قياس الاستقرار البروتين المتواجد في الحي اسماك الزرد الأجنة عن طريق الإسفار تسوس بعد Photoconversion (FDAP)

Summary

وغالبا ما ينظم مستويات البروتين في الخلايا والأنسجة بإحكام بواسطة ميزان إنتاج البروتين والتخليص. باستخدام الإسفار تسوس بعد Photoconversion (FDAP)، حركية إزالة البروتينات يمكن قياسها تجريبيا في الجسم الحي.

Abstract

استقرار البروتين يؤثر جوانب كثيرة من الأحياء، ويمكن قياس حركية إزالة البروتينات توفر معلومات هامة في النظم البيولوجية. في التجارب FDAP، يمكن قياس إزالة البروتينات داخل الكائنات الحية. والموسومة بروتين في المصالح مع بروتين فلوري photoconvertible، أعرب في الجسم الحي وphotoconverted، ويتم رصد انخفاض في إشارة photoconverted مع مرور الوقت. ثم تم تجهيز البيانات مع نموذج التخليص المناسب لتحديد بروتين نصف الحياة. الأهم من ذلك، يمكن فحص حركية تخليص السكان من البروتين في مقصورات مختلفة من الكائنات الحية بشكل منفصل من خلال تطبيق أقنعة المجزئ. وقد استخدم هذا الأسلوب لتحديد نصف العمر البينية وخارج الخلية من البروتينات مما يشير يفرز خلال تطوير الزرد. هنا، نحن تصف بروتوكول للتجارب FDAP في الأجنة الزرد. ينبغي أن يكون من الممكن استخدام FDAP لتحديد حركية تطهيرأي بروتين taggable في أي كائن الوصول بصريا.

Introduction

ويتم تحديد مستويات البروتينات في الخلايا والكائنات الحية بنسب إنتاجها والتخليص. يمكن أن البروتين نصف العمر تتراوح بين دقائق إلى أيام ^1-4. في كثير من النظم البيولوجية، والاستقرار أو التخليص من البروتينات الرئيسية له آثار مهمة على النشاط الخلوي. مطلوب تعديل للاستقرار البروتين داخل الخلايا لتقدم دورة الخلية ^5،6، مما يشير التنموية ^7-9، موت الخلايا المبرمج ^10، وظيفة عادية وصيانة الخلايا العصبية ^11،12. يؤثر الاستقرار البروتين خارج الخلية توزيع وتوافر البروتينات يفرز مثل morphogens ^13،14، داخل الأنسجة.

على مدى العقود القليلة الماضية، أساسا تم تقييم استقرار البروتين في زراعة الخلايا باستخدام المشع نبض وضع العلامات أو التجارب مطاردة سيكلوهيكسيميد ^15. في مثل هذه التجارب نبض مطاردة، وإما عابر تتعرض الخلايا إلى "نبض" للالأمينية المشعالسلائف حمض التي يتم إدراجها في البروتينات تصنيعه حديثا، أو يتعرضون لسيكلوهيكسيميد، الذي يثبط تخليق البروتين. ثم يتم جمع الخلايا المستزرعة في نقاط زمنية مختلفة، ويستخدم إما مناعي تليها تصوير الإشعاع الذاتي (في المشعة التجارب نبض مطاردة) أو ويسترن النشاف (في التجارب سيكلوهيكسيميد) لقياس التخليص من البروتين مع مرور الوقت.

التقليدية المقايسات الاستقرار البروتين لديهم العديد من أوجه القصور. أولا، وغالبا ما تكون غير أعرب البروتينات في هذه المقايسات في بيئاتهم المحلية، وإنما في زراعة الأنسجة وأحيانا في الخلايا من الأنواع المختلفة. للبروتينات التي الاستقرار هو تعتمد على السياق، وهذا النهج هو إشكالية. ثانيا، ليس من الممكن لمتابعة إزالة البروتين في الخلايا الفردية أو الكائنات الحية على مر الزمن، والبيانات من هذه المقايسات يعكس ما معدله مجموعات مختلفة من الخلايا في نقاط زمنية مختلفة. منذ الخلايا الفردية قد بدأتمع كميات مختلفة من البروتين، قد اتخذوا التسمية المشعة أو سيكلوهيكسيميد في أوقات مختلفة، أو قد يكون حركية التخليص مختلفة، مثل هذه البيانات الإجمالية يمكن أن تكون مضللة. وأخيرا، في حالة من التجارب مطاردة سيكلوهيكسيميد، إضافة تخليق البروتين المانع قد يكون لها آثار فسيولوجية غير مقصودة يمكن أن يغير بشكل مصطنع الاستقرار بروتين ^16-18. ويمكن تجنب هذه العيوب باستخدام الإسفار تسوس بعد Photoconversion (FDAP)، وهي تقنية تستخدم البروتينات photoconvertible لقياس إزالة بروتين حيوي في الكائنات الحية ^19-25 (انظر مناقشة لقيود تقنية FDAP).

البروتينات Photoconvertible هي البروتينات الفلورية التي الإثارة وخصائص الانبعاثات تغيير بعد التعرض للموجات محددة من الضوء ^26. واحدة البديل شيوعا هو Dendra2، وهو بروتين photoconvertible "الأخضر إلى الأحمر" الذي لديه في البداية السابقالاقتباس والانبعاثات خصائص مشابهة لالبروتينات الفلورية الخضراء، ولكن بعد التعرض للأشعة فوق البنفسجية ضوئية "photoconversion" -its الإثارة / خصائص الانبعاثات تصبح مماثلة لتلك التي من البروتينات الفلورية الحمراء ^23،27. الأهم من ذلك، سوف تنتج البروتين الجديد بعد photoconversion ليس لديه نفس الخصائص الإثارة / الانبعاثات مثل البروتين photoconverted، مما يسمح للفصل الإنتاج والتخليص على photoconversion ومراقبة سوى مجموعة من البروتين photoconverted. علامات البروتينات في المصالح مع البروتينات photoconvertible بالتالي يوفر وسيلة مريحة لنبض التسمية البروتينات في الكائنات الحية سليمة، ويمكن الوصول إليها بصريا.

في المقايسات FDAP (الشكل 1A)، والموسومة بروتين في المصالح مع بروتين photoconvertible وأعرب في كائن حي (الشكل 1B). وphotoconverted البروتين الانصهار، ويتم رصد انخفاض في إشارة photoconverted مع مرور الوقت من قبل fluorescenم المجهري (الشكل 1C). ثم تم تجهيز البيانات مع نموذج مناسب لتحديد عمر النصف من البروتين الانصهار (الشكل 1D).

وقد تم تصميم مقايسة FDAP الموضحة هنا لتحديد الخلية أعمار النصف من يفرز البروتينات مما يشير في الأجنة الزرد خلال مرحلة التطور الجنيني المبكر ^19. ومع ذلك، يمكن تكييف هذا النهج إلى أي كائن نموذج شفاف تتسامح التصوير الحي، ويمكن استخدامها لمراقبة إزالة أي البروتين داخل الخلايا أو الخلية taggable. وقد أجريت الاختلافات في تقنية الموضحة هنا في الخلايا المستزرعة ^20،23 وذبابة الفاكهة ²² و الماوس ²¹ الأجنة.

Protocol

1. توليد وPhotoconvertible فيوجن بناء والحقن Dechorionated اسماك الزرد الأجنة

1. توليد بناء وظيفية تحتوي على البروتين من الفائدة تنصهر لبروتين photoconvertible الأخضر إلى الأحمر (انظر مناقشة)، ثم استخدام النسخ في المختبر لتوليد توج مرنا ترميز البروتين الانصهار كما هو الحال في مولر وآخرون، 2012 ^(19).
2. استخدام pronase لإزالة chorions من حوالي 30 الأجنة الزرد في مرحلة خلية واحدة. بدلا من ذلك، dechorionate أجنة باستخدام ملقط ²⁸ يدويا.
   ملاحظة: يجب أن dechorionated الأجنة للتصوير لاحق. إذا رغبت في ذلك، يمكن حقن أجنة من خلال المشيمه وdechorionated في وقت لاحق، فقط قبل التصوير.
   1. جعل 5 ملغ / مل من محلول المخزون pronase من المتسلسلة غريس في معيار الجنين الزرد المتوسطة ^19. صخرة الحل بلطف في RT لمدة 10 دقيقة للسماح للالبروتيني إلى حل. قسامة 2 مل في أنابيب microcentrifuge وتجميد في -20 ° C.
   2. نقل مرحلة خلية واحدة الأجنة ليبلغ قطرها 5 سم من الزجاج أو البلاستيك طبق بتري المغلفة التي تحتوي على الاغاروز ~ 8 مل المتوسط ​​الجنين. إضافة 2 مل من محلول المخزون إذابة pronase إلى الطبق واحتضان في RT لمدة 5 إلى 10 دقيقة.
   3. تجنب تعريض الأجنة إلى الهواء أو البلاستيك، والاتصال مع أي سيتسبب الأجنة dechorionated إلى تمزق. ملء كوب كوب 200 مل مع الجنين المتوسطة. نقل الأجنة إلى دورق عن طريق إمالة طبق بيتري في حين غمر في المتوسط.
   4. بعد أن استقر الأجنة إلى قاع الكأس، من اجل الخروج أكثر من المتوسط ​​الجنين، ثم صب المتوسطة الجنين جديدة في الكأس. ويحوم خفيفة من المتوسط ​​تصب في كوب تسبب الأجنة لانقاص chorions من ضعف.
   5. كرر الخطوة 1.2.4.
3. نقل الأجنة dechorionated لحقن طبق المغلفة الاغاروز ²⁹ باستخدام الزجاج ماصة باستير مع طرف ملتهب. ملتهبغيض ماصة يمنع حواف خشنة من أجنة إصابة.
4. شارك في حقن مرنا و3 كيلو دالتون Alexa488-ديكستران المتقارن ^29،30 (1B الشكل، وانظر مناقشة لمقترح مرنا وكميات Alexa488-ديكستران). حقن مباشرة في مركز الخلية (وليس صفار) لضمان حتى توزيع مرنا وصبغة الفلورسنت مرة واحدة تبدأ الانقسام.
   ملاحظة: سيتم استخدام إشارة Alexa488 خلال تحليل البيانات لتوليد أقنعة المجزئ من أجل التمييز بين داخل وخارج الخلية مضان.
5. نقل الأجنة المحقونة إلى 1-2٪ المغلفة الاغاروز جيدا طبق ستة جيدا البلاستيك مليئة المتوسط ​​الجنين. احتضان في الظلام في 28 ° C حتى وصلت إلى الأجنة في مرحلة متأخرة المجال ³¹ (حوالي 5 ساعة بعد الإخصاب). تحقق أجنة كل واحد إلى 2 ساعة تحت stereomicroscope وإزالة أي حطام الناتجة عن الأجنة التي لقوا حتفهم.

2. تركيب اسماك الزرد الأجنة لPhotoconversion والتصوير على مقلوب متحد البؤر المجهر

1. استخدام stereomicroscope لتحديد 1-5 أجنة سليمة، واستخدام ماصة باستير الزجاج مع طرف ملتهب لإخراجها من الطبق.
2. إخراج بلطف الأجنة في أنبوب microcentrifuge تحتوي ~ 1 مل من ذاب 1٪ نقطة انصهار منخفضة الاغاروز في 1X Danieau في المتوسط ​​الجنين (انظر المواد القائمة) (الشكل 2A).
   ملاحظة: يجب أن يكون لديك الاغاروز درجة حرارة تتراوح بين 40 و 42 درجة مئوية. يمكن أن ارتفاع درجات الحرارة يؤدي إلى تلف الأجنة.
3. رسم الأجنة مرة أخرى إلى ماصة جنبا إلى جنب مع بعض الاغاروز. إخراج بلطف الاغاروز والأجنة على الزجاج غطاء من صحن الزجاج السفلي (الشكل 2B). تأكد من أن سماكة الزجاج غطاء متوافق مع الهدف على المجهر متحد البؤر.
   1. إعادة استخدام ماصة الزجاج اذا شئت. لتنظيف الاغاروز المتبقية للخروج من ماصة ومنع انسداد، بسرعة ماصة الجنين المتوسطة صعودا وهبوطا.وضع أنبوب 15 مل مليئة ~ 5 مل من المتوسط ​​الجنين بجوار stereomicroscope لهذا الغرض.
4. استخدام مجس معدني لوضع الأجنة بحيث القطب الحيواني (الأريمة) يواجه غطاء زجاجي. العمل بسرعة منذ الاغاروز سوف يصلب في 20-30 ثانية. استخدام stereomicroscope لمراقبة المواقف الأجنة "وتعديل حسب الضرورة حتى يصلب الاغاروز.
5. كرر الخطوات من 2،1-2،4 حتى يتم تركيبه العدد المرغوب فيه من الأجنة.
   ملاحظة: في تجربة نموذجية، وأربعة قطرات الاغاروز تحتوي على أربعة أو خمسة أجنة كل تناسب بسهولة على غطاء زجاجي. ولا يمكن تصوير حوالي 16 الأجنة خلال تجربة مثالية واحدة (الشكل 2C).
6. عندما عززت agarose، وملء طبق من الزجاج السفلي مع 1X Danieau في المتوسط ​​الجنين.

3. Photoconverting وقياس تصغير للPhotoconverted الإشارة

والهدف 25X 40X أو المياه طليالي يتناسب مع حجم ومعامل الانكسار من الأجنة الزرد. فمن الأفضل لاستخدام النفط الغمر مع نفس معامل الانكسار مثل الماء بدلا من الماء الفعلي، لأن المياه تتبخر خلال التجربة التي استمرت خمس ساعات. تأكد من أن النفط الغمر تم تصميم ليتم استخدامها مع هدف الماء (وليس النفط).

1. وضع قطرة كبيرة من النفط الغمر على الهدف لضمان أن الفيلم النفط بين الهدف وغطاء زجاجي لن يكسر بينما يتحرك المرحلة في مناصب مختلفة الجنين أثناء التصوير. وضع آمن طبق من الزجاج السفلي على خشبة المسرح بحيث الطبق لا يتحول عندما يتحرك المرحلة. إذا كان ذلك ممكنا، استخدم مرحلة ساخنة في 28 درجة مئوية، ودرجة الحرارة المثلى للتنمية الزرد.
2. تحديد موقف كل جنين في حزمة برامج المجهر متحد البؤر ل. ضبط ض متعمقة لكل الجنين، ومحاولة لاستهداف تقريبا نفس الطائرة في كل جنين.
   ملاحظة: حوالي 30 ميكرون من القطب الحيواني هو الذهابعمق التطوير التنظيمي منذ في هذا العمق طبقة يغلف الجنين يمكن تجنبها، يتم تكبير مساحة التصوير، وتشتت الضوء هو الحد الأدنى. شريحة ضوئية واحدة مع سمك 3.3 ميكرون ~ توفر بيانات كافية. ليست هناك حاجة للحصول على كومة ض (انظر القسم 5).
3. جمع إشارتين خلال التجربة: إشارة "الخضراء" من Alexa488-ديكستران المكورات-التي سيتم استخدامها خلال تحليل البيانات لعزل خارج الخلية والخلايا مضان وإشارة "الحمراء" من البروتين الانصهار بعد photoconverted ذلك.
   1. تثير Alexa488 باستخدام الليزر 488 نانومتر، وجمع مضان المنبعثة بين ~ 500 و 540 نانومتر. ملاحظة: بعد photoconversion، وكثير الأخضر إلى الأحمر البروتينات photoconvertible (على سبيل المثال، Dendra2) يمكن أن تكون سعيدا مع ليزر 543 نانومتر، وتنبعث مضان بين ~ 550 و 650 نانومتر. ضبط حسب الضرورة بناء على البروتين photoconvertible المستخدمة.
4. الحصول على "ما قبل photoconversion"الصور، وتكوين البرمجيات المجهر متحد البؤر لصورة كل موقع من المواقع المحددة سابقا (من الخطوة 3.2) مع الظروف التصوير المناسبة كل 10 دقيقة أو 20 لدورة الوقت خمس ساعات (انظر القسم 5 و المناقشة).
5. لphotoconvert البروتين الانصهار، والتحول إلى هدف 10X وفضح مجموعات من الأجنة لضوء الأشعة فوق البنفسجية من مصباح قوس الزئبق مع فلتر ~ 300-400 نانومتر الإثارة في الانتاج بنسبة 100٪ لمدة 2 دقيقة. تحويل التركيز على طول المحور Z لتعزيز photoconversion موحد (انظر القسم 5). تأكد من أن النفط الغمر لا بالتنقيط على الهدف 10X خلال photoconversion.
   ملاحظة: يمكن أن يكون آليا والتحول من التركيز خلال photoconversion من أجل تجنب التباين بين المجربون.
6. التبديل إلى الهدف 25X 40X أو مباشرة بعد photoconversion. تأكد من أن المواقف المحددة سابقا من الخطوة 3.2 لا تزال دقيقة. إذا تحول طبق خلال photoconversion، إعادة تحديد مواقف الأجنة.
   1. بدء تشغيل البرنامج تم إنشاؤه في الخطوة 3.4 والسماح لمواصلة التصوير لمدة 5 ساعة. لاحظ الوقت المنقضي بين photoconversion وبدء التصوير لكل الجنين.
7. أحيانا اطمئنان على التجربة. رصد مستوى المتوسطة Danieau وإضافة المزيد إذا لزم الأمر. إعادة تشغيل البرنامج إذا لم تعثر عليه.
8. من أجل تحديد القيم مضان الخلفية التي سيتم استخدامها خلال تحليل البيانات لتقدير الخط المقارب لنموذج تناقص بشكل كبير، وتشمل بعض الأجنة التي تم حقنها مع Alexa488-ديكستران ولكن ليس مرنا في التجربة. لتحديد الضوضاء الصك، والتي ستستخدم أيضا خلال تحليل بيانات لاحقة، والحصول على صورة في حالة عدم وجود عينة.

4. تحليل البيانات باستخدام PyFDAP

1. تفقد البصر مجموعات البيانات بالطبع الوقت من كل جنين. تجاهل مجموعات البيانات من الأجنة التي توفيت خلال ايماججي، التي تحولت بشكل ملحوظ، والتي لديها مستويات منخفضة جدا من إشارة photoconverted، أو التي تحتوي على مناطق الخلايا التي تبدو غير عادية، وقد توقفت عن الحركة وتقسيم (نموذجي من الأجنة المصابة أو المريضة).
   ملاحظة: أحيانا، فقاعات في مجال النفط الغمر أو سوف تظهر غيرها من الأعمال الفنية في واحد أو اثنين من الصور في مجموعة البيانات صالحة للاستعمال على خلاف ذلك. ملاحظة أي الصور التي تحتوي على القطع الأثرية. سيتم التخلص منها في وقت لاحق، ونقاط الوقت المتبقي من هذا مجموعة من البيانات لا يزال من الممكن تحليلها.
2. استخدام على بايثون حزمة برامج PyFDAP لتحليل البيانات FDAP. PyFDAP يحسب نصف العمر من خلال تحديد متوسط ​​داخل الخلايا وخارج الخلية كثافة مضان أحمر في كل صورة وتركيب البيانات مع خفض أضعافا مضاعفة وظيفة ⁵⁶ (الشكل 3).
   1. تحميل PyFDAP (انظر قائمة المواد).
   2. استخدام PyFDAP لفصل داخل وخارج الخلية إشارة photoconverted (الشكل 3A، B). لناالبريد إشارة Alexa488، والتي هي بدقة بين الخلايا، لإنشاء قناع داخل الخلايا. تطبيق هذا القناع إلى المقابلة صورة القناة الحمراء لمنع بكسل داخل الخلايا من التي يجري النظر فيها عند حساب متوسط ​​كثافة الخلية. لقياس متوسط ​​كثافة الخلايا، عكس القناع.
   3. في PyFDAP، عرض الصور ملثمين إنشاؤها في الخطوة 4.2.2. تفقد البصر هذه الصور وتجاهل مجموعات البيانات التي أقنعة لا تميز بدقة بين الخلايا من الفضاء خارج الخلية (هذا ينبغي أن يكون نادر، علما مدرجة أن أغشية الخلايا في الصور التي تم ملثمين الفضاء خارج الخلية، لكنها يمكن إزالتها عن طريق تغيير العتبة الخوارزمية أو عن طريق إدخال قناع غشاء (على سبيل المثال، وذلك باستخدام غشاء CFP)). أيضا تجاهل أي الصور واحدة تحتوي على التحف (على سبيل المثال، فقاعات في مجال النفط الغمر) التي تم تحديدها في الخطوة 4.1.
   4. استخدام PyFDAP لحساب متوسط ​​كثافة مضان خارج الخلية والخلايا لمجموعة شرق افريقياح الصورة. PyFDAP تحسب هذه المتوسطات عن طريق جمع شدة بكسل التي تقع خارج نطاق القناع وقسمة العدد الكلي للبكسل لخص.
   5. احتواء البيانات مضان (الشكل 3C) مع الدالة الأسية التالية:
      
      حيث t هو الوقت بعد photoconversion، ج (ر) هي شدة بقيمة معينة من ر، ج ₀ هي كثافة في تي = 0، ك هو معدل إزالة مستمر، و y ₀ هو الخط المقارب أن تقترب وظيفة مضان يقلل (1D الشكل). ذ ₀ يمكن أن تكون مقيدة على أساس القياسات في الخطوة 3.8 ^19.
   6. استخدام PyFDAP لحساب البروتين خارج الخلية والخلايا أعمار النصف (τ) من الثوابت معدل إزالة (ك) باستخدام العلاقة التالية:
      

5. تجارب مراقبة لتقييم photobleaching من، غافل Photoconversion، وPhotoconversion التوحيد

1. تقييم photobleaching من
   ملاحظة: photobleaching من يمكن أن تسبب انخفاضا مصطنعة في كثافة مضان التي تعكس خصائص التبييض من بروتين فلوري بالإضافة إلى التخليص من البروتين من الفائدة.
   1. لتقييم احتمال photobleaching من، نفذ مجموعة واحدة من التجارب FDAP مع 10 دقيقة فترات بين التصوير ومجموعة ثانية مع 20 دقيقة فترات بين التصوير (الشكل 4). تحليل البيانات من كلتا المجموعتين من التجارب باستخدام PyFDAP كما هو موضح في القسم (4).
   2. قارن حياة نصف من التجارب فترة 10 دقيقة و 20. يعد نصف حياة من 20 دقيقة التجارب الفاصلة تشير photobleaching من كبير. إذا كانت أعمار النصف من كل التجارب متطابقة، فوتobleaching ليس مصدر قلق كبير.
   3. بدلا من ذلك، تقييم photobleaching من خلال الحصول على سلسلة من ~ 30 صورة مباشرة بعد photoconversion. انخفاض كبير في كثافة مضان يشير photobleaching من كبير.
   4. إذا تم الكشف عن photobleaching من، استخدام أقل قوة الليزر، وتقليل وقت التصوير، أو النظر في استخدام photoconvertible البروتين أكثر صامد ^32.
2. تقييم photoconversion غير مقصود.
   ملاحظة: Dendra2 يمكن photoconverted باستخدام 488 نانومتر إضاءة ^27. عندما Alexa488 المثير مع ليزر 488 نانومتر كما هو موضح في الخطوة 3.3.1، photoconversion غير مقصود، وبالتالي زيادة مصطنعة في الظاهر عمر النصف من البروتين من الفائدة هو ممكن. ومع ذلك، نحن وغيرنا ³³ وقد وجد أن 488 نانومتر الإضاءة هي طريقة غير فعالة للphotoconversion في الأجنة الزرد.
   1. استخدام التجربة السيطرة هو موضح في الخطوة 5.1.1 للكشف عن photoconversion غير مقصود. قارن حياة نصف من التجارب فترة 10 دقيقة و 20. أقصر نصف العمر من 20 دقيقة التجارب الفاصلة تشير photoconversion غير مقصود كبير. إذا كانت أعمار النصف من كل التجارب متطابقة، photoconversion غير مقصود ليست مصدر قلق كبير.
   2. إذا تم الكشف عن photoconversion غير مقصود، واستخدام أقل قوة الليزر 488 نانومتر والأوقات التصوير أقصر لتجنب عن غير قصد photoconverting Dendra2.
3. تقييم photoconversion التوحيد.
   ملاحظة: إذا كان متحيزا photoconversion نحو القطب الحيواني من الجنين، وسوف تتأثر الانخفاض في مضان من البروتين نشر أو حركة الخلية إلى طائرات أعمق (الشكل 5A).
   1. لتحديد ما إذا photoconversion موحد، والتعبير عن بروتين يفرز photoconvertible (لاجراء تجارب مع البروتينات الانصهار خارج الخلية) أو البروتين photoconvertible هيولي (لاجراء تجارب مع البروتينات الانصهار داخل الخلايا). Photoconvert كالعادة، رالدجاجة تكتسب ض المكدس تشمل معظم الأريمة كل 20 دقيقة لمدة 80 دقيقة.
   2. إذا منحازة photoconversion نحو القطب الحيواني، فإن كثافة مضان في الطائرات أعمق تزيد بمرور الوقت بسبب نشر أو حركة الخلية (الشكل 5B). إذا تم الكشف غير موحدة photoconversion، والتركيز أعمق في الأجنة خلال photoconversion.

النتائج

وقد استخدم FDAP لتحديد أعمار النصف من البروتينات مما يشير إلى خارج الخلية في الأجنة الزرد ^19. واحدة من هذه البروتينات، الحول، يدفع التعبير عن الجينات mesendodermal خلال مرحلة التطور الجنيني ^34. الحول-Dendra2 ينشط التعبير عن الجينات mesendodermal عند مستويات مماثلة لغير محدد ...

Discussion

نجاح تجربة FDAP يعتمد على توليد وظيفية photoconvertible البروتين الانصهار. يمكن وضع علامات البروتين يؤثر على نشاطها البيولوجي و / أو الخصائص الفيزيائية الحيوية، بما في ذلك تمركز لها، والذوبان، والاستقرار ^36-41. تكون على استعداد لاختبار النشاط من عدة ثوابت الانصهار مختلفة ...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
PyFDAP (download from the following website: http://people.tuebingen.mpg.de/mueller-lab)			Install and operate using the instructions provided on the PyFDAP website; PyFDAP is compatible with Linux, Mac, and Windows operating systems.
mMessage mMachine Sp6 Transcription Kit	Life Technologies	AM1340	To generate capped mRNA for injection into embryos
Alexa488-dextran conjugate, 3 kDa	Life Technologies	D34682	Co-inject with mRNA to create intracellular and extracellular masks
6-well plastic dish	BD Falcon		Incubate embryos in agarose-coated wells until ready for mounting
Embryo medium			250 mg/L Instant Ocean salt, 1 mg/L methylene blue in reverse osmosis water adjusted to pH 7 with NaHCO3
Protease from Streptomyces griseus	Sigma	P5147	Make a 5 mg/ml stock and use at 1 mg/ml to dechorionate embryos at the one-cell stage
5 cm diameter glass Petri dish			For embryo dechorionation
200 ml glass beaker			For embryo dechorionation
Microinjection apparatus			For injection of mRNA and dye into embryos at the one-cell stage
Stereomicroscope			For injecting and mounting embryos
1x Danieau's medium			Dilute low melting point agarose and perform imaging in this medium; recipe: 0.2 mm filtered solution of 58 mM NaCl, 0.7 mM KCl, 0.4 mM MgSO4, 0.3 mM CaCl2, 5 mM HEPES pH 7.2
UltraPure low melting point agarose	Invitrogen	16520-100	For mounting embryos; use at a concentration of 1% in Danieau's medium: add 200 mg to 20 ml Danieau's medium, microwave until dissolved, then aliquot 1 ml into microcentrifuge tubes; aliquots can be stored at 4 °C, re-melted at 70 °C, and cooled to 40–42 °C when ready to use
Glass Pasteur pipette	Kimble Chase (via Fisher)	63A53WT	For mounting embryos; flame the tip to prevent jagged edges from injuring embryos
Metal probe			For positioning embryos during mounting
Glass bottom dishes	MatTek	P35G-1.5-14-C	Use the appropriate cover glass thickness for your objective; part number listed here is for cover glass No. 1.5
15 ml tube filled with ~5 ml embryo medium	BD Falcon		For rinsing residual agarose from the Pasteur pipette
Inverted laser scanning confocal microscope			A mercury arc lamp, 488 nm laser, 543 nm laser, and the appropriate filter sets are required
Heated stage			To maintain embryos at the optimal temperature of 28 °C during the experiment
Confocal software capable of time-lapse imaging			Must be able to define multiple positions and automatically image them at defined intervals
25X or 40X water objective			Objective for imaging
10X air objective			Objective for photoconversion
Immersion oil			Immersion oil with the same refractive index as water