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EPA Method 1615 uses an electropositive filter to concentrate enteroviruses and noroviruses in environmental and drinking waters. This manuscript describes the procedure for collecting samples for Method 1615 analyses.
EPA Method 1615 was developed with a goal of providing a standard method for measuring enteroviruses and noroviruses in environmental and drinking waters. The standardized sampling component of the method concentrates viruses that may be present in water by passage of a minimum specified volume of water through an electropositive cartridge filter. The minimum specified volumes for surface and finished/ground water are 300 L and 1,500 L, respectively. A major method limitation is the tendency for the filters to clog before meeting the sample volume requirement. Studies using two different, but equivalent, cartridge filter options showed that filter clogging was a problem with 10% of the samples with one of the filter types compared to 6% with the other filter type. Clogging tends to increase with turbidity, but cannot be predicted based on turbidity measurements only. From a cost standpoint one of the filter options is preferable over the other, but the water quality and experience with the water system to be sampled should be taken into consideration in making filter selections.
人类肠道病毒在胃肠道内复制并通过粪 - 口途径分布。这些病毒经常发现在污水中高浓度的1-3。他们能坚持生活污水4,5,并在表面6,7,地面8-10和处理饮用水11水域。当存在时,病毒在美国环境水的浓度典型地过低,可直接测量12,13。这需要的病毒被浓缩从大量的水。在信息收集规则(ICR)监测由美国环境保护署(USEPA)14进行,病毒浓度大事业,从0.009全国性范围的水源水阳性标本的19.7最可能的传染性单位数(MPN)/ L.中位数和平均浓度阳性标本分别为0.03和0.17 MPN / L的水源流入溪流,0.010.07 MPN / L为那些来自湖泊和水库,以及0.04〜0.74 MPN / L为那些使用地下水11(从2000年4月25日日的ICR辅助118个月访问数据库中的数据)。阳性标本来自全国地下水一个USEPA研究的病毒浓度从0.009到2.12传染性单位/ L用中位数和平均浓度为0.13和0.29传染性单位/ L范围8。病毒阳性地下水样品中的浓度高于溪流更高。大多数在这些研究中使用地下水的设施获得的水从位于岩溶地区地下蓄水层。这些连同那些位于石灰石和结晶(断裂基岩)设置有可能有更高的病毒浓度高于在其他设置8,15,16。 USEPA病毒方法指定的200升的地表水(ICR)300 L(方法1615年)和1000升的地下水17,18(ICR)至1500 L(方法1615年)的采样量。然而,即使使用大体积的样品,大多数地表水和地下水的样品是阴性病毒8,11,19,20。
目前在地表水中的病毒构成潜在的健康风险对消费者饮用水。在地表水处理规则要求采用地表水由至少4日志,以减少病毒浓度的所有污水处理厂。即使使用4-log减少,感染性病毒的浓度在源水小至0.0044 MPN / L时有可能导致每天1感染假设这样平均曝光和处理条件和剂量反应参数为轮状病毒11,21。从病毒中未处理地下水的风险可能更大,由于缺乏治疗和病毒的发生。博查特和他的同事估计,多达急性胃肠炎的22%的成年人和63%的儿童不到五年的时间可能是由于病毒使用未经处理的地下水19饮用水的社区。
USEPA Method 1615开发非常规污染物监测法规的第三监测周期(UCMR3)22作为国家过程中检测肠道病毒和诺瓦克病毒后续博查特的调查结果和同事19,23。美国环保局方法主要设计用于使用未经处理的地下水检测病毒系统,但被写得更普遍,包括其它水矩阵类型。新方法是一种混合型保持从ICR 17期间所使用的先前的病毒的方法,许多组件,加入分子程序基于博尔夏特等人 19,23和额外的引物组的诺如病毒24的方法。本文的目的是描述了采样过程,并收集和运输过程中保持样品的完整性所需的步骤。总体方法进行评估,Cashdollar 等人 25进行说明。该协议涵盖了简单的现场收藏品要采样的n地表水和地下水,其中一个泵和预滤器是不必要的,在那里不需要用于pH或在水中的消毒剂的存在的调整。更复杂的采样要求中的F out 等人 17,18进行说明。
1.初步程序
2.准备样品采集在采样现场
3.现场样品采集
4.装运现场样品
过滤器堵塞是可以与方法1615可能遇到堵塞减小的水通过过滤器的流率的一个主要的潜在问题。在某些情况下,这可以通过打开截止阀,以允许更大的流动来克服。在其他情况下,该过滤器将变成完全堵塞之前所需的体积已经通过它。 表1示出样品具有减少量作为过滤型,水型,和浊度的函数的百分比。堵塞发生了地下水和地表水样,与氧化铝纳米纤维为基础的过滤器跑赢季胺类过滤地下水样品,而相反的是地表水样品的情况下。总体而言,使用的季胺系滤波器收集的样本6%是缺乏量,同时与氧化铝纳米纤维为基础的过滤器收集的样品的10%没有达到所要求的最小规定体积由于堵塞。在属升,堵塞随浊度,但是许多不同的组件有助于浊度和其中的一些不会导致堵塞。例如,所述的ICR研究期间发生的所有事件的堵塞的43%被限制到2水系(数据未示出)。在ICR的最低目标卷的地表水为200 L.在研究过程中收集的平均量为217±32升用208升的容积中位数(日期为2000年4月25日从ICR辅助118个月访问数据库中的数据) 。因此,全卷可以从许多水域收集即使在高浊度。
该ICR要求采样使用预过滤器时,浊度均超过75 NTU,但即使有一个预过滤器,收集水域浊度超过75样本的34%NTU堵塞。方法1615建议使用预过滤器与水超过50 NTU;但是,由于方法1615的出版物中,除了在该方法中列出的几个不同的预过滤器的选择已经测试。所有这些导致了样品体积显著改善(数据未显示)。
图1.标准过滤设备的标准过滤器装置由进气,过滤器外壳,放电模块(见补充材料的每个模块的介绍)。 请点击此处查看该图的放大版本。
总样本 一 | 对缺乏样品 B 号码 | 百分比缺乏样品 | 浊度(NTU) |
使用NanoCeram地下水过滤器Ç | |||
113 | 1 | 1 | <20 |
使用地表水NanoCeram过滤器Ç | |||
83 | 12 | 14 | <20天 |
8 | 4 | 50 | 20 - <50 |
6 | 五 | 83 | ≥50ð |
总NanoCeramÇ | |||
210 | 22 | 10 | ≥0 |
使用1MDS过滤地下水Ç | |||
374 | 75 | 20 | <20 |
2693 | 27 | 1 C | <20个电子 |
505 | 36 | 7 F | 20 - <50架F |
122 | 19 | 16ê | 50 - <75克 |
175 | 60 | 34 E,F | ≥75 E,F,G |
总1MDSÇ | |||
3869 | 217 | 6 | ≥0 |
表1.过滤能力 一个样品是从下面的研究从体积和浊度的数据是可用的: 从 4/2日的ICR辅助118个月access数据库1)美国环保局的ICR研究(数据5/2000),2)美国环保局地下水研究8,3)USEPA劳伦斯和洛厄尔,MA研究(未发表资料),4)USEPA密西西比河研究(未发表资料),5)USEPA饮用水处理厂的研究(未发表资料) 6)USEPA方法1615评价研究25和7)的前三个月的UCMR3监测(未公布数据)。B瓶尿样 ,其中的每个研究规定的水体积最小才堵塞过滤器收集。这是200升的地表水和1500 L代表地下水,但200升的水源,正在接受美国环保局ICR地下水和1893 L代表美国环保局地下水研究。C到收集指定数量的最低全面的能力是不同的显著为使用样品收集NanoCeram和1MDS过滤器(P = 0.002)之间,地表水和地下水均整体(P <0.001),并为每个过滤器类型(P <0.001)采用Mann-Whitney秩和检验。D&#8211; G组相同的标值是显著差异(P <0.05),根据方差的秩和检验单向分析秩和检验和邓恩的成对多重比较程序。对于所有的统计检验的因变量是通过过滤器作为最小指定体积的一小部分通过了体积,但具有1.0的最大值。
浓缩的环境水域病毒不同的过滤器类型已经使用多年26。目前的方法采用超滤27,负电的过滤器13,28,29,玻璃棉过滤器23和正电的过滤器30。负电的过滤器被广泛地使用了许多年,但对于添加盐和前或取样期间水的pH值在现场的调整的要求限制了它们的效用13。最实用的过滤器选择现场采样正电的过滤器。利用这些过滤器的大体积的水的采样在高流速和没有水的任何设施。玻璃棉过滤器是最便宜的选项,但具有较慢的流速比正电的过滤器和市场上不能买到。超滤提供最高的病毒回收率在大范围的水的质量,但需要sampli设备纳克不易字段便携式和收集样品所需要的时间要长得多27。方法最近已开发了利用预处理阴电过滤器以避免需要调整的领域,但这些可能不适用,用于收集大体积样品28,29。
EPA方法1615使用阳电滤芯其中获得无论从氧化铝纳米纤维或季胺的正电荷。前者超过后者的优点是,它是便宜的,并有效地收集病毒从水域在更宽的范围内的天然pH值的值30,31;然而,每个盒,以及使用博尔夏特和他的同事的玻璃棉过滤得到肠病毒和诺沃克病毒从水23,31,32(Cashdollar,未发表的数据)的类似的回收率。筒式过滤器被放置成,其被设计来简化样品的集合的简单采样装置和取样过程中减少污染。
标准方法是非常宝贵的,当大型研究使用多个分析实验室进行。 EPA方法1615提供了标准的程序和指导,以尽量减少可能会影响在这些收集的数据的两大样本采集问题的研究,假阳性结果所产生的污染过程中样本采集或充分消毒的设备部件和过滤毛孔由组件堵塞水进行采样。
正如肠道病毒可波及人对人由于卫生不足,病毒可以被引入到从洗涤不好的手或双手的样品与被污染的手套33。至关重要的是,采样理解污染的潜在途径和采样过程中使用无菌技术。采样应该明白,手套主要用于保护免于暴露采样,而不是为protect从污染的装置。手要洗净前的取样和关怀的开始必须手套的穿戴过程中注意防止手手套污染。取样与胃肠炎或呼吸道症状不能收集样本,因为它们可能被脱落的肠道病毒或诺如病毒在较高的水平。
其次,必须小心,以防止病毒交叉污染,从上次采样事件。为了尽量减少这种潜在的污染的来源,在方法1615取样装置是从该ICR的由不包括进口和仓外壳模块之间的压力调节器和压力计修改。这些组件被删除,因为采样期间观察到的事件的压力总是低于最高住房等级( 例如 ,125磅的5英寸盒式磁带的外壳),因为他们难以消毒。通过ST设备的使用空白对照后一个问题被证明udies到ICR 6,20以后。在何种程度上影响了它的ICR数据是未知的,但很可能很小;在研究过程中,只有两个假阳性负面绩效考核的样本(数据未显示)。为了进一步减少遗留污染的可能性,也建议每个采样事件之后所述入口模块管代替。它是特别重要的,以确保有足够的消毒,如果该装置被用于被接种病毒一质量或性能的控制。之前进行消毒,游离氯的浓度应测量储存过程中的任何损失。除改变上述的装置的结构中,很重要的是正规的设备空白运行,以表明消毒是有效的。方法1615的设备使用的空白已经被用于病毒种子的控制后,经过消毒设备执行任务,从而简化由于不需要的程序之前,通过该装置中的病毒种子溶液来消毒。消毒剂的浓度增加至0.525%,次氯酸钠为方法1615,因为这个浓度是必需既以灭活设备上的任何可行的病毒和降解的核酸。因此,设备的空白,必须使用两个细胞培养和qPCR测定来进行分析。
这两种类型的过滤器正电的是主体在报告表1中的研究堵塞。未知的样本数量与体积的减少可能是由于抽样误差,如累加器的误读或抽样的有意尽早停止,以满足另一最后期限,特别是对水浊度读数低于20 NTU。堵塞的程度取决于两个经滤波器类型和水的质量的参数。预过滤器提供一些改善的措施,但如果使用的话,应进行处理和分析分别从正电的过滤器。为UCMR3当前的建议是,将样品在不使用氧化二铝纳米纤维基过滤器,如果至少有一半的体积可以使用第一过滤器来收集预过滤器收集。
The authors have nothing to disclose.
作者感谢众多EPA的人员,他们的贡献作出ICR和期间进行监控UCMR3可能,其他EPA研究以下铅研究者报告:丹尼尔Dahling,阿尔弗雷德·杜福尔,安德烈·叶戈罗夫,苏珊Glassmeyer,ASJA Korajkic,理查德·利伯曼,罗伯特Safferman,和蒂姆·韦德;和Shannon格里芬和迈克尔·洁具的严格审查本手稿。作者感谢印度山自来水厂对使用其泵房之一展示样品采集。虽然这项工作是由美国环保署审查和批准发布,也未必反映了官方机构的政策。商品名称或商品的提及并不构成认可或推荐使用。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1-L polypropylene bottle | Nalgene | 2104-0032 | |
Aluminum foil squares | Cole-Parmer | 06275-40 | |
Autoclave | Steris | Amsco Lab Series | |
Bubble wrap | U.S. Plastics | 50776 | |
Closable bag | Uline | S-12283 | |
Closable bag | Fisher Scientific | S31798C | |
Commercial ice packs | Cole-Parmer | 06345-20 | |
Cool safe box | Diversified Biotech | CSF-BOX | |
Gauze sponge | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
Graduated cylinder | Cole-Parmer | 06135-90 | 4-L or larger |
Hype Wipe | Fisher Scientific | 14-412-56 | |
iButtons temperature data logger | Maxim | DS1921G | |
Insulated storage and transport chest | Fisher Scientific | 11-676-12 | |
Packing tape | U.S. Plastics | 50083 | |
Portable chlorine colorimeter II test kit | Hach | 5870062 | |
Portable pH and temperature probe | Omega | PHH-830 | |
Portable turbidity meter | Omega | TRB-2020-E | |
PTFE thread tape | Cole-Parmer | 08270-34 | Use on all threaded connections |
Pump, Centrifugal Magnetic Drive | Cole-Parmer | 72010-20 | |
Reduction nipple | Cole-Parmer | 06349-87 | |
Sodium hypochlorite (NaClO) | Use locally available household bleach | ||
Sodium thiosulfate (Na2S2O3) | Sigma Aldrich | 217247 | |
Surgical gloves | Fisher Scientific | 19-058-800 | |
Waterproof marker | Fisher Scientific | 22-290546 | |
Media | Composition | ||
0.525% sodium hypochlorite (NaClO) | Prepare a 0.525% NaClO solution by diluting household bleach 1:10 in dH2O. Store 0.525% NaClO solutions for up to 1 week at room temperature. | | |
[header] | |||
1 M sodium thiosulfate (Na2S2O3) pentahydrate | Prepare a 1 M solution by dissolving 248.2 g of Na2S2O3 in 1 L of dH2O. Store sodium thiosulfate for up to 6 months at room temperature. |
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