血管再生在中枢神经系统中使用的小鼠视网膜评估

摘要

啮齿动物视网膜长期以来被认为是可访问的窗口到大脑。在此技术论文中，我们提供了一个协议，它采用的氧诱导视网膜病变研究，导致血管再生的失败缺血性损伤后的中枢神经系统内的机制的小鼠模型。所描述的系统也可以利用，以探讨策略，视网膜和中枢神经系统内促进功能性血管再生。

摘要

啮齿动物视网膜也许是最方便的哺乳动物系统中，中枢神经系统（CNS）内神经血管调查的相互作用。它被越来越多地认识到，一些神经变性疾病如阿尔茨海默氏症，多发性硬化症，与血管妥协肌萎缩性侧索硬化症本元素。此外，失明在儿科和工作年龄人口（早产儿视网膜病变和糖尿病性视网膜病变，分别）的最突出的原因是其特征在于，生理血管再生长的血管退化和故障。本技术文件的目的是提供一个详细的协议来研究中枢神经系统血管再生的视网膜。该方法可以用来阐明导致血管生长的故障缺血性损伤后的分子机制。此外，潜在的治疗方式，以加速和恢复健康的血管丛可以探讨。结果obtaineD使用所描述的方法可以提供的治疗途径，缺血性视网膜病变，如糖尿病或早产儿，可能有利于中枢神经系统的其他血管疾病。

引言

整个中枢神经系统发育，神经，免疫细胞和血管建立显着耦合网络，以确保有足够的组织灌注，并允许感官信息^1-5传输。血管系统，导致组织氧合不足和代谢受到影响供给和故障日益被视为一个重要因素神经退行性疾病⁶的发病机制。血管漏失和神经血管单元的大脑内的劣化，例如，与血管性痴呆，脑⁷的白质血管病变和阿尔茨海默氏病与小动脉和小血管⁸的狭窄相关联。此外，受损的血管屏障功能被认为有助于多发性硬化症⁹和肌萎缩性侧索硬化症^10。

直接的相关性，以在本协议中所述，致盲的视网膜模型的疾病，如糖 ​​尿病性视网膜病变¹¹和早产儿¹²的视网膜病变^，13的特征是早期血管退化的相位。对神经血管视网膜随后的缺血性应激触发过度和病理血管生成中的第二阶段中可能源于作为一种代偿性反应重新死刑犯氧和能量供应^14-16。一个有吸引力的策略来克服缺血性应激是中央到疾病进展是恢复功能性血管网络特别是在神经视网膜（ 图2和3）的局部缺血区。挑起控制血管生成的响应可能会遇到如反直觉对于其中的抗血管生成治疗，如抗的VEGF被认为是适于处理的条件。然而，证据表明这种方法的有效性安装。例如，加强ischem“生理状”血管再生IC视网膜病变已经通过引进内皮前体细胞^17，抑制缪勒细胞表达VEGF诱导的其他血管生成因子^18，注射髓系祖细胞^19，抑制NADPH氧化酶诱导的细胞凋亡^20，增加饮食中ω-3多不饱和脂肪酸下调的优雅展现酸摄入^21，具有色氨酸tRNA合成酶²²的羧基末端片段和VEGF或FGF-2的保护胶质细胞²³的直接给药治疗。此外，我们已经表明，调节神经古典的指导线索，如脑信号或导蛋白在缺血性视网膜病变加速视网膜内的良性血管的血管再生，从而减少病理性血管生成^24，25。直接的临床意义，几个上述动物研究提供的证据表明，促进血管再生成期间视网膜病的早期缺血阶段可以显著减轻威胁视力的视网膜前新生血管形成^{19，23，24，26，}有可能通过对缺血性负担的减轻。

制定刺激的功能性血管再生治疗策略仍然是血管生物学家一个显著的挑战。在这里，我们描述了一个实验系统，它采用的氧诱导视网膜病变（OIR）小鼠模型，探讨策略，视网膜内调节血管再生。 Smith 等人开发的。于1994年^27，这种模式可作为人类增生性视网膜病变的代理，由露出P7鼠标幼仔至75％的O _2，直到P12和随后重新引进幼犬室内环境_氧张力（ 图中1）。这一模式松散模仿一个场景：一个早产儿通风与O _2。鼠标幼仔高氧暴露引发视网膜毛细血管和微血管病变，并产生血管闭塞的可重复的区域（VO）通常在评估从O ₂的出口在P12，虽然最大VO面积达到48小时（P9）后接触到O ₂ ^28。在小鼠中，股骨头缺血性VO区自发地重新在一周的过程中下面再介绍了室内空气，并最终VO区域被完全重新血管化（ 图2）。重新引入到经受OIR小鼠的室内空气也引发视网膜前新生血管形成（NV）（最多为P17），它通常评估，以确定抗血管生成治疗模式的疗效。在其最纯粹的形式，OIR模型提供了一个高度可重复的，可量化的工具来评估氧 ​​诱导的血管退化，并确定破坏性预视网膜新生血管形成^29-31的程度。

该调节中枢神经系统血管再生的各种探索性的治疗模式可使用OIR模型，包括使用的化合物的药理学，基因治疗，基因缺失和更多的被调查。一个给定的方法来影响血管再生的倾向评估逐步在P12（从高氧退出后最大VO）和P17（最大内华达州）之间的窗口。评价病理NV的治疗结果可以并行地快速和容易地测定，并已Stahl和同事^30,31被彻底说明。在这里，我们提供了一个简单的一步一步的过程由药物化合物，有意治疗，病毒载体进行调查生理血运重建的调节神经视网膜内或研究的候选基因在转基因或基因敲除小鼠的影响。

研究方案

伦理声明：所有动物实验坚持以研究协会在视觉与眼科在眼科用动物和视觉研究和动物保健的加拿大委员会（ARVO）语句建立的动物护理指引。

1。氧诱导视网膜病变（OIR）

1. 鼠标幼仔为P0出生记录日期。
2. 在进入O _2，记录动物的全部重量，以确保有足够的体重范围。注意：对于C57BL / 6小鼠在P17，体重应5和7.5 g的为最大NV ^32系列 。为了保持环境的一致性，建议使用同窝对照（转基因小鼠和老鼠接受实验处理）。当评估一个病毒载体的作用，必须考虑病毒的嗜性，并允许有足够的时间对病毒交付的转基因充分表达。迅速表达病毒载体，如^第三代慢病毒^{24，25，33，}建议。
3. 将鼠标幼仔在P7（C57BL / 6或期望株）和CD1母亲培养成一个氧气室设定为75％的O ₂ 5天^27。环境湿度和温度在整个O ₂的曝光保持不变。注：配备的O ₂源中央研究设施是理想，限制了繁琐的更换空_氧气罐。如果使用转基因或基因敲除小鼠的工作，重要的是确保对照和实验小鼠被来自同一供应商获取到相同的菌株^30，29内限制遗传漂移是重要的。
4. 在P12，从氧舱去除小鼠和动物返回到环境的O _2。

2，玻璃体腔注射交货化合物的内层视网膜 （瓦时药理复合或重组蛋白的恩评估效果）

1. 在P14，麻醉小鼠中的氧气2升/分钟（或选择的动物保护委员会批准的麻醉剂）2％异氟醚。为了验证该麻醉的效果，顺序地捏住尾巴，后脚和耳钳。
2. 把鼠标在它的肚子。
3. 使用配有一个斜面拉到玻璃针的无菌10微升注射器进行注射1微升的溶液含有在眼睛的后缘被研究的化合物或赋形剂（生理盐水）的最大容积，具有45°的角度避开镜头。注意：该拉玻璃针是使用下拉环氧树脂附着到注射器。
4. 用棉签鼠标的眼睛滴一滴润滑剂眼药膏（理想的抗生素）的。
5. 返回鼠标回到笼子里培育的母亲。小鼠然后小心地监视，直到再覆盖和完全卧床。

容器灌注和屏障功能（完整性）3。通过荧光素血管造影评估

1. 麻醉小鼠中的氧气2升/分钟（或选择的动物保护委员会批准的麻醉剂）2％异氟醚。为了验证该麻醉的效果，顺序地捏住尾巴，后脚和耳钳。注意：该典型地在P17时再生进行评估。还随身携带了分析，在P19和P21，以确定是否血管的完整性被保留一段时间。
2. 一旦麻醉，称重鼠标。
3. 做中线的腹部切口解剖剪刀。注：解剖仪器应定期检查和激化。
4. 切肋骨横向和提高胸腔钳的帮助。注意：这是必要的，以切割为横向，以避免对心脏的损伤。
5. 去除perip后从大庆外围心脏组织，钳降主动脉与止血钳。
6. 慢慢地用25号针头向左心室注入荧光素 - 葡聚糖。注意：如果血管屏障功能进行了研究，70 kDa的荧光葡聚糖被采用，因为它会泄漏出的船只，当容器完整性受到损害。如果研究者希望投血管，2 MDA荧光葡聚糖被使用。关键的步骤：1）为了确保均匀的重新分区，离心机荧光葡聚糖和注入上清液，2）为了防止血管收缩，注入温热荧光葡聚糖溶液，3）它的循环时间不应该过量的4分钟。
7. 注射操作剪刀后斩首老鼠2分钟。

4，眼球摘除和眼球固定

注：在评估血管再生率，首先收集在视网膜P12和另外在P14和P17。增加采样时间点的数目S代表更精确地确定²⁴血运重建率。

1. 倾斜的鼠标头部，并将其放置在其一侧。
2. 去除皮肤和眼睑用解剖剪刀覆盖眼球。
3. 将弯钳眼睛下方轻轻向上拉，直到视神经被切断。
4. 把鼠标的头部到其另一侧，并执行相同的步骤（步骤4.2和4.3）。
5. 以确保固定剂更好的渗透，穿刺中，用30号针头在眼睛的前室中的孔。
6. 转移目光含4％多聚甲醛（PFA）管，且固定为1小时，在室温下进行。
7. 除去PFA，用冰冷的PBS溶液洗眼睛的4倍。

5，视网膜解剖

1. 鼠标放置在眼里含冷PBS的培养皿中，并在立体显微镜下进行视网膜剥离。
2. 去除眼睛周围用显微解剖SCI多余的脂肪/组织ssors。
3. 切断与显微解剖剪刀角膜。
4. 使用两对钳子的，微小的剥离巩膜远离朝向视神经的周边并丢弃。
5. 用钳子捏住镜头（角膜下方的白色球）和眼罩提取它。用一对镊子作为支撑的，和对方的抓地力和小心地抬起并取下镜头。
6. 用小刷子（大小为0）和镊子分离从视网膜的内侧的玻璃体血管。
7. 删除使用产钳连接到视盘玻璃体血管束。
8. 解剖转移到视网膜开始之前染色过程含有PBS中，发生在ICE 2 ml离心管中。

6，视网膜血管染色

1. 孵育解剖视网膜过夜，在4℃下轻轻摇动以溶液的荧光在PBS耦合凝集素B4（若丹明凝集素或其他），含1mM的CaCl ₂ （1:100稀释的2毫克/毫升的植物凝集素B4的解决方案建议）。在整个染色过程中，覆盖管，用铝箔或不透明箔避光。
2. 在第二天，除去染色溶液和在PBS中于室温下10分钟，洗3次视网膜。

视网膜铺片7的制备

1. 转移视网膜，感光器的一面朝下，在显微镜载玻片上，并用外科手术刀来划分视网膜成四个相等大小的象限使得4深等距离径向切口。在切口，振奋视网膜用刷子，这样它不会移动。
2. 使用两把刷子浸泡在PBS中，仔细压平象限感光面朝下，沉浸在视网膜中的安装介质，以防止光漂白。然后小心地将盖玻片安装的视网膜表面上不施加压力，并确保气泡不会盖玻片下积聚。

8，成像和Vasoobliteration（VO）和新生血管（NV）的定量如前所述³¹

1. 采取整体式视网膜图像的落射荧光显微镜在10倍的放大倍率。
2. 在照片编辑软件打开视网膜图像，缝合在一起，并测量视网膜总面积，无血管区。区域可以用像素表示。
3. 由像素的总的视网膜区域的数目除以在无血管区域的像素的数量确定VO的程度。
4. 除以NV的像素的数量由像素中的总的视网膜区域的描述³¹的数目确定NV的程度。

结果

的OIR模型被广泛用于研究氧诱导血管变性和局部缺血引起的病理性新生血管在视网膜中和一直在为眼部疾病^27，29，30目前使用的抗血管生成治疗的发展。利用该模型得到的结果可以大致推断缺血性视网膜病变，如增殖性糖尿病视网膜病变和³⁰早产儿视网膜病变。

在这里，我们提出一个替代使用这个模型来研究血管再生。我们将描述一个策略的例子来再生，这?...

讨论

什么是刺激在缺血性神经组织中新血管的健康成长最有效的方法是什么？它是治疗有效的干预和加速自然发生的血管再生？在神经缺血性疾病，如缺血性视网膜病或中风，血管退化与减少神经元功能^35-38相关联。因此，应对早期损伤，疾病的直接/早段期间复原区域微循环可能证明是有益的。在眼部背景下，实验范式是加速缺血性视网膜血管重建减少病理性新生血管形成^{21-25，34，}?...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
C57Bl/6 mice (Other strains may be used; angiogenic response varies from one strain to the other)
CD1 nursing mothers	Vendor of choice
Operating Scissors straight	World Precision Instruments	14192
Dissecting Scissors straight	World Precision Instruments	14393
Vannas Eye Scissors	Harvard Apparatus	72-8483
Iris Forceps, curved, serrated	World Precision Instruments	15915
Brushes 362R size 0	Dynasty
Dumont Forceps #3; straight	World Precision Instruments	500338
Surgical Blade, size 10	Bard-Parker	371110
Rhodamine Griffonia (Bandeiraea) Simplicifolia Lectin I	Vector Laboratories, Inc	RL-1102
Microscope slides	VWR	16004-368
Fluoromount G	Electron Microscopy Sciences	17984-25
Zeiss Axio Observer Z1 Inverted Phase and Fluorescence Microscope	Zeiss
Leica MZ9.5 Stereomicroscope	Leica
Fluorescein isothicyanate-dextran, 70000	Sigma-Aldrich	46945