同时PET / MRI成像在小鼠脑缺氧缺血

摘要

这里介绍的方法使用同时正电子发射断层扫描和磁共振成像。在脑缺氧缺血模型，扩散和糖代谢的动态变化过程及伤后发生。在这个模型中不断变化和不可重复的损害就必须同时获得，如果有意义的多模态成像的数据是被收购。

摘要

在缺氧脑缺氧缺血反映在受影响细胞生物能量扰动后组织水扩散和葡萄糖代谢的动态变化会发生。磁共振弥散加权成像（MRI）标识被损坏，造成无法恢复的区域，缺氧，缺血。在受影响的组织对葡萄糖的利用改变可以是可检测的正电子发射断层摄影术的2-脱氧^-2-（18 F）的氟ᴅ葡萄糖^（[18 F] FDG）摄取（PET）成像。由于损伤的动物模型的快速和可变性质，采集数据的两种模式的必须同时以有意义地关联的PET和MRI数据执行。此外，在缺氧缺血损伤由于血管差异的动物间变异性限制来分析多模态的数据和观察到的变化的一组，明智的做法，如果未在个体对象同时采集的数据的能力。该方法P反感这里允许一个之前在相同的动物获得两个扩散加权MRI和^[18 F] FDG摄取数据，在此期间，为了询问即时的生理变化的缺氧攻击后。

引言

在世界范围内，中风死亡的第二大原因和残疾¹的一大原因。发生期间和之后急性中风事件生理生化事件的级联反应迅速，与组织的活力，最终的结果²含义发生。脑缺氧缺血（HI），这导致缺氧缺血性脑病（HIE），估计影响高达0.3％和足月和早产，分别^3,4- 4％。死亡率在HIE患儿是约15％至20％。在HIE幸存者的25％，永久性并发症发生的伤害，包括智力低下，运动障碍，脑瘫和癫痫^3,4的结果。以往的治疗干预还没有被证明值得采纳的护理标准，并达成共识尚未达成，最先进的方法，基于低温，有效降低发病率^3,5。其他问题Ø˚F争夺包括低温和患者选择⁶给药方法。因此，对神经保护和神经复原的战略仍然是一个肥沃的地区研究^7。

自1960年以来脑HI大鼠模型已经面世，并随后进行了调整，以小鼠^8,9。由于模型和结扎的位置的性质，有对结果因在动物^10之间侧支血流差异固有可变性。其结果是，这些车型往往比同类机型，如大脑中动脉闭塞（缺血），更变数。生理变化的实时测量已被证实与激光多普勒血流仪以及弥散加权成像^11。脑血液流所观察到的帧内动物变性期间，并立即缺氧后，以及在急性成果，如梗死体积和神经赤字，建议同时采集多的数据和关联将是有益的。

在同时进行正电子发射断层扫描（PET）和磁共振成像（MRI）的最新进展已经允许在临床前成像^12-14中的新的可能性。这些混合，结合系统临床前应用的潜在优势在文献^15,16已经描述。例如，当事件如中风的每个实例本身表现独特，迅速变化的病理生理 - - 尽管许多临床前的问题可以通过成像个别动物顺序的或通过成像单独动物组，某些情况下加以处理，使其理想，甚至是必要使用同步测量。脑功能成像提供了这样一个例子，在这里同时2-脱氧^-2-（18 F）氟ᴅ葡萄糖^（[18 F-FDG）PET和布卢D-氧水平依赖（BOLD）MRI最近被证明在大鼠胡须刺激研究^14。

在这里，我们展示了一个发生缺氧缺血性中风的大脑生理学是不是在稳定状态的过程中同时进行PET / MRI成像，但在缺氧的挑战，而不是迅速和不可逆的变化。变化水扩散，如通过MRI测定，通过从弥散加权成像（DWI）衍生的表观扩散系数（ADC）量化的，已被充分表征的冲程在临床和临床前数据^17,18。在动物模型如MCAO，水在受影响的脑组织的扩散迅速下降是由于生物能量级联导致细胞毒性水肿^18。在ADC这些急性变化也观察到脑缺氧缺血^11,19的啮齿动物模型。 ^[18楼] FDG PET显像已应用于中风患者，以评估改变当地的冰川ucose代谢^20，和一个小数目的体内动物研究还使用^[18 F] FDG的^21，包括在脑缺氧缺血模型^22。总的来说，这些研究显示，缺血区减少葡萄糖的利用，尽管使用再灌注模型的一项研究发现，与后来的心肌梗塞发展²³这些代谢的变化无关。这是相对于已与不可逆受损^芯 21相关联的扩散变化。因此，为了能够获得笔划的进化过程中，来自于^[18 F] FDG PET及DWI以同时的方式中的补充信息是很重要的，因为这是可能产生关于损伤的进展，产生的影响的有意义的信息治疗干预。我们在这里描述的方法很容易适合与各种PET示踪剂和MRI序列的使用。例如^，[15 O] _H 2 O宠物随着DWI和灌注加权图像（PWI）从MRI图像可以被用于进一步探索缺血半暗带的开发和验证行程摄像视野内的电流的技术。

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研究方案

所有的动物处理和程序本文所述，并根据动物研究:报告体内实验（到达）的指导方针，按照批准的协会为实验动物的评审评估方案进行（AAALAC）的国际认证机构动物护理和使用委员会在加州大学戴维斯分校。适当的手术不应导致的在动物的任何疼痛或不适的迹象，但如果这些标志观察到，包括的止痛剂或在某些情况下施用安乐死应采取适当的步骤。右侧的动物是任意选择为所描述的单方面过程。

1.单侧颈总动脉（CCA）结扎

1. 准备无菌区与定位方便消毒外科手术工具和材料。确保加热垫加热至37℃，温度探针牢固地放置在垫。 ＆＃160;一定要使用一个无菌的悬垂覆盖手术部位。
2. 麻醉动物（异氟烷，在空气中1-3％在0.5-1升/分钟），并将其放置在动物的尾背向仰卧位置。检查麻醉按捏脚趾 - 这应该引起任何反应，如果动物是正确麻醉。应用眼药膏的眼睛。
3. 申请脱毛霜下颈部使用1-2棉签上胸部区域。等待1-3分钟，然后用湿纱布或酒精棉签去除毛发和奶油。优碘擦拭切口面积以循环的方式从内到外，再换上无菌手术手套。
4. 用手术剪，使约1厘米的切口沿着下颈部的中线。小心地用手术剪周围筋膜分开外皮。
5. 使用两个麦弗逊式微虹膜缝合镊子，从筋膜分离右侧颈总动脉，注意避免破坏静脉或distur兵迷走神经。
6. 使用镊子在右边，exteriorize右侧CCA在稳定的位置。应用数滴盐水以防止干燥。通过右侧CCA下方6-0丝线缝合，结扎，并使用双平结合适的长度（2-3厘米）。任选，结扎用6-0丝线缝合一个第二长度一次。
7. 重新定位正确的CCA和使用无菌海绵打开清理多余的液体放倒棉签。关闭切口用6-0丝线缝合。应用利多卡因局部达7毫克/公斤。
8. 让动物从麻醉到门诊（约30分钟），回收并进行手术后的监控，直到动物准备成像。

2.准备成像:系统和硬件检查

1. 设置硬件和软件的MRI和PET系统，并检查其功能如下。确保所有物理连接是否牢固和软件设置适当选择。
   1. 确保在PET系统是在5℃下使用空气冷却系统的规定的工作温度。
   2. 摩宠物系统的MRI孔内，对准了使用已知轴偏移视角（FOV）中心的PET和MRI领域。挂载MRI线圈宠物系统的孔内和中心线圈与PET系统和MRI磁体中心。
   3. 打开PET电子电源和偏置电压（注:步将用乐器不同）。采用⁶⁸缸戈执行快速（5分钟）的扫描和检查所生成的正弦图，以确保所有探测器的操作。
   4. 任选获得用于用于共登记用途的PET / MRI变换矩阵数据:填充三维幻影（例如，三填充球）与200微居里的^{18 F-}水溶液和获得15分钟的PET带。获取解剖MRI数据:在扫描控制窗口中，选择多片多回波（MSME）序列（ 见表 1 的信息）。重复所有三个主要方向:轴向，矢状面和冠状。
2. 检查输液泵的设置和操作。设置泵每分钟4.44微升，而在恒定输注45分钟提供200微升，对于静脉注射在20克的动物的典型建议的限制的总体积。
3. 检查加热器操作，并确认所述温度输出是足以保持动物温热（37℃）。检查温度和呼吸监测工作正常，准备对动物睡觉的动物安置。
4. 通过与压缩空气源关闭_和 O 2 _和 N 2在两个供电:检查O _{2和N 2}的流量计的操作_（O 2在57.2毫克/分_和 N 2在0.575克/分0.5升/分钟）来源上。为了避免损坏流量计的危险，不要打开它们没有足够的输入压力。
5. 确保异氟醚vaporizer被充分填充。在成像之前，启动异氟烷麻醉流量在1-2％和0.5至1升/分。
6. 制备动物床通过确保麻醉，呼吸垫，和加热器系统被安全地和功能性地定位。有关其他的PET /磁共振配准准确度，基准标记（例如，毛细管在相似浓度作为注射成像填充有放射性示踪剂）可以附着到动物床的视野内。

3.成像工作流程

毕竟必要的设备检查完成后，继续成像如下:

1. 麻醉用异氟烷的动物，并插入尾静脉导管（28克针，PE-10管小于5厘米）填充有肝素生理盐水（0.5毫升肝素，1000 USP /毫升，在10毫升盐水）。升温动物和/或尾可能提高的导管插入精度。任选放置一滴氰基丙烯酸酯类粘合剂的上插入部位以固定IV线。
2. 动物转移到准备好的动物床。确保动物的头是安全的，与上门牙的位置固定在牙齿的酒吧和耳棒，如果正在使用。
3. 应用眼药膏的眼睛，以防止干燥。插入直肠探头温度计。确保温度和呼吸读数功能。
4. 绘制示踪剂剂量（约600微居里在200μl）注射到肝素化的PE-10管的适当长度 - 约3μm对于PE-10管材和200微升的体积。连接该管道到输液泵的注射器，而另一对尾静脉导管线的一端，注意不要用来在管穿孔。
5. 向前滑动动物床到磁体的孔，确保不干扰磁共振线圈的定位和任何线路或电缆，尤其是麻醉管。保证大脑的中心与M的中心对准RI线圈，宠物系统，以及MRI磁体。
6. 通过旋转线圈上的调节旋钮，最小化阻抗（检查线圈规格）和频率（300兆赫¹ H在7特斯拉的）不匹配，通过观察高功率前置放大器的显示执行调谐的MRI线圈的和匹配。
7. （MRI）的调谐和匹配后，获取侦察图像:选择一种罕见的tripilot序列和运行扫描控制窗口的顺序。检查动物的定位，重复步骤3.5，并根据需要3.6。重置垫片到零值。
8. （MRI）取得局部，点分辨光谱扫描（PRESS）的体积在大脑中:运行PRESS序列（ 见表 1）在一个长方体，尺寸为3.9毫米×6毫米×9毫米。检查水线宽使用CalcLineWidth宏命令。如果在一半最大值（FWHM）值全宽是可以接受的（例如，为0.2ppm），继续到步骤3.10。如果没有，继续执行步骤3。9。
9. （MRI）获取字段映射:运行FieldMap序列（ 见表 1）。通过运行MAPSHIM宏命令，并选择线性和二阶^（Z 2）局部调整，使用了多角度的投影垫片（MAPSHIM）产生的数据。重复步骤3.8。
10. （MRI）位置的DWI扫描（ 见表 1）切片的计划:使用几何编辑器，确保收购FOV定位获取的大脑内的利益所需的音量。如果得到的片计划是一致的需要，复制在扫描控制窗口此片计划，所有后续弥散加权成像扫描。开始采集。
11. （PET）随着PET收购准备，并准备开始，启动输液泵。预先确定的延迟，其中从导管盐水已经注入之后，开始以捕获放射性示踪剂的条目的PET收集（ 见表 1）。监控计数率并查找逐渐增加在表明一个成功的注射次数。
12. 后10-15分钟，引发缺氧的挑战并行执行步骤3.12。以引发缺氧挑战，关掉医用空气流，并立即功率上_的 O 2 _和 N 2的流量计与预定的设置来提供8％的氧气和92％的氮气，并减少异氟烷〜0.8％。 请在流量计不功率而不输入压力。
13. （MRI）的同时作为步骤3.12，开始在步骤3.10制备DWI采集（扫描"H1"）。
14. （MRI）的开始DWI采集（扫描"H2"），在步骤3.10制备后立即扫描H1被完成。通过关闭流量计，恢复医用空气流动，异氟醚浓度恢复到基于生理监测一个合适的值完缺氧的挑战。
15. （MRI）收购后缺氧DWI扫描步骤3.10准备。关掉输液泵之后该扫描已完成。
16. （MRI）取得ANATomical图像在轴向平面和径向平面。在扫描控制窗口-选择MSME序列（ 见表 1）。利用几何编辑器，确保收购FOV涵盖了大脑。
17. 除去动物，返回到笼卧床时 ​​监测和发病率的迹象，安乐死必要时用CO ₂的施用颈椎脱位作为次要方法。

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结果

图1显示了普通颈动脉的结扎正确之前，闭合伤口用6-0丝线缝合的结果。

在该方法中，从拍摄得到的数据是高度依赖于实验，这又决定，并且还决定由实验的限制包括图像捕获方案和设备设置的时间安排。这些及其他因素的进一步探讨在讨论部分。与本文描述的协议中，设备（图2A）的物理安装允许进行不间断的多模态图像采集之前，期?...

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讨论

同时解剖MRI和动态DWI-MRI和^[18 F] FDG PET数据成功地从实验动物中以下颈总动脉结扎缺氧挑战获得的。这代表了一个强有力的实验范例用于与在大脑局部缺血损伤相关联的快速变化的病理生理的多模成像和可以很容易地扩展到研究其它的PET放射性示踪剂（对于神经炎症的示例标记）和MRI序列，以及介入战略的影响期间或缺血性的挑战后不久。

期间在?...

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材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Surgery
Surgical scissors	Roboz	RS-5852
Forceps	Roboz	RS-5237
Hartman mosquito forceps	Miltex	7-26
2x McPherson suturing forceps, 8.5 cm	Accurate Surgical & Scientific Instruments	4473	It is useful to reduce the opening width with a band on the forceps used to hold the carotid artery
6-0 silicone coated braided silk suture with 3/8 C-1 needle	Covidien Sofsilk	S-1172
Homeothermic blanket system	Harvard Apparatus	507220F
Super glue	(Generic)
Hypoxia
Flowmeter for O2	Alicat Scientific	MC-500SCCM-D
Flometer for N2	Alicat Scientific	MC-5SLPM-D
O2 meter	MSA	Altair Pro
Imaging
7.05 Tesla MRI System	Bruker	BioSpec	20 cm inner bore diameter with gradient set. Paravision 5.1 software.
Volume Tx/Rx 1H Coil, 35 mm ID	Bruker	T8100
PET system	(In-house)		4x24 LSO-PSAPD detectors, 10x10 LSO array per detector, 1.2 mm crystal pitch and 14 mm depth. 14 x 14 mm PSAPD. FOV: 60x35 mm. 350-650 keV energy window. 16 nsec timing window.
Vessel cannulation Dumont forceps	Roboz	RS-4991
PE-10 polyethylene tubing	BD Intramedic	427401
Infusion pump	Braintree Scientific	BS-300
Animal monitoring & gating equipment	Small Animal Instruments Inc.	Model 1025	Only respiration monitoring used
Animal bed with temperature regulation	(In-house)