Name: focused ultrasound neuromodulation of human in vitro neural cultures in multi-well microelectrode arrays
Uploaded: 2024-05-03T12:40:00
Duration: 4 min
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Amir Manbachi e Nitish Thakor agradecem o apoio financeiro da Defense Advanced Research Projects Agency, DARPA, Contrato de Adjudicação: N660012024075. Além disso, Amir Manbachi reconhece o apoio financeiro do Programa de Acadêmicos de Pesquisa Clínica (KL2) do Johns Hopkins Institute for Clinical and Translational Research (ICTR), administrado pelo National Center for Advancing Translational Sciences (NCATS), National Institutes of Health (NIH). Nitish Thakor reconhece o apoio financeiro dos Institutos Nacionais de Saúde (NIH): R01 HL139158-01A1 e R01 HL071568-15.

1. Preparação dos materiais
<ol><li>Aspirar o meio de cultura e utilizá-lo para preencher um único poço em uma placa de cultura de neurônios de 24 poços com MEA embutido (Figura 2A). Cultivar e induzir os neurônios seguindo o protocolo publicado por Taga et al.13.</li>
	<li>Esterilizar a interface parafilme, o elástico e o cone de FUS com sua membrana de borracha usando etanol 70% por 10 min e colocá-los no exaustor para posterior montagem.</li>
	<li>Degas 300 mL de água deionizada e 50 mL de gel de acoplamento. Centrifugar a água e o gel a 160 x g durante 5 min para evitar a indução de cavitação no meio de acoplamento. Observação : A origem original dos HiPSCs é de linhas de célula GM01582 e CIPS. Em média, pode-se obter uma densidade de 5 x 104 neurônios motores e 2,5 x 104 astrócitos por poço14.</li>
</ol>2. Conexão e configuração dos periféricos
<ol><li>Fixe o cone FUS no transdutor usando parafusos e sele o cone com uma membrana de borracha flexível em um exaustor estéril ventilado. Encher o cone com a água desgaseificada e deionizada (DG-DI) do passo 1.3 e garantir a ausência de bolhas no cone para evitar cavitação.</li>
	<li>Use uma haste roscada personalizada para fixar o suporte impresso em 3D a um quadro (Figura 2B). Posicione o quadro de forma que a cabeça do transdutor FUS fique sobre o poço que será estimulado.</li>
	<li>Use um elástico para fixar o parafilme sobre o poço na placa MEA de 24 poços que contém o meio e os HiPSCs.</li>
	<li>Prepare o sistema FUS conectando a eletrônica do driver de back-end do transdutor de ultrassom, neste caso, a potência de saída do transdutor (TPO; Figura 3A), a uma tomada de 100-240 V (Figura 3B, Conexão 6) e conectando a rede correspondente ao TPO e ao transdutor FUS (Figura 3B, Conexão 1 e Conexão 2, respectivamente). A rede correspondente garante um acoplamento elétrico eficiente entre o transdutor e o TPO.</li>
	<li>Conecte o sistema MEA a uma tomada (100-240 V) (Figura 3B, Conexão 5). Conecte a porta de sincronização do sistema MEA ao TPO (Figura 3B, Conexão 3). Essa conexão sincronizará a aquisição de dados pelo sistema MEA com a estimulação do USF.</li>
	<li>Coloque a placa MEA de 24 poços no sistema MEA e remova a tampa para permitir o contato direto entre o transdutor e o poço. Colocar o transdutor 5-10 mm acima da placa do poço para permitir espaço para o gel de acoplamento desgaseificado, conforme descrito no passo 3.2 (Figura 3A e Figura 2B).</li>
</ol>3. Estimulação e aquisição do sinal neuronal
<ol><li>Defina os parâmetros FUS no painel de controle TPO (Tabela 1).</li>
	<li>Aplicar o gel de acoplamento por cima do parafilme e abaixar o transdutor FUS no gel de acoplamento, garantindo o contato com o gel com o mínimo de bolhas de ar (Figura 2A).</li>
	<li>Inicie a gravação do sistema MEA clicando no botão Iniciar na interface do usuário.</li>
	<li>Inicie a sonicação FUS pressionando o botão inferior direito no TPO (Figura 3A, Rótulo 7) e aguarde pelo menos 5 min entre cada rodada de sonicação para permitir que os neurônios retornem a um estado basal.</li>
	<li>Utilize o pulso de disparo gerado pelo sistema FUS para alinhar a sequência de estimulação do FUS ao registro MEA (Figura 3B, Conexão 3).</li>
</ol>4. Processamento e análise de dados
<ol><li>Transfira os dados do sistema MEA para o computador usando uma conexão USB (Figura 3B, Conexão 4). Inicie isso clicando no painel Configuração de experimento . Em seguida, escolha o tipo de dados que se deseja gravar. Neste caso, os picos brutos são recomendados. Finalmente, nomeie o arquivo e selecione o local desejado dentro da unidade de disco para concluir a transferência. Observação : as etapas a seguir podem ser executadas executando o script Python liberado no https://github.com/Rxliang/FUSNeuromod.</li>
	<li>Leia os dados de cada um dos 16 eletrodos.</li>
	<li>Aplique um filtro passa-banda Butterworth com uma largura de banda de 5 Hz a 3 kHz com uma ordem Butterworth de 8. NOTA: Para otimizar esses valores, é crucial levar em conta a taxa de disparo das células específicas e o número de células envolvidas. Multiplicando esses 2 valores, pode-se estimar a taxa de disparo geral da população celular no experimento.</li>
	<li>Aplique um filtro gaussiano com σ = 3 para suavizar o sinal. NOTA: O parâmetro pode ser otimizado com base nos valores recomendados do sistema MEA, pois a suavização excessiva pode resultar em distorção de dados após a aquisição, e pouca suavização introduziria ruído indesejado.</li>
	<li>Defina um limite para detectar os picos potenciais como 5 vezes o desvio padrão do sinal suavizado gaussiano.</li>
	<li>Calcule a taxa de disparo dividindo o número de picos registrados em uma janela de 50 ms em todos os 16 canais pelo comprimento da janela (ou seja, 50 ms). Desloque a janela ao longo do sinal para o próximo quadro e repita o cálculo da taxa de disparo (Figura 1 Suplementar).</li>
	<li>Analise o sinal lendo o tempo de sonicação FUS dos dados transferidos com base na mudança na taxa de disparo associada ao FUS.</li>
</ol>5. Limpeza e reutilização de placas MEA multi-poços
<ol><li>Uma vez concluídos os experimentos, use uma pipeta para remover cuidadosamente o meio dos poços na placa de poços múltiplos, tomando cuidado para evitar a superfície do eletrodo.</li>
	<li>Adicionar 2 mL de água DG-DI por poço. Aspirar e repetir uma vez.</li>
	<li>Para desalojar quaisquer células e detritos, adicione uma mistura de 1 g de detergente enzimático Terg-A-Zyme com 10 mL de água DG-DI estéril (0,3 mL por poço) à placa. Deixe incubar durante a noite à temperatura ambiente (TR).</li>
	<li>No dia seguinte, retirar a solução dos poços e enxaguar com 1 mL de água DG-DI estéril.</li>
	<li>Incubar a placa de poço múltiplo por 5-7 min e aspirar. Repita esta etapa 5 vezes.</li>
	<li>Adicionar 0,5 mL de água DG-DI estéril por poço. Registre a linha de base da placa de poço múltiplo limpa para validar se a placa MEA está limpa. Uma placa limpa deve apresentar padrões de ruído gaussianos com baixos valores de intensidade.</li>
	<li>Conservar a placa de poço múltiplo limpa a 4 °C até estar pronta para ser utilizada novamente. Troque a água em que os MEAs são armazenados pelo menos uma vez por mês.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Kamimura, H. A. S., Conti, A., Toschi, N., Konofagou, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound+neuromodulation:+Mechanisms+and+the+potential+of+multimodal+stimulation+for+neuronal+function+assessment.">Ultrasound neuromodulation: Mechanisms and the potential of multimodal stimulation for neuronal function assessment.</a> Frontiers in Physics. 8, 150 (2020).</li><li>Manbachi, A., Kempski, K. M., Curry, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Abundant Promise of Ultrasound in Neurosurgery: A Broad Overview and Thoughts on Ethical Paths to Realizing Its Benefits. , (2022).</li><li>. Handbook for Clinical Ultrasound.Beginner's Guide to Fundamental Physics &amp; Medical Ultrasound Applications. Audible Available from: <a target="_blank" href="https://www.audible.com/pd/Handbook-for-Clinical-Ultrasound-Audiobook/B0983XJY83">https://www.audible.com/pd/Handbook-for-Clinical-Ultrasound-Audiobook/B0983XJY83</a> (2021)</li><li>Yoo, S., Mittelstein, D. R., Hurt, R. C., Lacroix, J., Shapiro, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Focused+ultrasound+excites+cortical+neurons+via+mechanosensitive+calcium+accumulation+and+ion+channel+amplification.">Focused ultrasound excites cortical neurons via mechanosensitive calcium accumulation and ion channel amplification.</a> Nature Communications. 13 (1), 493 (2022).</li><li>Szczot, M., Nickolls, A. R., Lam, R. M., Chesler, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+form+and+function+of+PIEZO2.">The form and function of PIEZO2.</a> Annual Review of Biochemistry. 90, 507-534 (2021).</li><li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Miniature+ultrasound+ring+array+transducers+for+transcranial+ultrasound+neuromodulation+of+freely-moving+small+animals.">Miniature ultrasound ring array transducers for transcranial ultrasound neuromodulation of freely-moving small animals.</a> Brain Stimulation: Basic, Translational, and Clinical Research in Neuromodulation. 12 (2), 251-255 (2019).</li><li>Hoffman, B. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Focused+ultrasound+excites+action+potentials+in+mammalian+peripheral+neurons+in+part+through+the+mechanically+gated+ion+channel+PIEZO2.">Focused ultrasound excites action potentials in mammalian peripheral neurons in part through the mechanically gated ion channel PIEZO2.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 119 (21), e2115821119 (2022).</li><li>Tyler, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mechanobiology+of+brain+function.">The mechanobiology of brain function.</a> Nature Reviews Neuroscience. 13 (12), 867-878 (2012).</li><li>Collins, M. N., Legon, W., Mesce, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+inhibitory+thermal+effects+of+focused+ultrasound+on+an+identified,+single+motoneuron.">The inhibitory thermal effects of focused ultrasound on an identified, single motoneuron.</a> eNeuro. 8 (2), (2021).</li><li>Chalfie, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurosensory+mechanotransduction.">Neurosensory mechanotransduction.</a> Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 10 (1), 44-52 (2009).</li><li>Launay, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TRPM4+Is+a+Ca2+-activated+nonselective+cation+channel+mediating+cell+membrane+depolarization.">TRPM4 Is a Ca2+-activated nonselective cation channel mediating cell membrane depolarization.</a> Cell. 109 (3), 397-407 (2002).</li><li>Cain, S. M., Snutch, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contributions+of+T-type+calcium+channel+isoforms+to+neuronal+firing.">Contributions of T-type calcium channel isoforms to neuronal firing.</a> Channels. 4 (6), 475-482 (2010).</li><li>Taga, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+an+electrophysiological+platform+for+modeling+ALS+with+regionally-specific+human+pluripotent+stem+cell-derived+astrocytes+and+neurons.">Establishment of an electrophysiological platform for modeling ALS with regionally-specific human pluripotent stem cell-derived astrocytes and neurons.</a> Journal of Visualized Experiments. (174), e62726 (2021).</li><li>Taga, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+human-induced+pluripotent+stem+cell-derived+spinal+cord+astrocytes+in+the+functional+maturation+of+motor+neurons+in+a+multielectrode+array+system.">Role of human-induced pluripotent stem cell-derived spinal cord astrocytes in the functional maturation of motor neurons in a multielectrode array system.</a> Stem Cells Translational Medicine. 8 (12), 1272-1285 (2019).</li><li>Manuel, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound+neuromodulation+depends+on+pulse+repetition+frequency+and+can+modulate+inhibitory+effects+of+TTX.">Ultrasound neuromodulation depends on pulse repetition frequency and can modulate inhibitory effects of TTX.</a> Scientific Reports. 10 (1), 15347 (2020).</li><li>Treeby, B. E., Cox, B. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=k-wave:+Matlab+toolbox+for+the+simulation+and+reconstruction+of+photoacoustic+wave+fields.">k-wave: Matlab toolbox for the simulation and reconstruction of photoacoustic wave fields.</a> J. Biomed. Opt. 15 (2), 021314 (2010).</li><li>Akhtar, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+peripheral+focused+ultrasound+neuromodulation+of+the+celiac+plexus+ameliorates+symptoms+in+a+rat+model+of+inflammatory+bowel+disease.">Noninvasive peripheral focused ultrasound neuromodulation of the celiac plexus ameliorates symptoms in a rat model of inflammatory bowel disease.</a> Experimental Physiology. 106 (4), 1038-1060 (2021).</li><li>Smirnova, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Organoid+intelligence+(OI):+The+new+frontier+in+biocomputing+and+intelligence-in-a-dish.">Organoid intelligence (OI): The new frontier in biocomputing and intelligence-in-a-dish.</a> Frontiers in Science. 1, 1017235 (2023).</li><li>Saccher, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Focused+ultrasound+neuromodulation+on+a+multi-well+MEA.">Focused ultrasound neuromodulation on a multi-well MEA.</a> Bioelectronic Medicine. 8 (1), 2 (2022).</li><li>Yger, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+spike+sorting+toolbox+for+up+to+thousands+of+electrodes+validated+with+ground+truth+recordings+in+vitro+and+in+vivo.">A spike sorting toolbox for up to thousands of electrodes validated with ground truth recordings in vitro and in vivo.</a> eLife. 7, e34518 (2018).</li><li>Babakhanian, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+low+intensity+focused+ultrasound+on+liposomes+containing+channel+proteins.">Effects of low intensity focused ultrasound on liposomes containing channel proteins.</a> Scientific Reports. 8, 17250 (2018).</li><li>Liang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Designing+an+Accurate+Benchtop+Characterization+Device:+An+acoustic+measurement+platform+for+localizing+and+implementing+therapeutic+ultrasound+devices+and+equipment+(amplitude).">Designing an Accurate Benchtop Characterization Device: An acoustic measurement platform for localizing and implementing therapeutic ultrasound devices and equipment (amplitude).</a> 2022 Design of Medical Devices Conference. , (2022).</li><li>Ko, H., Yoon, S. -. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optogenetic+neuromodulation+with+gamma+oscillation+as+a+new+strategy+for+Alzheimer+disease:+A+narrative+review.">Optogenetic neuromodulation with gamma oscillation as a new strategy for Alzheimer disease: A narrative review.</a> Journal of Yeungnam Medical Science. 39 (4), 269-277 (2022).</li><li>White, M., Mackay, M., Whittaker, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taking+optogenetics+into+the+human+brain:+Opportunities+and+challenges+in+clinical+trial+design.">Taking optogenetics into the human brain: Opportunities and challenges in clinical trial design.</a> Open Access Journal of Clinical Trials. 2020, 33-41 (2020).</li></ol>

Os autores declaram que a pesquisa foi conduzida na ausência de quaisquer relações comerciais ou financeiras que pudessem ser interpretadas como um potencial conflito de interesses. Amir Manbachi leciona e presta consultoria para a BK Medical (GE Healthcare) e Neurosonics Medical e é inventor de várias tecnologias FUS com patente pendente. Betty Tyler tem financiamento de pesquisa do NIH e é coproprietária da Accelerating Combination Therapies (incluindo capital ou opções). licenciou uma de suas patentes e é acionista da Peabody Pharmaceuticals.

Este manuscrito descreve um novo método que pode ser usado para registrar a atividade neuronal em HiPSCs durante a neuromodulação do USF. Este protocolo é generalizável para diferentes transdutores FUS e sistemas MEA. Para replicar os resultados observados com o protocolo descrito, o pesquisador deve garantir que o ponto focal do transdutor seja maior que a área do fundo do poço MEA. Além disso, se diferentes linhagens de células neuronais forem usadas, os parâmetros do filtro devem ser sintonizados com a resposta de frequência esperada para as células dentro do poço. Se resultados representativos não puderem ser alcançados, deve-se considerar a modificação dos parâmetros acima mencionados (por exemplo, o comprimento de ruptura, intensidade, ciclo de trabalho, etc.).
Embora este trabalho tenha demonstrado um aumento na taxa de disparo após a estimulação com USF, mais dados devem ser coletados para demonstrar a repetibilidade desse achado antes que qualquer conclusão seja tirada. Este protocolo herda as limitações dos sistemas MEA, que tipicamente apresentam fraquezas decorrentes do registro do sinal de corrente direta do microeletrodo. Embora o contato direto com o neurônio proporcione melhor sensibilidade, ele pode alterar a célula e afetar a precisão da medição. Além disso, devido ao pequeno tamanho dos poços, nosso sistema não inclui tecido periférico, que também pode desempenhar um papel na neuromodulação17. Isso pode limitar a aplicabilidade das conclusões tiradas dessa configuração para ambientes in vivo . Para estudar respostas de rede mais complexas, um sistema MEA de maior densidade de canais deve ser projetado para melhorar sua sensibilidade18. Várias direções futuras para esse sistema proposto foram identificadas, incluindo o uso de um pórtico 3D para segurar o transdutor e garantir a colocação precisa19. Melhorias adicionais poderiam ser feitas em relação ao algoritmo de pós-processamento, incluindo a utilização de um algoritmo de classificação de spiking20 para classificar neurônios individuais. Esse processo seria benéfico para desembaraçar as respostas de neurônios multiunidades em estudos futuros sobre os mecanismos da FUS. Mais importante, é essencial incorporar modalidades adicionais de estimulação, como estímulos químicos, elétricos e ópticos, para elucidar os mecanismos subjacentes. Esses métodos podem alterar propriedades e comportamentos neuronais, como inibir canais iônicos específicos15 ou modificar as características da membrana21. Ao modular os principais fatores dentro da via de sinalização hipotética, os pesquisadores podem identificar as contribuições de cada fator em ambientes controlados e, finalmente, lançar luz sobre as interações complexas em jogo.
A estimulação elétrica22 é uma das técnicas mais consagradas para neuromodulação, com uma longa história de aplicações bem-sucedidas em ambientes clínicos e de pesquisa. Por outro lado, o USF e a optogenética23 são modalidades relativamente novas que têm ganhado atenção nos últimos anos. As principais vantagens do USF são sua não invasividade e capacidade de estimular neurônios em profundidades que podem ser difíceis de alcançar com outras técnicas, incluindo estimulação elétrica e optogenética. Entretanto, assim como a optogenética24, a USF apresenta algumas limitações relacionadas à modelagem da propagação da onda e das respostas neuronais associadas. Captar a complexidade das propriedades acústicas heterogêneas do tecido in vivo pode ser um desafio, o que leva a incertezas no campo de pressão e, consequentemente, nas respostas neuronais. Essa dificuldade em modelar com precisão essas propriedades representa um desafio ao otimizar a técnica para aplicações específicas do mundo real. As complexidades inerentes enfatizam a importância de sistemas in vitro como o deste estudo, pois possibilitam o estudo direto das respostas sob condições de intensidade acústica controlada.
Em conclusão, este sistema fornece uma plataforma in vitro de alto rendimento para estudar os efeitos neuromodulatórios do USF em neurônios humanos. Com esse sistema, os mecanismos de ação do USF podem ser explorados medindo-se as respostas elétricas dos neurônios humanos quando expostos a diferentes níveis e tipos de estimulação em ambiente controlado. Portanto, oferece uma valiosa ferramenta complementar aos modelos humanos e animais comumente utilizados no campo.

O ultrassom focalizado (FUS) é uma modalidade promissora de neuromodulação que permite a estimulação não invasiva em centímetros de profundidade com resolução submilimétrica 1,2,3. Apesar desses pontos fortes, o impacto clínico do USF é limitado, em parte devido à falta de conhecimento sobre seu mecanismo de ação. Sem uma base teórica sólida, pesquisadores e clínicos enfrentam dificuldades em adaptar a terapia para atender às necessidades específicas de pacientes individuais sob condições variadas. Uma teoria proeminente proposta por Yoo et al.4 sugere que os canais iônicos mecanossensíveis são responsáveis pela ativação dos neurônios. No entanto, essa teoria falha em explicar a ativação do USF em neurônios cerebrais humanos, que carecem desses canais5. Essa ambiguidade limita o uso do USF na clínica, pois impede o ajuste dos parâmetros do USF para otimizar os resultados do tratamento.
Estudos anteriores relacionados empregaram uma variedade de abordagens para investigar os mecanismos fisiológicos subjacentes ao USF e determinar os parâmetros ótimos de estimulação. Uma etapa crucial nesse processo envolve o monitoramento das respostas neuronais como feedback, que pode ser obtido por meio de métodos que envolvem monitoramento por portas iônicas, como imagens por íons cálcio4, imagens ópticas1 e registro eletrofisiológico ex vivo (por exemplo, eletromiografia6 ou eletrofisiologia pele-nervo7). No entanto, a maioria desses estudos usa neurônios não humanos ou abordagens in vivo, o que pode introduzir variações adicionais devido a controles subótimos. Em contraste, o uso de eletrodos para medir sinais neuronais em neurônios de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (HiPSC) in vitro oferece medidas mais sensíveis e maior controle sobre o ambiente experimental. Neste trabalho, um sistema in vitro foi desenvolvido utilizando arranjos de microeletrodos (MEAs) para medir as respostas elétricas de neurônios HiPSC após estimulação com USF, como mostra a Figura 1. Esse sistema capacita os pesquisadores da comunidade a monitorar as respostas neuronais ao variar os parâmetros do ultrassom (por exemplo, frequência, comprimento de explosão, intensidade). Além disso, esse sistema permite um alto nível de controle da sensibilidade neuronal a estímulos físicos (por exemplo, temperatura, pressão e cavitação)8,9, uma vez que a funcionalidade dos canais iônicos dos neurônios pode ser manipulada genética e farmacologicamente (por exemplo, usando gadolínio para inibir canais iônicos)10,11,12. Esse controle em nível molecular pode ajudar a elucidar os mecanismos por trás dos efeitos neuromodulatórios da FUS.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>MEA System</td>
			<td>Axion Biosystem Inc.</td>
			<td>Maestro Edge</td>
			<td>Sampling Rate: 11500 Hz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEA Plate</td>
			<td>Axion Biosystem Inc.</td>
			<td>CytoView MEA</td>
			<td>Electrode and Well: 16 electrodes in 24 wells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Well plate Interface</td>
			<td>Amcor Inc.</td>
			<td>Parafilm PM996; P7793</td>
			<td>Thickness: 127 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CO2 Tank and Regulator for culture</td>
			<td>AirGas Inc./ Harris Inc.</td>
			<td>9296NC</td>
			<td>Concentration: 5%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Culture Media</td>
			<td>ThermoFisher Inc.</td>
			<td>Laminin; 23017-015</td>
			<td>Concentration: 1 &#181;g/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HiPSC Neurons</td>
			<td>Peprotech</td>
			<td>CIPS and GM01582 Derived; 450-10</td>
			<td>Concentration: 10 ng/mL (Refer Taga et al [2021]13)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>CTX250; 008</td>
			<td>Center Frequency: 250 kHz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matching Network</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>CTX250; NFS102v2</td>
			<td>Impedance: 50 &#937;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer Power Output (TPO)</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>Version 4.1; 020</td>
			<td>Frequency: From 250 kHz to 2.5 MHz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Membrane</td>
			<td>McMaster Inc.</td>
			<td>Silicone Rubber; 5542N115</td>
			<td>Thickness: 0.0127 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coupling Gel</td>
			<td>Parker Laboratory Inc.</td>
			<td>Aquasonic 100; B08DDWG GXB</td>
			<td>Viscosity: 130,000&#8211;185,000 cops</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Connection to Probe holder</td>
			<td>McMaster Inc.</td>
			<td>Steal Threaded Rod; 90322A661</td>
			<td>Length: 1&#8211;1/2&#34; Long</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>ThermoFisher Inc.</td>
			<td>Sorvall Legend X1R; 75004261</td>
			<td>Max acceleration: 10&#8211;25,830 x g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrophone</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>Y-104; 009</td>
			<td>Range: 50 kHz&#8211;1.9 MHz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water Tank</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>WT</td>
			<td>Size: 30 cm x 30 cm x 30 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water Conditioning Unit</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>WCU; SN006</td>
			<td>Flow Velocity: 50 mL/s maximum</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oscilloscope</td>
			<td>Rohde-Schwarz Inc.</td>
			<td>RTC1002</td>
			<td>Sampling rate: Up to 50 MHz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stage</td>
			<td>Sonic Concepts Inc.</td>
			<td>MicroStage; 2</td>
			<td>Accuracy: 1 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermochromic sheet</td>
			<td>TIPTEMP Inc.</td>
			<td>Liquid Crystal Sheet; TLCSEN337</td>
			<td>Range: 22&#8211;24 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer</td>
			<td>Microsoft Surface</td>
			<td>Surface Pro</td>
			<td>CPU i5 1035G4: 3.7 GHz</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Data Transfer Software</td>
			<td>Mathworks Inc.</td>
			<td>MATLAB</td>
			<td>Version 2021b</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Processing Software</td>
			<td>Python Software Foundation</td>
			<td>Python</td>
			<td>Version 3.7.10</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

focused ultrasound neuromodulation of human in vitro neural cultures in multi-well microelectrode arrays

Os efeitos neuromodulatórios do ultrassom focalizado (FUS) têm sido demonstrados em modelos animais, e o USF tem sido usado com sucesso para tratar distúrbios psiquiátricos e de movimento em humanos. No entanto, apesar do sucesso da USF, o mecanismo subjacente aos seus efeitos sobre os neurônios permanece pouco compreendido, dificultando a otimização do tratamento pelo ajuste dos parâmetros do USF. Para suprir essa lacuna no conhecimento, estudamos neurônios humanos in vitro usando neurônios cultivados a partir de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (HiPSCs). O uso de HiPSCs permite o estudo de comportamentos neuronais específicos de humanos em estados fisiológicos e patológicos. Este relato apresenta um protocolo para o uso de um sistema de alto rendimento que permite monitorar e quantificar os efeitos neuromodulatórios do USF sobre os neurônios HiPSC. Variando os parâmetros do FUS e manipulando os neurônios HiPSC através de modificações farmacêuticas e genéticas, os pesquisadores podem avaliar as respostas neurais e elucidar os efeitos neuromodulatórios do FUS nos neurônios HiPSC. Esta pesquisa pode ter implicações significativas para o desenvolvimento de terapias seguras e eficazes baseadas em FUS para uma variedade de distúrbios neurológicos e psiquiátricos.

Em resumo, apresentamos um protocolo que permite o monitoramento in vitro da neuromodulação por FUS utilizando neurônios cultivados a partir de HiPSCs. A plataforma geral do sistema para estimular neurônios induzidos por HiPSC e registrar as respostas elétricas correspondentes para análise está descrita na Figura 1. Este estudo enfoca a estimulação dos neurônios pelo USF e o registro das respostas elétricas em um sistema MEA, como mostra a Figura 2. Os componentes periféricos dos sistemas FUS e MEA e suas conexões estão ilustrados na Figura 3.
A caracterização do ponto focal é realizada antes dos experimentos neuronais para garantir que o fundo do poço seja totalmente coberto pelo ponto focal FUS. A visualização do ponto focal em folhas termocrômicas, como mostra a Figura 4, deve ser realizada para avaliar o sistema USF. Após a caracterização do ponto focal, as etapas de pós-processamento, incluindo filtragem, limiarização e cálculo da taxa de disparo, devem ser realizadas, e estas estão resumidas na Figura 5 e na Figura 6. Esses passos são essenciais para recuperar sinais úteis filtrando o ruído do ambiente e, assim, obter informações sobre as alterações da atividade neuronal causadas pela FUS. Os gráficos de Raster na Figura 6A-B mostram os picos detectados em cada canal. Como todo o fundo do poço está dentro do ponto focal do transdutor de USF, espera-se que o FUS altere a taxa de disparo em todos os eletrodos. Essa mudança na taxa de disparo é visualizada no gráfico de velocidade de disparo mostrado na Figura 6C, que mostra que os parâmetros de estimulação escolhidos resultaram em um aumento na taxa de disparo neuronal. Especificamente, a taxa de disparo pré-FUS (ou seja, basal) foi de 140 Hz ± 116,7 Hz, enquanto a taxa de disparo pós-FUS foi de 786 Hz ± 419,4 Hz com FUS de onda contínua. Além disso, a Figura 6C mostra como a alteração dos parâmetros do FUS (por exemplo, usando FUS de onda pulsada em vez de onda contínua) pode alterar a magnitude da mudança na taxa de disparo, bem como alterar a quantidade de tempo antes que os neurônios retornem ao seu estado basal. O ultrassom focalizado de baixa intensidade (IFLI) não causa aquecimento significativo das culturas, principalmente quando comparado ao ultrassom focado de alta intensidade, que pretende atingir lesão térmica. A ausência de mudança de temperatura clinicamente impactante é apoiada por cálculos teóricos e simulações (Figura 2 Suplementar). Mesmo em casos extremos dos parâmetros experimentais do USF listados na Tabela 1, apenas um aumento mínimo de temperatura pôde ser observado de aproximadamente 0,04 °C.
O uso de um gráfico de velocidade de disparo permite a quantificação dos efeitos neuromodulatórios do USF e pode ser usado para diferenciar entre respostas excitatórias e inibitórias. Uma vantagem significativa da placa MEA multipoço é que ela pode ser reutilizada várias vezes para estudar estados neuronais variados e parâmetros de estimulação de uma maneira de alto rendimento.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65115/65115fig01.jpg"> Figura 1: Visão geral da plataforma in vitro para a neuromodulação de neurônios em um poço com ultrassom focalizado (FUS) e a medição de sua atividade neuronal usando um arranjo de microeletrodos. Cada eletrodo (linhas vermelhas, verdes e azuis) registra uma população de neurônios dentro de um único poço. Um pipeline de processamento é implementado para converter os registros elétricos neuronais brutos na detecção de padrões de disparo neuronal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/65115fig01large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65115/65115fig02.jpg"> Figura 2: Neuromodulação do FUS com arranjo de microeletrodos (MEA) multipoço . (A) Esquema do setup para neuromodulação do FUS com um MEA multi-poço. As ondas acústicas geradas pelo transdutor FUS propagam-se através de um cone de FUS preenchido com água desgaseificada e são acopladas com gel de ultrassom. O parafilme é fixado ao poço usando um elástico para evitar contaminação. A placa MEA envia gravações elétricas dos neurônios para o sistema MEA. (B) Uma fotografia do transdutor FUS na placa multipoço contida no sistema MEA. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/65115fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65115/65115fig03.jpg"> Figura 3: Configuração da plataforma in vitro . (A) A parte frontal da configuração da plataforma in vitro . A potência de saída do transdutor (TPO; esquerda) é usada para programar os parâmetros do FUS. O sistema MEA (direito) registra a atividade elétrica dos neurônios da placa do poço, que são neuromodulados pelo transdutor de USF. (B) A parte traseira da configuração da plataforma in vitro com conexões da rede de correspondência (1) ao TPO e (2) ao transdutor. (3) A conexão do sistema MEA ao TPO sincroniza a aquisição de dados. (4) A ligação do sistema MEA ao computador para transferência de dados. (5) A ligação eléctrica ao sistema MEA. (6) A conexão de energia ao sistema FUS. (7) O botão de sonicação. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/65115fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65115/65115fig04v2.jpg"> Figura 4: Caracterização do transdutor de USF. (A) Mapa de pressão do ponto focal utilizando os parâmetros do USF detalhados na Tabela 1 medidos pelo sistema AMPLITUDE15. (B) Pré e pós-sonicação de uma folha termocrômica colocada no fundo de um poço utilizando o arranjo experimental mostrado na Figura 3. A folha termocrômica muda de cor em resposta a mudanças de temperatura, o que fornece uma validação visual de estimulação bem-sucedida na localização dos neurônios. A intensidade média máxima do pulso de pico espacial (ISPPA) de 30 W/cm2 e a sonicação contínua de 3 min foram ajustadas para alterar drasticamente a temperatura local para melhor visualização deste ponto focal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/65115fig04largev2.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65115/65115fig05.jpg"> Figura 5: Pipeline de processamento. Passo 1: As gravações elétricas brutas são capturadas de N = 16 canais. As etapas futuras mostram o processo usando o canal 16 (descrito em vermelho). Passo 2: Para cada canal, um filtro passa-banda Butterworth (passa-banda de 5 Hz a 3 kHz) é aplicado, seguido por um filtro gaussiano (σ = 3). Um limiar é definido como cinco vezes o desvio padrão do sinal dentro de uma janela de 2 s centrada no início da sonicação. Passo 3: Sinais acima ou abaixo do limiar são caracterizados como picos. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/65115fig05large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65115/65115fig06.jpg"> Figura 6: Gráficos de raster e taxa de disparo. (A) Gráfico raster dos picos detectados em cada canal em função do tempo de sonicação. O tempo de estimulação do USF é anotado por meio de uma linha vermelha. (B) Gráfico raster de neurônios sob diferentes configurações de FUS com FUS contínuo para comparação. (C) A taxa de disparo foi calculada usando uma janela deslizante de 50 ms. As taxas médias de disparo pré e pós-USF foram de 140 Hz e 786 Hz, respectivamente. Com fus pulsada, as taxas médias de disparo foram de 230 Hz e 540 Hz. Uma ativação mais curta e menor mudança de taxa foram induzidas por esse conjunto de estímulos variáveis do USF. O processo de cálculo da taxa de disparo está detalhado na Figura Suplementar 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/65115fig06large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Parâmetro</td>
			<td>Valor</td>
		</tr><tr><td>Potência máxima/ch.</td>
			<td>1.200 W</td>
		</tr><tr><td>Patual</td>
			<td>0,749 W/canal.</td>
		</tr><tr><td>ISPPA</td>
			<td>10,79 W/cm2</td>
		</tr><tr><td>EuSPTA</td>
			<td>0,05 W/cm2</td>
		</tr><tr><td>Comprimento de intermitência</td>
			<td>0,100 ms</td>
		</tr><tr><td>Frequência</td>
			<td>250,00 kHz</td>
		</tr><tr><td>Foco</td>
			<td>39.800 milímetros</td>
		</tr><tr><td>Período</td>
			<td>20.000 ms</td>
		</tr><tr><td>Temporizador</td>
			<td>60.000 s</td>
		</tr></tbody></table>Tabela 1: Parâmetros do ultrassom focalizado (FUS) fixados no TPO para o estudo apresentados na Figura 4.
Figura suplementar 1: Processamento do gráfico Raster para a taxa de disparo. Passo 1: Conte os picos entre todos os canais para obter o número de contagem dentro de uma determinada janela deslizante. Nota: Aqui, uma janela deslizante maior (definida para 0,1 s) foi escolhida para melhor ilustração. Passo 2: Converta os picos por comprimento de janela em picos por segundo (por exemplo, aqui, multiplique as contagens por 10 para converter em hertz [Hz] e, em seguida, divida por 1.000 para obter o valor em kilohertz [kHz]). Passo 3: A curva de taxa de disparo adquirida como resultado. Um kit de ferramentas de código aberto, juntamente com dados de amostra, está disponível no GitHub (https://github.com/Rxliang/FUSNeuromod). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/SupFig1.pdf" target="_blank">Clique aqui para baixar este arquivo.</a>
Figura suplementar 2: Perfil de temperatura do resultado da simulação da onda K do LIFU16. Com base no mapa de intensidade acústica mostrado na Figura 4, o resultado da simulação da onda K sugere um aumento máximo de temperatura de 0,04 °C na região central da zona focal (raio: 2 mm) usando o caso extremo dos parâmetros experimentais do USF listados na Tabela 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65115/SupFig2.pdf" target="_blank">Clique aqui para baixar este arquivo.</a>

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Focused Ultrasound Neuromodulation of Human In Vitro Neural Cultures in Multi-Well Microelectrode Arrays

Aqui, apresentamos um protocolo para o uso de um sistema de alto rendimento que permite o monitoramento e a quantificação dos efeitos neuromodulatórios do ultrassom focalizado em neurônios de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (HiPSC).

Neuromodulação por Ultrassom Focalizado de Culturas Neurais Humanas In Vitro em Matrizes de Microeletrodos Multi-Poço

The neuromodulatory effects of focused ultrasound (FUS) have been demonstrated in animal models, and FUS has been used successfully to treat movement and ...

Neuromodulação ultrassônica focalizada. Este campo empolgante em ascensão é um tópico de estudos em andamento No campo do ultrassom focado, os parâmetros de estimulação ideais para uma aplicação específica são muitas vezes desconhecidos. Este estudo visa uma determinação sistemática destes parâmetros através de testes empíricos in vitro em neurônios.Este método pode explorar o mecanismo neuronal subjacente ao foco da neuromodulação ressonante, permitindo ao pesquisador analisar as respostas de neurônios geneticamente e farmacologicamente modificados. Para iniciar a aspiração do meio de cultura para preenchimento de um único poço em uma placa de cultura de neurônios de 24 poços, tendo embutidos micro arranjos de eletrodos ou MEA. Depois de preparar 300 mililitros de água desgaseificada e deionizada, preencha-a cuidadosamente no cone do ultrassom focalizado ou do transdutor de USF.Usando uma haste roscada personalizada, prenda o suporte impresso em 3D a um quadro. Posicione o quadro de forma que a cabeça do transdutor FUS fique sobre o poço que será estimulado. Use um elástico para fixar a paraforma sobre o poço na placa MEA de 24 poços contendo o meio e as células-tronco pluripotentes induzidas pelo homem ou HIPSCs.Defina os parâmetros FUS na saída de energia do transdutor ou no painel de controle TPO. Os valores dos vários parâmetros são mencionados na tela. Em seguida, aplique o gel de acoplamento em cima da paraforma sobre o poço e abaixe o transdutor FUS no gel de acoplamento, garantindo o contato com o gel com o mínimo de bolhas de ar.Inicie a sonicação FUS pressionando o botão inferior direito no TPO e aguarde pelo menos cinco minutos entre cada rodada de sonicação para permitir que os neurônios retornem a um estado basal. Se a conexão for apropriada, o pulso de disparo gerado pelo sistema FUS alinhará automaticamente a sequência de estimulação do FUS com o registro MEA. Analise o sinal lendo o tempo de sonicação do FUS com os dados de transferência com base na mudança na taxa de disparo associada ao FUS.O ponto focal de FUS foi caracterizado tanto pela visualização em folhas termocromáticas quanto pela varredura de hidrofone em água. As etapas de pós-processamento, incluindo filtragem, limiar e cálculo da taxa de disparo, filtraram o ruído do ambiente para revelar as mudanças na atividade neuronal causadas pelo FUS. Os gráficos raster mostraram os picos detectados em cada canal.O gráfico da taxa de disparo mostrou que os parâmetros de estimulação escolhidos aumentaram a taxa de disparo neuronal. A taxa de disparo pré FUS foi de 140 hertz, enquanto a taxa de disparo pós FUS foi de 786 hertz com FUS de onda contínua. A alteração do modo de sonicação do FUS também alterou a quantidade de tempo antes que os neurônios retornassem ao seu estado basal.É crucial minimizar cuidadosamente a formação de bolhas ao colocar o transdutor na interface paraforme. Outra consideração é a energia elétrica entregue ao transdutor. A potência deve ser alta o suficiente para induzir um efeito, mas deve ser baixa o suficiente para não induzir dano ao transdutor ou à célula.Essa técnica poderia identificar o parâmetro de estimulação ideal para tratar a doença de Parkinson e outros distúrbios neurológicos, eliminando o risco associado à cirurgia invasiva, incluindo danos irreversíveis, recuperação prolongada e tempo de reabilitação. Mais esforços para descobrir seu mecanismo e controlar a otimização pré-clínica são necessários para garantir a segurança em estudos futuros, incluindo ensaios clínicos.

Without Section

Research

Focused Ultrasound Neuromodulation of Human In Vitro Neural Cultures in Multi-Well Microelectrode Arrays

JoVE Journal

Neuroscience

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

Dissecção e Cultura de Neurônios da Medula Espinhal comissural embrionárias

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

Neurociência

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Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in ...

Time-lapse Live Imaging of Clonally Related Neural Progenitor Cells in the Developing Zebrafish Forebrain

Lapso de tempo de imagens ao vivo de relação clonal células progenitoras neurais no desenvolvimento Zebrafish Encéfalo anterior

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Gravação e modulação da atividade epileptiforme em fatias de cérebro de roedor acoplado para matrizes de microeletrodos

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