Our study was conducted with the permission of United States Sugar Corporation. We want to thank R. Raid, S. Raid and T. Lang for their assistant. We also M. Stanback and three anonymous reviewers for suggestions that improved this manuscript.

1. Aufbau von Swarm-Trap-Boxen HINWEIS: Es gibt zwei alternative Protokolle für Schwarm Trap Konstruktion enthalten als 1.1 und 1.2 Schritte. Es gibt mehrere zusätzliche Wege trap Kästen konstruiert werden könnte. Die folgenden beiden Methoden werden hier vorgestellt, weil wir sie in Experimenten getestet haben, und sie haben erfolgreich. Für beide Protokoll verwenden 1,3 cm bis 2 cm dicken, nicht druckbehandelt Sperrholz. <ol><li> Der Bau der Swarm-Trap-Protokoll Option 1: Der Aufbau einer Trap-Box <ol><li> Schneiden sechs Stücke aus Sperrholz 30 cm x 30 cm. </li><li> Befestigen Sie die vier Seiten des Kastens zusammen mit Nägeln oder Schrauben. </li><li> Bringen Sie das untere Stück durch Nägel oder Schrauben. </li><li> Bringen Sie die obere Stück mit Schrauben oder Klammern. <ol><li> Verwenden Sie keine Nägel an die Spitze zu sichern. Die Spitze muss entfernbar sein, Bienen, sich aus und die Box reinigen. </li></ol></li><li> Bohren Sie ein 2,5 cm großes Loch in der Mitte einer Seite der Trap-Box 2,5 cm von der Unterkante. </li><li> Haftgrund, sealant oder Farbe auf die Außenseite des Trap-Box Holz vor Witterung zu schützen. <ol><li> Keine Farbe oder Dichtmittel auf der Innenseite des Fallenfeld anzuwenden. Dies könnte auf die Bienen abweisend oder toxisch sein. </li></ol></li></ol></li><li> Der Bau der Swarm-Trap-Box-Protokoll Option 2: Die Verwendung eines Standard-Tief Hive Körper <ol><li> Besorgen Sie sich einen Standard-10-Rahmen tief hive Körper von einem lokalen Bienen Versorgung zu speichern. </li><li> Schneiden Sie ein oben und unten aus Sperrholz von je 50,8 cm lang und 41,3 cm breit. </li><li> Bringen Sie das untere Stück durch Nägel oder Schrauben. </li><li> Bringen Sie die obere Stück mit Schrauben oder Klammern. <ol><li> Verwenden Sie keine Nägel an die Spitze zu sichern. Die Spitze muss entfernbar sein, Bienen, sich aus und die Box reinigen. </li></ol></li><li> Bohren Sie ein 2,5 cm großes Loch in der Mitte auf einer Seite des Trap-Box 2,5 cm von der Unterkante. </li><li> Bewerben Primer, Versiegelung oder Farbe auf die Außenseite des Trap-Box Holz vor Witterung zu schützen. <ol><li> Verwenden Sie keine Farbe oder Dichtstoffes auf die AnwendungInnere der Fallenfeld. Dies könnte auf die Bienen abweisend oder toxisch sein. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Herstellung des Pheromonköder <ol><li> Bereiten Sie eine Mischung aus Citral und Geraniol bei einem 2: 1-Verhältnis. </li><li> Platzieren 1 ml dieser Mischung in eine Schnapp oben 1,5 ml Polypropylen-Rohr Mikrozentrifugation. </li><li> Wickeln Sie lockt in Aluminiumfolie zum Schutz vor Licht. Hinweis: Die Kappe des Zentrifugationsröhrchen mit einem Push-Pin-durchstochen, wenn es im montierten Schwarm Falle angeordnet ist. Hinweis: Köder kann in einem dunklen Ort bei RT oder für eine längere Lagerung in einem gespeichert werden -10 ° C Gefrierschrank. </li></ol> 3. Installation von Swarm-Trap-Boxen HINWEIS: Es gibt zwei alternative Protokolle für die Installation von Schachteln Schwarms trap in den Schritten 3.1 und 3.2 dargestellt. <ol><li> Installation der Swarm-Trap-Box-Protokoll Option 1: Installation auf einem Beitrag <ol><li> Legen Sie ein 10 cm mal 10 cm Druck behandeltes Holz Zaunpfosten in den Boden 10 m zu15 m, von wo aus der Vogelnest-Feld befindet. </li><li> Konstruieren Sie einen hängenden Bord von 1,3 cm dicken Druck behandeltes Holz Abmessungen 20 cm x 20 cm. </li><li> Richten Sie die Hängeplatte in der Mitte einer Seite des Fallenfeld mit 10 cm über dem oberen Rand der Box. Sichern Sie die Platine an die Box mit mindestens zwei Nägeln oder Schrauben auf beiden Seiten der Platine. </li><li> Legen Sie die Trap-Box auf der Post in einer Höhe (1,5 m bis 3 m), die sicher und einfach zu entfernen ist, wenn die Falle Box von Bienen besiedelt ist. Schrauben Sie die Box auf die Post durch die Hängeplatte zu befestigen. Legen Sie eine Schraube ca. 5 cm unterhalb der Oberkante der Hängeplatte und festschrauben. <ol><li> Keine Nägel verwendet werden, da sie nur schwer zu entfernen sind. </li></ol></li></ol></li><li> Installation der Swarm-Trap-Box-Protokoll Option 2: Installation auf einem Baum <ol><li> Bohren Sie ein 5 mm Loch in der oberen hinteren Ecke jeder Seite der Box. </li><li> Gewinde einen Draht durch die Löcher. Hinweis: Wenn Sie dieses Protokoll wird es EASI seiner setzen den Draht durch die Löcher vor der Oberseite der Box zu sichern. </li><li> Wählen Sie einen Baum ca. 10 m bis 15 m entfernt, von wo der Vogel Nistkasten befindet. <ol><li> Nicht-Trap-Boxen in den gleichen Bäumen wie Vogelkästen platzieren, weil, wenn jemand über den Status des Vogels Box überprüft, Trap-Boxen von Bienen kolonisiert gestört werden können Bienen verursacht Defensive zu werden. </li></ol></li><li> Befestigen Sie den Draht um den Baum 1,5 m bis 3 m über dem Boden. Hinweis: Um den Baum zu schützen, kann ein Kambiumschoner um den Draht verwendet werden. <ol><li> Stellen Sie sicher, dass das Feld eben und sicher, so dass er nicht umkippt. Die Box kann auf einem Baumzweig für zusätzliche Stabilität, wenn vorhanden ausgeruht sein. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. Die Zugabe des Pheromon-Köder <ol><li> Nehmen Sie einen zuvor hergestellten Köder aus Abschnitt 2 und pannen das obere Ende des Rohrs mit einem Push-Pin. </li><li> Setzen Sie den Köder in der Falle Kasten auf dem Boden nahe dem Eingang nach installation es, um sicherzustellen, fällt nicht heraus, während die Box zu installieren. </li></ol> 5. Behandlung von Vogel-Nest-Box mit Permethrin <ol><li> Wählen Sie eine Permethrin-Produkt, das nur für die Verwendung bei Geflügel oder Vögeln in Käfigen markiert ist. </li><li> Folgen Sie Anweisungen auf dem Etikett zum Mischen und Auftragen ACHTUNG: Folgen Sie keine persönlichen Schutzrichtlinien auf dem Etikett Empfehlungen. </li><li> Sprühen Sie die Innenseite des Nistkasten vollständig, bis zu dem Punkt, dass die Flüssigkeit, die die Seiten der Box funktioniert mit einer 3,7 L Handpumpe Sprayer. Hinweis: Nistkästen können vor oder nach der Installation behandelt werden. </li></ol> 6. Entfernen eines Trap-Box Besetzt von Honig-Bienen <ol><li> Stecken Sie das Eingangsloch mit einem kleinen Handtuch. ACHTUNG: Tragen Sie angemessene Schutzkleidung Stiche von Honigbienen zu verhindern. <ol><li> Wenn Schwarm getötet werden, sind so, sobald entdeckt. Wenn Schwarm verwendet werden soll, lassen Sie Bienen vollständig zu stoppen Boxen besiedeln, bevor sie zu entfernen (usually ca. 2 Wochen). Wenn möglich, entfernen besetzten Trap-Boxen in der Nacht (wenn alle Bienen im Inneren sind). Die Falle Eingang kann nachts eingesteckt werden und dann entfernt die Box am nächsten Morgen bei Tageslicht. Hinweis: Verwenden Sie ein rot gefilterte Licht, wenn sie um die Bienen in der Nacht arbeiten. </li></ol></li><li> Schrauben Sie die Box von der Post oder den Draht schneiden Sie die Box, um den Baum zu halten. </li><li> Bewegen Sie die Box an den neuen Standort (mindestens 4 km entfernt) und ziehen Sie das Tuch aus dem Eingangsloch. </li></ol> 7. Die Zerstörung der Bienenkolonie in Trap-Box Hinweis: In Bereichen, in denen es illegal ist Africanized Honigbienen zu halten, die Zerstörung der Kolonie gerechtfertigt sein. Wenn ja, zwei Protokolle werden hier vorgestellt. <ol><li> Solarisierende der Kolonie <ol><li> Stecken Sie das Eingangsloch mit einem kleinen Handtuch. ACHTUNG: Tragen Sie angemessene Schutzkleidung Stiche von Honigbienen zu verhindern. </li><li> Schrauben Sie die Box von der Post oder den Draht schneiden Sie die Box, um den Baum zu halten. </li><li> Enclose und versiegeln die Falle Kasten vollständig in eine Plastiktüte und für mehrere Tage in voller Sonne verlassen ACHTUNG: Tragen Sie angemessene Schutzkleidung Stiche von Honigbienen zu verhindern. </li><li> Reinigen Sie die Box durch Entfernen toten Bienen und Kamm. </li></ol></li><li> Die Verwendung eines Insecticide Spray <ol><li> Verwenden Sie ein Insektenspray für die Verwendung der Bezeichnung Bienen zu töten in der Falle Box zu sprühen. ACHTUNG: Anweisungen auf dem Etikett auf Insektizid folgen und geeignete persönliche Schutzausrüstung verwenden Stiche von Honigbienen zu verhindern. </li><li> Stecken Sie den Eingang und lassen Sie das Feld für 24 Stunden. </li><li> Reinigen Sie die Box durch Entfernen toten Bienen und Kamm. Hinweis: Um die Falle Box reinigen Sie das Innere mit einer Seifenlösung wiederzuverwenden Rest Insektizid zu entfernen. Spülen Sie gut und vollständig trocknen lassen, bevor neu zu installieren. </li></ol></li><li> Die Verwendung eines Insektizids Schaum <ol><li> Füllen Sie den gesamten Hohlraum des besetzten Falle mit einem Waschmittel-basierten Schaum. (ACHTUNG: Folgen Sie Anweisungen auf dem Etikett auf INSECticide und geeignete persönliche Schutzausrüstung verwenden und entsprechende Schutzkleidung tragen Stiche von Honigbienen zu verhindern). Hinweis: Der Schaum kann mit einem handelsüblichen Schädlingsbekämpfungsschaumgenerator oder einem Druckluft Feuerlöscher angewendet werden. Hinweis: Für einen Feuerlöscher mit: Platz 3,8 l Wasser in einen 9,5 l Feuerlöscher, fügen Sie 190 ml Schaummittel (oder Spülmittel), Siegel den Feuerlöscher und unter Druck setzen es auf 100-125 Pfund / sq. inch (psi). Kurz vor kräftig zu verwenden, aufregen, und dann den Schaum gelten, bis die Falle überquell ist. Hinweis: Schaum tötet die Bienen innerhalb von 60 Sekunden durch die Stigmen eintritt, und die Luftröhre blockiert. </li><li> Stecken Sie den Eingang und lassen Sie das Feld für 24 Stunden. </li><li> Reinigen Sie die Box durch Entfernen toten Bienen und Kamm. Hinweis: Um die Falle Box reinigen Sie das Innere mit einer Seifenlösung wiederzuverwenden Rest Insektizid zu entfernen. Spülen Sie gut und vollständig trocknen lassen, bevor neu zu installieren. &lt;/ Li&gt; </ol></li></ol>

<ol>
	<li>Winston, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biology+and+management+of+Africanized+honey+bees.">The biology and management of Africanized honey bees.</a> Annu Rev Entomol. 37, 173-193 (1992).</li><li>Schmidt, J. O., Hurley, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selection+of+nest+cavities+by+Africanized+and+European+honey+bees.">Selection of nest cavities by Africanized and European honey bees.</a> Apidologie. 26, 467-475 (1995).</li><li>Eadie, J., Sherman, P., Semel, B., Casro, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conspecific+Brood+Parasitism,+Population+Dynamics,+and+the+Conservation+of+Cavity-Nesting+Birds.">Conspecific Brood Parasitism, Population Dynamics, and the Conservation of Cavity-Nesting Birds.</a> In: Behavioral Ecology and Conservation Biology. , 306-340 (1998).</li><li>Newton, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+nest+sites+in+limiting+the+numbers+of+hole-nesting+birds:+a+review.">The role of nest sites in limiting the numbers of hole-nesting birds: a review.</a> Biol Conserv. 70, 265-276 (1994).</li><li>White, T. H., Abreu-Gonz&#225;lez, W., Toledo-Gonz&#225;lez, M., Torres-B&#225;ez, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+the+field:+artificial+nest+cavities+for+Amazona+parrots.">From the field: artificial nest cavities for Amazona parrots.</a> Wildl Soc Bull. 33, 756-760 (2005).</li><li>Vaughan, C., Nemeth, N., Marineros, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ecology+and+management+of+natural+and+artificial+Scarlet+Macaw+(Ara+macao)+nest+cavities+in+Costa+Rica.">Ecology and management of natural and artificial Scarlet Macaw (Ara macao) nest cavities in Costa Rica.</a> Ornitol Neotrap. 14, 381-396 (2003).</li><li>WCS Guatemala Program. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+interventions+to+conserve+Scarlet+Macaws+as+flagships+for+the+Maya+Biosphere+Reserve,+Guatemala.">Integrated interventions to conserve Scarlet Macaws as flagships for the Maya Biosphere Reserve, Guatemala.</a> 2009-2010 Report to BBC Wildlife Fund. , (2011).</li><li>Fish and Wildlife Service. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Puerto Rican Parrot (Amazona vittata) 5-Year Review: Summary and Evaluation. , (2008).</li><li>Berkunsky, I., DiazLuque, J. A., Kacoliris, F. P., Daniele, G., Milpacher, S., Gilardi, J. D., Martin, S., Eckles, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=10+Years:+Blue-throated+Macaw+Conservation.">10 Years: Blue-throated Macaw Conservation.</a> PsittaScene. 24, 3-5 (2012).</li><li>Synder, N., McGowen, P., Gilardi, J. D., Grajal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Parrots: Status Survey and Conservation Action Plan 2000-2004. , (2000).</li><li>Delnicki, D. E., Bolen, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+Black-Bellied+Whistling+duck+nest+sites+by+other+species.">Use of Black-Bellied Whistling duck nest sites by other species.</a> SW Naturalist. 22, 275-277 (1977).</li><li>Twedt, D. J., Henne-Kerr, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+Cavities+Enhance+Breeding+Bird+Densities+in+Managed+Cottonwood+Forests.">Artificial Cavities Enhance Breeding Bird Densities in Managed Cottonwood Forests.</a> Wildl Soc Bull. 27, 680-687 (2001).</li><li>Carlile, N., Priddel, D., Zino, F., Natividad, C., Wingate, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+four+successful+recovery+programmes+for+threatened+sub-tropical+petrels.">A review of four successful recovery programmes for threatened sub-tropical petrels.</a> Mar Ornithol. 31, 185-192 (2003).</li><li>Oldroyd, B. P., Lawler, S. H., Crozier, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Do+feral+honey+bees+(Apis+mellifera)+and+regent+parrots+(Polytelis+anthopeplus)+compete+for+nest+sites.">Do feral honey bees (Apis mellifera) and regent parrots (Polytelis anthopeplus) compete for nest sites.</a> Aust J Ecol. 19, 444-450 (1994).</li><li>Downs, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+nest+boxes+and+wild+Cape+Parrots+Poicephalus+robustus:+persistence+pays+off.">Artificial nest boxes and wild Cape Parrots Poicephalus robustus: persistence pays off.</a> Ostrich. 76, 222-224 (2005).</li><li>Seeley, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+Nest+Cavity+Volume+by+the+Honey+Bee+(Apis+mellifera).">Measurement of Nest Cavity Volume by the Honey Bee (Apis mellifera).</a> Behav Ecol Sociobiol. 2, 201-227 (1977).</li><li>Schneider, S. S., DeGrandi-Hoffman, G., Smith, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+African+Honey+Bee:+Factors+contributing+to+a+successful+biological+invasion.">The African Honey Bee: Factors contributing to a successful biological invasion.</a> Annu Rev Entomol. 49, 351-376 (2004).</li><li>Seely, T. D., Visscher, P. K., Passino, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Group+decision+making+in+honey+bee+swarms.">Group decision making in honey bee swarms.</a> Behav Ecol Sociobiol. 94, 220-229 (2006).</li><li>Taylor, K. S., Waller, G. D., Crowder, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impairment+of+a+classical+conditioning+response+of+the+honey+bee+(Apis+mellifera+L.)+by+sublethal+doses+of+synthetic+pyrethroid+insecticides.">Impairment of a classical conditioning response of the honey bee (Apis mellifera L.) by sublethal doses of synthetic pyrethroid insecticides.</a> Apidologie. 18, 243-252 (1987).</li><li>Ingram, E. M., Augustin, J., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+sub-lethal+effects+of+orchard-applied+pyrethroids+using+viedo-tracking+software+to+quantify+honey+bee+behaviors.">Evaluating sub-lethal effects of orchard-applied pyrethroids using viedo-tracking software to quantify honey bee behaviors.</a> Chemosphere. 135, 272-277 (2015).</li><li>Rieth, J. P., Levin, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+repellent+effect+of+two+pyrethroid+insecticides+on+the+honey+bee.">The repellent effect of two pyrethroid insecticides on the honey bee.</a> Physiol Entomol. 13, 213-218 (1988).</li><li>Efstathion, C. A., Bardunias, P. M., Boyd, J. D., William, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+push-pull+integrated+pest+management+scheme+for+preventing+use+of+parrot+nest+boxes+by+invasive+Africanized+honey+bees.">A push-pull integrated pest management scheme for preventing use of parrot nest boxes by invasive Africanized honey bees.</a> J Field Ornithol. 86, 65-72 (2015).</li><li>Seeley, T. D., Morse, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nest+site+selection+by+the+honey+bee,+Apis+mellifera.">Nest site selection by the honey bee, Apis mellifera.</a> Insect Sco. 25, 323-337 (1978).</li><li>Schmidt, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Attraction+of+reproductive+honey+bee+swarms+to+artificial+nests+by+nasonov+pheromone.">Attraction of reproductive honey bee swarms to artificial nests by nasonov pheromone.</a> J Chem Ecol. 20, 1053-1056 (1994).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Als sehr erfolgreich invasive Insekten 17, bilden AHB ein wichtiger Wettbewerber für Hohlraum Brüter in ihrem Verbreitungsgebiet. Das Protokoll hier präsentiert wird entworfen, um die Kolonisierung Raten von Nistkästen von AHB zu reduzieren. Die Hauptkomponenten dieses Entwurfs umfassen 1) die Verwendung eines abstoßenden und Vogelsicheren Insektizid Permethrin; 2) Die Bereitstellung einer alternativen Nistplatz für Bienen; und 3) die Verwendung eines Lockstoffpheromon innerhalb trap-Boxen. Bienen in de...

Da die Einschleppung von mehr als zwei Dutzend afrikanische Honigbienenköniginnen in Sao Paulo, Brasilien 1957 1 haben diese Insekten in ganz Süd- und Mittelamerika verbreitet und bis in den Süden der Vereinigten Staaten, usurpiert und den Ersatz der weniger gut angepasst europäischen Honigbienen ( EHB) in der Schwarzwildpopulation. Diese hybriden Africanized Honigbienen (AHB) haben Eigenschaften, die sie in Konflikt setzen beide mit Mensch und Tier. Sie weisen eine sehr defensive Verhalten, vermehren sich sehr schnell und sind weniger selektiv über , wo sie ein Haus 1,2 machen. Obwohl Nistkästen wurden von Ornithologen langem verwendet, um Zucht durch den Hohlraum Brüter 3,4, zu verbessern und ihre Verwendung ist für die Verbesserung der Zucht von bedrohten und gefährdeten Papageien in den Tropen 5,6 besonders wirksam erwiesen. Leider oft afrikanisiert Honigbienen diese gleichen Nistkästen wählen - manchmal sogar den Insassen zu tötens. Darüber hinaus stellen diese AHB eine erhebliche Bedrohung für Biologen, wenn sie nisten Studien führen. In den Bereichen , in Südamerika , wo AHB eingerichtet wurden, haben mehrere Papageienschutzprojekte ihre künstlichen Nistkästen von AHB 7-10 besetzt gesehen. Wettbewerb für Nistkästen mit Honigbienen ist weit verbreitet und ist nicht auf Papageien beschränkt. Viele andere Vogelarten sowohl in der neuen und alten Welt sind 11 bis 15 betroffen. Ohne die Bemühungen um die Bedrohung durch diese invasive AHB, die jüngsten Erfolge in Papageien Erhaltung zu mildern könnten verloren gehen. Die derzeitige Praxis für den Wettbewerb von Bienen Verwaltung umfasst die Verwendung von wiederholten, hohe Dosen von 7 Permethrin, manuell Schwärme, schließen Nest Eingänge unmittelbar nach der Brutzeit 8, oder die Anwendung von Chemikalien auf den Außenseiten von Nistkästen 15 zu entfernen. Die Arbeit beteiligt und die Gefahr für Biologen machen diese Strategien weniger als optimal. Entwicklung eines prevention-Protokoll gewährleistet. Honigbienenvölker vermehren über ein Verfahren , wie das Schwärmen bekannt, als die alte Königin , die Kolonie Blätter mit bis zu drei Viertel der Arbeiterinnen 16. Afrikanisierten Honigbienen hohe Reproduktionsrate ermöglicht es ihnen häufiger Schwarm (vier- bis achtmal pro Jahr) als EHB (die ein- oder zweimal pro Jahr Schwarm) 17. Darüber hinaus kann AHB im Laufe des Jahres Schwarm und nicht während einer bestimmten Jahreszeit wie EHB. Folglich kann AHB schnell die meisten der geeigneten Nistplätzen in einem bestimmten Gebiet zu besetzen. Honigbienenhaus Jagdverhalten kann verwendet werden, um die Wahl der Nistplatz zu beeinflussen. Ein kleiner Teil der Bienen in einem Schwarm fliegen neue potentielle Nistplätzen zu lokalisieren und zu inspizieren. Mehrere potenzielle Nistplätze für gleichzeitig ausgekundschaftet. Diese Scout Bienen kehren zum Schwarm und führen Tänze die Position der Website anzuzeigen. Je stärker das Tanzen ist für eine Website, desto schneller ist die Anzahl der scout Bienen baut an dieser Stelle 18 auf. Deshalb tanzen Bienen stärker für eine bessere Qualität Websites, im Vergleich zu Websites, die mittelmäßig oder schlecht sind. Sobald ein Quorum Schwellenwert erreicht ist, nimmt der Schwarm ab und fliegt in die neue Wahlheimat Website 18. Subletale Kontaktdosen des Insektizid Permethrin behindern die Fähigkeit des Scout Biene zu orientieren und seine Aktivitätsniveau 19,20 reduzieren. Eine Anwendung von Permethrin innerhalb Nistkästen an sollten zunächst Bienen abweisend werden 21 Scout, und Überstunden als die chemischen degradiert, Scout Bienen Permethrin während ihrer Einschätzung der Box ausgesetzt sind , sollten weniger in der Lage gemacht werden starke Rekrutierung Tänze durchzuführen, um die Menge abnimmt von Scout Bienen auf der Website eingestellt. Eine geeignetere (ideal Hohlraumvolumen, kleine Eingangsloch am Boden angeordnet, und ein Pheromon-Lockstoff) alternative Nistplatz in Form einer Falle Box für die Bienen zur Verfügung gestellt. Diese ausgezeichnete Fangpunkt sollte ein Quorum erreichen schnellerals der Vogel-Box führt den Schwarm Insektizid behandelt, um die Trap-Box über den Vogel-Box zur Auswahl. Als Beispiel beschreiben wir ein Experiment Kolonisierung Barn Owl künstlichen Nistkästen von AHB in Süd-Florida Zuckerrohrfelder zu reduzieren. Unser Ziel war es, die Wirksamkeit der Verwendung eines Push-Pull-Methode zu testen, die Bienen weg von Eule Nistkästen behandelt mit einem Insektizid &quot;Push&quot; wird und &quot;ziehen&quot;, um sie in Richtung Pheromon geködert Schwarm Fallen.

<table><tbody><tr><td>Citral (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC11044-1000</td><td></td></tr><tr><td>Geraniol (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC41090-1000</td><td></td></tr><tr><td>PermaCap CS</td><td>BASF</td><td></td><td>controlled release permethrin</td></tr></tbody></table>

a push-pull protocol to reduce colonization of bird nest boxes by honey bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

Eine frühere kleine Pilot Push-Pull - Studie in Brasilien zeigte , Schwarm Fallen waren effektiv und reduziert Bienen Besetzung von Papageien Nistkästen 22. Um festzustellen, ob die Push-Pull-Verfahren in einem größeren Maßstab wirksam sein kann Besiedlung von Nistkästen von AHB zu reduzieren, führten wir eine Feldstudie in Zuckerrohrfeldern im südlichen Florida, USA. Sechzig Barn Owl Nistkästen installiert wurden und jeder wurde mit einem Schwarm Falle 15 m entfernt ...

Watch this Scientific Journal Video about A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees at JoVE.com

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Verhindern Besiedlung von Nistkästen durch invasive Africanized Honigbienen ist wichtig für die Erhaltung Bemühungen von Nest-Ort begrenzt Vögel. Wir bieten eine integrierte Schädlingsbekämpfung Ansatz zu &quot;push&quot; Bienen weg von Nistkästen mit einem abstoßenden Insektizid Permethrin und &quot;ziehen&quot;, um sie in Richtung Pheromon geködert Schwarm Fallen.

Push-Pull-Protokoll zur Reduzierung der Kolonisierung von Nistkästen von Honig-Bienen

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

a-push-pull-protocol-to-reduce-colonization-bird-nest-boxes-honey

Research

JoVE Journal

Environment

8.6K Aufrufe.  University of Florida.  Verhindern Besiedlung von Nistkästen durch invasive Africanized Honigbienen ist wichtig für die Erhaltung Bemühungen von Nest-Ort begrenzt Vögel. Wir bieten eine integrierte Schädlingsbekämpfung Ansatz zu "push" Bienen weg von Nistkästen mit einem abstoßenden Insektizid Permethrin und "ziehen", um sie in Richtung Pheromon geködert Schwarm Fallen. 

Serie: A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Empirical, Metagenomic, and Computational Techniques Illuminate the Mechanisms by which Fungicides Compromise Bee Health

Growers often use fungicide sprays during bloom to protect crops against disease, which exposes bees to fungicide residues. Although considered &#34;bee-safe,&#34; there is mounting evidence that fungicide residues in pollen are associated with bee declines (for both honey and bumble bee species). While the mechanisms remain relatively unknown, researchers have speculated that bee-microbe symbioses are involved. Microbes play a pivotal role in the preservation and/or processing of pollen, which serves as nutrition for larval bees. By altering the microbial community, it is likely that fungicides disrupt these microbe-mediated services, and thereby compromise bee health. This manuscript describes the protocols used to investigate the indirect mechanism(s) by which fungicides may be causing colony decline. Cage experiments exposing bees to fungicide-treated flowers have already provided the first evidence that fungicides cause profound colony losses in a native bumble bee (Bombus impatiens). Using field-relevant doses of fungicides, a series of experiments have been developed to provide a finer description of microbial community dynamics of fungicide-exposed pollen. Shifts in the structural composition of fungal and bacterial assemblages within the pollen microbiome are investigated by next-generation sequencing and metagenomic analysis. Experiments developed herein have been designed to provide a mechanistic understanding of how fungicides affect the microbiome of pollen-provisions. Ultimately, these findings should shed light on the indirect pathway through which fungicides may be causing colony declines.

Microbial consortia within bumble bee hives enrich and preserve pollen for bee larvae. Using next generation sequencing, along with laboratory and field-based experiments, this manuscript describes protocols used to test the hypothesis that fungicide residues alter the pollen microbiome, and colony demographics, ultimately leading to colony loss.

Empirische, metagenomischen und Computertechniken beleuchten die Mechanismen, durch welche Fungizide Kompromiss Bienengesundheit

Growers often use fungicide sprays during bloom to protect crops against disease, which exposes bees to fungicide residues. Although considered ...

Forschung

Umwelt

Evaluating the Effect of Environmental Chemicals on Honey Bee Development from the Individual to Colony Level

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be brought back to the beehive after the bees have foraged on flowers that have been sprayed with pesticides. Pesticide contaminated food can be exchanged between workers which then feed larvae and therefore can potentially affect the development of honey bees. Thus, residual pesticides in the environment can become a chronic damaging factor to honey bee populations and gradually lead to colony collapse. In the presented protocol, honey bee feeding methods are described and applied to either an individual honey bee or to a colony. Here, the insect growth regulator (IGR) pyriproxyfen (PPN), which is widely used to control pest insects and is harmful to the development of honey bee larvae and pupae, is used as the pesticide. The presenting procedure can be applied to other potentially harmful chemicals or honeybee pathogens for further studies.

Herein we present a method to feed pesticide contaminated food to both an individual honey bee and a beehive colony. The procedure evaluates the pesticide effect on individual honey bees by in vivo feeding of basic larval diet and also on the natural condition of beehive colony.

Die Bewertung der Wirkung von Umweltchemikalien auf Honig-Bienen-Entwicklung von der Person zu Colony Ebene

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be ...

Video Tracking Protocol to Screen Deterrent Chemistries for Honey Bees

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey bee colony numbers have been declining in the United States and many European countries since 1947. A number of factors play a role in this decline, including the unintentional exposure of honey bees to pesticides. The development of new methods and regulations are warranted to reduce pesticide exposures to these pollinators. One approach is the use of repellent chemistries that deter honey bees from a recently pesticide-treated crop. Here, we describe a protocol to discern the deterrence of honey bees exposed to select repellent chemistries. Honey bee foragers are collected and starved overnight in an incubator 15 h prior to testing. Individual honey bees are placed into Petri dishes that have either a sugar-agarose cube (control treatment) or sugar-agarose-compound cube (repellent treatment) placed into the middle of the dish. The Petri dish serves as the arena that is placed under a camera in a light box to record the honey bee locomotor activities using video tracking software. A total of 8 control and 8 repellent treatments were analyzed for a 10 min period with each treatment was duplicated with new honey bees. Here, we demonstrate that honey bees are deterred from the sugar-agarose cubes with a compound treatment whereas honey bees are attracted to the sugar-agarose cubes without an added compound.

The loss of honey bee colonies presents a challenge to crop pollination services. Current pollinator protection practices warrant an alternative approach to minimize the contact of honey bees to harmful pesticides using repellent chemistries. Here, we provide detailed methods for a visual tracking protocol to screen deterrents for bees.

Video-Tracking-Protokoll auf Bildschirm abschreckende Chemie für Honigbienen

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey ...

A Proboscis Extension Response Protocol for Investigating Behavioral Plasticity in Insects: Application to Basic, Biomedical, and Agricultural Research

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). There are several behavioral mechanisms through which an insect learns salient associations and relates them to these events. It is important to understand this behavioral plasticity for programs aimed toward assisting insects that are beneficial for agriculture. This understanding can also be used for discovering solutions to biomedical and agricultural problems created by insects that act as disease vectors and pests. The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol was developed for honey bees (Apis mellifera) over 50 years ago to study how they perceive and learn about floral odors, which signal the nectar and pollen resources a colony needs for survival. The PER procedure provides a robust and easy-to-employ framework for studying several different ecologically relevant mechanisms of behavioral plasticity. It is easily adaptable for use with several other insect species and other behavioral reflexes. These protocols can be readily employed in conjunction with various means for monitoring neural activity in the CNS via electrophysiology or bioimaging, or for manipulating targeted neuromodulatory pathways. It is a robust assay for rapidly detecting sub-lethal effects on behavior caused by environmental stressors, toxins or pesticides.
We show how the PER protocol is straightforward to implement using two procedures. One is suitable as a laboratory exercise for students or for quick assays of the effect of an experimental treatment. The other provides more thorough control of variables, which is important for studies of behavioral conditioning. We show how several measures for the behavioral response ranging from binary yes/no to more continuous variable like latency and duration of proboscis extension can be used to test hypotheses. And, we discuss some pitfalls that researchers commonly encounter when they use the procedure for the first time.

The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol, developed for the honey bee (Apis mellifera), provides an ecologically-relevant and easily quantifiable means for studying several different mechanisms of learning in many insect species.

Eine Nasennebenschutz-Protokoll für die Untersuchung Verhaltensplastizität bei Insekten: Anwendung auf Grund, Biomedizinische und Agrarforschung

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). ...

Neurowissenschaften

Preparation of Single-cohort Colonies and Hormone Treatment of Worker Honeybees to Analyze Physiology Associated with Role and/or Endocrine System

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related division of labor). Young workers are engaged in nursing the brood (nurse bees), while older workers are engaged in foraging for nectar and pollen (foragers). The physiology of the workers changes in association with this role shift. For example, the main function of the hypopharyngeal glands (HPGs) changes from the secretion of major royal jelly proteins (MRJPs) to the secretion of carbohydrate-metabolizing enzymes. Because worker tasks change as the workers age in typical colonies, it is difficult to discriminate the physiological changes that occur with aging from those that occur with the role shift. To study the physiological changes in worker tissues, including the HPGs, in association with the role shift, it would be useful to manipulate the honeybee colony population by preparing single-cohort colonies in which workers of almost the same age perform different tasks. Here we describe a detailed protocol for preparing single-cohort colonies for this analysis. Six to eight days after single-cohort colony preparation, precocious foragers that perform foraging tasks earlier than usual appear in the colony. Representative results indicated role-associated changes in HPG gene expression, suggesting role-associated HPG function. In addition to manipulating the colony population, analysis of the endocrine system is important for investigating role-associated physiology. Here, we also describe a detailed protocol for treating workers with 20-hydroxyecdysone (20E), an active form of ecdysone, and methoprene, a juvenile hormone analogue. The survival rate of treated bees was sufficient to examine gene expression in the HPGs. Gene expression changes were observed in response to 20E- and/or methoprene-treatment, suggesting that hormone treatments induce physiological changes of the HPGs. The protocol for hormone treatment described here is appropriate for examining hormonal effects on worker physiology.

Here we describe our detailed protocol for the preparation of single-cohort honeybee colonies&#160;&#8211; a useful tool for analyzing the role-associated worker physiology. We also describe detailed protocols for treating workers with juvenile hormone and ecdysone to evaluate the involvement of these hormones in the regulation of worker behavior and/or physiology.

Erstellung von Einzel-Kohorte Kolonien und Hormonbehandlung von Arbeitshonigbienen Physiologie Assoziierte Analysieren mit Rolle und / oder endokrine System

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related ...

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize and to study. Therefore, bees have long been a favored model amongst neurobiologists and neuroethologists for studying the neural basis of social and natural behavior. It is important, however, that the experimental techniques used to study bees do not interfere with the behaviors being studied. Because of this, it has been necessary to develop a range of techniques for pharmacological manipulation of honey bees. In this paper we demonstrate methods for treating restrained or free-flying honey bees with a wide range of pharmacological agents. These include both noninvasive methods such as oral and topical treatments, as well as more invasive methods that allow for precise drug delivery in either systemic or localized fashion. Finally, we discuss the advantages and disadvantages of each method and&#160;describe common hurdles and how to best overcome them. We conclude with a discussion on the importance of adapting the experimental method to the biological questions rather than the other way around.

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

This manuscript describes several protocols for administering pharmacological agents to honey bees, including simple noninvasive methods for free-flying bees, as well as more invasive variants that allow precise localized treatment of restrained bees.

Neuropharmakologische Manipulation von Verhaltene und Free-Fliegen-Honig-Bienen,<em&gt; Apis mellifera</em

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize ...

Monitoring Colony-level Effects of Sublethal Pesticide Exposure on Honey Bees

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment methods. Here we describe methods to measure the quantities of adult bees, brood, and food resources by weighing hives and hive parts, by photographing frames, and by installing hives on scales and with internal sensors. Data from these periodic evaluations are then combined with running average and daily detrended data on hive weight and internal hive temperature. The resulting datasets have been used to detect colony-level effects of imidacloprid applied in a sugar syrup as low as 5 parts per billion. The methods are objective, require little training, and provide permanent records in the form of sensor output and photographs.

Sublethal doses of pesticides may affect colonies in ways that are difficult to detect using only periodic or visual methods. Methods to measure total adult bee mass, brood, and food resources by weighing hives and hive parts, photographing frames, and installing sensors, are provided. Data analysis is also addressed.

Überwachung der Kolonie-Ebene Auswirkungen der subletalen Schädlingsbekämpfungsmittelbelichtung auf Honigbienen

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment ...

Biologie

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee (Bombus) Hive Entrances

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis. This has traditionally been done by netting foragers at nest entrances or on flowers, chilling the bees on ice, and then removing the pollen loads from the corbiculae with forceps or a brush. This method is time and labor intensive, may alter normal foraging behavior, and can result in stinging incidents for the worker performing the task. Pollen traps, such as those used on honey bee hives, collect pollen by dislodging corbicular pollen loads from the legs of workers as they pass through screens at the nest entrance. Traps can remove a large quantity of pollen from returning forager bees with minimal labor, yet to date no such trap is available for use with bumble bee colonies. Workers within a bumble bee colony can vary in size making size selection of entrances difficult to adapt this mechanism to commercially reared bumble bee hives. Using 3D printing design programs, we created a pollen trap that successfully removes the corbicular pollen loads from the legs of returning bumble bee foragers. This method significantly reduces the amount of time required by researchers to collect pollen from bumble bee foragers returning to the colony. We present the design, results of pollen removal efficiency tests, and suggest areas of modifications for investigators to adapt traps to a variety of bumble bee species or nest box designs.

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee Bombus Hive Entrances

We present a non-lethal and automated mechanism to collect pollen from bumble bee (Bombus) workers returning to a hive. Instructions for producing, preparing, installing and using the devices are included. By using 3D-printed objects, modification to the design was timely, efficient and allowed for quick turnaround for testing.

Eine 3D-gedruckte Pollenfalle für Hummel (Bombus) Bienenstockeingänge

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis.  ...

Collection and Identification of Pollen from Honey Bee Colonies

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate pesticide exposure of bees via pollen. Described herein is an effective pollen-trapping method for collecting corbicular pollen from honey bees returning to their hives. This collection method results in large quantities of corbicular pollen that can be used for research purposes. Honey bees collect pollen from many plant species, but typically visit one species during each collection trip. Therefore, each corbicular pollen pellet predominantly represents one plant species, and each pollen pellet can be described by color. This allows the sorting of samples of corbicular pollen by color to segregate plant sources. Researchers can further classify corbicular pollen by analyzing the morphology of acetolyzed pollen grains for taxonomic identification. These methods are commonly used in studies related to pollinators such as pollination efficiency, pollinator foraging dynamics, diet quality, and diversity. Detailed methodologies are presented for collecting corbicular pollen using pollen traps, sorting pollen by color, and acetolyzing pollen grains. Also presented are results pertaining to the frequency of pellet colors and taxa of corbicular pollen collected from honey bees in five different cropping systems.

We describe methods for collecting corbicular pollen from honey bees as well as protocols for color sorting, acetolysis, and microscope slide preparation of pollen for taxonomic identification. In addition, we present pellet color and taxonomic diversity of corbicular pollen collected from five cropping systems using pollen traps.

Sammlung und Identifizierung von Pollen aus Honigbienenvölkern

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate ...

Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not accurately capture the effects of agrochemical exposure on honey bee queens. As the sole producer of fertilized eggs inside a honeybee colony, the queen is arguably the most important single member of a functioning colony unit. Therefore, understanding how agrochemicals affect queen health and productivity should be considered a critical aspect of pesticide risk assessment. Here, an adapted method is presented to expose honey bee queens and worker queen attendants to agrochemical stressors administered through a worker diet, followed by tracking egg production in the laboratory and assessing first instar eclosion using a specialized cage, referred to as a Queen Monitoring Cage. To illustrate the method&#39;s intended use, results of an experiment in which worker queen attendants were fed diet containing sublethal doses of imidacloprid and effects on queens were monitored are described.

This protocol was developed to enhance the understanding of how agrochemicals affect honey bee (Apis mellifera) reproduction by establishing methods to expose honey bee queens and their worker caretakers to agrochemicals in a controlled, laboratory setting and carefully monitoring their relevant responses.

Bewertung des agrochemischen Risikos für gepaarte Honigbienenköniginnen

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not ...