JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Photostable cyanine dyes are attached to oligonucleotides to monitor hybridization by energy transfer.

Abstract

في هذا البروتوكول، ونحن يبرهن على وجود طريقة لتركيب 2'-آلكاين تعديل النووي الريبي منقوص الأكسجين حامض (DNA) خيوط من قبل الآلي توليف المرحلة الصلبة باستخدام الكيمياء phosphoramidite القياسية. وصفت [أليغنوكليوتيد ما بعد صناعي من قبل اثنين من cyanine الأصباغ صامد جديدة باستخدام المحفز النحاس النقر الكيمياء. ووصف تركيب كل من الجهات المانحة ومتقبل صبغ ويتم تنفيذ في ثلاث خطوات متتالية. مع الحمض النووي كما أن الهيكل المحيطة بها، وهذه الأصباغ اثنين من الخضوع لنقل الطاقة عندما يتم تقديمهم الى مقربة من التهجين. لذلك، هو تصور الصلب اثنين واحد جدائل الحمض النووي تقطعت بهم السبل بسبب تغيير اللون مضان. يتميز هذا التغيير اللون عن طريق التحليل الطيفي مضان ولكن يمكن أيضا أن نلاحظ مباشرة باستخدام مصباح الأشعة فوق البنفسجية المحمولة (الأشعة فوق البنفسجية). مفهوم مزدوج قراءات اللون مضان يجعل هذه التحقيقات النوكليوتيد أدوات ممتازة للتصوير الجزيئي خصوصا عندما هواتف وصفهوتستخدم الأصباغ tostable. وبالتالي، يتم منع photobleaching من لتحقيقات التصوير، والعمليات البيولوجية يمكن ملاحظتها في الوقت الحقيقي لفترة زمنية أطول.

Introduction

يمثل التصوير الجزيئي تقنية أساسية لفهم العمليات البيولوجية داخل الخلايا الحية. 1-3 تطوير تحقيقات الفلورسنت الحمض النووي على أساس لمثل هذه التطبيقات الكيميائية البيولوجية أصبح حقل البحوث التوسع. وتحتاج هذه تحقيقات الفلورسنت لتلبية بعض المتطلبات لتصبح أدوات مناسبة لتصوير الخلايا. أولا، يجب أن الأصباغ تطبيقها تظهر مضان ذات العوائد العالية الكم، والتحولات الكبيرة ستوكس، والأهم من ذلك، photostabilities مرتفعة للسماح طويلة الأجل في مجال التصوير الجسم الحي. وثانيا، ينبغي أن تظهر قراءات مضان يمكن الاعتماد عليها. وتعتمد أنظمة حامل اللون-فاكهه تقضي التقليدية على قراءات من لون مضان واحد عن طريق تغييرات بسيطة في كثافة مضان. 4 هذا النهج يحمل خطر من النتائج السلبية الإيجابية أو كاذبة كاذبة بسبب تألق ذاتي من مكونات داخل الخلايا أو انخفاض نسب الإشارة إلى الضوضاء بسبب التبريد غير مرغوب فيه من قبل شركات أخرى لponents 4

بلغنا مؤخرا على مفهوم "إشارات المرور الحمض النووي" التي تظهر مزدوجة قراءات اللون مضان باستخدام اثنين من حاملات مختلفة. 5-6 ويستند مفهوم على نقل الطاقة (ET) من الصبغة المانحة إلى صبغ متقبل الذي يتغير مضان اللون (انظر الشكل 1). هذا يسمح للقراءات أكثر موثوقية، وبالتالي يوفر أداة قوية لتحقيقات التصوير الفلورسنت. وضع البطاقات التعريفية على أليغنوكليوتيد مع الأصباغ الفلورية يمكن أن يتحقق من خلال نهجين مختلفين. ويمكن إدراج الأصباغ خلال توليف الحمض النووي الكيميائي في مرحلة الصلبة باستخدام كتل بناء phosphoramidite تعديل تبعا لذلك. 7 يقتصر هذا الأسلوب إلى الأصباغ التي هي مستقرة في ظل phosphoramidite وdeprotection الظروف القياسية. وكبديل لذلك، تم إنشاء منهجيات تعديل آخر الاصطناعية في الكيمياء النوكليوتيد. هنا، علينا أن نظهر تركيب واحدة من الصور الجديدةالطاقة الجدول نقل أزواج 8،9 ووضع العلامات آخر الاصطناعية من الحمض النووي باستخدام المحفز النحاس 1،3-cycloaddition بين أزيدات والألكاينات (CuAAC). 10

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

تنبيه: يرجى التشاور مع جميع بيانات سلامة المواد ذات الصلة (MSDS) قبل الاستخدام. العديد من المواد الكيميائية المستخدمة في هذه التوليفات سامة ومسرطنة. الرجاء استخدام جميع ممارسات السلامة المناسبة التي تكون مطلوبة عادة في مختبرات الكيمياء العضوية، مثل ارتداء معطف المختبر، والنظارات الواقية والقفازات.

1. توليف للأصباغ

ملاحظة: كل من الأصباغ يمكن توليفها من قبل نفس أنواع من ردود الفعل ويبين الشكل 2 لمحة عامة عن هذه التفاعلات.

  1. توليف 1- (3 azidopropyl) -4- (2- (1-ميثيل-1H ​​إندول-3-YL) الفينيل) pyridin-1-البوتاسيوم يوديد (صبغ 1)
    1. توليف 1- (3 iodopropyl) -4-methylpyridin-1-البوتاسيوم يوديد (الشكل 2A، خطوة أ)
      1. حل 466 ملغ 4 بيكولين و5.91 ز 1،3-diiodopropane في 10 مل من الأسيتونتريل في 20 مل فراغ الرأس قارورة وختم بإحكام بغطاء الحاجز.
      2. الحرارة إلى 85 درجة مئوية لمدة 16 ساعة.
      3. السماح لتبرد لRT، ثم إزالة المذيب تحت ضغط منخفض باستخدام المبخر استداري.
      4. إضافة 20 مل من خلات الإيثيل إلى النفط المتبقي وعلاج الخليط في 120 حمام بالموجات فوق الصوتية W لمدة 3 دقائق.
      5. جمع يعجل شكلت عن طريق الترشيح وغسل خمس مرات مع خلات الإيثيل. تجفيف المنتجات الصلبة في ظل فراغ O / N.
    2. توليف 1- (3 azidopropyl) -4-methylpyridin-1-البوتاسيوم (الشكل 2A، خطوة ب)
      1. حل 900 ملغ 1- (3 iodopropyl) يوديد -4-methylpyridin-1-البوتاسيوم في 12 مل من الأسيتونتريل في 20 مل فراغ الرأس القارورة، إضافة 376 ملغ من أزيد الصوديوم، وختم بإحكام بغطاء الحاجز.
      2. الحرارة إلى 85 درجة مئوية لمدة 16 ساعة.
      3. السماح لتبرد لRT، ثم إزالة المذيب تحت ضغط منخفض باستخدام المبخر الدوار.
      4. إضافة 15 مل من ثنائي كلورو ميثان إلى بقايا.
      5. تصفية الخروج والتخلص من الرواسب الناتجة عن ذلك.
      6. إزالة المذيب تحت ضغط منخفض باستخدام تعفنالمبخر آرى للحصول على المنتج والنفط البني.
    3. توليف 1-ميثيل-1H-الإندول-3-carbaldehyde (الشكل 2A، خطوة ج)
      1. تحت غاز خامل (الأرجون)، ويحل 1.45 ز الإندول-3-carbaldehyde، 1.52 جم كربونات البوتاسيوم و2.70 غرام ثنائي ميثيل الكربونات في 10 مل ثنائي ميثيل الفورماميد المطلق في 50 مل قارورة مجهزة المكثف الراجع جولة القاع.
      2. يحرك الخليط في 130 درجة مئوية لمدة 19 ساعة.
      3. السماح لتبرد لRT، ثم يصب الخليط على الجليد.
      4. استخراج طبقة المائية ثلاث مرات مع خلات الإيثيل 150 مل.
      5. الجمع بين الطبقات العضوية، وغسلها بالماء، وتجفيفها على كبريتات الصوديوم وإزالة المذيب عند 50 درجة مئوية تحت ضغط منخفض باستخدام المبخر الدوار.
    4. اقتران 1- (3 azidopropyl) -4- (2- (1-ميثيل-1H ​​إندول-3-YL) الفينيل) pyridin-1-البوتاسيوم يوديد (صبغ 1) (الشكل 2A، خطوة د)
      1. العمل تحت الأرجون وتحت استبعاد الرطوبة. Dissolلقد 90 ملغ 1- (3 azidopropyl) -4-methylpyridin-1-البوتاسيوم و 48 ملغ 1-ميثيل-1H-الإندول-3-carbaldehyde في 4 مل ايثانول في 20 مل قارورة مجهزة المكثف الراجع جولة القاع.
      2. إضافة 0.07 مل تأكسد والحرارة إلى 80 درجة مئوية لمدة 4 ساعات.
      3. السماح لتبرد لRT.
      4. جمع راسب الناتج عن طريق الترشيح ويغسل ثلاث مرات مع ثنائي إيثيل الإيثر.
      5. إضافة إلى ثنائي إيثيل الإيثر طاف وجمع راسب الناتج عن طريق الترشيح. يغسل ثلاث مرات مع ثنائي إيثيل الإيثر.
      6. الجمع بين رواسب.
  2. توليف 1- (3 azidopropyl) -4- (2- (1-ميثيل-2-فينيل-1H ​​إندول-3-YL) الفينيل) quinolin-1-البوتاسيوم يوديد (صبغ 2)
    1. توليف 1- (3 iodopropyl) -4-methylquinolin-1-البوتاسيوم يوديد (الشكل 2B، خطوة أ)
      1. حل 715 ملغ 4-ميثيل كينولين و5.91 ز 1،3-diiodopropane في 10 مل من الأسيتونتريل في 20 مل فراغ الرأس قارورة وختم بإحكام بغطاء الحاجز.
      2. حرارةإلى 85 درجة مئوية لمدة 16 ساعة.
      3. السماح لتبرد لRT، ثم إزالة المذيب تحت ضغط منخفض باستخدام المبخر الدوار.
      4. إضافة 20 مل من خلات الإيثيل إلى الزيت المتبقي وعلاج الخليط في 120 حمام بالموجات فوق الصوتية W لمدة 3 دقائق.
      5. جمع يعجل شكلت عن طريق الترشيح وغسل خمس مرات مع خلات الإيثيل. تجفيف المنتجات الصلبة في ظل فراغ O / N.
    2. توليف 1- (3 azidopropyl) -4-methylquinolin-1-البوتاسيوم (الشكل 2B، خطوة ب)
      1. حل 900 ملغ 1- (3 iodopropyl) يوديد -4-methylquinolin-1-البوتاسيوم في 12 مل من الأسيتونتريل في 20 مل فراغ الرأس القارورة، إضافة 333 ملغ من أزيد الصوديوم، وختم بإحكام بغطاء الحاجز.
      2. الحرارة إلى 85 درجة مئوية لمدة 16 ساعة.
      3. السماح لتبرد لRT، ثم إزالة المذيب تحت ضغط منخفض باستخدام المبخر الدوار.
      4. إضافة 15 مل من ثنائي كلورو ميثان إلى بقايا.
      5. تصفية الخروج والتخلص من الرواسب الناتجة عن ذلك.
      6. إزالة ش المذيباتالتانجو خفض الضغط باستخدام المبخر الدوار للحصول على المنتج من النفط البني.
    3. توليف 1-ميثيل-2-فينيل-1H-الإندول-3-carbaldehyde (الشكل 2B، خطوة ج)
      1. تحت غاز خامل (الأرجون)، ويحل 1.45 ز 2-فينيل-1H-الإندول-3-carbaldehyde، 0،996 جم كربونات البوتاسيوم و1.77 غرام ثنائي ميثيل الكربونات في 10 مل ثنائي ميثيل الفورماميد المطلق في 50 مل قارورة مجهزة المكثف الراجع جولة القاع.
      2. يحرك الخليط في 130 درجة مئوية لمدة 19 ساعة.
      3. السماح لتبرد لRT، ثم يصب الخليط على الجليد.
      4. استخراج طبقة المائية ثلاث مرات مع خلات الإيثيل 150 مل.
      5. الجمع بين الطبقات العضوية، وغسلها بالماء، وتجفيفها على كبريتات الصوديوم وإزالة المذيب تحت ضغط منخفض باستخدام المبخر الدوار.
    4. اقتران 1- (3 azidopropyl) -4- (2- (1-ميثيل-2-PHE NYL-1H إندول-3-YL) الفينيل) يوديد quinolin-1-البوتاسيوم (الشكل 2B، خطوة د)
      1. العمل تحت ARGعلى وتحت استبعاد الرطوبة. حل 90 ملغ 1- (3 azidopropyl) -4-methylquinolin-1-البوتاسيوم و 59.7 ملغ 1-ميثيل-2-فينيل-1H-الإندول-3-carbaldehyde في 4 مل ايثانول في 20 مل قارورة جولة القاع-مجهزة المكثف الراجع.
      2. إضافة 0.06 مل تأكسد والحرارة إلى 80 درجة مئوية لمدة 4 ساعات.
      3. السماح لتبرد لRT.
      4. جمع راسب الناتج عن طريق الترشيح ويغسل مع ثنائي إيثيل الإيثر ثلاث مرات.
      5. إضافة إلى ثنائي إيثيل الإيثر طاف وجمع راسب الناتج عن طريق الترشيح. يغسل ثلاث مرات مع ثنائي إيثيل الإيثر.
      6. الجمع بين رواسب.

2. توليف الحمض النووي السواحل

ملاحظة: تجميع للحمض النووي ونفذت باستخدام طريقة phosphoramidite على المرحلة الصلبة، كما وصفها محمد Caruthers 11 على المزج الحمض النووي. يتم اختبار أداء المزج قبل إجراء الاصطناعية، ويتم تجديد الكواشف إذاضروري.

  1. Prearrangements
    1. حل متاح تجاريا 2'-O-propargyl-deoxyuridinephosphoramidite (CU) في 1.2 مل من مخفف amidite (الأسيتونتريل خارج الجاف). نقل الحل في قارورة إلى قارورة المزج والمسمار في المزج.
    2. إجراء "اختبار تسرب" (وفقا لتعليمات الشركة الصانعة) للتأكد من عدم وجود تسرب للغاز الأرجون موجودا. إذا فشل "اختبار تسرب"، المسمار في القارورة أكثر إحكاما.
    3. رئيس الحل مكعب عن طريق ملء الأنبوب الذي يصل إلى غرفة تخليق المرحلة الصلبة.
    4. غسل جميع الخطوط مع الأسيتونتريل.
  2. تخليق حمض النووي
    1. استخدام جهاز كمبيوتر متصل لدخول تسلسل الحمض النووي واقتران الطريقة، وبعد مطالبات من بروتوكول الشركة المصنعة. الخطوة اقتران لبنة النحاس يأخذ 168 ثانية مع 7 البقول (كل نبضة و16 ميكرولتر) مقابل 40 ثانية مع 7 البقول لالتقليديةphosphoramidite لبنات البناء.
    2. تركيب العمود الذي يحتوي على الدليل السياسي الشامل (التي يسيطر الزجاج المسام)، والمرحلة الصلبة التي يتم تعديلها مع 1 مكرومول القاعدة الأولى (يتم تنفيذ توليف الحمض النووي من 3 'إلى 5') في المزج.
    3. بدء تركيب على المزج الحمض النووي (11).
  3. Workup من خيوط الحمض النووي توليفها
    1. تجفيف الأعمدة مع حمض النووي توليفها في ظل فراغ O / N.
    2. استخدام كماشة لفتح العمود والافراج عن الحكومة الشعبية المركزية في قارورة التفاعل. إضافة 700 ميكرولتر من محلول الأمونيا المركز المائي لdeprotect قليل النوكليوتيد والافراج عن الحمض النووي حبلا من الحكومة الشعبية المركزية.
    3. إغلاق القارورة وتطبيق غطاء الأمن على وعاء التفاعل لمنعها من الانفجار، والحرارة إلى 50 درجة مئوية لمدة 18 ساعة.
    4. إزالة الأمونيا عن طريق الطرد المركزي تحت ضغط منخفض (100 مليبار) عند 30 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
    5. بدء الترشيح من CPG: سفينة الطرد المركزي في 11000 x ج فوص 3 دقائق. اتخاذ طاف وتحويلها إلى جهاز الطرد المركزي مع حجم المسام 0.45 ميكرون. أجهزة الطرد المركزي في 1000 x ج لمدة 4 دقائق.
    6. وفي الوقت نفسه إضافة 300 ميكرولتر من الماء المقطر المزدوج إلى الحكومة الشعبية المركزية، دوامة لمدة 20 ثانية، وأجهزة الطرد المركزي في 11000 x ج لمدة 3 دقائق. نقل طاف في جهاز الطرد المركزي وأجهزة الطرد المركزي في 1000 x ج لمدة 4 دقائق. كرر هذا الإجراء الغسيل مرتين.
    7. إزالة المياه من المحاليل المائية المشتركة بواسطة الطرد المركزي عند 0.1 مللي بار و 25 درجة CO / N.

3. "النقر" الإجراءات

  1. إضافة 50 ميكرولتر الماء المقطر على نحو مضاعف، 25 ميكرولتر من حل أسكوربات الصوديوم (0.4 M في الماء)، 34 ميكرولتر تريس - [(1-البنزيل-1H-1،2،3-triazol-4-YL) الميثيل] أمين (0.1 M في DMSO / tBuOH 3: 1)، 114 ميكرولتر من أزيد (0.01 M في DMSO / tBuOH 3: 1)، و 17 ميكرولتر من tetrakis (الأسيتونتريل) النحاس (I) حل hexafluorophosphate (0.1 M في DMSO / tBuOH 3: 1) إلى مجفف بالتجميد المعدلة آلكاين عينة من الحمض النووي.
  2. احتضان العينة على 60 درجة مئوية لمدة 1.5 ساعة.
  3. بارد لRT.
  4. إضافة 150 ميكرولتر نا 2 EDTA (0.05 M في الماء) و 450 خلات الصوديوم ميكرولتر (0.3 M في الماء) لعينة من الحمض النووي ونقل إلى أنبوب 10 مل.
  5. إضافة 10 مل ايثانول (100٪) والحفاظ على -32 درجة مئوية لمدة 16 ساعة.
  6. سفينة الطرد المركزي لمدة 15 دقيقة في 1000 x ج وإزالة طاف.
  7. غسل الحمض النووي بيليه مع 2 مل ايثانول البارد (80٪).
  8. بيليه الجافة تحت ضغط منخفض.

4. HPLC تنقية

ملاحظة: قبل فصل حمض النووي تأكد من أن HPLC يعمل بشكل صحيح، ما يكفي من المذيبات متاحة والعمود نظيفة. شطف العمود مع تركيز بدءا من العازلة / الأسيتونتريل.

  1. حل الخام الحمض النووي بيليه في 250 ميكرولتر من الماء المقطر مضاعفة، ونقل إلى قارورة HPLC.
  2. بدء تشغيل HPLC من 45 دقيقة مع التدرج من 0٪ الأسيتونتريل إلى 15٪ من الأسيتونتريل لصبغ 1 وغرادي والأنف والحنجرة من 0٪ الأسيتونتريل إلى 17٪ من الأسيتونتريل لصبغ 2. رصد المدى عن طريق فحص 260 نانومتر (امتصاص الحمض النووي) و 459 نانومتر (صبغ 1) أو 542 نانومتر (صبغ 2). جمع تلك الكسور التي تظهر امتصاص في كل قنوات الطول الموجي.
  3. تحقق الكسور التي جمعت لكتلة اليمين التي كتبها matrix بمساعدة الليزر الامتزاز التأين (MALDI) مطياف الكتلة باستخدام مصفوفة تتكون من 3 hydroxypicolinic حمض (3HPA) وdiammoniumhydrogencitrate.
    1. إعداد مصفوفة عن طريق خلط 900 ميكرولتر من محلول 3-HPA المشبعة في 1: 1 خليط من الأسيتونتريل والمياه مع 100 ميكرولتر من حل diammoniumhydrogencitrate (100 غرام / لتر) في الماء.
    2. ماصة 1-2 ميكرولتر من التحقيق الحمض النووي على الهدف واتركها لتجف في الهواء.
    3. إضافة 0.2 ميكرولتر من المصفوفة 3-HPA / diammoniumhydrogencitrate لعينة وتخلط حتى يبلور.
    4. أداء مطياف الكتلة MALDI.
    5. الجمع بين تلك الكسور HPLC الذي يحمل كتلة اليمين.
_title "> 5. تحديد تركيز

ملاحظة: يتم تحديد تركيز من خلال قياس امتصاص عند 260 نانومتر باستخدام الأشعة فوق البنفسجية / فيس طيفي، استنادا إلى معاملات الانقراض (ε 260) من قواعد الحمض النووي وصبغ.

  1. حل الحمض النووي في 100-200 ميكرولتر المقطر مضاعف المياه.
  2. تطبيق 1 ميكرولتر من محلول الحمض النووي على الأشعة فوق البنفسجية / فيس معمل.
  3. قياس امتصاص عند 260 نانومتر. كرر ثلاث مرات.
  4. أخذ متوسط ​​قيمة لحساب تركيز المحلول. لحساب معاملات الانقراض، استخدم ε 260nm القواعد الطبيعية الأربعة 12 و260nm ε من النحاس بناء كتلة المشتراة (تعتبر يوريدين الطبيعي) 12 للحصول على 260nm ε من الحمض النووي حبلا كله. لصبغ 1، استخدام ε 260nm = 10200 L * مول -1 * سم -1 ولصبغ 2، استخدام ε 260nm = 13100 L * مول <سوب> -1 * سم -1. حساب تركيز المحلول التالية قانون لامبرت-بيرز على أساس معامل الانقراض والامتصاصية قياس 13

6. تحضير العينة والتحليل الطيفي

  1. إعداد عينات حبلا واحدة
    1. إعداد منفصل 1 مل من 2.5 ميكرومتر الحلول من كل من DNA1 المعدلة وDNA2 في 200 مم كلوريد الصوديوم، و 50 ملي قيلولة ط العازلة، ودرجة الحموضة = 7.
  2. إعداد عينات حبلا مزدوجة
    1. إعداد 1 مل من محلول يحتوي على 2.5 ميكرومتر من DNA1 و 2.5 ميكرومتر من DNA2 في 200 مم كلوريد الصوديوم، و 50 ملي قيلولة ط العازلة، ودرجة الحموضة = 7 في وعاء التفاعل.
    2. تأمين غطاء مع غطاء سلامة والحرارة إلى 90 درجة مئوية لمدة 10 دقيقة. ثم إيقاف التدفئة والسماح لتبرد لRT O / N.
  3. طيف الامتصاص
    ملاحظة: لتحديد الطول الموجي الإثارة لالمواصفات مضانوتسجل أطياف امتصاص troscopy.
    1. قياسات حبلا واحدة
      1. تسجيل قياس فارغ لا يحتوي إلا على 200 ملي مول كلوريد الصوديوم، و 50 ملي قيلولة ط العازلة، ودرجة الحموضة = 7.
      2. نقل الحل استعداد للDNA1 إلى 1 سم كوفيت زجاج الكوارتز وتسجيل الاستيعاب. تصحيح القياس على بيانات فارغة. تحديد الحد الأقصى لقيمة امتصاص الصبغة.
      3. كرر DNA2.
  4. مضان الطيفي
    1. قياسات حبلا واحدة
      1. تسجيل قياس فارغ لا يحتوي إلا على 200 ملي مول كلوريد الصوديوم، و 50 ملي قيلولة ط العازلة، ودرجة الحموضة = 7؛ باستخدام الطول الموجي الإثارة من صبغ 1.
      2. نقل الحل DNA1 إلى 1 سم كوفيت زجاج الكوارتز.
      3. تسجيل الطيف مضان.
    2. قياس حبلا مزدوج
      1. نقل الحل حبلا مزدوج في كوفيت زجاج الكوارتز.
      2. تسجيل الطيف مضان باستخدام الطول الموجي الإثارة من صبغ 1.
  5. تجارب التصور
    تحذير: يجب ارتداء حماية العين المناسبة لتجنب أضرار الأشعة فوق البنفسجية إلى العينين!
    1. للحصول على فهم أفضل لما أطياف سجلت تظهر، أشرق cuvettes مع المحمولة للأشعة فوق البنفسجية مصابيح (الشكل 5). لاحظ التغير في اللون مضان من واحد إلى الحمض النووي المزدوج تقطعت بهم السبل.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

وتسجل امتصاص ومضان أطياف من الحمض النووي مفردة ومزدوجة الذين تقطعت بهم السبل كما هو مبين في الشكل (4).

أطياف الامتصاص سجلت (الشكل 4 يمين) تظهر امتصاص ماكسيما λ كحد أقصى في ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

ويظهر هذا البروتوكول الإجراء الكامل لتسمية الحمض النووي بعد صناعي عبر CuAAC بواسطة الأصباغ الفلورية المعدلة أزيد. وهذا يشمل تركيب الأصباغ والحمض النووي المعدلة آلكاين فضلا عن إجراءات وضع العلامات.

تركيب الأصباغ يتبع أربع خطوا?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

الدعم المالي من قبل جمعية الألمانية للبحوث (DFG، وا 1386 / 17-1)، والتدريب البحثي المجموعة GRK 2039 (التي تمولها DFG) وKIT ما قدمه من مساعدة.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
synthesis
4-PicolineSigma Aldrich239615
1,3-DiiodopropaneSigma Aldrich238414
AcetonitrileFisher Scientific10660131HPLC grade
Ethyl acetateFisher Scientific10456870technical grade
Sodium azideSigma Aldrich71290p.a. grade
DichloromethaneFisher Scientific10626642technical grade
Indole-3-carboxaldehyde; 98%ABCRAB112969
Potassium carbonate, 99+%Acros424081000
dimethylcarbonateSigma Aldrich517127
N,N-Dimethylformamide, 99.8%, Extra Dry over Molecular SieveAcros348435000
Sodium sulfateBernd Kraft12623.46
Ethanol, 99.5%Acros397690010
Piperidine, 99%Acros147181000
DiethyletherFisher Scientific10407830technical grade
2-Phenylindole-3-carboxaldehyde; 97%ABCRAB125050
4-MethylquinolineABCRAB117222
DNA synthesis
Expedite 8909 Nucleic Acid SynthesizerApplied Biosystems -
DMT-dA(bz) PhosphoramiditeSigma AldrichA111081
DMT-dT PhosphoramiditeSigma AldrichT111081
DMT-dG(dmf) PhosphoramiditeSigma AldrichG11508
DMT-dC(bz) PhosphoramiditeSigma AldrichC11108
Amidite Diluent for DNA synthesisSigma AldrichL010010
Ultrapure Acetonitrile for DNA synthesisSigma AldrichL010400
Cap ASigma AldrichL840000
Cap BSigma AldrichL850000
CPG dT Column 1.0 µmoleProligo ReagentsT461010
CPG dA(bz) Column 1.0 µmoleProligo ReagentsA461010
CPG dG(ib) Column 1.0 µmoleProligo ReagentsG461010
CPG dC(bz) Column 1.0 µmoleProligo ReagentsC461010
ammonia (aqueous solution) Fluka Analytical318612
centrifugal devices nanosep 0.45 µmPallODGHPC34
5-(Benzylthio)-1H-tetrazole (Activator)Sigma Aldrich75666
2'-O-propargyl deoxyuridinephosphoramiditeChem GenesANP-7754
workup
vacuum concentratorChrist
clicking procedure
Tetrakis(acetonitrile)copper(I) hexafluorophosphateSigma Aldrich346276
Sodium acetateSigma AldrichS2889
(+)-Sodium L-ascorbateSigma AldrichA7631
EDTA disodium saltSigma AldrichE5134
TBTA-ligand - -synthesized according to a literature procedure1
HPLC
HPLC-systemShimadzu
MALDI-Biflex-IV spectrometerBruker Daltonics
LC-318 C18 columnSupelcosil via Sigma Aldrich58368
determination of concentration
ND 1000 Spectrophotometernanodrop
sample preparation and spectroscopy
Cary 100 BioVarian
Fluoromax-3 fluorimeterJobin-Yvon
1 R. Chan Timothy, R. Hilgraf, K. B. Sharpless, V. Fokin Valery, Org Lett 2004, 6, 2853-2855.

References

  1. Kobayashi, H., Ogawa, M., Alford, R., Choyke, P. L., Urano, Y. New strategies for fluorescent probe design in medical diagnostic imaging. Chem Rev. 110 (5), 2620-2640 (2010).
  2. Berezin, M. Y., Achilefu, S. Fluorescence Lifetime Measurements and Biological Imaging. Chem. Rev. 110 (5), 2641-2684 (2010).
  3. Lee, J. S., Vendrell, M., Chang, Y. T. Diversity-oriented optical imaging probe development. Curr. Opin. Chem. Biol. 15 (6), 760-767 (2011).
  4. Tyagi, S., Bratu, D. P., Kramer, F. R. Multicolor molecular beacons for allele discrimination. Nat. Biotechnol. 16 (1), 49-53 (1998).
  5. Holzhauser, C., Wagenknecht, H. A. #34;DNA Traffic Lights": Concept of Wavelength-Shifting DNA Probes and Application in an Aptasensor. ChemBioChem. 13 (8), 1136-1138 (2012).
  6. Holzhauser, C., Wagenknecht, H. A. DNA and RNA "Traffic Lights": Synthetic Wavelength-Shifting Fluorescent Probes Based on Nucleic Acid Base Substitutes for Molecular Imaging. J. Org. Chem. 78 (15), 7373-7379 (2013).
  7. Berndl, S., Wagenknecht, H. A. Fluorescent Color Readout of DNA Hybridization with Thiazole Orange as an Artificial DNA Base. Angew. Chem. Int. Ed. 48 (13), 2418-2421 (2009).
  8. Bohländer, P. R., Wagenknecht, H. A. Synthesis of a Photostable Energy-Transfer Pair for "DNA Traffic Lights". Eur. J. Org. Chem. 34, 7547-7551 (2014).
  9. Walter, H. K., Bohländer, P. R., Wagenknecht, H. A. Development of a Wavelength-Shifting Fluorescent Module for the Adenosine Aptamer Using Photostable Cyanine Dyes. ChemistryOpen. 4 (2), 92-96 (2015).
  10. Gierlich, J., Burley, G. A., Gramlicj, P. M. E., Hammond, D. M., Carell, T. Click chemistry as a reliable method for the high-density postsynthetic functionalization of alkyne-modified DNA. Org. Lett. 8 (17), 3639-3642 (2006).
  11. Matteucci, M. D., Caruthers, M. H. Synthesis of deoxyoligonucleotides on a polymer support. J. Am. Chem. Soc. 103 (11), 3185-3191 (1981).
  12. Handbook of Biochemistry and Molecular Biology, Volume 1: Nucleic Acids. Fasman, G. D. , CRC Press. 589(1975).
  13. Puglisi, J. D., Tinoco, J. I. Absorbance melting curves of RNA. Meth. Enzymol. 180, 304-325 (1989).
  14. Johansson, M. K., Fidder, H., Dick, D., Cook, R. M. Intramolecular Dimers: A New Strategy to Fluorescence Quenching in Dual-Labeled Oligonucleotide Probes. J. Am. Chem. Soc. 124, 6950-6956 (2002).
  15. Barrois, S., Wörner, S., Wagenknecht, H. A. The Role of Duplex Stability for Wavelength-Shifting Fluorescent DNA Probes: Energy Transfer vs Excition Interactions in DNA "Traffic Lights", Photochem. Photobiol. Sci. 13, 1126-1129 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

113

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved