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  • 摘要
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摘要

该协议说明了电压敏感染料如何使豚鼠肠神经系统的神经丛,如完整的神经网络电活动的可调节分辨率的光学记录,范围从单细胞到多节后电路。

摘要

肠神经系统(ENS),是一个自成体系的网络识别功能,能够执行复杂的行为,在隔离。丛局限于肠壁不同的飞机被安排在它的神经元(直径在10至25微米)

研究方案

第1部分:组织编制

  1. 连续剥离150 - 200G(2-3周龄)哈特利几内亚,已经由吸入异氟醚和断头麻醉的猪小肠黏膜下和肌间神经丛制剂隔离。安乐死后,小肠切除和温暖,含氧的解决方案冲洗管腔,其内容删除。我们使用中等199辅以HEPES 25毫米,5毫米碳酸氢钠3和2毫米谷氨酰胺,和pH值调整到7.4(提到,从现在开始,M199 - DM),已在37预热° C。然而,该协议的所有剩余的步骤,将开展在室温下。
  2. 肠道段,长8-10厘米,被转移到一个Sylgard菜含有M199 - DM,沿肠系膜边界打开,并安装黏膜侧使用昆虫引脚。这是非常重要的是保持张力均匀,使组织后穿针展品定期对齐的粘膜绒毛行长方形。
  3. 使用直提示优良杜蒙钳,在几乎水平的位置,它很容易抓取的绒毛,在一端的准备和甩开沿纵轴组织剥离的黏膜。当样品是均匀寄托的,粘膜的丝带可以在少数个别笔划分开,露出的粘膜下层,包含粘膜下神经节和粘膜下血管。
  4. 对于罚款的丛清扫,我们建议使用在解剖显微镜,暗场照明。事实上,这种类型的照明所造成的伪三维效果,有助于区分个别层,从而防止或尽量减少仪器造成损害。
  5. 为了使粘膜下准备,我们按照赫斯特和McKirdy 4经典的程序,要求:a)作出削减在粘膜下层环形肌纤维的方向,可以做到这一点,使用非常细的剪刀(如莫里亚MC19或解除其当量);二)粘膜下层,轻轻地用细镊子,而压低使用罚款剪刀圆形肌肉层; C)沿纵向边缘切割,分离过程,以摆脱其余的粘膜下层预习; D)第二个切下面的环形肌纤维,在距离第一个定义粘膜下准备的最终大小方向。导致粘膜下段,这是只有30至50微米厚,并有一个游丝外观,可转移到另一个Sylgard菜含有新鲜M199 - DM,轻轻地寄托和无张力,并保存供日后使用含氧室。
  6. 原来肠道段,现在被剥夺黏膜和黏膜下层,环形肌暴露出来,仍然可以用于产生肌间神经丛准备。要揭露肌间神经丛,必须尽可能的圆形肌肉层可能消除。这可以通过使用提示在前面的步骤就业同一条直线罚款钳。纤维束可以拉轻轻地走,首先从一个,然后从另一端的准备。裸露的肌间神经丛不能从纵向的肌肉和底层浆膜层分开。因此,什么是所谓的肌间神经丛准备沿引脚,可切段。由于它含有活的肌肉,它是可取的,它非常松散,针中含有含氧M199 - DM菜,直到生理实验开始。
  7. 由于黏膜是主要的ENS的传感器,和所有的效应也嵌入在肠壁,是可能的解剖半完整的准备工作,维护整个反射通路。这些定制设计的准备工作需要在1.3中描述的步骤的组合。到1.6,适用于离体肠管段的邻近地区。
  8. 几分钟之前,实际的光学实验,准备选择一个安装在试验室,确保张力均匀分布和组织就在于对Sylgard底部完全平坦。这是取得了非常精细,可以各地外围没有造成组织损伤定位与多个引脚的标本。

第2部分:光学记录的组织样本的制备

  1. (可选)为了防止背景荧光染料结合残留的平滑肌和结缔组织,可孵育30-60分钟M199 - DM含胶原酶VII(≤50 U /毫升)和蛋白酶九(≤0.5微克两个孤立的丛/毫升)。酶处理的筹备工作,应清洗,并保持一夜之间,M199 - DM加上10%的动物血清(如马或牛)和抗生素(青霉素,100U/ml链霉素,100微克/毫升),在商会饱和无线网络日95%O 2和5%的CO 2。这个过程中,我们有多年的使用,因为它明显增强信号信噪比的光录音,不得对初学者很有帮助,应谨慎采用。事实上,在夹层中损坏了准备运行在酶处理瓦解的危险。然而,即使在酶处理的情况下,我们建议的筹备工作保持在隔夜M199 - DM,与血清和抗生素。这一步促进急性夹层动脉瘤后损伤组织的愈合,并增加了样品的透明度。
  2. 不能实现电活动的光学记录在筹备中的肌肉收缩。因此,要防止肌肉收缩时,肌间神经丛,几分钟录制之前我们添加2微米硝苯地平M199 - DM洗澡组织的光学实验。

第3部分:染色与DI - 4 - ANEPPDHQ

  1. DI - 4 - ANEPPDHQ商业冻干形式提供。我们建议使用纯乙醇溶解,使一个集中的股票解决方案[如15-20毫克/毫升。这个股票,保存在-20 ° C时,是非常稳定。事实上,在我们的实验室,我们刚刚结束的这个原因,我们取得了近6年前的染料股票解决方案的最后一滴。
  2. 染色液应准备在M199 - DM,如果该协议要求,应包含2微米硝苯地平。对染料的最终浓度可高达5微克/毫升和不应高于50微克/毫升。然而,这取决于该股票的浓度,将一定量的乙醇染色液中,应考虑。例如,染色溶液与50μg/ ml的染料将包含〜0.3%的乙醇,如果从15毫克/毫升的股票,但如果股票只有5毫克/毫升的浓度接近1%的乙醇。
  3. 染色,准备被淹没在染料溶液10-30分钟。在这一时期结束后,染料被冲走,替换由新鲜,含氧M199 - DM。由于DI - 4 - ANEPPDHQ是一种膜impermeant染料,荧光只有在脂质环境,健康的神经元从一个彩色的肠道准备应具备的外观空气球。

第4部分:电刺激

  1. 刺激可通过电压或电流驱动。我们用电流刺激,计算机控制,4通道的刺激发生器的最大输出每通道16毫安发表。
  2. 在一个给定的实验中使用的电极模型是由实验的目标。可用于细胞内吸液管或修补电极时,我们的目标是一个特定的神经元的刺激。当刺激的目的是激活在一个给定的节的一个神经元以上,外电极接触结缔组织均可使用。研究互连节,大,低电阻电极和/或可以采用多元素的电极阵列,但是,我们一般使用电流刺激时,多元素的数组成了唯一的选择。许多型号的外电极,以及一些线性电极阵列,都是现成的,从商业来源。
  3. 电极可使用不同类型micromanipulators的定位。为了避免由长而细桶引起的振动,我们赞成使用相邻的试验室,可定位的磁基地小micromanipulators,并支持灵活的钨电极与瘦,但很死板的金属条桶。

第5部分:灌注

我们使用一个通道输入含氧的解决方案,和其他的输出,2通道蠕动泵。为了消除灌注引起的机械干扰,泵,光学数据采集期间关闭的。

第6部分:多个站点的光学记录膜电位器

  1. 光学元件:

    多个站点的光学记录膜电位的仪器,包括一个NeuroCCD - SM相机(RedShirtImaging)和1:10 demagnifier /中继镜头,装在一个堂堂正正的显微镜三目镜筒。显微镜移动的XY转换,独立的一个固定的主动隔振表顶部的阶段。为了减少空气中的振动,整个装置所包围的沉重的声学窗帘和聚酯薄膜屋顶。 EPI -照明是提供一个100W的卤钨灯超低纹波反馈稳压电源供电的灯。入射光是准单色,采用热过滤器,高Q干扰滤波器(HQ530/50)和一个565纳米(50%的传输)分色镜。荧光发射是分开使用分色镜和长通滤波器(HQ572LP)。中的INTEN入射光的密度调整使用中性密度过滤器。跨照明,明场观看的准备,提供了第二个100瓦的钨卤灯由一个0-55伏,1-10 A电源,不需要具备任何特殊属性的驱动。

  2. 高速摄像头规格:

    电子设计和NeuroCCD - SM相机的性能特点,已被描述详细 3 。简言之,它是一个冷却,分辨率低,精度高,速度的摄像头,使用背减薄,背照马可尼CCD39 - 01芯片(80x80像素)。数字化是14位,并以全帧速率为2 kHz。然而,对于特定的目的,可能会增加帧速率最高为10 kHz,通过各种分级组合或减少功能的像素数量。该相机具有极低的读出噪声(23电子在2 kHz; 9电子在1 kHz)的重要优势。此外,它的像素有一个比较大的井的深度(215000电子),允许在高帧频的光照强度适中。

  3. 数据采集​​和分析软件:

    光学实验控制Neuroplex,一个软件包从RedShirtImaging,作为内IDL平台(交互式数据语言)的应用程序,包括光学数据的采集,显示和分析所必需的多种功能。

  4. 额外的相机:

    作为仪器的组成部分,一个三目显微镜继电器到第二,高分辨率CCD相机连接到一个帧的采集编制的形象头分光镜。的形象,这是收购和储存,使用全球Lab图像/ 2软件,可以叠加到亚毫秒级的显示的时间分辨NeuroCCD - SM相机所拍摄的光信号产生的空间原点的精确地图光学记录电压信号。在我们的实验室,这台相机的图像采集卡驻留在不同的计算机上一个比一个负责数据采集功能。因此,图像文件从一台计算机传输到另一台,小的高清晰度图像的大小和位置的调整需要实现两个摄像头的完美登记前。

第7部分:光学实验

  1. 每个功能的录音之前,我们收购的地区,从我们计划通过光学手段记录电活动(6.4)高清晰度黑白图像。这个形象,叠加到地图的高速摄像头的像素时,可以帮助我们确定的结构,是光信号源。
  2. Neuroplex(见6.3)在适当的系统配置,还可以控制快门,和触发电刺激。由于高速数据采集需要大量的计算机的电源,这是可取的,如果可能的话,使用一个大容量的内存和高容量的硬盘驱动器的专用计算机。然而,这是不平凡的。我们自己的系统,例如,已有数岁,员工是太大,无法在国家的最先进的的计算机数据采集板。作为一种妥协,我们通过和我们的光学系统在Dell Precision 390配备了500 GB的硬盘驱动器和4 GB的RAM。这台计算机,使我们能够保持我们年纪大了,但足够,A / D转换和D / A板,同时仍然提供足够的电力来运行我们的实验。
  3. 一旦收购结束,Neuroplex可以显示在多个互补的格式结果,下面详细介绍其中一些:
    1. 在屏幕的一个区域,称为页面显示显示作为一个单独的帧的80X80高速相机拍摄的准备的原油形象。到这个第二个摄像头(在6.4和7.1的说明)收购的高清晰度图像的像素图的叠加,优化运营商的能力,以确定感兴趣的领域。
    2. 当这个页面上显示的像素下鼠标控制选择时,Neuroplex会自动转换成注册为时间的函数由这些像素的光学变化幅度的痕迹,其光输出。 (例如,ΔF/ F随时间变化)。操作者可以决定这些痕迹是否应该反映单个像素的输出,或者,而编制的一个特定区域的多个位点的空间平均超过输出。
    3. 这些数据也可以显示电影格式。

      为了确保在个别实验运行中的所有信息是完全提取,但是,我们赞成光学数据的离线分析。代表的这一分析结果可用。

第8部分:如何实现在光学实验中的技术​​质量

钍E的光学实验技术,最终成功的衡量标准信号录音的信噪比。此外,一个良好的信号信噪比梗并不是一种顿悟,而是从一个旅程。在歌剧表演,最后的结果是由多重因素交互协同。因此,要实现一个技术上可靠的光学实验,它是必不可少的完善,独立,光学仪器,并为每个协议的各个步骤所需的技能。以下是一个潜在的麻烦地区名单,并为避免问题并不总是预计5的一些建议:

  1. 噪声源

    机械和光学稳定是至关重要的电压敏感染料记录电活动时,因为反映生理反应的微小变化(ΔF/ F)相对较小(<10%/ 100毫伏在大多数肠道录音)和嘈杂的跟踪始终预示着一个坏的结果。因此,优化信号噪声比,它是必须消除,或者,至少,以尽量减少,表现最差的两个贡献:A)机械振动,和b)光源波动。

    1. 机械振动产生的各种来源的多样化设置配置,建立稳定,机动设备,空气,噪声,流体的运动,或颗粒浮在洗澡的解决方案电流接近。一个良好的振动隔离系统,极端情况下的声窗帘(见,例如,在5.1中描述),有很大的不同,是非常值得他们的成本。此外,常识性的方法,如在实验中,或使用磁性底座小,可移动部件安装的解决方案,用于过滤,是相当有效的。
    2. 光源是最稳定的准最大强度。因此,应该设置一个电源电流限制,并在必要时,通过插入中性密度滤光片在光路径,而不是通过降低电压降低光线强度。弧光灯本质上是嘈杂。钨卤灯泡或发光二极管更加稳定,应该是首选 6 。

  2. 动物的年龄

    解剖应使用年轻动物的肠道,因为随着年龄的肠道toughens内的结缔组织,它变得更加难以分开两丛神经元的传入和传出的进程可能造成重大损失的个人组织层跨层边界和/或沿纵轴的肠道相当距离项目。最重要的咨询,研究神经节内连接时,可以忽略,当实验的目的是分析神经节间的电路或反射通路的激活。

  3. 染料内化

    重要的是要使用尽可能低的染料浓度,并尽量减少不必要的光线照射。 DI - 4 - ANEPPDHQ虽然已被证明比其他染料的光毒性要少得多,它就会内化,最终,作为该制剂的健康恶化。染料内化减少增加显着的背景荧光信号的信噪比。

  4. 电极的维护

    1. 电极应审慎和彻底清洗后,每一个实验。在钨电极的技巧有机存款增加电极电阻,防止刺激。
    2. 市售钨电极的绝缘层是非常微妙和容易损坏。在绝缘泄漏将分流,妥协的刺激效果,并危及实验的成功。

  5. 灌注危险

    切勿将设置无人值守,同时灌注。如果在蠕动泵的流量和出流没有适当的平衡,两个灾难性事件可能发生:
    1. 洪水可能造成不可逆转的损害,在显微镜。
    2. 在实验过程中可能会干出的编制。

  6. 软件的麻烦

    它是必不可少的,以自己熟悉的软件来控制收购,以及分析。高速数据采集和/或创造非常大的文件往往驱动系统崩溃的边缘,Neuroplex,这是很无情的,无情的崩溃,除非其边界条件是尊重。在细微之处的记录,容易漏诊,当分析限于有限的地区的利益,往往显露出自己在电影显示的数据。

讨论

该协议已被写入两个目标。第一个是说服其他调查,由于许多技术进步,在过去十年中,利用电压敏感染料的电气活动的光记录,已成为最强大的,可靠和可负担得起的完整的神经网络研究的方法之一,事实上,它可以很容易地实施,甚至在实验室有限的资源。第二个目标是作为一个独特的实验模型,以促进肠道的神经系统,在其中两个神经丛和生物输出的电气行为相关的分子和细胞活动。

致谢

我们想感谢DA库尔特(CHOP)的,允许我们使用他的双光子显微镜双光子图像显示在视频开始,和H.高野收购与我们分享他的技术专长。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Medium 199Sigma-AldrichM3769With Earle’s salts Without L-Glutamine, Phenol Red and Sodium Bicarbonate
SylgardDow Corning184 silicone elastomer kit
Insect pins used for dissectionF.S.T.26001-30
Dumont forcepsF.S.T.11203-23 or 11200-33
Moria MC19/B Pascheff-Wolff Spring ScissorsF.S.T.15371-92
Pins to hold the tissue during the experimentSeirin Corp.Seirin Spinex
Collagenase VIISigma-AldrichC0773
Protease IXSigma-AldrichP6141
Fetal Bovine SerumInvitrogen10439-016
PenStrepGIBCO, by Life Technologies15140
L-Glutamine 100XGIBCO, by Life Technologies25030
NifedipineSigma-Aldrich
Di-4-ANEPPDHQMolecular Probes, Life TechnologiesD36802
4-Channel Stimulus GeneratorMulti Channel System MCS GmbH2000 Series
Peristaltic pumpRainin2-channel Dinamax RP-1
High-speed cameraRedShirtImaging, LLCNeuroCCD-SM
1:10 demagnifier / relay lensOptem, Qioptiq Inc.
Upright microscopeOlympus CorporationBX61TRF
Gibraltar fixed stage with motorized X-Y translatorGibraltar, Burleigh Instruments, EXFO, Quebec, CanadaPSSG--BX2
Linear matrix electrodesFHC, Inc.Custom made
Active vibration-isolation tableHalcyonics,Inc., Menlo Park, CAMicro 60
Ultra-low-ripple feedback stabilized power supplyKepco, Flushing, NYATE 75-15M
Heat filterSchott AGKG-1
High-Q interference filterChroma Inc.HQ530/50
Dichroic mirrorChroma Inc.565 nm (50% transmission)
Long-pass filterChroma Inc.HQ572LP
Acoustic curtainsAcoustical Surfaces, Inc.BSC-25
NeuroplexRedShirtImaging, LLC
IDLITT Visual Information Solutions
High-resolution CCD camera, with its own camera controllerHamamatsu Corp.
Frame-grabber for high-resolution cameraData TranslationDT3120K-1
Imaging software for high-resolution cameraData TranslationGlobal Lab Image/2

参考文献

  1. Costa, M. a. r. c. e. l. l. o., Furness, J. o. h. n. . B., Llewellyn-Smith, I. J., Johnson, L. e. o. n. a. r. d. . R. . in Physiology of the Gastrointestinal Tract, edited by Leonard R. , 1-1 (1987).
  2. Obaid, A. L. Spatiotemporal patterns of activity in an intact mammalian network with single-cell resolution: optical studies of nicotinic activity in an enteric plexus. J Neurosci. 19 (8), 3073-3073 (1999).
  3. Obaid, A. L., Loew, L. M., Wuskell, J. P., Salzberg, B. M. Novel naphthylstyryl-pyridinium potentiometric dyes offer advantages for neural network analysis. J. Neurosci. Methods. 134 (2), 179-179 (2004).
  4. Hirst, G. D., McKirdy, H. C. Synaptic potentials recorded from neurones of the submucous plexus of guinea-pig small intestine. J Physiol (Lond). 249 (2), 369-369 (1975).
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  6. Salzberg, B. M. An ultra-stable non-coherent light source for optical measurements in neuroscience and cell physiology. Journal of Neuroscience Methods. 141, 165-16 (2005).
  7. Obaid, A. L., Nelson, M. E., Lindstrom, J., Salzberg, B. M. Optical studies of nicotinic acetylcholine receptor subtypes in the guinea-pig enteric nervous system. J Exp Biol. 208 (Pt 15), 2981-2981 (2005).
  8. Obaid, A. L., Zou, D. J., Rohr, S., Salzberg, B. M. Optical recording with single cell resolution from a simple mammalian nervous system: Electrical activity in ganglia from the submucous plexus of the guinea-pig ileum. Biol. Bull. 183, 344-344 (1992).
  9. Salzberg, B. M., Davila, H. V., Cohen, L. B. Optical recording of impulses in individual neurones of an invertebrate central nervous system. Nature. 246 (5434), 508-508 (1973).

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