نشكر السيد كريغ سلافن دال (قسم اللغة الإنجليزية ، جامعة كنتاكي) لتقديم المساعدة التحريرية. بدعم من جامعة كنتاكي ، قسم علم الأحياء ، ومكتب للدراسات الجامعية وكلية الآداب والعلوم.

<ol>
	<li>Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Organization+and+synaptic+physiology+of+crustacean+neuromuscular+systems.">Organization and synaptic physiology of crustacean neuromuscular systems.</a> Prog. Neurobiol. 7, 291-391 (1976).</li><li>Atwood, H. L., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synaptic+diversity+and+differentiation:+Crustacean+neuromuscular+junctions.">Synaptic diversity and differentiation: Crustacean neuromuscular junctions.</a> Invertebrate Neuroscience. 1, 291-307 (1996).</li><li>Bradacs, H., Cooper, R. L., Msghina, M., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+physiology+and+morphology+of+phasic+and+tonic+motor+axons+in+a+crayfish+limb+extensor+muscle.">Differential physiology and morphology of phasic and tonic motor axons in a crayfish limb extensor muscle.</a> J. Exp. Biol. 200, 677-691 (1997).</li><li>Cooper, R. L., Stewart, B. A., Wojtowicz, J. M., Wang, S., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantal+measurement+and+analysis+methods+compared+for+crayfish+and+Drosophila+neuromuscular+junctions,+and+rat+hippocampus.">Quantal measurement and analysis methods compared for crayfish and Drosophila neuromuscular junctions, and rat hippocampus.</a> J. Neurosci Methods. 61, 67-78 (1995).</li><li>Cooper, R. L., Donmezer, A., Shearer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intrinsic+differences+in+sensitivity+to+5-HT+between+high-+and+low-output+terminals+innervating+the+same+target.">Intrinsic differences in sensitivity to 5-HT between high- and low-output terminals innervating the same target.</a> Neuroscience Research. 45, 163-172 (2003).</li><li>Cooper, A. S., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Historical+view+and+demonstration+of+physiology+at+the+NMJ+at+the+crayfish+opener+muscle.">Historical view and demonstration of physiology at the NMJ at the crayfish opener muscle.</a> J Vis Exp. , (2009).</li><li>Del Castillo, J., Katz, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantal+components+of+the+end-plate+potential.">Quantal components of the end-plate potential.</a> J. Physiol. 124, 560-573 (1954).</li><li>Desai-Shah, M., Viele, K., Sparks, G., Nadolski, J., Hayden, B., Srinivasan, V. K., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+synaptic+function+during+short-term+facilitation+in+motor+nerve+terminals+in+the+crayfish.">Assessment of synaptic function during short-term facilitation in motor nerve terminals in the crayfish.</a> The Open Neuroscience Journal. 2, 24-35 (2008).</li><li>Desai-Shah, M., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Different+mechanisms+of+Ca2++regulation+that+influence+synaptic+transmission:+Comparison+between+crayfish+and+Drosophila+neuromuscular+junctions.">Different mechanisms of Ca2+ regulation that influence synaptic transmission: Comparison between crayfish and Drosophila neuromuscular junctions.</a> SYNAPSE. 63, 1100-1121 (2009).</li><li>Dudel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+reduced+calcium+on+quantal+unit+at+the+crayfish+neuromuscular+junction.">The effect of reduced calcium on quantal unit at the crayfish neuromuscular junction.</a> Pfl gers Arch. 391, 35-40 (1981).</li><li>Griffis, B., Moffett, S., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+phenotype+remains+unaltered+after+limb+autotomy+and+unloading.">Muscle phenotype remains unaltered after limb autotomy and unloading.</a> J. Exp. Zool. 289, 10-22 (2001).</li><li>Harata, N., Pyle, J. L., Aravanis, A. M., Mozhayeva, M., Kavalai, E. T., Tsien, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Limited+numbers+of+recycling+vesicles+in+small+CNS+nerve+terminals:+implications+for+neural+signaling+and+vesicular+cycling.">Limited numbers of recycling vesicles in small CNS nerve terminals: implications for neural signaling and vesicular cycling.</a> Trends in Neurosci. 24, 637-643 (2001).</li><li>Jeromin, A., Shayan, A. J., Msghina, M., Roder, J., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crustacean+frequenins:+molecular+cloning+and+differential+localization+at+neuromuscular+junctions.">Crustacean frequenins: molecular cloning and differential localization at neuromuscular junctions.</a> J. Neurobiol. 41 (2), 165-175 (1999).</li><li>Johnstone, A. F. M., Kellie, S., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Presynaptic+depression+in+phasic+motor+nerve+terminals+and+influence+of+5-HT+on+docked+vesicles.">Presynaptic depression in phasic motor nerve terminals and influence of 5-HT on docked vesicles.</a> The Open Neuroscience Journal. 2, 16-23 (2008).</li><li>Katz, B., Kuffler, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excitation+of+the+nerve-muscle+system+in+Crustacea.">Excitation of the nerve-muscle system in Crustacea.</a> Proc. Roy. Soc. B. 133, 374-389 (1946).</li><li>Kennedy, D., Takeda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reflex+control+of+abdominal+flexor+muscles+in+crayfish.+I.+The+twitch+system.">Reflex control of abdominal flexor muscles in crayfish. I. The twitch system.</a> J. Exp. Biol. 43, 211-227 (1965).</li><li>Kennedy, D., Takeda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reflex+control+of+abdominal+flexor+muscles+in+crayfish.+II.+The+tonic+system.">Reflex control of abdominal flexor muscles in crayfish. II. The tonic system.</a> J. Exp. Biol. 43, 229-246 (1965).</li><li>King, M. J. R., Atwood, H. L., Govind, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+features+of+crayfish+phasic+and+tonic+neuromuscular+junctions.">Structural features of crayfish phasic and tonic neuromuscular junctions.</a> J. Comp. Neurol. 372, 618-626 (1996).</li><li>LaFramboise, W., Griffis, B., Bonner, P., Warren, W., Scalise, D., Guthrie, R. D., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+type+specific+myosin+isoforms+in+crustacean+muscles.">Muscle type specific myosin isoforms in crustacean muscles.</a> J. Exp. Zool. 286, 36-48 (2000).</li><li>Logsdon, S., Johnstone, A. F. M., Viele, K., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+synaptic+vesicles+pools+within+motor+nerve+terminals+during+short-term+facilitation+and+neuromodulation.">Regulation of synaptic vesicles pools within motor nerve terminals during short-term facilitation and neuromodulation.</a> J. Applied Physiol. 100, 662-671 (2006).</li><li>Lucas, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+analysis+of+complex+excitable+tissues+by+their+response+to+electric+currents+of+short+duration.">The analysis of complex excitable tissues by their response to electric currents of short duration.</a> J. Physiol. 35, 310-331 (1907).</li><li>Lucas, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+summation+of+propagated+disturbances+in+the+claw+of+Astacus+and+on+the+double+neuromuscular+system+of+the+abductor.">On summation of propagated disturbances in the claw of Astacus and on the double neuromuscular system of the abductor.</a> J. Physiol. 51, 1-35 (1917).</li><li>Magrassi, L., Purves, D., Lichtman, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescent+probes+that+stain+living+nerve+terminals.">Fluorescent probes that stain living nerve terminals.</a> J. Neurosci. 7, 1207-1214 (1987).</li><li>Millar, A. G., Bradacs, H., Charlton, M. P., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inverse+relationship+between+release+probability+and+readily+releasable+vesicles+in+depressing+and+facilitating+synapses.">Inverse relationship between release probability and readily releasable vesicles in depressing and facilitating synapses.</a> J. Neurosci. 22, 9661-9667 (2002).</li><li>Millar, A. G., Zucker, R. S., Ellis-Davies, C. G., Charlton, M. P., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcium+sensitivity+of+neurotransmitter+release+differs+at+phasic+and+tonic+synapses.">Calcium sensitivity of neurotransmitter release differs at phasic and tonic synapses.</a> J. Neurosci. 25, 3113-3125 (2005).</li><li>Msghina, M., Govind, C. K., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synaptic+structure+and+transmitter+release+in+crustacean+phasic+and+tonic+motor+neurons.">Synaptic structure and transmitter release in crustacean phasic and tonic motor neurons.</a> J. Neurosci. 18, 1374-1382 (1998).</li><li>Msghina, M., Millar, A. G., Charlton, M. P., Govind, C. K., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcium+entry+related+to+active+zones+and+differences+in+transmitter+release+at+phasic+and+tonic+synapses.">Calcium entry related to active zones and differences in transmitter release at phasic and tonic synapses.</a> J. Neurosci. 19, 8419-8434 (1999).</li><li>Mykles, D. L., Medler, S. A., Koenders, A., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myofibrillar+protein+isoform+expression+is+correlated+with+synaptic+efficacy+in+slow+fibres+of+the+claw+and+leg+opener+muscles+of+crayfish+and.">Myofibrillar protein isoform expression is correlated with synaptic efficacy in slow fibres of the claw and leg opener muscles of crayfish and.</a> 205 (4), 513-522 (2002).</li><li>Sparks, G., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=5-HT+offsets+homeostasis+of+synaptic+transmission+during+short-term+facilitation.">5-HT offsets homeostasis of synaptic transmission during short-term facilitation.</a> J. Applied Physiol. 96, 1681-1690 (2004).</li><li>Sohn, J., Mykles, D. L., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+anatomical,+physiological+and+biochemical+characterization+of+muscles+associated+with+the+articulating+membrane+in+the+dorsal+surface+of+the+crayfish+abdomen.">The anatomical, physiological and biochemical characterization of muscles associated with the articulating membrane in the dorsal surface of the crayfish abdomen.</a> J. Exp. Zool. 287, 353-377 (2004).</li><li>Tsien, R. W., Harata, N. C., Choi, S. W. P. y. l. e., Aravanis, A. M., AM, G. C. h. e. n. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vesicles,+quanta+and+synaptic+plasticity.+Molecular+Mechanisms+of+synaptic+function.">Vesicles, quanta and synaptic plasticity. Molecular Mechanisms of synaptic function.</a> , (2001).</li><li>Van Harreveld, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+physiological+solution+for+freshwater+crustaceans.">A physiological solution for freshwater crustaceans.</a> Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 34, 428-432 (1936).</li><li>Van Harreveld, A., Wiersma, C. A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+triple+innervation+of+the+crayfish+muscle.">The triple innervation of the crayfish muscle.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 22, 667-667 (1936).</li><li>Wiersma, C. A. G., Van Harreveld, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+influence+of+the+frequency+of+stimulation+on+the+slow+and+fast+contraction+in+crustacean+muscle.">The influence of the frequency of stimulation on the slow and fast contraction in crustacean muscle.</a> Physiol. Zool. 11, 75-81 (1938).</li><li>Wojtowicz, J. M., Smith, B. R., Atwood, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-dependent+recruitment+of+silent+synapses.">Activity-dependent recruitment of silent synapses.</a> Ann. N.Y. Acad. Sci. 627, 169-179 (1991).</li></ol>

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

وقد أثبتنا في هذا التقرير كيفية تشريح وتسجيل وقياس ردود متشابك في إعداد جراد البحر فريدة في الاعصاب الطرفية والتي على حد سواء العالية والمنخفضة الانتاج يعصب الألياف العضلية نفسها. الاستعدادات العصبية والعضلية في تقديم العديد من المزايا جراد خلال تقاطعات الفقاريات العصبية والعضلية ، لأن هناك حاجة سوى عدد قليل من الخلايا العصبية الحركية مثير ليعصب العضلات ، ومنذ الخلايا العصبية يمكن تمييزها من الإعداد إلى إعداد (أتوود ، 1976) بالإضافة إلى ذلك ، الناقل العصبي هو مثير الغلوتامات ، وتصنف امكانات مثير بعد المشبكي (الكامن الاستثاري بعد المشبكي) ، وبالتالي ، فإن الخصائص الفيزيائية الحيوية متدرج للأحداث مشابهة لالتشعبات من الخلايا العصبية في الجهاز العصبي المركزي من الفقاريات. التيارات كمي ، ومع ذلك ، يمكن رصدها مباشرة في المواقع بعد المشبكي (كوبر وآخرون ، 1995). التحفيز المتكرر هرتز 5 من العصب طوري يثير EPSPs الكبيرة التي بالاكتئاب بشكل كبير بعد عدة دقائق. هذا النوع من الاكتئاب شائع في العصبية والعضلية المفصلية تقاطعات طوري (اتوود وكوبر ، 1996). وجود محطات منشط جنبا إلى جنب مع محطات طوري يسمح احد لتقييم ما إذا كانت أو لم يتم تعديل كبير في الهدف بعد المشبكي أثناء وبعد الاكتئاب من الخلايا العصبية الحركية طوري. بالإضافة إلى ذلك ، ومحطات الانتاج المنخفض توفير إعداد لطيفة للتحقيق في الآليات التي تكمن وراء تيسير متشابك (ديساي للشاه وآخرون ، 2008 ؛. ديساي للشاه ، وكوبر ، 2009) المحطات الطرفية عالية الانتاج توفر أرضية اللعب للتحقيق في تعديل نسبة الاكتئاب متشابك وعملية الاسترداد. ينبغي الوصول إليها وقابلة للاستمرار الاستعدادات مساعدة في فك رموز الآليات وراء الاكتئاب متشابك. في هذا الباسطة إعداد جراد الساق ، وطلب من الخارجية السيروتونين هو أداة أخرى لتحقيق الانتعاش من الاكتئاب متشابك وربما وسيلة لتعزيز التحقيق في تعبئة برك حويصلة متشابك. هذا المستحضر يوفر مزايا عدة تجريبية ، حيث يتم معصب ألياف العضلات الفردية عن طريق الخلايا العصبية الحركية على حد سواء طوري ومنشط. منذ السيروتونين يزيد من عدد الحويصلات التي تم إصدارها مع التحفيز أثار ، ونظرا لأنه يعزز الانتعاش خلال الاكتئاب ، فمن الواضح أن هناك بعض التعديل للحمامات حويصلة لتعزيز احتمالات الاندماج مع الحاضر السيروتونين (جونستون وآخرون ، 2008 ؛ Logsdon وآخرون ، 2006 ؛. الشرر وآخرون ، 2004). النماذج التي من شأنها أن تفسر ديناميكية تجمعات حويصلة داخل محطة العصب قبل المشبكي خلال التحفيز التردد المنخفض ، في مقابل حالة من الاكتئاب ، تحتاج أيضا إلى النظر بين البروتوكولات التجريبية المختلفة التي من الممكن مع هذا الإعداد. وقد لوحظ أنه في نظم أخرى أن حوالي 30 ٪ من تجمع حويصلة تخضع لعملية إعادة التدوير السريع ، في حين أن بقية الحويصلات تدويرها تذهب من خلال مسار بطيء التدوير التقليدية من خلال شبكية هيولي باطني (Harata وآخرون ، 2001 ؛. تسين وآخرون. ، 2001). قد تكون هذه المسارات المزدوجة أيضا موجودة في هذا النظام. ربما إذا ATP غير موجودة في حالة الكساد من المحطة قبل المشبكي ، ثم رفع وتنزيل لا تكون قادرة على أن يحدث ، وبالتالي فإن العديد من الحويصلات أكثر تفريغ ستبقى على السطح متشابك. منذ يتم الافراج بسرعة أكبر عندما تتعرض الحويصلات المحطات إلى 5 HT ، فمن الممكن أن ترد أكثر داخل تجمع نشره بسهولة (RRV). ومع ذلك ، في حالة الاكتئاب ، مع انخفاض ATP ، قد يتم حظر رفع وتنزيل حتى في وجود من 5 HT ، الأمر الذي يترك مرة أخرى تفريغ حويصلات على سطح متشابك. لأن البيانات الأولية تشير إلى أن يتم إطلاق المزيد من الحويصلات بمرور الوقت مع التعرض المطول HT (5) والتحفيز ، وتوزيع تجمع حويصلة من المسارات السريعة والبطيئة إعادة التدوير قد تكون منحرفة لحويصلات المختصة لإعادة اطلاق سراح (جونستون من وآخرون. ، 2008 ، انظر الى استعراض للشاه ديساي ، وآخرون ، 2008 ؛. ديساي للشاه ، وكوبر ، 2009) مع تقنيات الاتصال التسجيلات macropatch التيارات بعد المشبكي وتدابير كمات واحدة من مناطق محددة من المحطة العصب المحرك ، يمكن للمرء أن يسأل أسئلة لتحديد ما إذا كان الاكتئاب هو متشابك التي تحدث نتيجة لانخفاض عدد الحويصلات الإفراج عنهم أو بسبب تغيرات في وظيفة من المستقبلات بعد المشبكي. وقد تبين أن الحويصلات أكثر حساسية للانصهار في NMJ طوري هذا استعدادا لتعرض الكالسيوم يساوي (ميلر وآخرون 2005) ، الذي يمثل على الأرجح لارتفاع متوسط ​​محتوى كمي للمحطات طوري (Msghina وآخرون. ، 1998 ، 1999). بالإضافة إلى ذلك ، الاختلافات في بروتين frequenin الكالسيوم ملزمة (Jeromin وآخرون ، 1999) ، والترآيب الدقيق (الملك وآخرون ، 1996) تسهم في فعالية الفرق متشابك (كوبروآخرون ، 2003). واستكشفت بعض الدراسات السابقة على النمط الظاهري العضلات من ألياف العضلات الباسطة (Bradacs وآخرون ، 1997 ؛. كوبر وآخرون ، 2003). بمقارنة تنظيم تمايز لأنواع الألياف العضلية منشط بحتة وطورية في جراد البحر إلى أنواع الألياف المختلطة ، مثل لساقه التي هي الباسطة معصب حسب الأصول ، يمكن أن يوفر أدلة على التعبير والتنظيم العضلات النمط الظاهري (LaFramboise وآخرون ، 2000 ؛. سون وآخرون القاعدة ، 2000 ؛. Griffis وآخرون ، 2001 ؛. Mykles وآخرون ، 2002). لا يزال العديد من المسائل الأساسية التي ينبغي معالجتها في بيولوجيا الأعصاب ، وهذا قد يساعد في إعداد معالجة بعض منها. عدد قليل من المواضيع ذات الاهتمام في هذا المجال اليوم قد يكون اقترب مع الباسطة الساق ما يلي : 1) تحديد الآليات الخلوية التي تكمن وراء الاكتئاب متشابك داخل عالية الانتاج محطات (هل الاكتئاب نتيجة لتخفيض CA2 + الدخول ، وعدم وجود المختصة حويصلة نشره بسهولة (RRV) بركة ، و / أو تقبل بعد المشبكي تغيير؟) 2) تحديد دور الميكانيكية للHT - 5 عندما يطبق بعد تحريض من الاكتئاب متشابك لتعزيز الانتعاش بشكل أسرع ، و 3) تحديد ما إذا كانت الأشكال من كمي ويجري تغيير التيارات التي تنشأ من محطات طوري تحفيز خلال تحريض لمعالجة الاكتئاب المكونات السابقة واللاحقة ، متشابك من الاكتئاب متشابك. هذا NMJ المهم أن البحوث الجارية والمحققين في المستقبل لأنها تمكننا من الحصول على المعلومات ذات الصلة التي تتناول آليات تابعا للأداء متشابك كما تقاس مباشرة في مواقع إطلاق سراحهم. الأبحاث الجارية في هذا المجال هو توفير معلومات حول التشكيل متشابك من الاكتئاب بواسطة HT - 5 وديناميات تجمعات الحويصلة. مثل هذه المواضيع تتعلق أساسيات الأساسية للانتقال متشابك ذات الصلة لجميع الأنظمة العصبية.

<ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جراد البحر (Procambarus clarkii). Atchafalaya البيولوجي شركة التموين ، Raceland لوس انجليس. ، الولايات المتحدة الأمريكية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جراد البحر المالحة القياسية : <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعديل من حل فان Harreveld في (1936). (مم) 205 كلوريد الصوديوم ؛ بوكل 5.3 ؛ 13.5 CaCl 2 2H 2 O ؛ 2.45 MgCl 2 6H 2 O (5) ؛ HEPES وتعديلها لدرجة الحموضة 7.4 </li></ul></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أدوات تشريح : الجميلة # 5 ملاقط ، مقصات غرامة ، حامل سكين شفرة ، # 26002-20 دبابيس الحشرات (الحصول على جميع العلوم من أدوات الجميلة (الولايات المتحدة) ، وشركة ، 373 - G فخمة بارك محرك ، فوستر سيتي ، كاليفورنيا 94404-1139) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Sylgard طبق تشريح المغلفة ، وطبق تسجيل بناؤها إما مع شفط القطب الكهربائي أو استخدام الشفط وتتلاعب في العضو الذكري لعقد القطب الشفط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح المجهر مع وظيفة التكبير والتصغير للتسجيلات داخل الخلايا. للتسجيل الاتصال على المحطات المرئية ويستخدم مجهر مركب تستقيم مع أهداف (4 x و 20X). يحتاج المرء إلى مصدر الضوء الزئبق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مضخم الخلايا القياسية وA / D لوحة تسجيل على الخط لجهاز كمبيوتر. يتم تسجيل الإشارات الكهربائية على الخط إلى واجهة PowerLab/4s (ADInstruments واستراليا). نستخدم البرامج القياسية من ADInstruments اسمه تخطيط أو نطاق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المواد الكيميائية : <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نستخدم صبغة الفلورسنت الحيوية ، (4) [4 (diethylamino) styryl] يوديد methylpyridinium N (4 2 دي الحية ؛ المسابر الجزيئية ، يوجين ، OR) ، لتصور دوالي (Marigassi وآخرون ، 1987 ؛. كوبر وآخرون ، 1995a. ). تم الحصول على جميع المواد الكيميائية المالحة من شركة سيغما الكيميائية (سانت لويس ، MO). </li></ul></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> للتسجيلات الخلايا نستخدم أنابيب الزجاج الشعرية (كتالوج # 30-31-0 من FHC ، برونزويك ، ME ، 04011 ، الولايات المتحدة الأمريكية) وأقطاب macropatch التنسيق نستخدم Kimax - 51 ، كيمبل منتجات الفن. رقم 34502 ، رقم 0.8 1.1mm ، طول 100mm. ينبغي أن يكون القطب الخلايا المقاومة بين 20 و 30 mOhm. هي التي شيدت من قبل القطب macropatch قطع غيض من الزجاج بعد أن قدم معلومات سرية غرامة من مجتذب الكهربائي. غيض قبالة كسر يحتاج إلى فترة انقطاع عن 20μM عمودي نظيفة في القطر. غيض من الحرارة ثم مصقول لقطرها حوالي 10μM الداخلية. ومن ثم تشغيل رمح القطب أكثر من عنصر التدفئة لتجعله ينحني نحو 45 درجة مئوية مع منحنى تدريجيا. هذا ينتج تجويف القطب شقة أو عمودي على العصب الطرفي كما زاوية مع تتلاعب الصغيرة سوف تنتج نحو 45 درجة أخرى إلى الإعداد. </li></ol>

physiological recordings of high and low output nmjs on the crayfish leg extensor muscle

نشرح بالتفصيل كيفية كشف وإجراء التسجيلات الكهربية من الاستجابات متشابك عالية (طورية) ، وانخفاض انتاج السيارات (منشط) الخلايا العصبية التعصيب العضلات الباسطة في الساق المشي من جراد البحر. اختلافات واضحة موجودة في علم وظائف الأعضاء ومورفولوجية المحطات العصب الجيبي ومنشط. محور عصبي منشط تحتوي على العديد من الميتوكوندريا ، مما مكنها من اتخاذ ملون حيوي أكثر من محور عصبي شديد طوري. المحطات منشط ودوالي ، ومحطة طوري غير خيطي. المحطات منشط منخفضة في نجاعة متشابك كنها تظهر ردود يسرت دراماتيكية. في المقابل ، فإن محطات طورية على نسبة عالية من الفعالية كمي لكنها تظهر الاكتئاب متشابك مع ارتفاع وتيرة التحفيز. يتم قياس الناتج كمي مع القطب macropatch التنسيق وضعها مباشرة على الأعصاب الطرفية تصور. محطات كلا طوري ومنشط يعصب ألياف العضلات نفسها ، مما يوحي بأن الخلافات الكامنة في الخلايا العصبية ، بدلا من ردود الفعل الفرق الوراء من العضلات ، وحساب التفاضل المورفولوجية والفسيولوجية.

Watch this Scientific Journal Video about Physiological Recordings of High and Low Output NMJs on the Crayfish Leg Extensor Muscle at JoVE.com

Physiological Recordings of High and Low Output NMJs on the Crayfish Leg Extensor Muscle

هذه المقالة يوضح كيفية اجراء التسجيلات الكهربية متشابك من الردود على العضلات الباسطة في الساق المشي من جراد البحر ، وكيف يتم تصور الأعصاب الطرفية لاظهار الاختلافات المظهرية الإجمالي العالية وانخفاض الناتج الأعصاب الطرفية.

الفسيولوجية تسجيلات NMJs المخرجات العالية والمنخفضة على العضلة الباسطة جراد البحر الساق

We explain in detail how to expose and conduct electrophysiological recordings of synaptic responses for high (phasic) and low (tonic) output motor ...

physiological-recordings-high-low-output-nmjs-on-crayfish-leg

Research

JoVE Journal

Neuroscience

11.6K Views.  University of Kentucky. هذه المقالة يوضح كيفية اجراء التسجيلات الكهربية متشابك من الردود على العضلات الباسطة في الساق المشي من جراد البحر ، وكيف يتم تصور الأعصاب الطرفية لاظهار الاختلافات المظهرية الإجمالي العالية وانخفاض الناتج الأعصاب الطرفية.

Video: Physiological Recordings of High and Low Output NMJs on the Crayfish Leg Extensor Muscle

State-Dependency Effects on TMS:  A Look at Motive Phosphene Behavior

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive neurostimulatory and neuromodulatory technique that can transiently or lastingly modulate cortical excitability (either increasing or decreasing it) via the application of localized magnetic field pulses.1,2 Within the field of TMS, the term state dependency refers to the initial, baseline condition of the particular neural region targeted for stimulation. As can be inferred, the effects of TMS can (and do) vary according to this primary susceptibility and responsiveness of the targeted cortical area.3,4,5

In this experiment, we will examine this concept of state dependency through the elicitation and subjective experience of motive phosphenes. Phosphenes are visually perceived flashes of small lights triggered by electromagnetic pulses to the visual cortex. These small lights can assume varied characteristics depending upon which type of visual cortex is being stimulated. In this particular study, we will be targeting motive phosphenes as elicited through the stimulation of V1/V2 and the V5/MT+ complex visual regions.6

In this article, we examine the effects of visually relevant state dependency on TMS induced motive phosphenic presentations.

التبعية للدولة التأثيرات على TMS : نظرة على سلوك الدافع وبصة

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive neurostimulatory and neuromodulatory technique that can transiently or lastingly modulate ...

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

الإمكانيات الغشاء ، الردود متشابك ، الدارات العصبية ، تعديل العمليات العصبية والأنسجة العضلية باستخدام جراد البحر : تمارين مختبر طالبة

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this experiment is to learn anatomy of the preparation by staining, dissection and viewing of neurons and sensory structures under a dissecting microscope. This is performed by using basic neurophysiological equipment to record the electrical activity from a joint receptor organ and staining techniques. The muscle receptor organ (MRO) system in the crayfish is analogous to the intrafusal muscle spindle in mammals, which aids in serving as a comparative model that is more readily accessible for electrophysiological recordings. In addition, these are identifiable sensory neurons among preparations. The preparation is viable in a minimal saline for hours which is amenable for student laboratory exercises. The MRO is also susceptible to neuromodulation which encourages intriguing questions in the sites of modulatory action and integration of dynamic signals of movements and static position along with a gain that can be changed in the system.

The primary purpose of this experiment is to understand how primary sensory neurons convey information of joint movements and positions as proprioceptive information for an animal. An additional objective of this report is present the anatomy of the preparation by dissection and viewing of neurons under a dissecting microscope.

هيئات مستقبلات العضلات في البطن جراد البحر : تمرين الطلاب في مختبر استقبال الحس العميق

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive ...

Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings with a force transducer to monitor the strength of contraction. In addition, we demonstrate how to visually monitor peristaltic activity, which can be used as a bioassay for various peptides, biogenic amines and neurotransmitters. This preparation is amenable to student laboratories in physiology and for demonstrating pharmacological concepts to students. This preparation has been in use for over 100 years, and it still offers much as a model for investigating the generation and regulation of peristaltic rhythms and for describing the mechanisms underlying their modulation. The pharmacological assays and receptor sub-typing that were started over 50 years ago on the hindgut still contribute to research today. This robust preparation is well suited to training students in physiology and pharmacology.

In this report we demonstrate techniques that can be used to investigate the biology of the crayfish hindgut. We show how to dissect a crayfish abdomen and study the associated anatomy, physiology and modulation of activity. The peristaltic activity and strength of contractions are measured using a force transducer.

الفسيولوجية التجريب مع المعى المؤخر جراد البحر : تمرين الطلاب مختبر

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings ...

Paired Patch Clamp Recordings from Motor-neuron and Target Skeletal Muscle in Zebrafish

Larval zebrafish represent the first vertebrate model system to allow simultaneous patch clamp recording from a spinal motor-neuron and target muscle. This is a direct consequence of the accessibility to both cell types and ability to visually distinguish the single segmental CaP motor-neuron on the basis of morphology and location. This video demonstrates the microscopic methods used to identify a CaP motor-neuron and target muscle cells as well as the methodologies for recording from each cell type. Identification of the CaP motor-neuron type is confirmed by either dye filling or by the biophysical features such as action potential waveform and cell input resistance. Motor-neuron recordings routinely last for one hour permitting long-term recordings from multiple different target muscle cells. Control over the motor-neuron firing pattern enables measurements of the frequency-dependence of synaptic transmission at the neuromuscular junction. Owing to a large quantal size and the low noise provided by whole cell voltage clamp, all of the unitary events can be resolved in muscle. This feature permits study of basic synaptic properties such as release properties, vesicle recycling, as well as synaptic depression and facilitation. The advantages offered by this in vivo preparation eclipse previous neuromuscular model systems studied wherein the motor-neurons are usually stimulated by extracellular electrodes and the muscles are too large for whole cell patch clamp. The zebrafish preparation is amenable to combining electrophysiological analysis with a wide range of approaches including transgenic lines, morpholino knockdown, pharmacological intervention and in vivo imaging. These approaches, coupled with the growing number of neuromuscular disease models provided by mutant lines of zebrafish, open the door for new understanding of human neuromuscular disorders.

Larval zebrafish represent the first vertebrate model system to allow simultaneous patch clamp recording from a spinal motor-neuron and target skeletal muscle. This video demonstrates the microscopic methods used to identify a segmental CaP motor-neuron and target muscle cells as well as the methodologies for recording from each cell type.

المقترنة تسجيلات المشبك من تصحيح للسيارات ، والخلايا العصبية في العضلات الهيكلية الهدف اسماك الزرد

Larval zebrafish represent the first vertebrate model system to allow simultaneous patch clamp recording from a spinal motor-neuron and target muscle.  ...

High-density EEG Recordings of the Freely Moving Mice using Polyimide-based Microelectrode

Electroencephalogram (EEG) indicates the averaged electrical activity of the neuronal populations on a large-scale level. It is widely utilized as a noninvasive brain monitoring tool in cognitive neuroscience as well as a diagnostic tool for epilepsy and sleep disorders in neurology. However, the underlying mechanism of EEG rhythm generation is still under the veil. Recently introduced polyimide-based microelectrode (PBM-array) for high resolution mouse EEG1 is one of the trials to answer the neurophysiological questions on EEG signals based on a rich genetic resource that the mouse model contains for the analysis of complex EEG generation process. This application of nanofabricated PBM-array to mouse skull is an efficient tool for collecting large-scale brain activity of transgenic mice and accommodates to identify the neural correlates to certain EEG rhythms in conjunction with behavior. However its ultra-thin thickness and bifurcated structure cause a trouble in handling and implantation of PBM-array. In the presented video, the preparation and surgery steps for the implantation of PBM-array on a mouse skull are described step by step. Handling and surgery tips to help researchers succeed in implantation are also provided.

In this article, we described the surgery procedure and handling tips for implantation of ultra-thin polyimide-based microelectrode array (PBM-array) on the mouse skull for acquisition of high-density encephalography (EEG) in a mouse model.

عالية الكثافة تسجيلات EEG من الفئران تتحرك بحرية باستخدام بوليميد المستندة Microelectrode

Electroencephalogram (EEG) indicates the averaged electrical activity of the neuronal populations on a large-scale level. It is widely utilized as a ...

Multi-electrode Array Recordings of Neuronal Avalanches in Organotypic Cultures

The cortex is spontaneously active, even in the absence of any particular input or motor output. During development, this activity is important for the migration and differentiation of cortex cell types and the formation of neuronal connections1. In the mature animal, ongoing activity reflects the past and the present state of an animal into which sensory stimuli are seamlessly integrated to compute future actions. Thus, a clear understanding of the organization of ongoing i.e. spontaneous activity is a prerequisite to understand cortex function. 
Numerous recording techniques revealed that ongoing activity in cortex is comprised of many neurons whose individual activities transiently sum to larger events that can be detected in the local field potential (LFP) with extracellular microelectrodes, or in the electroencephalogram (EEG), the magnetoencephalogram (MEG), and the BOLD signal from functional magnetic resonance imaging (fMRI). The LFP is currently the method of choice when studying neuronal population activity with high temporal and spatial resolution at the mesoscopic scale (several thousands of neurons). At the extracellular microelectrode, locally synchronized activities of spatially neighbored neurons result in rapid deflections in the LFP up to several hundreds of microvolts. When using an array of microelectrodes, the organizations of such deflections can be conveniently monitored in space and time. 
Neuronal avalanches describe the scale-invariant spatiotemporal organization of ongoing neuronal activity in the brain2,3. They are specific to the superficial layers of cortex as established in vitro4,5, in vivo in the anesthetized rat 6, and in the awake monkey7. Importantly, both theoretical and empirical studies2,8-10 suggest that neuronal avalanches indicate an exquisitely balanced critical state dynamics of cortex that optimizes information transfer and information processing.
In order to study the mechanisms of neuronal avalanche development, maintenance, and regulation, in vitro preparations are highly beneficial, as they allow for stable recordings of avalanche activity under precisely controlled conditions. The current protocol describes how to study neuronal avalanches in vitro by taking advantage of superficial layer development in organotypic cortex cultures, i.e. slice cultures, grown on planar, integrated microelectrode arrays (MEA; see also 11-14).

A robust way to study neuronal avalanches, i.e. scale-invariant spatio-temporal activity bursts, indicative of critical state dynamics in cortex. Avalanches emerge spontaneously in developing superficial layers of cultured cortex which allows for long-term measurements of the activity with planar integrated multi-electrode arrays (MEA) under precisely controlled conditions.

تسجيلات صفيف متعدد القطب من الانهيارات الجليدية الخلايا العصبية في الثقافات عضوي النمط

The cortex is spontaneously active, even in the absence of any particular input or motor output.  During development, this activity is important for the ...

A Procedure for Implanting Organized Arrays of Microwires for Single-unit Recordings in Awake, Behaving Animals

In vivo electrophysiological recordings in the awake, behaving animal provide a powerful method for understanding neural signaling at the single-cell level. The technique allows experimenters to examine temporally and regionally specific firing patterns in order to correlate recorded action potentials with ongoing behavior. Moreover, single-unit recordings can be combined with a plethora of other techniques in order to produce comprehensive explanations of neural function. In this article, we describe the anesthesia and preparation for microwire implantation. Subsequently, we enumerate the necessary equipment and surgical steps to accurately insert a microwire array into a target structure. Lastly, we briefly describe the equipment used to record from each individual electrode in the array. The fixed microwire arrays described are well-suited for chronic implantation and allow for longitudinal recordings of neural data in almost any behavioral preparation. We discuss tracing electrode tracks to triangulate microwire positions as well as ways to combine microwire implantation with immunohistochemical techniques in order to increase the anatomical specificity of recorded results.

Implanting organized arrays of microwires for use in single-unit electrophysiological recordings presents a number of technical challenges.&#160;Methods for performing this technique and the equipment necessary are described.&#160;Also, the beneficial use of organized microwire arrays to record from distinct neural subregions with high spatial selectivity is discussed.

إجراء لغرس صالحة المنظمة من Microwires للتسجيلات واحدة وحدة في استيقظ، تتصرف الحيوانات

In vivo electrophysiological recordings in the awake, behaving animal provide a powerful method for understanding neural signaling at the single-cell ...

Functional Analysis of the Larval Feeding Circuit in Drosophila

The serotonergic feeding circuit in Drosophila melanogaster larvae can be used to investigate neuronal substrates of critical importance during the development of the circuit. Using the functional output of the circuit, feeding, changes in the neuronal architecture of the stomatogastric system can be visualized. Feeding behavior can be recorded by observing the rate of retraction of the mouth hooks, which receive innervation from the brain. Locomotor behavior is used as a physiological control for feeding, since larvae use their mouth hooks to traverse across an agar substrate. Changes in feeding behavior can be correlated with the axonal architecture of the neurites innervating the gut. Using immunohistochemistry it is possible to visualize and quantitate these changes. Improper handling of the larvae during behavior paradigms can alter data as they are very sensitive to manipulations. Proper imaging of the neurite architecture innervating the gut is critical for precise quantitation of number and size of varicosities as well as the extent of branch nodes. Analysis of most circuits allow only for visualization of neurite architecture or behavioral effects; however, this model allows one to correlate the functional output of the circuit with the impairments in neuronal architecture.

Functional Analysis of the Larval Feeding Circuit in Drosophila

The feeding circuit in Drosophila melanogaster larvae serves a simple yet powerful model that allows changes in feeding rate to be correlated with alterations in the stomatogastric neural circuitry. This circuit is composed of central serotonergic neurons that send projections to the mouth hooks as well as the foregut.

التحليل الوظيفي للتغذية اليرقات الدائرة في ذبابة الفاكهة</i

The serotonergic  feeding circuit in Drosophila  melanogaster larvae can be used to investigate neuronal substrates of  critical importance during the ...

The Swimmeret System of Crayfish: A Practical Guide for the Dissection of the Nerve Cord and Extracellular Recordings of the Motor Pattern

Here we demonstrate the dissection of the crayfish abdominal nerve cord. The preparation comprises the last two thoracic ganglia (T4, T5) and the chain of abdominal ganglia (A1 to A6). This chain of ganglia includes the part of the central nervous system (CNS) that drives coordinated locomotion of the pleopods (swimmerets): the swimmeret system. It is known for over five decades that in crayfish each swimmeret is driven by its own independent pattern generating kernel that generates rhythmic alternating activity 1-3. The motor neurons innervating the musculature of each swimmeret comprise two anatomically and functionally distinct populations 4. One is responsible for the retraction (power stroke, PS) of the swimmeret. The other drives the protraction (return stroke, RS) of the swimmeret. Motor neurons of the swimmeret system are able to produce spontaneously a fictive motor pattern, which is identical to the pattern recorded in vivo 1.
The aim of this report is to introduce an interesting and convenient model system for studying rhythm generating networks and coordination of independent microcircuits for students&#8217; practical laboratory courses. The protocol provided includes step-by-step instructions for the dissection of the crayfish&#8217;s abdominal nerve cord, pinning of the isolated chain of ganglia, desheathing the ganglia and recording the swimmerets fictive motor pattern extracellularly from the isolated nervous system.
Additionally, we can monitor the activity of swimmeret neurons recorded intracellularly from dendrites. Here we also describe briefly these techniques and provide some examples. Furthermore, the morphology of swimmeret neurons can be assessed using various staining techniques. Here we provide examples of intracellular (by iontophoresis) dye filled neurons and backfills of pools of swimmeret motor neurons. In our lab we use this preparation to study basic functions of fictive locomotion, the effect of sensory feedback on the activity of the CNS, and coordination between microcircuits on a cellular level.

Here we describe the dissection of the crayfish abdominal nerve cord. We also demonstrate an electrophysiological technique to record fictive locomotion from swimmeret motor neurons.

نظام Swimmeret من جراد البحر: دليل عملي للتشريح من الحبل العصب وخارج الخلية تسجيلات من نمط للسيارات

Here we demonstrate the dissection of the crayfish abdominal nerve cord. The preparation comprises the last two thoracic ganglia (T4, T5) and the chain of ...