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摘要

蛋白质结合丝状肌动蛋白通过不同的肌动蛋白结合模块(F - actin的)。在这个视频中,我们共同沉淀,这是一个经常使用的分析,结合F -肌动蛋白的蛋白质或特定域在体外实验证明肌动蛋白的过程。

摘要

细胞内的肌动蛋白细胞骨架的微丝网络,使细胞和细胞进程的运动,而产生的紧张局势,并有助于保持细胞形态。虽然肌动蛋白细胞骨架是一个刚性的结构,它是一个动态的结构,不断重塑。一些蛋白质可以结合到肌动蛋白细胞骨架。 F - actin的一种特定的蛋白质结合通常需要支持细胞生物学的观察,或进一步了解由于肌动蛋白细胞骨架重塑的动态过程。肌动蛋白共沉淀实验是在体外实验中通常用来分析特定的蛋白质或F -肌动蛋白结构域的结合。检测的基本原则,包括与F -肌动蛋白(孵化全长或域),超速离心沉淀的F -肌动蛋白和合作与F -肌动蛋白沉积的蛋白质的分析步骤。肌动蛋白的共沉淀实验可以设计相应的措施,肌动蛋白的亲和力和竞争分析。

研究方案

1。肌动蛋白的制备

在这个实验中使用的肌动蛋白的来源是从骨架公司股票在10毫克/毫升-70℃冷冻保存等分获得的非肌肉的人血小板(β-肌动蛋白)。肌动蛋白检测,稀释至0.4毫克/毫升含有5毫米的Tris pH值8, 氯化钙 0.2毫米,0.2毫米ATP和0.5毫米的DTT,4℃离心10分钟,在20000克的缓冲上清,这是单体肌动蛋白聚合。另外50 mM的氯化钾,1毫米的ATP和2毫米MgCl 2的诱导肌动蛋白聚合。在室温下发生聚合1小时。

2。蛋白质的制备

在这个实验中,我们使用的塔林,已作为一个GST标签的蛋白质纯化的C -末端。在实验中使用的蛋白质是经过高速离心聚合前明确孵化前F -肌动蛋白。
纺在贝克曼超速离心机在10万克的蛋白质是在22 ° C 20分钟

3。肌动蛋白的蛋白质孵化

在检测肌动蛋白和蛋白的数量会有所不同。在这个例子中,我们使用的是多余的肌动蛋白。通常情况下,摩尔比计算,例如。 4:1的摩尔比的肌动蛋白的蛋白质。

在下面的实验,最终反应体积为150μL。其中的蛋白质和F -肌动蛋白孵育的缓冲区,将取决于要测试的蛋白质和所需的条件。在这个例子中,我们使用了一个缓冲区,其中包含10毫米的Tris pH值7.0,1 mM的ATP,0.2毫米数码地面电视,EGTA 1毫米,0.1毫米氯化钙和氯化镁2 2毫米。蛋白质和F -肌动蛋白孵育在室温下1小时的缓冲。

4。 F -肌动蛋白的沉淀

潜伏期之后,纺100,000克样品,在22 ° C。我们使用视频贝克曼超速离心机。转子小心取下,以免干扰颗粒。

5。与F -肌动蛋白的蛋白质共同沉淀分析

上清液小心删除到Eppendorf管和5 × Laemmli的SDS - PAGE样品缓冲液吹打。一个适当的量是1 + X Laemmli的SDS - PAGE样品缓冲液加入到剩余的微丸,吸管上下,并转移到新的Eppendorf管中。他们SDS - PAGE和考马斯亮蓝染色的凝胶或免疫印迹分离后,颗粒和上清液中蛋白质的相对含量进行了分析。

为了确定蛋白质相互作用的特殊性,肌动蛋白与肌动蛋白浓度依赖的合作sedimentations可以执行。对于这种实验中,固定数额的蛋白质和肌动蛋白的数量不断增加的一系列培养,并进行分析如上所述。

讨论

肌动蛋白共沉淀是一个简单分析F -肌动蛋白结合specfic蛋白在体外试验。在这个视频中,我们展示了一个简单的肌动蛋白可以进行合作沉淀的一个例子。我们将展示如何准备F -肌动蛋白,准备要测试的蛋白和肌动蛋白的共同沉淀的过程。开展肌动蛋白共同沉淀分析时应该考虑的若干要点。例如,孵化缓冲组件可以进行测试,pH值,温度和盐的浓度可能会影响到F -肌动蛋白结合蛋白的不同而有所不同。我们已经证明?...

致谢

感谢您在惠特曼在加州大学旧金山分校的实验室Praveen库马尔博士在HaCaT细胞中的肌动蛋白的电影。

参考文献

  1. Senetar, M. A., Foster, S. J., McCann, R. O. Intrasteric inhibition mediates the interaction of the I/LWEQ module proteins Talin1, Talin2, Hip1, and Hip12 with actin. Biochemistry. 14, 15418-15428 (2004).
  2. Goldmann, W. H., Hess, D., Isenberg, G. The effect of intact talin and talin tail fragment on actin filament dynamics and structure depends on pH and ionic strength. Eur J Biochem. 260, 439-445 (1999).
  3. Lee, H., Bellin, R. M., Walker, D. L., Patel, B., Powers, P., Liu, H., Garcia-Alvarez, B., de Pereda, J., Liddington, R. C., Volkmann, N., Hanein, D., Critchley, D. R., Robson, R. M. Characterization of an Actin-binding Site within the Talin FERM Domain. J Mol Biol. 22, 771-784 (2004).

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