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这里介绍了一个制造球形成像设备的协议。该设备可对癌细胞球体进行动态或纵向荧光成像。该协议还提供了一个简单的图像处理程序,用于分析癌细胞入侵。
癌细胞从原发性肿瘤侵入相邻的健康组织是转移的早期步骤。侵入性癌细胞构成重大临床挑战,因为一旦其传播开始,就不存在有效的消除方法。更好地了解调节癌细胞入侵的机制可能导致新疗法的发展。由于它们与肿瘤的生理相似性,嵌入胶原蛋白中的球形已被研究人员广泛利用,以研究癌细胞侵入细胞外基质(ECM)的机制。然而,这种检测受到(1)对球体嵌入ECM缺乏控制的限制:(2) 胶原蛋白 I 和玻璃底盘成本高,(3) 由于抗体和荧光染料的低效渗透以及 (4) 耗时的图像处理和数据量化,不可靠的免疫荧光标签。为了应对这些挑战,我们优化了三维 (3D) 球形协议,使用延时视频或纵向成像对嵌入胶原蛋白 I 中的荧光标记癌细胞进行成像,并分析癌细胞入侵情况。首先,我们描述了球形成像设备 (SID) 的制造,以可靠和最小的胶原蛋白 I 体积嵌入球体,从而降低了检测成本。接下来,我们为活体和固定球体的强荧光标记描述步骤。最后,我们提供了一个易于使用的斐济宏图像处理和数据量化。总之,这种简单的方法提供了一个可靠和负担得起的平台,以监测胶原蛋白I的癌细胞入侵。此外,此协议可以轻松修改,以满足用户的需求。
在癌症进展过程中,癌细胞可以获得一种移动和侵入性表型,使它们能够逃离肿瘤质量并侵入周围的组织1。最终,这些侵入性癌细胞可以在继发性器官内到达并生长,这个过程称为癌症转移1。转移导致超过90%的癌症相关死亡2.原因之一是,虽然局部肿瘤在临床上是可控的,但一旦发生转移性扩散,就不存在消除侵入性癌细胞的有效方法。因此,侵入性癌细胞的出现和从局部性疾病向侵入性疾病的过渡是一项重大的临床挑战。确定癌细胞如何启动和维持侵入行为可能导致新的有效疗法的发展。
3D球形模型是研究受控癌细胞的移动行为的理想平台,但生理相关条件3。事实上,在这个测定中,癌细胞的球体嵌入细胞外基质(ECM),例如胶原蛋白I,它模仿了简化的肿瘤。然后,成像用于可视化癌细胞从球体侵入胶原蛋白基质。但是,多个挑战限制了此过程。
第一个挑战发生在嵌入步骤,液体胶原蛋白矩阵可以扩散到盘面,导致球体接触菜的底部。因此,球体中的细胞扩散到二维(2D)表面,打破了三维(3D)球形形态。增加胶原蛋白的体积是一种高效但成本高昂的解决方案。为了防止细胞在二维表面扩散,同时保持最小的胶原蛋白体积,我们开发了一个球形成像设备 (SID),将一个 1 毫米厚的 3 孔聚二甲基硅烷 (PDMS) 插入....
1. 制造球形成像设备 (SID), 以优化球形嵌入 (持续时间 1 天)
由于其生物相容性,PDMS 被广泛用于限制井、邮票和模具的微压造,从而彻底改变了微模式和微流体设备。在此处描述的方法中,它用于创建 SID,可定制的井,可优化球形嵌入和成像过程。图 1说明了用于制造 SID 的主要组件。为了铸造 PDMS 模具,一个 1 毫米厚的隔板是 3D 打印(图 1A,B),放置在两个玻璃板之间,用大夹子密封。在板之?.......
3D 打印间隔器设计用于创建 1 毫米厚的 PDMS 纸张,然后可以按照实验应用的要求轻松创建各种形状的 PDMS。由于其制造的简单性和改变设计的自由度,这种 PDMS 铸造方法被选为小岛屿发展中国家的初始设计。如果需要大量 SID,则可以通过创建 3D 打印模具来提高生产效率,该模具已经包含带三个相同间隔孔的 PDMS 磁盘,并将工艺简化为一步。这将消除冲出每个磁盘以及随后的三个孔的需要,并减少.......
作者没有什么可透露的。
我们要感谢圣殿生物工程的成员进行了宝贵的讨论。我们感谢大卫安布罗斯在流细胞学核心(刘易斯卡茨医学院)的帮助细胞分拣和托尼博姆从IDES中心(工程学院,坦普尔大学)的3D打印的帮助。我们也感谢我们的资助资源:美国癌症协会研究学者格兰特134415-RSG-20-034-01-CSM,征服癌症现在/青年研究员奖,国家卫生研究院,R00 CA172360和R01 CA230777,所有BG。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 N NaOH | Honeywell Fluka | 60-014-44 | |
10X Dulbecco’s phosphate-buffered saline (PBS) | Gibco | SH30028.LS | |
16% paraformaldehyde (PFA) | Alfa Aesar | 43368-9M | |
1X Dulbecco’s phosphate-buffered saline (PBS) | Gibco | 20012027 | |
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Invitrogen | D1306 | |
48-well plate | Falcon | T1048 | |
Alexa Fluor 647 phalloidin | Life Technologies | A20006 | |
Anti cortactin antibody | Abcam | ab33333 | 1 to 200 dilution |
Anti E-cadherin antibody | Invitrogen | 13-1900 | 1 to 100 dilution |
Bovine atelocollagen I solution (Nutragen) | Advanced Biomatrix | 501050ML | |
Bovine serum albumin (BSA) | Sigma Aldrich | A4503-50G | |
CellTracker Red CMTPX Dye | Invitrogen | C34552 | |
Conical tubes | Falcon | 352095 | |
Coverslips | FisherBrand | 12-548-5E | |
Disposable container | Staples | Plastic cups | |
Disposable transfer pipette | Thermo Scientific | 202 | |
DMEM | Fisher Scientific | 11965118 | |
Double-faced tape | Scotch | ||
Ethanol | Sigma Aldrich | E7023-500ML | |
Fetal bovine serum (FBS) | Bio-Techne | S11550 | |
Fluoromount-G | eBioscience | 00-4958-02 | |
Glutaraldehyde | Sigma Aldrich | G5882-100mL | |
Hoescht nuclear stain | Thermo Fischer | 62249 | |
Isopropanol | Thermo Fischer | S25371A | |
MatTek dish (glass bottom dish) | MatTek Corporation | P35G-1.5-14-C | |
Methyl cellulose | Sigma Aldrich | M6385-100G | |
MilliQ water | |||
Penicilin/streptomycin solution | Thermo Fischer | 15140122 | |
Petri dish | Corning | 353003 | |
Pipet tips | Fisherbrand | 02-707 | |
Pipets | Gilson | F167300 | |
Poly-L-Lysine | Sigma | P8920 | |
Primary antibodies, user specific | |||
Rat Tail Collagen I | Corning | 47747-218 | |
Razor Blade | Personna | 74-0001 | |
Secondary antibodies, user specific | |||
Slides | Globe Scientific | 1354W-72 | |
Sylgard 184 Silicone | Dow Corning | 4019862 | |
Tape | Scotch | ||
Triton X100 | Sigma Aldrich | 10789704001 | |
Tween 20 | Sigma Aldrich | 655204-100ML |
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