工作模式下的心功能和代谢评估

摘要

诺本心脏原位灌注 (eshp), 使心脏保持跳动, 半生理状态。在工作模式下进行操作时, eshp 提供了对捐献者心脏功能和器官生存能力进行复杂评估的机会。在这里, 我们描述了我们的方法在 eshp 期间心肌性能评估。

摘要

目前的标准器官保存方法 (冷库, cs), 使心脏暴露在冷缺血期, 限制了安全保存时间, 增加了移植后不良结局的风险。此外, cs 的静态性质不允许在保存间隔内进行器官评估或干预。诺曼原位心脏灌注 (eshp) 是一种新的方法, 保存捐赠的心脏, 通过提供含氧, 营养丰富的心脏吸乳, 最大限度地减少冷缺血。eshp 在保存标准供体心脏方面已被证明不低于 cs, 也为循环死亡测定后捐献的心脏的临床移植提供了便利。目前, 唯一可用的临床 eshp 设备在卸载、非工作状态下灌注心脏, 限制了对心肌性能的评估。相反, 在工作模式下的 eshp 提供了机会, 通过评估生理条件下的功能和代谢参数, 全面评估心脏表现。此外, 早期的实验研究表明, eshp 在工作模式下可能会导致更好的功能保存。在这里, 我们描述了在一个大型哺乳动物 (猪) 模型中对心脏进行原位灌注的协议, 该模型可针对不同的动物模型和心脏大小进行重现。此 eshp 设备中的软件程序允许实时和自动控制泵的速度, 以保持所需的主动脉和左心房压力, 并评估各种功能和电生理参数, 而对监督/操纵。

引言

临床相关性

虽然自1967年第一次心脏移植以来, 心脏移植的大多数方面都有了显著的发展, 但冷藏 (cs) 仍然是供体心脏保护^{的标准 1}。cs 使器官暴露在冷缺血期, 限制了安全保存间隔 (4-6小时), 并增加了原发性移植物功能障碍^2,3,4的风险。由于 cs 的静态性质, 在器官采购和移植之间的时间内, 无法评估功能或治疗干预。这是扩大标准捐助方的一个特别限制, 包括循环死亡后捐赠的心脏, 这给克服需求与目前捐助方^之间的巨大差距造成了障碍 5^、6.为了解决这一局限性, 提出了一种新的半生理方法来保存捐赠的心脏, 通过在保存时向心脏提供含氧、营养丰富的香水, 最大限度地减少冷缺血的暴露^1,7.,8。

原位心脏灌注

在孤立的心脏的异地检查中最常用的方法之一是朗根多夫灌注。在1895年由 oskar langendorff 介绍的这种方法中, 血液流入冠状动脉, 流出孤立心脏的冠状窦, 心脏处于空的和跳动的状态^9,10.使用转移医疗器官护理系统设备 (ocs) 在 langendorff 模式下的临床 eshp 已被证明在保存标准供体心脏¹方面不低于 cs, 并为 dcd 心脏^{的临床移植提供了便利11}. 然而, 人们对该装置评价器官可行性的能力表示关切, 因为一些最初被认为可移植的捐献者心脏在 ocs³上灌注后被丢弃。ocs 在 langendorff (非工作) 模式下支持心脏, 因此具有有限的能力来评估心脏的抽水功能^3,12。越来越多的证据表明, 功能参数为评估器官生存能力提供了更好的方法, 这表明在 eshp 3 期间, 评估心脏功能可能成为评估和选择移植心脏的可靠工具 ^{此外,我们}对原位灌注猪心脏的研究表明, 在工作模式下, eshp 为心脏提供了增强的功能保护。灌注间隔^15,16。

能够在工作模式下保持心脏的 eshp 设备必须具有一定的自动化级别, 以安全、精确地保持预紧力、后负荷和流量。此外, 这种系统应具有灵活性, 以促进对心脏功能进行全面评估。这里使用的 eshp 设备配备了定制软件, 1) 提供和维护所需的主动脉 (o) 和左心房 (la) 压力流和 2) 提供功能参数的实时分析和压力波形的视觉评估。对监督的最低需求。利用标准充液压力传感器采集压力数据, 利用跨时间多普勒流量探头采集流量数据。这些信号分别通过桥接和模拟输入进行数字化。心脏水平定位, 轻微提升到柔软的硅胶膜上的大血管。插管附件穿过膜, 加入一个顺应性室, 用于抑制心室射血。这项工作的目的是为心脏移植领域的研究人员提供一个协议, 用于对心脏进行原位灌注和评估, 在正常的, 半生理条件下的工作模式, 在一个大型哺乳动物 (约克郡猪) 模型。

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研究方案

本手稿中的所有程序都是按照加拿大动物护理理事会的指导原则和实验室动物护理和使用指南进行的。这些议定书得到了艾伯塔大学动物护理机构委员会的批准。该方案已应用于幼小约克郡猪35-50 公斤之间。所有参与 eshp 程序的个人都接受了适当的生物安全培训。

1. 手术前准备

1. 将风琴室正确地放置在仪器车上, 并将硅支撑膜安装在风琴室内。在图 1中可以看到奥、肺动脉 (pa) 和 la 连接点。
2. 安装 eshp 管网 (如图 2a、b) 氧气机和过滤器所示。将热交换器的水管和扫气管连接到氧气机上。
3. 将测量冠状窦/pa 和 la 流动的流动探头放置在相应的导管上。
4. 将 o 和 la 压力传感器连接到电路上的代表性线路。
5. 确保所有的油管连接牢固地连接在一起, 所有的塞子和 luer 锁都在未连接的地方正确关闭。
6. 使用750毫升改性的 krebs-henseleit 缓冲器的电路 (nicl, 85;kcl, 4.6;nhco₃, 25;kh₂po, 1.2;mgso₄, 1.2;葡萄糖, 11;和 ccl₂, 1.25 mmol/L), 含有8% 的白蛋白。通过将泵出口定位在进气口上方, 使空气离开泵室, 将 o 和 la 泵送去空气 (图 3)。该溶液通常不需要在灌注开始前进行氧合。
7. 在 o 和 la 泵断电并启动电路后启动软件。

2. eshp 软件初始化和调整

请注意:这里使用的 eshp 设备配备了一个定制的软件程序, 允许控制泵的速度, 以达到和保持所需的 la 和 o 压力。该软件还分析功能参数, 并提供压力波形的可视化评估 (图 4)。

1. 要启动 eshp 程序, 请单击显示器上的程序快捷方式。
2. 在 "设置" 页面中, 单击 "初始化"。初始化消息将显示在主板上 (图 5)。
3. 在同一页上, 将单击 "零 la 流" 和 "零 pa 流" 的流量传感器归零。该消息将显示在主板上。
4. 将压力传感器的高度调整到硅支架的高度.要将压力传感器归零, 请将 o 和 la 压力传感器 (以及用于检查压力的任何其他传感器) 打开到大气中, 然后单击 "零所有压力" 按钮。该消息将显示在主板上。
5. 在 "主" 页面中, 逐渐提高 o 泵的速度, 直到器官腔内出现来自奥插管的流量。在目前的系统中, 每分钟900–1000转 (rpm) 可实现这一点。
6. 在灌注溶液中添加750毫升血液, 使总灌注体积达到1.5 升 (如 "手术、采集血液和心脏采购"部分所述), 然后增加 la 泵 prm (800-900 rpm), 使洛杉矶插管中没有空气残留或硅胶支撑膜下的 la 管。
7. 在初始化控制软件并取消 eshp 设备的通风后, 可以进行供体心脏采购。

3. 准备和麻醉

1. 服用 20 mg kg 的氯胺酮和 0.05 mg kg 的肌肉注射剂进行药物治疗。
2. 将猪转移到手术室, 并将猪放置在工作台上, 并提供桌面加热, 以保持正常。
3. 根据动物重量和麻醉系统进行面膜诱导的滴定氧流速。对于闭环麻醉回路, 氧流量应为 20-40 mL/kg。
4. 将异氟醚打开至 4–5%;一两分钟后, 这可能会降低到3%。
5. 评估麻醉的深度。如果对有害的刺激没有戒断反射, 猪就在手术平面上。
6. 确认适当的麻醉深度后, 进行插管。
7. 将脉搏血氧仪探头放在舌头 (首选) 或耳朵上。用脉搏血氧仪测量的氧饱和度应保持在90% 以上。
8. 在左肘和右肘区域剪掉几块头发, 左窒息。用肥皂和水清洗皮肤油脂, 用酒精摩擦冲洗, 彻底干燥。放置心电图触点。避免引线对手术部位的干扰。将潜在顾客连接到正确的位置。
9. 为了保持麻醉, 调整氧气流量 (20-40 mL/kg) 和吸入气体率 (1-3%)。心率应为80–130比茨/min, 呼吸速率应为12-30 呼吸/分钟。
10. 洗头、洗洗、无菌地准备切口部位。

4. 采血和心脏采购

1. 每5分钟评估一次麻醉水平, 以确认手术平面 (没有踏板反射, 也没有眨眼反射, 没有对疼痛刺激的反应)。
2. 做胸骨切开术的中位。
   1. 识别颈室和为地标。
   2. 用电烧, 通过划分皮下组织和胸大肌纤维之间的筋膜, 发展地标之间的中线。
   3. 用烧焦的刺标记胸骨沿线的中线。用电动或空中锯进行胸骨截骨术。为了防止对底层结构 (如心包和臂头静脉, 以及无名动脉) 造成伤害, 请逐步进行锯片。
   4. 使用胸骨牵引器, 逐渐收回胸骨。为了避免过度紧张和血管损伤, 不要把牵引器放得太远。
   5. 用烧焦的方法将胸膜后表面的胸骨全包韧带解救出来。
   6. 用 metzenbaum 剪刀打开心包, 用1-0 真丝缝合线将心包边缘固定在胸骨上。
3. 将中线切口颅骨延伸2-3 厘米, 露出右颈总动脉和颈内静脉。
4. 通过用丝质领带 (2-0) 包围血管, 获得血管的近端和远端控制。
5. 将每个容器上的颅骨包围的纽带绑起来。
6. 用11刀片打开每个容器的前半, 然后将一个 5-6 f 鞘插入每个容器。将尾端环绕在每艘船上的领带绑在一起, 以确保各自的鞘。
7. 通过将每个护套连接到压力传感器来监测动脉和中心静脉压力。
8. 静脉注射 1, 000 u/kg 肝素。
9. 将3-0 聚丙烯包绳缝合在右心房附属物周围, 用陷阱固定。
10. 在包绳缝合线内, 使用11刀片在附属物上创建一个1厘米的切口。在切口内插入两阶段静脉插管 (28/36 fr), 并将远端尖端放置在 ivc 中。通过将鼻孔固定在静脉插管上, 以固定插管。用管钳控制插管的出口。
11. 从放置在右心房的两级静脉插管, 在15分钟的时间内, 将750毫升的全血从猪中逐渐收集到蒸压玻璃容器中, 同时用同位素晶体合金溶液的1l 代替体积, 如等离子体 a。
12. 将血液添加到灌注电路 (该电路以前已启动750毫升克里克斯-亨塞利特缓冲含有8% 的白蛋白), 以达到最终体积的1.5 升灌注。这种吸血是 krebs-henseleit 的1:1 组合, 其中含有8% 的白蛋白溶液和来自捐献者^的全血17。
13. 将心绞痛针 (14–16 f) 放置在上升的 aoo 中, 并用陷阱固定它。
14. 将心绞痛插管连接到心绞痛袋, 并添加100毫升血液到400毫升的心绞痛 (圣托马斯医院解决方案), 以达到500毫升血液心绞痛的最终体积。
15. 用失血过多的方法使猪安乐死。如果打算在灌注开始后将更多的血液添加到香水中 (根据研究的目的), 收集血液并在其中添加 10-30 ul 的肝素, 并将其存放在玻璃容器或塑料袋中, 时间很短 (小时)
16. 用 o 夹具交叉夹紧提升的奥, 并将心脏病溶液传递到 o 根。
17. 完成心脏静脉溶液的分娩后, 取出交叉夹具并进行心脏切除术。
    1. 为了便于将 aoo 和 pa 附加到其代表性的插管中, 使用 metzenbaum 剪刀部分地解剖了来自 pa 的上升奥。
    2. 横切上腔和下腔静脉, 每个静脉的长度约为1厘米。
    3. 通过横切肺静脉将心脏与后纵隔分开。
    4. 消费心脏, 确保所有的奥拱形船只采购与下降的 o。保存到 pa 分叉。
18. 称重空虚的心。在异地保存间隔内增加的体重量可作为治疗器官水肿的指标。

5. 心脏放置在 eshp 设备上并启动灌注

1. 用 metzenbaum 剪刀修剪洛杉矶周围多余的组织, 并在肺静脉之间切割, 以形成一个共同的孔口。
2. 使用3-0 聚丙烯缝合线在 la 孔周围放置一个包绳缝合线。
3. 缝合和关闭下腔静脉与3-0 聚丙烯缝合。在灌注开始时保持上腔静脉打开, 以确保右心室 (rv) 保持减压状态, 直到灌注温暖, 并实现有组织的节奏。
4. 将 la 插管放入 la 孔中, 并用陷阱固定 (图 6)。
5. 轻轻挤压心室, 使心脏 "从5.5。并将其添加到5.7。将 o 泵的速度提高到 1600 rpm, 轻轻挤压心脏。在奥根的剩余空气将被弹出通过无名和锁骨下分支。
6. 将 o 连接到嵌入在硅胶膜中的 o 插管。用丝质领带把奥在插管周围固定。修剪奥, 以实现一个适当的谎言, 没有紧张或眨眼。
7. 将 o 泵转速提高到 1600 rpm。在奥根的剩余空气将被弹出通过无名和锁骨下分支。
8. 将 o 清洗线连接到无名动脉。用丝绸领带固定连接。
9. 用丝质领带在锁骨下的左动脉孔上的鼻孔。用陷阱和捕捉来固定闭合。通过锁骨下动脉的孔口, 放置一个介绍护套 (5f)。确保导管的长度及其方向得到适当调整, 以免干扰 o 阀功能。
10. 将 o 压力传感器连接到导入器护套侧端口。
11. 读取显示器上的 o 压力。调整 o 泵速度, 达到30毫米汞的平均压力。此时 (时间 0), 灌注将在非工作模式 (朗根多夫模式) 开始, 在 pa 线的暗脱氧灌注剂的出现是重建冠状动脉流动的反射器。如果需要, 设置计时器以遵循灌注的持续时间。
12. 打开热交换器, 将温度设置为38°c。在大约10分钟内, 香水将升温至37–38°c。对于猪心脏的正常灌注, 在整个灌注过程中保持38°c 的温度。
13. 在灌注的第一个小时内保持非工作模式下的灌注。调整 la 泵的速度, 使 la 压力保持在0毫米汞柱。
14. 一旦香水温度 gt;34, 根据需要评估心脏节律和速度以及除颤 (5-20 焦耳)。在尝试恢复治疗之前, 请确保心脏完全减压。
15. 使用血气分析仪检查溶解气体的状态。调整气体混合物以保持 ph 值: 7.35–7.45, 二氧化碳的动脉分压 (p_{co 2}):35–45毫米汞柱, 动脉部分压力的氧气 (p_{a o 2}):为100–150毫米汞柱, 氧饱和度 (so₂) ≥95%。
16. 一旦心脏是正常的, 并在一个稳定的节奏, 结扎上腔静脉。
17. 将临时起搏器连接到右心房壁, 并以 aai 模式以 100 ats min 的速度为心脏。
18. 将心外膜心电图电极连接到心脏表面。
19. 在朗多夫模式下, 在灌注1小时后切换到工作模式。为此, 请在主页左侧的 "所需 lap" 部分输入所需的 la 压力 (通常为 6-8 mmhg), 然后单击按钮启动反馈循环。激活的工作模式将显示为绿色按钮, 而 la 泵的速度将自动增加和减少, 以达到并保持所需的 la 压力。
20. 当心脏开始工作时, 冠状动脉阻力会下降, 导致低舒张压。调整 o 泵转速, 使工作模式下灌注过程中的 o 舒张压保持为后负荷。

6. eshp 期间的代谢支持

请注意:器官灌注溶液, 包括克里布-亨塞利特缓冲液, 通常含有葡萄糖作为主要能量底物。

1. 在灌注过程中, 定期检查葡萄糖水平 (例如血气分析)。根据消耗率, 使用标准输液泵, 用连续动脉输液和/或丸剂量代替葡萄糖, 以保持整个灌注过程中葡萄糖的动脉浓度为 6-8 mmol。
2. 使用单独的输液泵, 在整个输液过程中向输液液输送 2 uh 胰岛素, 根据研究的目的改变胰岛素输注率。
3. 对于β-肾上腺素受体刺激心脏, 使用标准输液泵向香水提供0.08μgmemin 的肾上腺素, 并在整个灌注过程中继续进行。或者, 也可以使用4微克/敏多巴酚丁胺的输液。

7. 抗微生物和抗炎药

1. 在灌注开始时加入广谱抗生素 (例如3.375 克哌拉西林-他唑巴坦)。
2. 如有必要, 根据研究的目的, 在香水中添加抗炎药 (如500毫克甲基强的松龙)。

8. 职能评估

请注意:eshp 控制软件每10秒自动计算和记录一次稳态血流动力学和功能指数。

1. 稳态收缩舒张功能的评价
   1. 为了评估和记录稳态数据, 通过先前放置在锁骨下动脉的引种鞘, 在工作模式下将充满液体的辫子导管放入左心室 (lv)。
      1. 用盐水冲洗猪尾导管, 并将导丝放在导管内。
      2. 轻轻地将导管插入先前放置在锁骨下动脉的鞘插管中。一旦它通过 o 阀门, 慢慢地取出导丝, 并将辫子导管连接到 lv 压力线。
      3. 跟随显示器上的 lv 压力波。当导管正确放置在 lv 内时, 压力波的舒张部分将达到零。值得注意的是, 这一步骤只有在工作模式下才有可能, 因为 o 阀门必须正常打开, 猪尾导管才能进入腔内。一旦猪尾导管放置在 lv 中并连接到 lv 压力传感器, lv 压力变化的最大和最小速率 (dp/dt 最小值和 dp/dt 最大值) 将被自动记录。
   2. 在给定的恒压 (6-8 毫米汞柱) 和40毫米汞柱的 o 舒张压和^100-min–1的心率下, 通过在 la 线上对测量流量进行索引来确定心肌性能.la 压力等于心输出量, 假设没有 ao-col 功能不全。检查 o 压力波形, 以确保没有 o 不足。
2. 提前招聘的中风工作评估 (prsw)
   请注意:prsw 是舒张终末体积与 lv 脑卒中工作 (lvsw) 之间的线性关系, 是评价心室功能的指标, 与前程^、后负荷和心室18、19的大小无关。prsw 可以用这个系统以非侵入性的方式进行测量, 如下^所述。
   1. 从 lv 中取出辫子导管, 因为导管在 prsw 分析过程中可能会诱发心律失常, 从而对结果的准确性产生负面影响。
   2. 在主页上的 "捕获 pvl" 部分, 调整分析期间洛杉矶泵速度的预期下降速率 (通常为 100–200 rpm) 和进行分析所需的时间 (通常为10–12秒) (图4)。
   3. 执行上述调整后, 点击 "录制 pvl"。该软件将自动退出工作模式, 并逐步减少 la 泵 rpm, 同时记录 lvsw 和 la 压力。在数据收集结束时, 软件将对新获得的数据集进行线性回归, 以获得 prsw。eshp 软件完成分析后, 主页上将出现一条消息, 显示分析的相关系数。如果系数 (r 值) 是可取的 (通常和 gt;0.95), 请按 "确定"。将记录 prsw 分析结果。
   4. 执行分析后, 要在工作模式下返回到灌注, 请单击 "按启动工作模式; 否则软件将继续在 langendorff (非工作) 模式下。灰色按钮将变为绿色, 表示返回工作模式。如果需要重复的 prsw 分析, 则在每次新尝试之前, 确保 la 压力/流值返回到以前的稳态值。

9. 前位完美心脏的代谢评估

1. 利用从 o (动脉) 和 pa (静脉) 线每1-2小时采集的香水样本的血气分析中获得的信息, 评估 eshp 期间心脏和香水的代谢状态。
2. 进行血气分析 (每 1-2小时), 以监测香水的气体和离子状态。调整气体成分 (o2和 co₂) 并扫描速度, 以保持7.35–7.45 的 ph 值, 100–150毫米汞柱的 pao₂和35–45毫米汞柱的 paco2.在灌注过程中, 调整和保持生理范围内钾和钙的乳精离子浓度 (例如, 必要时添加氯化钙)。
3. 利用从血气分析和冠状动脉血流中获得的信息来计算代谢参数。例如, 计算心肌耗氧量 (mvo₂) 和 lv 机械效率 (me), 如下所示:
   1. 确定 mL₂ (ml2·min-1·100 g-1), 使冠状动脉血流量 (cbf) 乘以氧含量的动静脉差 (cao 2–cvo₂) .
      mL₂ = [cao_{2-cvo 2} (ml o2·100 ml-1), xcbf (ml. min-¹. 100 g心质量), 在哪里;
      动脉含氧量 (cao₂) = [1.34 (ml o _. 2. g hb-1) xhb 浓度 (g· 100 ml-1) x 氧饱和度 (%)] + [0.00289 (ml o 2·mhg-1ml-1) (毫米hg)]
      静脉含氧量 (cvo₂₎ = [1.34 (ml o 2·g hb-1) xhb 浓度 (g· 100mlml-1) x 氧饱和度 (%)] + [0.00289 (ml o 2·mm hg-1 ) xpvo₂ (毫米 hg)]
   2. 计算 lv 机械效率 (me), 如下所示:
      me = lvsw (j. 跳动^-1)/mvo₂ (j. 节拍^-1), 其中
      行程工作 = {平均动脉压力 (mmhg)-la 压力 (mmhg)} {la 流量 (ml. min-1)/心率 (跳动最小 ^-1)} x0.0001334 (j. mmmhgh-1⁾, 以及
      mL₂ (j. 跳动^-1) = {mL 2 (ml. min_- 1)/心率 (跳动. min-¹)} x20 (焦耳. ml-1)

10. 在灌注结束时从 eshp 设备中取出心脏

1. 退出工作模式。将 la 泵 rpm 变为零。
2. 将 o 泵 rpm 降低到零。
3. 取下辫子和鞘。
4. 快速删除心脏的所有附件。
5. 称量空心, 确定心肌水肿形成的程度。
6. 快速从左心室和右心室采集适当大小的组织样本, 并将其放置在最佳切割温度 (oct) 凝胶、福尔拉林和/或将其冻结在液氮中。将样品存放在-80°c 的冰柜中, 将冷冻样品存放在室温下适当密封的容器中), 以便将来进行调查 (oct 和将冷冻样品贴在-80°c 的冰柜中)。
7. 关闭该程序;所有记录的数据都将被保存。
8. 根据机构协议丢弃剩余的组织、血液、生物活性物质和使用的 eshp 仪器组件。
9. 使用消毒硬表面清洁剂 (如70% 乙醇) 彻底清洁 eshp 购物车。

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结果

在灌注开始时 (在非工作模式下), 当系统和灌注的温度接近正常时, 心脏通常会恢复窦性心律。当进入工作模式时, 当 la 压力接近所需的值时, 应观察到对 o 压力跟踪的喷射, 并应逐渐增加 la 流量 (心脏输出量的反射)。在约克郡猪模型 (35-50 公斤) 和启动心脏重量180-220 克, 最初的 la 流量将是约 2, 000 mL/min, 这通常将接近约 2, 750 mL/min 在工作模式灌注的第一个小时。

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讨论

成功灌注是根据研究的目的来定义的;但是, 这应该包括不间断的 eshp 所需的时间量和完整的收集有关心功能的数据在灌注过程中。为此, 必须遵循议定书中的几个关键步骤。

心脏是一个对氧气和能量有很高需求的器官, 最大限度地减少插管和灌注前的缺血时间是必须遵循的重要原则。采购过程、将心脏安装在 eshp 设备上以及启动灌注不应超过20-30分钟。

为...

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材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Debakey-Metzenbaum dissecting scissors	Pilling	342202
MAYO dissecting scissors	Pilling	460420
THUMB forceps	Pilling	465165
Debakey straight vascular tissue forceps	Pilling	351808
CUSHING Gutschdressing forceps	Pilling	466200
JOHNSON needle holder	Pilling	510312
DERF needle holder	Pilling	443120
Sternal saw	Stryker	6207
Sternal retractor	Pilling	341162
Vorse tubing clamp	Pilling	351377
MORRIS ascending aorta clamp	Pilling	353617
Surgical snare (tourniquet) set	Medtronic	CVR79013
2-0 SILK black 12" x 18" strands	ETHICON	A185H
3-0 PROLENE blue 18" PS-2 cutting	ETHICON	8687H
Biomedicus pump drive (modified)	Medtronic	540	Modified to allow remote electronic control of pump speed
Biomedicus pump	Maquet	BPX-80
Membrane oxigenator D 905	SORIN GROUP	50513
Tubing flow module	Transonic	Ts410
PXL clamp-on flow sensor	Transonic	ME9PXL-BL37SF
TruWave pressure transducer	Edwards	VSYPX272
Intercept tubing 3/8" x 3/32" xX 6'	Medtronic	3506
Intercept tubing 1/4" x 1/16" x 8'	Medtronic	3108
Heated/Refrigerated Bath Circulator	Grant	TX-150
ABL 800 FLEX Blood Gas Analyzer	Radiometer	989-963
DLP cardioplegia cannula (aortic root cannula)	Medtronics	20613994495406
5F Ventriculr straight pigtail cathter	CORDIS	534550S
5F AVANTI+ Sheath Introducer	CORDIS	504605A
Emerald Amplatz Guidewire	CORDIS	502571A
Dual chamber pace maker	Medtronic	5388
Defibrilltor	CodeMaster	M1722B
Infusion pump	Baxter	AS50
Surgical electrocautery device	Kls Martin	ME411
Gas mixer	SECHRIST	3500 CP-G
Medical oxygen tank	praxair	2014408
Cabon dioxide tank	praxair	5823115
Bovine serum albumin	MP biomedicals	218057791