الليستريه المستوحدة التهاب الدماغ

Pallab Ghosh; Darrren E. Higgins

doi:10.3791/58723

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

Summary

خلال العدوى، الليستريه المستوحدة قادرة على عبور حاجز الدم في الدماغ لاستعمار الدماغ. في هذا البروتوكول، ونحن لشرح كيفية تقييم الاستعمار الجرثومي للأجهزة بعد إصابة فئران. ويرد إجراء لأداء الجهاز كله نضح لتصميم محددة من أرقام البكتيرية في حمة الدماغ.

Abstract

الليستريه المستوحدة من مسببات الأمراض بكتيرية داخل الخلايا التي كثيرا ما يرتبط بالعدوى المنقولة عن طريق الأغذية. قدرة لام الليستريه على عبور حاجز الدم في الدماغ (بي بي بي) المتعلقة بأنها يمكن أن تؤدي إلى التهاب السحايا والتهاب الدماغ مهددة للحياة. بي بي بي يحمي المكروية الدماغ من مختلف نواتج الأيض السامة ومسببات الأمراض الميكروبية الموجودة في الدم بعد الإصابة، ويدعم ذلك التوازن في الدماغ. أن الآليات التي لام الليستريه موجودة في مجرى الدم عبر BBB التسبب في الدماغ العدوى ليست مفهومة فهما كاملا وهناك أيضا الافتقار إلى نظام نموذجي قوية لدراسة التهابات الدماغ لام الليستريه. هنا، نحن نقدم نموذج عدوى ماوس بسيطة لتحديد ما إذا كانت البكتيريا قد عبرت بي بي بي وكوانتيتاتي عبء البكتيريا التي قد استعمرت الدماغ في فيفو. في هذا الأسلوب، الحيوانات أصيبوا عن طريق الوريد مع الليستريه ل. وقد euthanized معاملة إنسانية بالتعرض لأول أكسيد الكربون₂ متبوعاً بخلع عنق الرحم. وأجرى التروية القلبية للحيوانات قبل حصادها الأجهزة المصابة. تم جمع الدم قبل التروية ويتحدد العدد من البكتيريا في الجهاز أو مل من الدم تصفيح تخفيف هوموجيناتيس الدم أو الجهاز على ألواح أجار وإحصاء عدد المستعمرات وشكلت. يمكن استخدام هذا الأسلوب لدراسة التفاعلات يجند مستقبلات الرواية التي تعزز الإصابة بالدماغ لام الليستريه ويمكن تكييفها بسهولة لدراسة مسببات الأمراض البكتيرية متعددة.

Introduction

هو بكتيريا إيجابية الليستريه المستوحدة ممرض داخل الخلايا اختياري وواحد مسببات معظم القاتل المنقولة بالأغذية في جميع أنحاء العالم. ابتلاع الطعام لام الليستريه الملوثة يمكن أن يؤدي إلى داء الليستَريات في البشر، وهو مرض الغازية شديدة تستهدف معظم الحوامل، والأطفال حديثي الولادة، والأفراد المسنين، والمناعة¹. لام الليستريه من بين الأسباب الرئيسية للوفاة بالممرضات المنقولة بالأغذية في الولايات المتحدة، ومعدلات الوفاة من داء الليستَريات يصل إلى 20-30 ٪، أعلى لجميع مسببات الأمراض التي تنقلها الأغذية². حاليا لا يوجد لقاح لام الليستريه وقدرة البكتيريا على فعالية وامتدت إلى الأجهزة البعيدة والدماغ بعبور حاجز الدم في الدماغ (BBB) قد تؤدي إلى التهاب السحايا مهددة للحياة واستعمار الدماغ³ ^, ⁴ ^, ⁵ ^, ⁶-التهاب السحايا الجرثومي عادة شديدة؛ الإصابات أثناء استرداد معظم الناس الذين يتلقون العلاج، يمكن أن يسبب مضاعفات خطيرة مثل، وتلف الدماغ، وفقدان السمع أو إعاقات التعلم في الأطفال. ومن المتوقع لام الليستريه لحساب 10 في المائة على الأقل من كل المجتمع اكتسب التهاب السحايا في الولايات المتحدة⁷.

طريقا رئيسيا لنشر البكتيريا إلى الدماغ والسحايا من خلال مجرى الدم. البكتيريا المتداولة في الأوعية الدموية في الدماغ قادرة على عبور BBB يسبب التهاب الدماغ. بي بي بي هو نظام حاجز vascularized العالية التي تحمي الدماغ من الجسيمات الأجنبية المتداولة في الدم. خلايا بطانية تشكل طبقة خطوط سطح الداخلية ل الأوعية الدموية⁸^،⁹. وبالإضافة إلى لام الليستريه، مسببات الأمراض البكتيرية متعددة مثل وجود النيسرية السحائية، العقدية الرئوية، الإشريكيّة القولونية، و النزلة النزفية من النوع باء (Hib) قادرون على استعمار الدماغ بعبور ال بي بي بي³^،⁴^،^،من⁵⁶. ومع ذلك، عند دراسة أعباء البكتيرية في دماغ الفئران المصابة، من المهم لتحديد ما إذا كانت البكتيريا عبروا BBB، خلاف ذلك عبء البكتيرية في الدماغ قد تمثل البكتيريا التي لا تزال في الأوعية الدموية للمخ. وبالتالي، من الضروري أن نتخلل الفئران من كل الدم قبل تحديد الوحدات المكونة للمستعمرة (زيمبابوي) من هوموجيناتيس الدماغ.

في هذه الدراسة، يصف لنا في فيفو أساليب دراسة العدوى الليستريه لام المخ. للأساليب الموصوفة هنا، استخدمنا لام الليستريه سلالة 10403S. المستوحدة ل. 10403S واحد من سلالات المختبر الأكثر استخداماً لدراسة داء الليستَريات النظمية في طراز الماوس من عدوى¹⁰. ويستند هذا البروتوكول الحقن القياسية لام الليستريه يليه نضح الفئران. ويرد في الشكل 1ملخص تخطيطي البروتوكول العدوى في الفئران. لام الليستريه-جمعت العقول المصابة والأجهزة الأخرى من الفئران غير perfused أو perfused وتحديد عبء الجهاز الجرثومي. هذه الأساليب هي مفيدة ليس فقط تحديد مجموع استعمار الدماغ في الحيوانات المصابة بالعدوى البكتيرية، ولكن هي أيضا مفيدة لتحديد ما إذا كانت البكتيريا قد تغلغلت في بي بي بي في فيفو التوسط من أجل غزو الدماغ. من المهم تسليط الضوء على أنه ينبغي أن تجري هذا البروتوكول المختبر بعد التشاور مع إدارة مرفق اللجنة والحيوان في السلامة المؤسسية ذات الصلة.

Protocol

جميع الحيوانات الحفاظ عليها والتعامل معها العناية القصوى لتقليل عدم الراحة أثناء سير الإجراءات. الإجراء إجراء امتثالا لرعاية الحيوان المؤسسية واستخدام اللجنة وجميع القوانين الاتحادية والولائية والمحلية. أيضا ملاحظة أن التجارب المختبرية التي تجري وفقا للمبادئ التوجيهية للسلامة البيولوجية المستوى 2.

1-النمو لام الليستريه "الدراسات الإصابة بالماوس"

اﻷوتوكﻻف 500 مل من ضخ القلب الدماغ (بهي) أجار المتوسطة في قارورة Erlenmeyer ل 1 لإعداد لوحات إعلامية متينة. السماح لوسائل الإعلام لتبريد في حمام مائي 56 درجة مئوية ثم قم بإضافة ستربتوميسين بتركيز نهائي 100 ميكروغرام/مل.
1. صب 25 مل من وسائل الإعلام/بيتري طبق في لوحات طبق بيتري. السماح لوحات لتجف في درجة حرارة الغرفة (22 ^سC-25 درجة مئوية). إذا لزم الأمر، يمكن أن تجفف اللوحات عند 37 درجة مئوية حتى يجف تماما.
استخدام حلقة تطعيم معقمة وتقنية العقيم، الحصول على حلقة كاملة من المجمدة لام الليستريه سلالة 10403S¹¹^،¹² من ثقافة الأرصدة المجمدة في بهي والغليسيرول وسائل الإعلام بالإضافة إلى 30% وتحتفظ في ثلاجة-80 درجة مئوية.
1. الانتصارات لام الليستريه في أجار بهي/ستربتوميسين لوحة مثل أن يمكن أن تكون واحدة من المستعمرات البكتيرية المعزولة. وضع اللوحات في حاضنة 37 درجة مئوية بين عشية وضحاها (ح 18 إلى 24 ساعة) تنمو المستعمرات لام الليستريه .
2. استخدام حلقة إينوكولاتينج عقيمة، اختيار واحدة لام الليستريه مستعمرة من أجار بهي لوحة وتطعيم المستعمرة في أنبوب اختبار عقيمة التي تحتوي على 5 مل مرق بهي تحتوي على 100 ميكروغرام/مل والستربتوميسين.
احتضان الأنبوب الثقافة لام الليستريه يميل قليلاً في 30 ° بين عشية وضحاها في حاضنة ثابت.
1. في اليوم التالي، تفقد بصريا ثقافة لام الليستريه للنمو (وسائل الإعلام بهي ستكون عكر) ودوامه بإيجاز لضمان وقف موحدة للثقافة.
2. أسيبتيكالي إزالة قاسمة 1 مل من ثقافة البكتيرية وقياس الكثافة البصرية 600 نانومتر (OD₆₀₀) باستخدام جهاز المطياف الضوئي.
  ملاحظة: يستخدم مرق بهي العقيمة الفارغة لجهاز المطياف الضوئي القراءة قبل قياس الكثافة البصرية للثقافة لام الليستريه . يمكن أيضا أن تضعف ثقافة لام الليستريه (اثنين إلى خمسة إضعاف) في بهي قبل قراءة الكثافة البصرية.
3. تحديد عدد لام الليستريه مستعمرة تشكيل وحدات (زيمبابوي) كل مل الثقافة بهي بالطلاء إذ تخفيف المسلسل للثقافة. وهذا مفيد لإقامة علاقة بين الكثافة البصرية للثقافة لام الليستريه والعدد من البكتيريا كل مل ثقافة. بشكل عام، التطوير التنظيمي₆₀₀من 1.0 لثقافة لام الليستريه يساوي حوالي 1 × 10⁹ زيمبابوي بكتيريا كل مل.

2-إعداد لام الليستريه "العدوى من الفئران"

ثمانية عشر عاماً لأربع وعشرين ساعة قبل الإصابة بالحيوانات، تنمو الثقافات لام الليستريه في مرق بهي تحتوي على 100 ميكروغرام/مل ستربتوميسين وتحديد OD₆₀₀/~ زيمبابوي كل مل كما هو مبين في الخطوة 1.
ملاحظة: الفئران هي عموما أمر أسبوع واحد قبل الإصابة وهي تأقلم إلى مرفق الحيوان قبل الإصابة يتم إجراء الدراسات. في هذه الدراسة، 6 – 8 أسابيع القديمة الإناث بالب/ج الفئران (5 الفئران في كل مجموعة) كانوا يسكنون في بيئة حاجز في منشأة الاحتواء الحيوان هارفارد الطبية BSL2 المستوى وتوفير الأغذية والمياه libitum الإعلانية.
تحديد مقدار لام الليستريه الثقافة المطلوبة لتصيب كل الماوس على أساس ~ زيمبابوي الواحد مل ثقافة البكتيرية. جعل إضعاف ثقافة لام الليستريه في العقيمة مخزنة الفوسفات المالحة الرقم الهيدروجيني 7.2 (PBS) بتركيز مناسب من البكتيريا. عادة يصاب الفئران عن طريق الوريد مع 200 ميليلتر من برنامج تلفزيوني يحتوي على 1 – 2 × 10⁴زيمبابوي من البكتيريا/الحيوان.
التحقق من عدد لام الليستريه في العدوى بالطلاء إذ تخفيف المسلسل على لوحات أجار بهي تحتوي على 100 ميكروغرام/مل ستربتوميسين. احتضان اللوحات في حاضنة 37 درجة مئوية بين عشية وضحاها تحديد عدد لام الليستريه تلقيح كل الماوس كما يلي:
العدوى (زيمبابوي) = (عدد من المستعمرات × معامل التخفيف)/مطلي مل × حجم (mL) حقن

3-عدوى فئران مع الليستريه لام عن طريق "الحقن الوريد الذيل"

إزالة سلال الغطاء والغذاء من القفص الذي يحتوي على الفئران، ووضع القفص تحت مصباح الأشعة تحت حمراء حرارة ث 250 لمدة 5 دقائق.
ملاحظة: يسمح هذا الأسلوب الأوردة الذيل تمدد، ضمان أسهل لإجراء الحقن.
1. بعناية بوضع الحيوان في ماوس حجم مناسب كبح الجهاز بأمان تقييد الحيوان أثناء حقن الوريد الذيل.
مزيج العدوى الليستريه لام (الخطوة 2، 2)، وتحميل العدوى في محقن 1 مل مزودة بإبرة ز 26.
موقع الوريد ذيل أفقي للماوس وتنظيف مكان الحقن باستخدام منصة الكحول أو رذاذ إيثانول 75%.
حقن بلطف الماوس مع 200 ميليلتر من تعليق لام الليستريه في الوريد ذيل أفقي باستخدام المحاقن مع الإبرة ز 26.
1. استخدام الشاش القطن بإيجاز ممارسة ضغوط على موقع الحقن لوقف أي نزيف، ووضع الحيوان في قفص جديد.
  ملاحظة: إجراء هذه العملية لكل من الفئران حقن ومارك القفص مع التسميات المناسبة. لتحديد تركيز حقن بعد انتهاء العدوى الليستريه L. ، كرر الخطوة 2.3 استخدام المبلغ المتبقي من العدوى. الوريد ويقال لام الليستريه الإصابة بالعدوى كل الماوس مقاسا زيمبابوي متوسط من العينات العدوى قبل وبعد حقن.
مراقبة الحيوانات المصابة يوميا وملاحظة أي علامات المرض العلني (مثلاً، تكدرت الفراء، موقف متحدب، بطيئة الحركة، وفقدان الوزن). إزالة الحيوانات التي يبدو أن تحتضر كثيرا قبل الإصابة بعد انتهاء ح 72 (مثلاً، 24، 48 ساعة بعد الإصابة) من الدراسة والتضحية بطريقة إنسانية. مواصلة الرصد اليومي حتى يتم التضحية بها جميع الحيوانات المتبقية في ح 72 بعد الإصابة.
ملاحظة: هو الجرعة المميتة 50 في المائة (LD₅₀) لام الليستريه سلالة 10403S في الفئران بالب/ج ~ 1 – 2 × 10⁴ زيمبابوي/الحيوان. الفئران المصابة بجرعات₅₀ دينار لام الليستريه استخدام هذا البروتوكول قد يحمل علامات المرض، كما هو مبين أعلاه، ويمكن أن نتوقع المحققين الفئران لبدء الخضوع للعدوى بعد الإصابة بعد انتهاء ح 72.

4-تشريح والقلب نضح من الفئران المصابين الليستريه ل.

في العدوى بعد ح 72 (أو في نقطة في وقت سابق من وقت المطلوب)، euthanize الفئران المصابة باستخدام بروتوكول أقرته "لجنة أخلاقيات الحيوان" المؤسسية، مثل الاختناق₂ CO متبوعاً بخلع عنق الرحم.
ملاحظة: إذا كان جمع الدم التي يتعين القيام بها، التقليل من تمزق الأوعية الدموية أثناء القيام بخلع عنق الرحم.
1. تأكيد قد تم euthanized الفئران بسبب عدم استجابة نشل مخلب.
  ملاحظة: إذا كان القلب نضح المراد تنفيذها، إقامة نظام الآلي مضخة/التروية بمعدل تدفق حجم 4 مل/دقيقة.
ضع الحيوان على ظهرها في عموم تشريح وتطبيق الإيثانول 75% على سطح الفراء/جلد البطن.
باستخدام مقص، جعل شق في جدار البطن وتوسيع شق للتو تحت القفص الصدري.
كشف الحجاب الحاجز وأجهزة الحشوي.
ملاحظة: ينبغي الحرص على عدم لاسيراتي أي أجهزة الحشوي.
فتح تجويف الصدر بقطع الحجاب الحاجز وقص القفص الصدري ثنائيا لفضح البطين الأيسر للقلب.
استخدام الملقط حادة، فهم بلطف بالقلب وإدراج إبرة فراشة ز 21 متصل بنظام التروية في البطين الأيسر وثم بعناية قطع الاذين الأيمن لجمع الدم (~0.2 مل) في أنبوب 2 مل تحتوي على الإيثيلين 10 ملم حمض (يدتا) لمنع تخثر الدم. ويرد في الشكل 2رسم تخطيطي التروية القلبية في الماوس.
ملاحظة: إذا نضح لا التي يتعين القيام بها، الدم قد يكون جمعها ثقب القلب باستخدام حقنه 1 مل وتنتقل بسرعة إلى أنبوب 2 مل يحتوي على 10 مم يدتا لمنع تخثر الدم. لام الليستريه-إصابة ثم يتم حصادها الأجهزة كوصف (الخطوة 5، 1).
يبدأ نضح ونتخلل الحيوان لمدة 4 دقيقة مع 15 – 20 مل من برنامج تلفزيوني يتضمن 10 مم يدتا.
ملاحظة: تقييم التروية بمراقبة الدم وحل برنامج تلفزيوني-يدتا تتدفق من خلال الاذين الأيمن وفي عموم التشريح. سوف تظهر المخ والكبد متبيض بعد نضح كاملة ضمان أن البكتيريا المتبقية من الأجهزة المقطوع ولم يعمم الدم.

5-الجهاز الحصاد وتحديد أعباء البكتيرية

المرفقة التالية التروية، أجهزة الحصاد (مثل الكبد والطحال) عن طريق إزالة بعناية أي المفرج والأربطة ووضع الأجهزة بشكل منفصل في أنبوب مخروطي عقيمة 15 مل يحتوي على 5 مل الباردة العقيمة (4 درجة مئوية) برنامج تلفزيوني. تخزين العينات في الثلج حتى يحدث مزيد من المعالجة.
لحصاد الدماغ، وقطع رأس الرأس خلف الأذنين باستخدام مقص وقص الجلد فروة الرأس الفترات الفاصلة بين عيون الحيوان أسفل خط الوسط. إذا لزم الأمر، قم بقطع الأنسجة الزائدة إبقاء المقص ضغط ضد الجمجمة.
1. برفق إدراج تلميح واحد مقص ماغنوم ثقبة (الثقب في قاعدة الجمجمة يمر من خلالها الحبل الشوكي) ويقتطع الجمجمة أفقياً على كلا الجانبين.
2. بلطف قطع الجمجمة الفترات الفاصلة بين العينين القوارض أسفل خط الوسط، ويجري التأكد من تطبيق الضغط الأفقي. تجنب اضطرابات الدماغ والحفاظ على الحد الأدنى من الاتصال بين أنسجة المخ والمقص.
3. استخدام الملقط تلميح جيد، فتح الجمجمة لكشف الدماغ ووضع ملعقة بين الجانب السفلي الدماغ وقاعدة الجمجمة لإزالة الدماغ.
  ملاحظة: يؤدي إلى تمزق الألياف العصبية في الدماغ.
4. نقل الدماغ بعناية إلى أنبوب مخروطي 15 مل يحتوي على 5 مل من برنامج تلفزيوني الباردة العقيمة.
5. تجاهل الذبيحة الماوس، وكرر هذه الخطوات للحيوانات المتبقية.
  ملاحظة: بمجرد قد تم حصادها جميع الأجهزة، تنظيف منطقة الداخلي والتحضير لتجانس الجهاز لتحديد أعباء البكتيرية.
تنظيف وتعقيم غيض من الخالطون الأنسجة وضعها مجلس الوزراء بإدراج التلميح، ويعمل الخالطون للتبييض s في التتابع 10 5%، والمياه المعقمة، 75% إيثانول، الماء المعقم كل الوارد في أنبوب مخروطي منفصل 15 مل في السلامة الأحيائية.
مجانسة الدماغ المصاب (~ 20 s في الإعداد 6، دورة في الدقيقة كحد أقصى) في أنبوب مخروطي 15 مل حتى تبقى لا أجزاء الأنسجة مرئية.
1. تنظيف الخالطون كما هو موضح في الخطوة 5، 3 لمنع البكتيريا تحمل أكثر من تلوث للعينة الجهاز القادم.
2. تنفيذ عملية التجانس لجميع الأجهزة الأخرى (مثل الكبد والطحال).
3. وبمجرد الانتهاء من عملية التذويب، تنظيف الخالطون كما هو موضح في الخطوة 5، 3 وتخزين حتى استخدامها مرة أخرى.
إعداد الوقت تخفيف المسلسل من هوموجيناتيس الجهاز في برنامج تلفزيوني العقيمة ولوحة تخفيف على ألواح أجار/ستربتوميسين بهي لتحديد زيمبابوي للجهاز الواحد.
ملاحظة: يتم تنفيذ أسلوب مماثل لتحديد زيمبابوي كل مل دم.
1. بعد أن يتم تخفيف جميع مطلي، نقل اللوحات لحاضنة 37 درجة مئوية بين عشية وضحاها.
2. وفي اليوم التالي إحصاء عدد المستعمرات في كل لوحة لتحديد العدد الكلي للبكتيريا في الجهاز أو مل من الدم على النحو التالي:
  زيمبابوي/الجهاز = (عدد المستعمرات × معامل التخفيف)/مل هوموجيناتي مطلي x 5
  زيمبابوي/مليلتر دم = (عدد المستعمرات × معامل التخفيف)/مطلي مل دم

النتائج

فاسكولاريزيد الدماغ هو الغاية و لام الليستريه المعروف لتصيب أنواع الخلايا الموجودة في الدم³^،¹³. يستخدم بروتوكول وصف لإثبات قدرة لام الليستريه على عبور حاجز الدم في الدماغ (بي بي بي) مما أدى إلى إصابة في الدماغ في الفئران. لتحديد إذ...

Discussion

المستوحدة لام غير قادرة على تسبب التهاب السحايا والدماغ مما يهدد حياة البشر. الدراسات السابقة أثبتت قدرة البكتيريا عبر الدم-الدماغ-الجدار (BBB) واستعمار الدماغ. وقد اقترحت ثلاث طرق لغزو الدماغ أثناء الإصابة: مباشرة اختراق BBB بالبكتيريا، والنقل خلسة بواسطة البكتيريا الواردة داخل الخلا?...

Disclosures

الكتاب يعلن لا تضارب المصالح المالية.

Acknowledgements

هذا العمل كان تدعمها "خدمة الصحة العامة في الولايات المتحدة" منح AI103806 من "المعاهد الوطنية للصحة".

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Brain Heart Infusion media	Becton Dickinson	237200
Streptomycin sulfate	Amresco	0382-50G
Petri dishes	VWR	25384-342
Glycerol	VWR	97062-832
IKA T18 ULTRA-TURRAX Basic Homogenizer	IKA	3352109	Model: T18BS1
Spectrophotometer	Beckman Coulter	DU 800 series
BALB/c mice	Jackson Laboratory	Model #000651
1 mL syringes	Becton Dickinson	309659
26 G needles	Becton Dickinson	305115
21 G butterfly needles	Becton Dickinson	367281
Ethylenediaminetetraacetic acid	Sigma-Aldrich	60004
15 mL conical tubes	VWR	21008-918
Round-bottom test tubes	VWR	60819-546
Phosphate-buffered saline	Corning	46-013-CM
Stainless steel spatula	VWR	82027-520
Stainless steel scissors (6.5 in)	VWR	82027-592
Stainless steel scissors (4.5 in)	VWR	82027-578
Stainless steel blunt forceps (4.5 in)	VWR	82027-440
Stainless steel fine tip forceps (6 in)	VWR	82027-406

References

Radoshevich, L., Cossart, P. Listeria monocytogenes: towards a complete picture of its physiology and pathogenesis. Nature Reviews Microbiology. 16 (1), 32-46 (2018).
de Noordhout, C. M., et al. The global burden of listeriosis: a systematic review and meta-analysis. The Lancet Infectious Diseases. 14 (11), 1073-1082 (2014).
Drevets, D. A., Leenen, P. J., Greenfield, R. A. Invasion of the central nervous system by intracellular bacteria. Clinical Microbiology Reviews. 17 (2), 323-347 (2004).
Huang, S. H., Stins, M. F., Kim, K. S. Bacterial penetration across the blood-brain barrier during the development of neonatal meningitis. Microbes and Infection. 2 (10), 1237-1244 (2000).
Brouwer, M. C., Tunkel, A. R., van de Beek, D. Epidemiology, diagnosis, and antimicrobial treatment of acute bacterial meningitis. Clinical Microbiology Reviews. 23 (3), 467-492 (2010).
Thigpen, M. C., et al. Bacterial meningitis in the United States, 1998-2007. New England Journal of Medicine. 364 (21), 2016-2025 (2011).
Durand, M. L., et al. Acute bacterial meningitis in adults. A review of 493 episodes. The New England Journal of Medicine. 328 (1), 21-28 (1993).
Disson, O., Lecuit, M. Targeting of the central nervous system by Listeria monocytogenes. Virulence. 3 (2), 213-221 (2012).
Daneman, R., Prat, A. The blood-brain barrier. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 7 (1), a020412 (2015).
Becavin, C., et al. Comparison of widely used Listeria monocytogenes strains EGD, 10403S, and EGD-e highlights genomic variations underlying differences in pathogenicity. MBio. 5 (2), e00969-e00914 (2014).
Kirchner, M., Higgins, D. E. Inhibition of ROCK activity allows InlF-mediated invasion and increased virulence of Listeria monocytogenes. Molecular Microbiology. 68 (3), 749-767 (2008).
Grubaugh, D., et al. The VirAB ABC transporter is required for VirR regulation of Listeria monocytogenes virulence and resistance to nisin. Infection and Immunity. 86 (3), 901-917 (2018).
Vazquez-Boland, J. A., et al. Listeria pathogenesis and molecular virulence determinants. Clinical Microbiology Reviews. 14 (3), 584-640 (2001).
Ghosh, P., et al. Invasion of the brain by Listeria monocytogenes is mediated by InlF and host cell vimentin. MBio. 9 (1), e00160-e00118 (2018).
Henke, D., et al. Listeria monocytogenes spreads within the brain by actin-based intra-axonal migration. Infection and Immunity. 83 (6), 2409-2419 (2015).
Maury, M. M., et al. Uncovering Listeria monocytogenes hypervirulence by harnessing its biodiversity. Nature Genetics. 48 (3), 308-313 (2016).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

140

This article has been published

Video Coming Soon

Keep me updated: