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  • 摘要
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摘要

这个视频协议演示,从成年小鼠脑室周围地区产生和扩大神经干细胞的神经球的含量测定方法,并提供技术见解,以确保可以实现重复性的神经球文化。

摘要

分离和扩展的假定从成年鼠大脑中的神经干细胞(NS​​Cs的)是在1992年首次描述了采用化学定义的无血清培养系统,被称为神经干法(NSA)的雷诺和Weiss。在这个实验中,多数分化的细胞类型文化的几天内死亡,但人口少的生长因子的反应前体细胞进行增殖活跃在表皮生长因子(EGF)和/碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)的存在。这些细胞的未分化细胞,称为神经球,这反过来又可以传代培养的神经干细胞池扩大形成的殖民地。此外,细胞可以诱导分化,产生中枢神经系统,即神经元,星形胶质细胞和少突胶质细胞的三个主要类型的细胞。这个实验提供了一个宝贵的工具,提供一个一致的,可再生能源的未分化的中枢神经系统前体, 可用于在体外研究中,也为治疗目的。

本视频演示了NSA的产生和扩大,从成年小鼠脑室周围区域的神经干细胞的方法,并提供技术见解,以确保可以实现重复性的神经球文化。该过程包括收获从成年小鼠,脑室周围地区的微观解剖,组织编制和文化在NSA大脑。收获的组织是第一个使用在NSC培养基胰蛋白酶- EDTA和机械分离,实现了单细胞悬液,最后镀在NSA化学消化。经过7-10天文化,产生的初级神经球传代培养的准备,以达到未来的实验所需的细胞量。

研究方案

第1部分:基本设置,然后再进行剥离:

    1。如果您的实验室不具备了丰富的经验与介质,我们强烈建议使用市售的中等质量控制神经干细胞生长之前被卖掉(这是NeuroCult,干细胞Technolgies公司)已。
  1. 介质在37℃水浴预热。
  2. 冷HEPES缓冲的最低限度的基本介质与高浓度抗生素(10%)(HEM)准备剥离和清洗的目的。另外,国科会与抗生素补充培养基,也可能被用于此目的。
  3. 30-40毫升含抗生素的冷HEM分装到无菌50毫升脑收集管。
  4. 若干10厘米塑料培养皿期间举行的大脑解剖和一个10厘米无菌玻璃培养皿举行解剖组织。
  5. 需要删除的大脑(大剪刀,小尖剪刀,大钳,小弯钳,和一个小铲)或组织剥离(小镊子,弯细镊子,手术刀)的外科手术工具使用玻璃珠的灭菌消毒在250 ° C或其他可用高压灭菌方法。
  6. 解剖镜下用70%酒精擦拭和内部设置的PC2罩。

第2部分:收获成年小鼠大脑和微观解剖:

  1. 2-4成年小鼠(5-8周龄)根据机构批准的动物协议使用3-4%的异氟醚或腹腔注射戊巴比妥麻醉(120毫克/公斤)。
  2. 颈椎脱位执行,以确保动物不遭受的痛苦和悲伤。
  3. 麻醉鼠标吸水纸巾上,放在其腹部和头部是用70%乙醇冲洗,消毒面积。
  4. 大剪刀,用来斩首略高于脊髓型颈椎病地区的动物。
  5. 小尖剪刀被用来制造中位数的尾鳍喙切断,暴露颅骨。
  6. 切割边缘的皮肤用于保存头部,然后每一个小剪刀的刀片放置在每个眶腔之间的轨道作冠状切开。
  7. 使用为切入点,枕骨大孔,纵向切割是通过头骨沿矢状缝和横向削减两个侧壁交界处及颅底。时应注意不损伤小切口,并确保刀片的角度尽可能浅底层的大脑。
  8. 覆每个半球的头骨是掌握和使用弯钳揭露大脑,然后用一个小的湿锅铲向外去皮,脑舀到50毫升含HEM管。
  9. 重复此过程,直到所有的大脑已收获。
  10. 解剖前脑脑室周围地区,置于解剖显微镜下用低倍率的菜含有的大脑。的大脑,然后对他们的腹面定位平面和尾侧用细弯钳举行。另一套弯钳是用于去除嗅球。
  11. 后去除嗅球,大脑旋转腹侧方面暴露。
  12. 重复此过程,直到所有的大脑切片。
  13. 在更高的放大倍率,大脑延髓方面旋转,使切面朝上。首先,隔罚款弯曲的微型剪刀或弯曲,尖头镊子,然后一层薄薄的心室侧壁周围组织被切断,但不包括纹状体实质和胼胝体的拆除和丢弃。解剖组织是汇集在一个10厘米无菌玻璃培养皿。
  14. 重复此过程,直到所有的大脑微解剖。

第3部分:组织准备和电镀细胞:

  1. 汇集组织肉末约1-2分钟使用手术刀刀片,直到只有非常小的碎片仍然的。
  2. 总量的3%,0.05毫升胰蛋白酶- EDTA是用剁碎组织转移到一个15毫升的试管中。 3毫升胰蛋白酶- EDTA的是足够的8只收获了良好的组织消化。
  3. 7分钟在37℃水浴孵育管。
  4. 上清被丢弃。然后细胞悬浮于适当量完成国科会与20ng/ml EGF,在10ng/ml碱性成纤维细胞生长因子和1μl/ml0.2%肝素培养基。
  5. 2

第4部分:神经干细胞传代和扩展:

  1. 上清液丢弃,重悬于1毫升的0.05%胰蛋白酶EDTA的领域。另外,神经球也可以传代使用机械或化学分解方法在文献中描述的 2,3
  2. 细胞悬液,培养于37 ° C在水浴为2-3分钟,然后等体积的大豆胰蛋白酶抑制剂是用来阻止胰蛋白酶的活性。
  3. 细胞悬液轻轻吸管,以确保已完全灭活,胰蛋白酶。
  4. 细胞悬液,离心5分钟700转。然后,取上清液被删除,在1毫升的NSC培养基中悬浮细胞。
  5. 细胞悬液10μL混合90μl台盼蓝进行细胞计数。
  6. 细胞镀浓度的5X10 4细胞/ ml的完成国科会在一个适当大小的组织培养瓶中的培养基与20ng/ml EGF,在10ng/ml碱性成纤维细胞生长因子和1μl/ml0.2%肝素补充。 T75和T175烧瓶40毫升,使用的T25,20毫升的5毫升介质。
  7. 中的神经球是在5-7天,在37℃孵育形成℃,5%CO2培养箱在 2

第5部分:代表性的成果:

在小学成人国科会文化,多数细胞就会死亡后2-3天,但反应前体(包括干细胞和祖细胞)生长因子,细胞就会增殖(图1),后6-8天产生的未分化细胞的克隆。在这些文化通常是大量的碎片可能获得一个球形目前,可用于神经球误。碎片的数量是直接的微观解剖和组织制备技术的依赖。真正的神经球是相亮(发光)和规模的增大变得更加球形(见视频)。经过7-10天,球必须是圆,但不板结;和应措施,在150和200微米之间,也应在高放大倍率(图2)周边刚性微尖峰。如果允许的神经球增长过大,他们变得​​颜色较暗,由于细胞死亡的领域的中心。大神经球是很难解离,并最终开始附加到基板和区分。

图1。成人国科会主文化电镀后3天。箭头显示增殖神经干细胞的小菌落。原始放大倍率20倍。

图2。快速通道成人神经干电镀后第7天。请注意在微球体的外围尖峰。原始放大倍率20倍。

讨论

神经球的检测 2不仅获得了隔离和中枢神经系统 4-5的神经干细胞研究,但也是公认的从众多的组织干细胞 ,如乳房 6和心脏7,其他类型的隔离研究界的广泛关注和脑,乳腺癌和结肠癌肿瘤干细胞8-9表明,这种文化系统可应用于体细胞和肿瘤的整个身体的前体细胞群的鉴定。这种方法的一些优点,包括它的简单性,重复性和无限期数量从一小块组织,甚至?...

披露声明

没有利益冲突的声明。

致谢

这项工作是从Overstreet基金会的资金支持。

材料

*为了使下摆,混合1M HEPES的MEM and160ml 110L包和带卷到8.75 l使用蒸馏水。设置最终pH至7.4,并存储在4 ° C

参考文献

  1. Louis, S. A., Reynolds, B. A. Neurosphere and Neural Colony-Forming Cell Assays. Protocols for Neural Cell Culture. 10, 1-28 (2010).
  2. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  3. Sen, A., Kallos, M. S., Behie, L. A. New tissue dissociation protocol for scaled-up production of neural stem cells in suspension bioreactors. Tissue Eng. 10, 904-913 (2004).
  4. Morshead, C. M. Neural stem cells in the adult mammalian forebrain: a relatively quiescent subpopulation of subependymal cells. Neuron. 13, 1071-1082 (1994).
  5. Golmohammadi, M. G. Comparative analysis of the frequency and distribution of stem and progenitor cells in the adult mouse brain. Stem Cells. 26, 979-987 (2008).
  6. Dontu, G. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes Dev. 17, 1253-1270 (2003).
  7. Messina, E. Isolation and expansion of adult cardiac stem cells from human and murine heart. Circ Res. 95, 911-921 (2004).
  8. Ignatova, T. N. Human cortical glial tumors contain neural stem-like cells expressing astroglial and neuronal markers in vitro. Glia. 39, 193-206 (2002).
  9. Galli, R. Isolation and characterization of tumorigenic, stem-like neural precursors from human glioblastoma. Cancer Res. 64, 7011-7021 (2004).
  10. Reynolds, B. A., Rietze, R. L. Neural stem cells and neurospheres--re-evaluating the relationship. Nat Methods. 2, 333-336 (2005).
  11. Louis, S. A. Enumeration of Neural Stem and Progenitor Cells in the Neural Colony Forming Cell Assay. Stem Cells. , (2008).

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