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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

In der vorliegenden Studie wurde ein einzigartiger Mechanismus identifiziert, durch den Salidrosid mitochondriale Schutzwirkungen auf hypoxische HT22-Zellen ausübt, teilweise über den AMPK/Sirt1/HIF-1α-Signalweg.

Zusammenfassung

Es wurde festgestellt, dass Salidrosid (Sal), ein Wirkstoff von Rhodiola crenulata (Hook. f. et Thoms.) H. Ohba, mitochondriale Schutzwirkungen ausübt, indem er den Stoffwechsel verbessert und die Energieversorgung der Gehirnzellen unter hypoxischen Bedingungen erhöht. Der Wirkmechanismus ist jedoch noch nicht vollständig geklärt. In der vorliegenden Studie wurde zunächst die Hochleistungsflüssigkeitschromatographie eingesetzt, um die Auswirkungen von Sal auf die Nukleotidspiegel (ATP, ADP und AMP) zu analysieren. Der Cellular Thermal Shift Assay (CETSA), eine weit verbreitete molekulare Interaktionsmethode zur Validierung und Quantifizierung der Wirkstoffzielbindung in Zellen und Geweben verschiedener Spezies, wurde dann ausgewählt, um die Affinität von Sal zu Proteinen zu bestätigen, die mit dem AMPK/Sirt1/HIF-1α-Signalweg in Verbindung stehen. Die Ergebnisse zeigten, dass Sal die ATP- und ADP-Spiegel in hypoxischen HT22-Zellen erhöhte, während es die AMP-Spiegel senkte. Darüber hinaus zeigte Sal eine stabile Bindung an AMPKα-, p-AMPKα-, Sirt1- und HIF-1α-Proteine. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass Sal mitochondriale Schutzwirkungen ausüben kann, indem es den AMPK/Sirt1/HIF-1α-Signalweg moduliert, um den Nukleotidgehalt zu regulieren. Diese Studie stellt eine methodische Referenz für die Analyse des Nukleotidgehalts in Zellproben dar und trägt zur Identifizierung und Entdeckung von Angriffspunkten für Verbindungen aus der traditionellen chinesischen Medizin bei.

Einleitung

Das Gehirn reagiert aufgrund seines hohen Stoffwechselbedarfs, seiner begrenzten glykolytischen Kapazität und seiner Abhängigkeit von oxidativer Phosphorylierung sehr empfindlich auf Sauerstoff. Infolgedessen kann die Exposition gegenüber einer sauerstoffarmen Umgebung in großen Höhen leicht zu einer hypobaren hypoxischen Hirnschädigung (HHBI) führen1,2. Epidemiologische Studien deuten darauf hin, dass die Inzidenz der akuten Bergkrankheit bis zu 75 % erreichen kann, wenn Personen, die nicht an große Höhen gewöhnt sind, schnell in hochgelegene Regionen aufsteigen, mit einer Sterblichkeitsrate von etwa 1 % für schwere Fälle. Darüber hinaus kann die Sterblichkeitsrate bei Hirn- oder Lungenödemen in großer Höhe bei bis zu 40 % liegen, wenn keine medizinische Versorgung vorhanden ist3,4.

Die HHBI zeigt ein breites Spektrum an klinischen Symptomen. Leichte bis mittelschwere Fälle können Kopfschmerzen, Schwindel und Gedächtnisverlust umfassen5, während schwere Fälle zu kognitiven Beeinträchtigungen, Bewusstseinsstörungen und potenziell tödlichen Ergebnissen führen können5. Die Prävention und Behandlung von HHBI in hochgelegenen Regionen ist zu einem Schwerpunkt der medizinischen Forschung geworden. Präventive Strategien umfassen in erster Linie adaptives Training in Höhenumgebungen, einschließlich ausreichender Ruhe, ausgewogener Ernährung, richtiger Ernährung und angemessener körperlicher Bewegung 6,7. Darüber hinaus stehen pharmakologische Interventionen zum Schutz der Gehirnzellen und zur Linderung der zerebralen Hypoxie im Mittelpunkt der aktuellen HHBI-Forschung.

Mitochondrien dienen als primäre Energieproduktionszentren in den Zellen und synthetisieren Adenosintriphosphat (ATP), um den zellulären Energiebedarf zu decken. Unter hypoxischen Bedingungen nimmt die mitochondriale Energieproduktion ab, was zu einem verringerten ATP-Spiegel und einer Beeinträchtigung der Zellfunktion führt8. Die hypoxische Schädigung stört auch die mitochondriale Regulation von Ca2+ und der pH-Homöostase und löst Apoptose und Nekroseaus 9,10. Es besteht eine sich gegenseitig verstärkende Beziehung zwischen mitochondrialer Dysfunktion und hypoxischer Hirnverletzung. Einerseits verschlimmert die durch Hypoxie induzierte mitochondriale Beeinträchtigung den Sauerstoffmangel, indem sie den zellulären Energiestoffwechsel weiter reduziert und einen Teufelskreis erzeugt. Auf der anderen Seite erhöht die mitochondriale Dysfunktion den intrazellulären Ca2+-Spiegel, aktiviert apoptotische Kaskaden und führt zum Zelltod11. Obwohl die Mechanismen, die der hypoxischen Hirnschädigung zugrunde liegen, nach wie vor komplex und nicht vollständig verstanden sind, haben mehrere Studien einen gestörten neuronalen mitochondrialen Energiestoffwechsel als kritischen Faktor für ihre Pathogenese identifiziert12,13. Daher kann die weitere Erforschung der mitochondrialen Funktion wertvolle Einblicke in potenzielle therapeutische Ziele für hypoxische Hirnverletzungen liefern.

Salidrosid (Sal) ist ein Wirkstoff, der aus der Plateaupflanze Rhodiola crenulata (Hook. f. et Thoms.) H. Ohba gewonnen wird und häufig in Lebensmitteln, Gesundheitsprodukten und Pharmazeutika verwendetwird 14. Die Summenformel von Sal lautet C14H20O7 und ist auch als 2-(4-Hydroxyphenyl)-ethyl β-D-glucopyranosid bekannt. Es besitzt verschiedene pharmakologische Eigenschaften, darunter Anti-Hypoxie, Antioxidans, Anti-Müdigkeit, Anti-Tumor, immunmodulatorische, entzündungshemmende sowie kardiovaskuläre und zerebrovaskuläre Schutzwirkungen 15,16,17. Unter diesen ist seine Anti-Hypoxie-Wirkung eine der am besten dokumentierten. Neuere Studien haben zunehmend die signifikante mitochondriale Schutzwirkung von Sal als potenziellen Mechanismus für seine präventive und therapeutische Wirkung auf Plateau-induzierte Hirnverletzungen bei Mäusen hervorgehoben14,18. Die genauen molekularen Mechanismen, durch die Sal die ATP-, ADP- und AMP-Spiegel beeinflusst, sind jedoch nach wie vor wenig verstanden.

Die AMP-aktivierte Proteinkinase (AMPK) fungiert als wichtiger Energiesensor, der zur Aufrechterhaltung der zellulären Energiehomöostase beiträgt. Die Aktivierung von AMPK stimuliert Sirtuin 1 (Sirt1), was zu einem Anstieg des intrazellulären NAD+-Spiegels führt19. Studien haben gezeigt, dass Sirt1 den Hypoxie-induzierbaren Faktor 1-alpha (HIF-1α) regulieren kann, um die zelluläre Reaktion auf Hypoxie20 zu koordinieren. Frühere Forschungen haben gezeigt, dass Sal die Öffnung der neuronalen mitochondrialen Permeabilitätsübergangspore hemmt, HIF-1α-vermittelte mitochondriale Energieprozesse reguliert, die neuronale Apoptose abschwächt und die Integrität der Blut-Hirn-Schranke aufrechterhält, wodurch Ratten vor plateauinduzierten Hirnschäden geschütztwerden 14,21. Die Wirkung von Sal auf ATP und seine Metaboliten ADP und AMP bleibt jedoch ungewiss.

Um dies zu untersuchen, wurde zunächst die Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) eingesetzt, um die Spiegel dieser drei Nukleotide zu quantifizieren. Darüber hinaus wurde der Cellular Thermal Shift Assay (CETSA) eingesetzt, eine weit verbreitete biophysikalische Technik, die 2013 eingeführt wurde, um Liganden-Protein-Wechselwirkungen in intakten Zellenzu untersuchen 22. Diese Methode wird häufig eingesetzt, um die Wirkstoff-Ziel-Bindung in Zellen und Geweben verschiedener Spezies zu validieren und zu quantifizieren. Insbesondere nach der Co-Inkubation von Zielzelllysaten mit dem Wirkstoff bei unterschiedlichen Temperaturen für eine festgelegte Dauer weist das wirkstoffgebundene Protein eine erhöhte thermische Stabilität auf, wodurch es weniger anfällig für Denaturierung und Ausfällung ist. Die gefällten ungebundenen Proteine werden dann durch Zentrifugation entfernt, und anschließend werden Wirkstoff-Ziel-Wechselwirkungen durch Western-Blot-Analyse des Überstands22 identifiziert. Um potenzielle molekulare Ziele von Sal zu identifizieren, wurde CETSA ausgewählt, um seine Bindungsaffinität mit Proteinen, die mit dem AMPK/Sirt1/HIF-1α-Signalweg in Verbindung stehen, zu bewerten.

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Protokoll

Die kommerziellen Details der Reagenzien und der in dieser Studie verwendeten Geräte sind in der Materialtabelle aufgeführt.

1. Vorbereitung der Lösung

  1. Bereiten Sie das komplette modifizierte Eagle-Medium (DMEM) von Dulbecco zu, indem Sie 10 % fötales Rinderserum und 1 % Penicillin-Streptomycin hinzufügen.
  2. Bereiten Sie eine 20 mM Sal-Lösung vor, indem Sie 3 mg Sal in 500 μl phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) auflösen21.
  3. 500 mL chromatographisch reines Acetonitril (mobile Phase A) mit einer 0,45 μm organischen Membran filtrieren.
  4. Bereiten Sie 1000 mL der mobilen Phase B vor, indem Sie 3,5 mL Reagenz I zu 1 l deionisiertem Wasser hinzufügen. Stellen Sie den pH-Wert mit Reagenz II auf 6,15 ein und befolgen Sie dabei die Anweisungen des Assay-Kits für den Nukleotidgehalt (ATP, ADP und AMP) (siehe Materialtabelle).
    HINWEIS: Reagenz I und Reagenz II sind im Assay-Kit für den Nukleotidgehalt (ATP, ADP und AMP) enthalten.
  5. Filtrieren Sie die mobile Phase B mit einer 0,22 μm wässrigen Membran.
    HINWEIS: Mobile Phase B sollte sofort nach der Zubereitung verwendet werden. Die mobilen Phasen A und B sollten vor der Verwendung 30 Minuten lang beschallt werden, um Luftblasen zu entfernen.
  6. Verdünnen Sie eine 1 μM ATP-, ADP- und AMP-Standardlösung mit deionisiertem Wasser, um Standardlösungen der Serien 0,5 μM, 0,1 μM, 0,05 μM, 0,01 μM und 0,005 μM ATP, ADP und AMP zu erhalten.
  7. Filtrieren Sie die Serie der Standardlösungen mit einer 0,22 μm nadelförmigen mikroporösen Filtermembran.
    HINWEIS: Für die Lagerung der serienmäßigen Standardlösungen sollten braune Injektionsflaschen verwendet werden. Die vorbereitete Serie von Standardlösungen sollte so schnell wie möglich verwendet werden.

2. Zellkultur

HINWEIS: Die HT22-Zellkultur und das CoCl 2-stimulierte Hypoxiemodell wurden gemäß einem früheren Berichtetabliert 21.

  1. Kultivieren Sie HT22-Zellen bei 37 °C mit 5 % CO2 , bis eine Konfluenz von 80 % in der Petrischale erreicht ist. Verdauen Sie die Zellen mit 0,25% Trypsin für 1 min.
  2. Seed 2 × 105 Zellen aus Schritt 2.1 in 6-Well-Platten mit vollständigem DMEM (Kontrollgruppe ohne medikamentöse Behandlung) oder vollständigem DMEM, das das Medikament enthält (250 μM CoCl2, 250 μM CoCl2 + 10 μM Dor, 250 μM CoCl2 + 20 μM Sal und 250 μM CoCl2 + 10 μM Dor + 20 μM Sal). 24 h bei 37 °C mit 5 % CO2 inkubieren.
    HINWEIS: In jeder Gruppe wurden drei parallele Stichproben eingerichtet.

3. Assay des Nukleotidgehalts (ATP, ADP und AMP)

  1. Geben Sie 1 ml Extraktionsreagenz I in jede Vertiefung in den 6-Well-Platten aus Schritt 2.2.
    HINWEIS: Das Extraktionsreagenz I ist im Assay-Kit für den Nukleotidgehalt (ATP, ADP und AMP) enthalten (siehe Materialtabelle).
  2. Lysieren Sie die Zellen durch Beschallung in einem Eisbad mit einem Ultraschall-Zellaufschlussgerät (Leistung: 300 W, Ultraschallwellen für 3 s, 7 s Intervall, Gesamtzeit: 3 min).
  3. Die lysierten Zellen werden bei 10.304 × g für 10 min bei 4 °C mit einer gekühlten Hochgeschwindigkeitszentrifuge zentrifugiert.
  4. 0,75 mL Überstand aus Schritt 3.3 in ein 2,0 mL Röhrchen überführen. 0,75 mL Extraktionsreagenz II zugeben, schütteln und mit einem Vortex-Mischer mischen und erneut bei 10.304 × g für 10 min bei 4 °C zentrifugieren.
    HINWEIS: Das Extraktionsreagenz II ist im Assay-Kit für den Nukleotidgehalt (ATP, ADP und AMP) enthalten.
  5. Der Überstand aus Schritt 3.4 wird pipettiert und mit einer mikroporösen 0,22-μm-Nadelfiltermembran in ein braunes Fläschchen filtriert.
    HINWEIS: ATP, ADP und AMP in der extrahierten Probe sind nicht stabil. Alle experimentellen Eingriffe sollten bei niedrigen Temperaturen oder auf Eis durchgeführt werden. Die Proben sollten so schnell wie möglich verarbeitet und getestet werden.
  6. Öffnen Sie die Chromatographie-Software und stellen Sie die folgenden Parameter ein: Injektionsvolumen: 10 μL; Temperatur der Säule: 27 °C; Durchflussrate: 0,8 mL/min; Detektionswellenlänge: 254 nm; Dauer der Detektion: 70 min. Stellen Sie das Verfahren für die Gradientenelution gemäß Tabelle 1 ein.
  7. Klicken Sie auf die Schaltfläche Ausführen , um die Probe automatisch zu injizieren und den Gehalt an ATP, ADP und AMP in seriellen Standardlösungen (Schritt 1.7) und Probenlösungen (Schritt 3.5) gemäß dem in Schritt 3.6 eingestellten Programm zu ermitteln.
    HINWEIS: Waschen Sie die chromatographische Säule am Ende des Experiments mit 98 % mobiler Phase B, um ein Verstopfen zu vermeiden.
  8. Zeichnen Sie die Standardkurven von ATP, ADP und AMP mithilfe von Grafik- und statistischer Analysesoftware mit seriellen Standardkonzentrationen auf der x-Achse und Peakbereichen auf der y-Achse.
  9. Berechnen Sie den ATP-, ADP- und AMP-Gehalt in den Proben mit der Standardkurvengleichung aus Schritt 3.8.

4. Zellulärer thermischer Shift-Assay (CETSA)

  1. Normale HT22-Zellen werden 20 Minuten lang in einer Petrischale mit Proteasehemmer-haltigem Lysat (Lysat: Proteasehemmer = 100:1) durch wiederholtes Pipettieren der Zellen lysiert.
    HINWEIS: Führen Sie diesen Schritt in einem Eisbad durch, um einen Proteinabbau zu verhindern.
  2. Sammeln Sie das Zelllysat aus Schritt 4.1 und beschallen Sie es in einem Eisbad mit einem Ultraschall-Zellaufschlussgerät (Leistung: 300 W, Ultraschallwellen für 3 s, 7 s Intervall, Gesamtzeit: 3 min). Bei 10.304 × g, 4 °C für 20 min zentrifugieren und den Überstand auffangen.
    HINWEIS: Teilen Sie den Überstand in 14 Portionen auf: 7 Gruppen für die Koinkubation mit Sal und 7 Gruppen für die Koinkubation mit PBS als Kontrolle. Für die Sal-behandelte Gruppe sind 100 μl Überstand und 0,1 μl 20 μM Sal pro Probe zuzugeben. Für die Kontrollgruppe werden 100 μl Überstand und 0,1 μl PBS pro Probe zugegeben.
  3. Inkubieren Sie jede Probe 30 Minuten lang bei Raumtemperatur und dann weiter bei 37 °C, 42 °C, 47 °C, 52 °C, 57 °C, 62 °C und 67 °C für 3 Minuten mit einem Heiztemperaturkontrollgerät aus Metall.
  4. Die Proben aus Schritt 4.3 werden bei 10.304 × g für 20 min bei 4 ΰC zentrifugiert und der Überstand mit einer Pipette entnommen.
  5. Die Gesamtproteinkonzentration des Überstands aus Schritt 4.4 ist mit einem BCA-Proteinkonzentrationsassay-Kit gemäß den Anweisungen des Herstellers zu messen (siehe Materialtabelle).
  6. Bereiten Sie ein 10%iges Trenngel mit einem PAGE-Gel-Schnellvorbereitungskit gemäß den Anweisungen des Herstellers vor (siehe Materialtabelle).
  7. Laden Sie 3 μl des vorgefärbten Farbproteinmarkers und 14 μl Proben in die Vertiefungen des Trenngels (endgültige Proteinmenge pro Vertiefung: 20 μg).
  8. Lassen Sie das Gel 1 h lang bei 80-100 mV mit Elektrophoresepuffer laufen, um getrennte Proteine zu erhalten.
  9. Die Proteine aus Schritt 4.8 werden mit einer schnellen Membrantransferlösung und einer Sandwichstruktur (Baumwolle-Filterpapier-PVDF-Membran-Protein-Gel-Filterpapier-Baumwolle) bei 400 mA für 30 min auf eine PVDF-Membran übertragen.
  10. Blockieren Sie die PVDF-Membranen aus Schritt 4.9 mit 5%iger Rinderserumalbumin-Lösung (BSA) für 1-2 h bei Raumtemperatur.
    HINWEIS: Bereiten Sie eine 5%ige BSA-Lösung vor, indem Sie 5 mg BSA-Pulver in 100 ml TBST-Lösung auflösen, die 100 ml TBS-Puffer und 0,05 % Tween 20 enthält.
  11. Die PVDF-Membranen aus Schritt 4.10 werden über Nacht mit 5 mL verdünntem Primärantikörper bei 4 °C inkubiert.
    HINWEIS: Verdünnen Sie den Primärantikörper in BSA-Lösung (Verhältnis 1:1000).
  12. Waschen Sie die PVDF-Membranen dreimal mit TBST für jeweils 5 Minuten, um ungebundene Primärantikörper zu entfernen.
  13. Die Membranen aus Schritt 4.12 werden mit verdünntem Meerrettichperoxidase (HRP)-gekoppeltem Sekundärantikörper 2 h bei Raumtemperatur auf einem Entfärbungsschüttler inkubiert.
    HINWEIS: Verdünnen Sie den HRP-gekoppelten Sekundärantikörper in BSA-Lösung (Verhältnis 1:10.000).
  14. Waschen Sie die Membranen dreimal für jeweils 5 Minuten mit TBST, um den verbleibenden Sekundärantikörper zu entfernen.
  15. Bedecken Sie die Membranen aus Schritt 4.14 mit einem ECL-Chemilumineszenz-Entwickler und bilden Sie dann das Zielproteinsignal mit einem bildgebenden System ab.
    HINWEIS: Führen Sie diesen Schritt im Dunkeln durch, um eine Fluoreszenzlöschung zu verhindern.
  16. Analysieren und quantifizieren Sie den Grauwert von Zielproteinen mit der ImageJ-Software (siehe T able of Materials).

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Ergebnisse

Die Standardkurven für ATP, ADP und AMP, die durch HPLC nachgewiesen wurden, waren Y = 7006,5X - 222,99, Y = 5217,3X - 17,796 bzw. Y = 9280,1X + 22,749 (Abbildung 1A-C). Die mittels HPLC gemessenen Nukleotidgehalte in jeder Gruppe wurden anhand der Standardkurven berechnet (Abbildung 1D-I). Es zeigte sich, dass CoCl2 die ATP- und ADP-Spiegel in HT22-...

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Diskussion

Mitochondrien sind Schlüsselorganellen, die an der therapeutischen Prävention von HHBI beteiligt sind 23,24,25. Frühere Studien der Gruppe haben bestätigt, dass Sal die Expression von AMPK-, Sirt1- und HIF-1α-Proteinen reguliert, die neuronale Mitochondrienfunktion verbessert und vor HHBI schützt21,24. Die direkte Wirkung von Sal a...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde unterstützt von der National Natural Science Foundation of China (82274207 und 82474185), dem Science & Technology Department der Provinz Sichuan (2024NSFSC1845), der Science Foundation for Youths of Science & Technology Department der Provinz Sichuan (2023NSFSC1776), dem Key Research and Development Program von Ningxia (2023BEG02012), dem Youth Talent Support Project der China Association of Chinese Medicine für 2024-2026 (2024-QNRC2-B07) und dem Xinglin Scholar Research Förderprojekt der Chengdu University of TCM (XKTD2022013 und QJJJ2024027).

BEITRAG DES AUTORS:
Xiaobo Wang, Yating Zhang, Ya Hou, Rui Li und Xianli Meng haben dieses Projekt konzipiert. Yating Zhang, Ya Hou und Tingting Kuang führten die Experimente durch und analysierten die Daten. Yating Zhang und Hong Jiang schrieben das Manuskript. Xiaobo Wang und Xianli Meng überarbeiteten das Manuskript. Alle Autorinnen und Autoren haben das endgültige Manuskript gelesen und freigegeben.

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Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
AcetonitrileAladdinA104440
0.22 µm aqueous membraneJintengJTMF0445
0.22 µm needle type microporous filter membraneJintengJTSFM013001
0.45 µm organic membraneJintengJTMF0448
Agilent OpenLab software  AgilentVersion 2.X
Antibody-AMPKαCell Signaling Technology#2532
Antibody-HIF-1αCell Signaling Technology#41560
Antibody-p-AMPKαCell Signaling Technology#50081
Antibody-Sirt1Cell Signaling Technology#2028
Antibody-β-actinCell Signaling Technology#4970
BCA protein concentration assay kitBoster Biological Technology17E17B46
Bovine serum albuminCywin Innovation (Beijing) Biotechnology Co., Ltd.SW127-02
Broad-spectrum phosphatase inhibitor (100×)Boster Biological TechnologyAR1183
Chromatographic columnAgilentSB-C18
CoCl2Sigma15862
Decolorization shakerKylin-BellTS-2
DorsomorphinMedChemExpress (MCE)HY-13418A
Dulbecco's modified eagle mediumGibco8121587
Electrophoresis bufferNCM Biotech20230801
Fetal bovine serumGibco2166090RP
Goat Anti-rabbit IgG H&L (TRITC)ZenBioScience Co., Ltd.511202
GraphPad Prism softwareGraphPad software, LLCVersion 9.0.0
High performance liquid chromatographyAgilent1260 Infinity II Prime 
High speed refrigerated centrifugeThermo Fisher ScientificLegend Micro 17R
HRP conjugated affinipure goat anti-rabbit IgG(H+L)Boster Biological Technology Co., Ltd.BA1054
HT22 cellsGuangzhou Jennio Biotech Co., Ltd.JNO-02001
Hypersensitive ECL chemiluminescence kitNCM BiotechP10300
Image J softwareNational Institutes of Healthv1.8.0
Metal heating temperature control instrumentBaiwan Electronictechnology Co., Ltd.HG221-X3
MethanolAladdinM116118
Nucleotide (ATP, ADP, and AMP) content assay kitBeijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd.BC5114
PAGE gel rapid preparation kitBiosharpPL566B-5
Penicillin-streptomycinNCM BiotechC125C5
Phosphate buffered saline (1×)Gibco8120485
Pre-stained color protein marker (10-180 kDa)Cywin Innovation (Beijing) Biotechnology Co., Ltd.SW176-02
Protein loading buffer (5x)Boster Biological TechnologyAR1112
PVDF (0.45 μm)Cywin Innovation (Beijing) Biotechnology Co., Ltd.SW120-01
Rapid membrane transfer solutionCywin Innovation (Beijing) Biotechnology Co., Ltd.SW171-02
RIPA lysateBoster Biological Technology Co., Ltd.AR0105
SalidrosideChengdu Herbpurify Co., Ltd.RFS-H0400191102
TBS bufferNCM Biotech23HA0102
Transmembrane bufferNCM Biotech23CA2000
Trypsin (0.25%, 1×)HyCloneJ210045
Tween 20Shanghai Canspec Scientific Instruments Co., Ltd.PM12012
Ultrasonic cell disruption apparatusNingbo Xinyi ultrasonic equipment Co., Ltd.JY92-IIDN
Visionworks imaging systemAnalytik JenaUVP ChemStudio
Vortex mixerKylin-BellXW-80A

Referenzen

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