该方法有助于回答在制备标有RGD-肽的Gallium 68中的关键问题,以及其模拟的生物评价方法。该技术的主要优点是,它是开发一种新的放射性金属标记肽的简单系统协议。演示这个程序的将是Ki-HyeJung,一个来自我们研究所的博士后。
首先使用0.5摩尔盐酸从放射性标记三氯化铀从放射性标记三氯酸。在80摄氏度下用氮气在5毫升反应小瓶中清除化合物。其次是在一个摩尔醋酸钠中加入100微克的醋酸精氨酸或RGD肽。
将反应混合物在80摄氏度下加热5分钟,然后让混合物冷却至室温。要使用高性能液相色谱来净化粗制氧产品,请将溶液添加到 C18 柱中,然后通过 C18 反相带墨盒传递溶液。用两毫升盐水清洗墨盒,用0.7毫升95%乙醇洗除放射性标记肽,随后在氮气下80摄氏度下去除溶剂20分钟。
重组PBS中纯化肽,并通过无菌0.22微米无菌滤株过滤放射性标记产品。在一毫升无菌盐水溶液中配制肽,将一微升肽溶液点到即时薄层色谱板上。然后,在含有水 0.1 摩尔柠檬酸的腔室中开发板,直到距离该点 9 厘米,以确定放射性化学产量。
为了评估肽体内细胞吸收情况,在六孔板中每口10至6个人类胶质母细胞瘤细胞,每井111千克奎雷,每孔37摄氏度,三升30、60、90或120分钟。在孵育结束时,每次洗涤用两毫升 PBS 洗井两次,并在 37 摄氏度的 PBS 中用 0.25% Trypsin 和 0.02% EDTA 收获细胞,在 37 摄氏度内洗涤 3 到 5 分钟。然后,将每个井中的细胞转移到15毫升锥形管中,以测量伽马计数器上的放射性标记肽吸收。
为了评估放射性标记的RGD-肽的血清稳定性,添加500微升新鲜制备的小鼠血清、500微升的人类血清和500微升PBS到每个样品的50微升,并在37摄氏度下孵育混合物长达两个小时。然后,在30、60、90和120分钟的孵育后,将每个样品的1至2微升发现到一个即时薄层色谱板上,并如所示,开发这些板。要确定肽的嗜脂性,在八进制PBS系统中加入10微升放射性标记RGD肽,并在室温下慷慨地混合小瓶5分钟。
然后通过离心收集肽,从每层收集100微升样品,用伽马计数器进行测量。为了生成放射性标记的肿瘤模型,将 PBS 100 微升中第 5 个人类胶质母细胞瘤细胞加载到半英寸胰岛素注射器中,每只 BALB/c 裸体小鼠配备 28 量针进行注射,然后将肿瘤细胞皮下送到每个接受者的左侧。对于通过正电子发射断层扫描(PET)对肽进行体内定量,将头部的肿瘤携带、麻醉小鼠放入PET龙门,并在列表模式下通过尾静脉将200微升PBS的放射性标记RGD肽溶液静脉注射到每个异种移植小鼠模型中,通过尾静脉进行一分钟。
在活体外生物分布分析中,在200微升PBS中注射0.37兆基放射性标记RGD肽,注射到异种移植的肿瘤动物的尾静脉中,并在注射后30分钟、60分钟、90分钟和120分钟收获感兴趣的组织。然后称量组织,用伽马计数器测量其放射性。溷合后,反应杂质可以通过高性能液相色谱成功去除,如所证明的。
放射性标记的RGD肽的放射性化学纯度大于99%,在合成结束时,每纳米90至130兆贝奎尔之间的特定活性可以达到。PET 分析表明,主要器官(包括肝脏、肾脏、心脏、肌肉)以及肿瘤内的初始吸收率很高。在分析的后期阶段,肿瘤区域可以清晰可视化,肿瘤与肌肉的比例保持不变,表明肽的动力学稳定性。
前体内生物分布分析显示,肿瘤中累积的放射性随时间而减少,如预期中体内PET的发现。在尝试这一程序时,重要的是要记住,虽然我们的方法不能取代微妙的生物评估过程,但它可以大大地用于使用传统药物开发做法的时间和成本。不要忘记,使用放射性物质可能非常危险,并应采取预防措施,例如在执行这些程序时,应始终使用适当的防护设备,如个人剂量计和热致发光剂量计。