الأمثل<em&gt; السابقين البيضة</em&gt; التثقيف من الفرخ الأجنة إلى مراحل متقدمة من التطوير

Summary

Viewing and accessing the chicken embryo during development can be challenging. We have developed an ex ovo method that is simple, cost effective, and can easily be used in a classroom or research setting. This method provides access to the embryo into late stages of embryonic development (HH 40).

Abstract

Research in anatomy, embryology, and developmental biology has largely relied on the use of model organisms. In order to study development in live embryos model organisms, such as the chicken, are often used. The chicken is an excellent model organism due to its low cost and minimal maintenance, however they present observational challenges because they are enclosed in an opaque eggshell. In order to properly view the embryo as it develops, the shell must be windowed or removed. Both windowing and ex ovo techniques have been developed to assist researchers in the study of embryonic development. However, each of the methods has limitations and challenges. Here, we present a simple, optimized ex ovo culture technique for chicken embryos that enables the observation of embryonic development from stage HH 19 into late stages of development (HH 40), when many organs have developed. This technique is easy to adopt in both undergraduate classes and more advanced research laboratories where embryo manipulations are conducted.

Introduction

Ex ovo culturing has played an important role in the study of development of the chicken^{1, 2}. This culturing method has been used to study neurological diseases, limb development, craniofacial development, and as a model to investigate malformations associated with diabetes ^{3, 4, 5}.

There are many variations to the ex ovo technique. The most common approach is to use a Styrofoam cup^6,7,8 or a glass bowl⁵. In these methods, the cup or bowl is lined with plastic wrap to cradle the embryo, a lid is placed on the cup, and the embryo is then placed in an incubator with appropriate humidity⁶. This set up however, can be technically challenging. The first challenge is the plastic wrap that is used to cradle the embryo. This wrap is difficult to work with and often does not adhere to the cup very well. To solve this problem, an elastic band is placed around the cup to hold the wrap in place. Despite this, the wrap can still slip, which is fatal to the embryo. The plastic wrap has the potential to tear or get punctured by forceps or needles that may be used during embryo manipulations and observations. Finally, this set-up is not very stable and students can easily knock the cups over. The height of the cups also makes it very difficult to place the embryo under a stereomicroscope, which has a limited objective to stage height. These challenges make it difficult for undergraduate students to work with live chick embryos in teaching labs, such as advanced developmental biology courses.

The above challenges in the ex ovo method has meant that researchers turn to the windowing method ^9,10 to view embryonic chick development. In this technique, a hole or “window” is made in the eggshell overlying the embryo. The hole can be re-sealed with tape or wax⁹ to allow for further embryonic development. Although the windowing method has some advantages, such as the ability to view embryonic development and easy maintenance, this method also has several limitations. The first is that the window needs to be fairly large in order to view the entire embryo (especially at late stages). Secondly, large windows are difficult to seal; an improper seal will lead to sterility and survivability problems. Using molten wax as a sealant adds another inconvenient and messy step to the protocol. Therefore, although the windowing method may be ideal for chick embryos at young stages (HH 11 – HH 27), viewing the entire embryo at late stages is not easily accomplished.

Here, we describe an improved and simple ex ovo culturing technique¹¹ that avoids the need for high tech equipment, is easy to handle under a stereomicroscope, gives the embryo enough support to perform microscopic manipulations, and enables researchers to view the growth of the embryo in its entirety well into the later stages of development (up to HH 40-41). With these advances in the ex ovo technique, individuals gain access to a more complete understanding of embryonic development. For instance, growth into later stages allows individuals to observe developmental processes that do not occur until this time point, such as ossification, feather development, and advanced limb and eye development. The entire embryo and extraembryonic membranes and vasculature are clearly visible. More advanced research can also be performed, such as, embryonic manipulations (i.e., implanting beadssoaked in inhibitors or inserting barriers between tissue layers), and researchers are then able to observe the effect of the manipulations in later stage embryos.

Protocol

ملاحظة: يتم سرد كافة الإمدادات في الجدول 1.

1. تخزين الأجنة الدجاج

1. احتضان بيض الدجاج من سلالة جالوس جالوس أفقيا عند ³⁷ درجة مئوية مع ما يقرب من 40٪ الرطوبة وتحويل البيض مرة أو مرتين يوميا. تحول البيض المهم لمنع الجنين من الانضمام إلى قشر البيض.
2. لا لتحويل البيض في ساعة 24 قبل إنشاء ثقافة وإلا سوف يكون موجودا الجنين بطني إلى كتلة صفار البيض وسوف يكون معطوبا على فتح البيض في الخطوة 3. وبالإضافة إلى ذلك، والحفاظ على البيض عند 4 ^درجة مئوية درجة لمدة لا تزيد على أسبوع قبل الحضانة في التنمية "وقف" ولكن هذه ليست مثالية.

2. التدريج الأجنة الدجاج

1. استضافة أجنة الدجاج باستخدام همبرغر وهاميلتون ¹² الجدول التدريج. مرحلة مثالية لإقامة زراعة-البيضة السابقين هي HH مرحلة 19-20 (حوالي 3- يوما من الحضانة) تيروause هذا بعد فترة وجيزة يتحول الرأس في 53 HPF.
   ملاحظة: يتميز صاحب السمو مرحلة 19-20 من الصفات المورفولوجية التالية: يتم تمديد somites في الغالبية العظمى من الذيل، ولكن النهاية من الذيل يبقى unsegmented، وكرة لولبية من المهد ذيل، والسقاء صغير والأوعية الدموية محدودة، المحطة براعم هي أكبر من الجناح البراعم والعيون unpigmented أو لديها هوى رمادي.

3. إزالة الأجنة من شل

1. قبل إزالة الجنين من قذيفة، رش قذيفة مع الايثانول 70٪ واتركه حتى يجف. لا تتحول البيضة بسرعة حيث سيؤدي ذلك إلى تلف الجنين.
2. والحرص على عدم تغيير اتجاه البيض، والكراك بعناية البيض على الجانب السفلي (أي الجانب الذي كان بطني أثناء الحضانة) والافراج عن الجنين في عقيمة تزن قارب (88 س 88 × 23 ملم). مسح أسفل تزن القوارب مع 70٪ من الإيثانول. تفقد الجنين للتأكد من أن الكيس المحي غير تالف. إذا صفار حكما مكسورة، وتجاهل الجنين، كما انها لن البقاء على قيد الحياة.
3. مراقبة الجنين للتأكد من أنها غير قابلة للتطبيق. كان القلب ينبض، يظهر الأوعية الدموية العادية، ولا تشوهات واضحة موجودة. تأكد من أن حواف تزن قارب جافة.
4. باستخدام ماصة، وانخفاض 40 ميكرولتر من البنسلين / الستربتومايسين (5،000 وحدة البنسلين، 5 ملغ الستربتومايسين لكل مل) على أعلى من الألبومين للمساعدة في منع العدوى.

4. إعداد غرفة الرطوبة

1. وضع كومة صغيرة من كيم مناديل و / أو وسادة ماصة مصنوعة من القطن في الجزء السفلي من وعاء من البلاستيك معقمة (12 × 12 × 6 سم) تمحى مع 70٪ من الإيثانول.
2. إضافة الماء المعقم، المقطر لترطيب كيم مناديل و / أو القطن (حوالي 150 مل من الماء).

5. تجميع البيضة السابقين الثقافة

1. ضع وزن القارب الذي يحتوي على الجنين في أعلى الحشو رطبة. ثم، ومكان النصف من مربع معقم بتري طبق (9.5 X 9.5 سم) على رأس ركان وزن القارب لتشكيل غطاء فضفاض.
2. تغطية حاوية بلاستيكية مع غطاء لها. اضغط لأسفل ركنين من الغطاء، وضمان وجود ختم الجزئي الذي لا يزال يسمح لتدفق الهواء جيدة داخل الغرفة.
3. وضع بعناية الإعداد إلى C حاضنة ³⁷ درجة حتى المرحلة المطلوبة.
4. وضع حاويات من المياه في الحاضنة للمساعدة في السيطرة على الرطوبة، وإذا حاضنة الرطوبة تسيطر عليها غير متوفرة. تعقيم جميع المياه في غرف الرطوبة والحاضنة وتجديد حسب الحاجة أثناء فترة الحضانة. 40٪ نسبة الرطوبة مثالية.

النتائج

هذه البيضة السابقين الأسلوب يسمح لمراقبة الأجنة من المراحل الأولى من التنمية (HH 19/20) إلى المراحل المتأخرة للتنمية (HH 40-41) (الشكل 1A و 1B). وضع الثقافة في HH 19-20 يزيد بقاء الأجنة في الثقافة. وقبل رأسه تحول (قبل 53 HPF) البقاء على قيد الحياة ضئيلة جدا في الث?...

Discussion

البيضة السابقين زراعة ووضع النوافذ على حد سواء لها مزايا وتحديات. نحن هنا مقارنة المزايا والتحديات من الكأس السابق الستايروفوم البيضة طريقة وأسلوب النوافذ لدينا سابقا الأمثل البيضة الطريقة هو موضح هنا. لدينا وسيلة تمكن التلاعب والمراقبة سه?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Penicillin/Streptomycin	Sigma	P4458	Make small aliquots to avoid freeze/thaw events
Square Petri Dish			9.5 cm x 9.5 cm
Weigh Boat	Fischer Scientific	8732113	88 x 88 x 23 mm
Ziplock container	Ziplock	N/A	12 cm x 12 cm x 6 cm