Method Article
Wir zeigen, intraperitoneale Injektion in das Erwachsenenleben Zebrafisch. Wir verwenden eine 10 ul Nanofil Mikrospritze durch eine Micro4 Controller und UltraMicroPump III geregelt. Diese Demonstration umfasst den Einsatz von kaltem Wasser als Betäubungsmittel.
Ein praktisches Verfahren zur chemischen Behandlung von Zebrafisch ist das Reagens in den Tank Wasser, wo sie von den Fischen genommen wird eingeführt. Allerdings macht diese Methode ist es schwierig zu wissen, wie viel Reagenz absorbiert wird oder bis pro Fisch entnommen. Einige experimentelle Fragen, insbesondere im Zusammenhang mit metabolischen Studien kann besser durch die Bereitstellung einer definierten Menge zu jedem Fisch, auf das Gewicht angesprochen werden. Hier präsentieren wir eine Methode für die intraperitoneale (ip) Injektion in das Erwachsenenleben Zebrafisch. Injection in die Bauchhöhle, hinter dem Beckengürtel. Dieses Verfahren wird von veterinärmedizinischen Methoden für größere Fische abgestimmt sind. Es ist sicher, wie wir Null-Mortalität beobachtet haben. Zusätzlich haben wir gesehen, Blutungen an der Injektionsstelle in nur 5 von 127 Injektionen, und in jedem dieser Fälle die Blutung war kurz, mehrere Sekunden dauert, und die Menge Blut verloren war klein. Erfolg mit diesem Verfahren erfordert schonende Behandlung der Fische in mehreren Schritten einschließlich Fasten, Wäge-, Anästhesie, Einspritzung und Erholung. Vorsichtsmaßnahmen sind erforderlich, um Stress während des gesamten Verfahrens zu minimieren. Unsere Vorsichtsmaßnahmen gehören mit einem kleinen Injektionsvolumen und eine 35G Nadel. Wir verwenden Cortland Salzlösung als das Fahrzeug, das osmotisch für Süßwasserfische ist ausgewogen. Die Belüftung der Kiemen während der Injektion durch erste bringt die Fische in eine chirurgische Ebene der Anästhesie, die langsamen Bewegungen Operculum erlaubt gehalten, und zweitens, indem die Fische in einer Wanne in einem mit Wasser gesättigten Schwamm während der Injektion selber. Wir demonstrieren den Nutzen von IP Injektion durch die Injektion von Glucose und Überwachung der Anstieg des Blutzuckerspiegels und die anschließende Rückkehr zur Normalität. Wie Stress ist bekannt, dass Blutzucker in Knochenfische erhöhen, vergleichen wir den Blutzuckerspiegel in Fahrzeug-Injektion und nicht gespritzt Erwachsene und zeigen, dass das Verfahren nicht zu einem signifikanten Anstieg des Blutzuckerspiegels.
1. Pre-Injektion Vorbereitungen
2. Anästhesie, Injection und Recovery
3. Repräsentative Ergebnisse:
Abbildung 1. Repräsentative Ergebnisse nach intraperitonealer Injektion von 0,5 mg / g Glucose oder Fahrzeug. Die Fische wurden für 72 Stunden vor der Injektion gefastet. Die x-Achse zeigt die Zeit, nach der Injektion. Mittelwert ± SEM.
Intraperitoneale Injektion erfolgt in fünf Schritten: Fasten, Wäge-, Anästhesie, Einspritzung und Erholung. Für jeden Schritt gibt es Best Practices, die den Erfolg sicherstellen können. Success beinhaltet eine gesunde Fische Patienten sowie eine gute experimentelle Ergebnis.
Fasten: Ein 24-stündigem Fasten sollte der Darm leer Glühbirne. Diese Praxis ist aus dem Fisch veterinärmedizinischen Literatur (zB Brown 1993) übernommen. Zusätzliche Fasten Überlegungen werden im Folgenden erörtert.
Längerfristige Fasten: Wir haben festgestellt, dass ein 72-stündigem Fasten erforderlich ist, um den Blutzucker zu einem Basisniveau vor der Injektion zu verringern (Eames et al, 2010.). Wir haben auch festgestellt, dass für die Glucose-Studien gibt es mehrere Verfahren, die erforderlich sind, um sicherzustellen, dass die Fische richtig gefastet werden. Beginnen Sie mit einem sauberen Behälter (kein Schmutz auf der Unterseite). Tanks sollten offline, klar als "Fasten" bezeichnet und in einem Ort, wo begeisterte Fisch Pflegepersonal nicht zu füttern. Beurteilen Sie die äußere Umgebung des Tanks und Schritte unternehmen, um den Fisch ins von Störungen betonte verhindern, denn Stress ist bekannt, Blutzucker (Chavin und Young, 1970.; Groff et al, 1999) zu erhöhen. Zum Beispiel hatten wir ein Fasten Experiment, in dem ein Radio täglich auf der Bank, die halten den Fischbecken wurde betrieben wurde. Wir fanden, dass Blutzucker war ungewöhnlich hoch und festgestellt, dass die Fische durch die Vibrationen wurden betont. Ein weiterer Stressfaktor ist Überbelegung. Fische sollten in einer Dichte, die mit guten Fisch Tierhaltung entspricht gehalten werden. Für Empfehlungen, siehe Brand et al. (2002) und Westerfield (1995). Wir haben gute Ergebnisse Fasten unsere Fische bei einer Dichte von 10-12 Fische in einem 9-Liter-Tank (mit 3 Schichten von Marmor nimmt einige dieser Lautstärke) hatte. Die Trennung der Geschlechter kann Stress verursachen, so dass wir empfehlen, einen Mixed-sex Bevölkerung während des Fastens. Dies bedeutet, dass Eier gelegt werden können, und die Eier müssen abgesondert, so dass sie nicht gegessen werden. Ein einfacher Weg, um Eier absondern zu den Tankboden mit 2-3 Lagen von Kugeln zu decken. Die Wasserqualität muss durch die Beseitigung Eier und Abfall und durch den Austausch etwa 10-15% des Beckenwassers, täglich gepflegt werden. Zum Entfernen von Eiern und Abfall, Siphon funktioniert gut.
Wiegen: Bei der Abwägung Fische, die nicht betäubt, sollte darauf geachtet werden, um Wasser zu übertragen aus dem Netz zu minimieren und in das Becherglas, um genaue Gewicht zu gewährleisten. Wenn das Netz (mit Fisch) auf Küchenpapier abgetupft wird, kann die Mehrheit der überschüssiges Wasser entfernt werden, und das Gewicht genau gemessen werden kann. Es kann einfacher sein, um die Fische vor dem Wiegen zu betäuben, aber wir haben nicht die möglichen Auswirkungen der Anästhesie ein Fisch zweimal an einem Tag getestet. Wir haben unsere Technik durch Wiegen der Fische zuerst mit dem Netting / Blot-Methode und dann wieder den Fisch wiegt, nachdem es wurde betäubt getestet und sanft trocken getupft. Wir fanden keinen signifikanten Unterschied im Gewicht zwischen den Methoden (P = 0,7927, t-Test). Darüber hinaus haben wir getestet, ob das Netzwerk / Blotting-Verfahren betroffen Blutzucker im Vergleich zu lediglich die Übertragung der Fische in den Becher so schnell wie es saldiert (kein Löschpapier). Wir fanden keinen signifikanten Unterschied in Blutzuckerspiegel zwischen den beiden Methoden der Übertragung (P = 0,2241, t-Test).
Betäubende: Chemische Anästhesie kann für viele Studien. Hier haben wir kaltes Wasser Anästhesie als Alternative gezeigt, weil viele Anästhetika (einschließlich tricaine/MS-222 (Brown, 1993)), den Blutzuckerspiegel erhöhen. In früheren Studien haben wir festgestellt, dass kaltes Wasser nicht den Blutzuckerspiegel erhöhen im Zebrafisch (Eames et al., 2010).
Für Kaltwasser Anästhesie, sollte die Temperatur langsam gesenkt werden. Die Rate der Abnahme scheint sich auf die Größe des Fisches ab, wobei kleinere Fische gehen unter schneller als größere Fische. Nach der Injektion, können Sie beobachten, dass der Fisch ist zu langsam erholt sich von der Narkose (siehe unten). Dies kann auftreten, wenn entweder die Starttemperatur zu niedrig ist, oder wenn die Temperatur zu schnell abnimmt. Der Ausgangspunkt ist zu niedrig, wenn die Fische Kurven seitlich beim Betreten des Wassers. Wenn die Starttemperatur korrekt ist, wird der Fisch aus dem Gleichgewicht zunächst aufrecht zu erhalten. Sie wird ihre Brustflossen in eine horizontale Position drehen, Keuchen, und haben eine schnelle Operculum Bewegungen. In der Regel wird es schwimmen. Da die Temperatur abnimmt, wird Bewegungen zu verringern und die Fische werden das Gleichgewicht zu verlieren. Ein chirurgischer Ebene der Anästhesie ist erreicht, wenn die Fische ohne Reaktion behandelt werden kann. Um die Fische unter Narkose, müssen Sie Ihre Finger kalt werden, so halten sie in dem Wasser vor dem Umgang mit dem Fisch. Der Schwamm muss auch kalt gehalten werden bei der gleichen Temperatur wie das Wasser für die Betäubung der Fische benutzt. Es ist wichtig, um den Schwamm mit Wasser, das sufficie ist gesättigtntly kalt Narkose zu halten, wenn die Fische auf sie gelegt wird.
Injection: Vor der Durchführung von Injektionen, möchten Sie vielleicht wenigstens ein Fisch sezieren, um ein Gefühl für Körper Wandstärke bekommen. Dies kann Ihnen helfen zu beurteilen, wie weit die Nadel muss einfügen, um die Bauchhöhle gelangen. Darüber, wie man die Nadel legen, können Sie sich die Wand des Körpers "geben", wenn die Nadel in die Bauchhöhle. Während der Injektion Schritte, damit die Patienten zufrieden. Achten Sie darauf, den Schwamm mit der richtigen Temperatur kaltes Wasser gesättigt ist, um die Fische aus Wiederbelebung während der Injektion zu verhindern. Ein gut gesättigt und weichen Schwamm ist zur Minimierung der Schäden an der Waage und Schleim Abdeckung der Haut wichtig. Ein gut gesättigten Schwamm ist auch für die Führung der Kiemen belüftet wichtig. Wir empfehlen den Schaum Schwamm unten unter Materialien aufgeführt. Schließlich, sobald der Fisch betäubt, schnell zu arbeiten, um die Zeit, dass die Fische unter sich zu minimieren.
Recovery: Die Fische sollten aus der Narkose praktisch beim Eintritt in die warme Beckenwasser zu erholen. Wenn der Fisch beginnt nicht schwimmen sofort vorsichtig schwenken, das Wasser zu den Kiemen zur Erholung beschleunigen. Wenn die Wiederherstellung langsam ist, dann den Fisch ging unter viel zu schnell und Sie sollten die Anästhesieverfahren entsprechend anpassen. Die möglichen Ursachen für die langsame Erholung sind unter Betäubung diskutiert.
Diese Studie wurde von Juvenile Diabetes Research Foundation zu gewähren 5-2007-97 (zum VEP), National Institute of Diabetes and Digestive und Nierenkrankheiten unterstützt gewährt R01DK064973 (zum VEP), R01DK48494 (bis LHP), T32DK07074 (unterstützt SCE), K01DK083552 (zu MDK) und durch P60DK20595 an die University of Chicago Diabetes Research and Training Center. Der Inhalt ist ausschließlich in der Verantwortung der Autoren und stellen nicht notwendigerweise die offizielle Meinung der NIDDK oder die NIH.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Foam Sponge | Jaece Industries | L800-D | |
60 mm Petri dish | |||
Pipet tip box lid | not too deep, e.g. 1.5 cm | ||
Plastic storage container | deep, e.g. 7 cm | ||
Thermometer | |||
Crushed ice | made from facility water | ||
Warm facility water | 1 liter or more | ||
500 ml beaker | for weighing | ||
NanoFil syringe | World Precision Instruments, Inc. | NANOFIL | or Hamilton syringe |
35 gauge needle | World Precision Instruments, Inc. | NF35BV-2 | beveled |
Silflex tubing | World Precision Instruments, Inc. | SILFLEX-2 | |
UltraMicroPump III and Micro4 controller | World Precision Instruments, Inc. | UMPS-1 | |
Foot switch | World Precision Instruments, Inc. | 15867 | |
Dissecting microscope | |||
Plastic wrap | |||
Paper towels | |||
Cortland salt solution |
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