Die Autoren möchte Dieter Häussler und Beat Gautschi für ihre Unterstützung während des experimentellen Setup bis zu danken. Wir sind auch dankbar Caroline Hyde für Englisch Korrekturlesen.

1. Vorbereitung der Saccharose-Lösungen
Hinweis: Die Saccharose-Lösungen werden als billig, Newtonschen Modell Medien mit erhöhter Viskosität und Dichte für geringere turbulenzbedingungen verwendet (siehe Tabelle 1).
<ol><li>Füllen Sie Duran-Glas-Flasche mit Wasser und Saccharose von verschiedenen Konzentrationen (20-60 %w/w).</li>
	<li>Mischen Sie den Inhalt mit einem Magnetrührer, bis die Saccharose vollständig aufgelöst hat.<ol>
<li>Für Saccharose-Konzentration von mehr als 40 %w/w, fügen Sie die Saccharose intermittierend und die Glasflasche leicht erhitzen (~ 50 ° C). Lassen Sie die Saccharose-Lösung auf Raumtemperatur vor der Anwendung abkühlen.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Vorbereitung einer Messung Rezept und die Datenerfassung

<ol><li>Nach dem Start der Software, initiiert die Kommunikation mit dem Steuergerät durch den richtigen seriellen COM-Port aus dem Dropdown-Menü auswählen und klicken Sie auf die Schaltfläche verbinden . Hinweis: Die Connect -Taste ändert sich die Farbe auf grün und die LED unter dem Dropdown-Menü schaltet sich ein, sobald die Kommunikation mit dem Steuergerät initiiert wird.</li>
	<li>Richten Sie Datei Datenpfad innerhalb der Bioreaktor Steuerungssoftware Einheit um die Daten auf den Bediener PC speichern.<ol>
<li>Öffnen Sie die Registerkarte Einstellungen und drücken Sie das Ordnersymbol neben dem Textfeld Speicherort der Datendatei .</li>
		<li>Im Dialogfenster Datei auf die Wunsch-Ordner durchsuchen Sie, geben Sie einen Dateinamen in das Feld Dateiname Text und klicken Sie auf "OK" . Hinweis: Die Daten-Log-Datei-Pfad und den Namen in das Textfeld angezeigt und die DAQ -Starttaste aktiviert, sobald ein gültige Datei-Pfad definiert ist.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Richten Sie eine Routine in der Rezeptmanager der Bioreaktor Steuerungssoftware Einheit um den Messvorgang zu automatisieren.<ol>
<li>Öffnen Sie die Rezept -Registerkarte und geben Sie die gewünschte Eingabewerte für das Rezept Phase verstrichene Zeit (min) und die entsprechende Laufrad-Geschwindigkeit (u/min) in die Textfelder Feld. Das Profil wird automatisch im Diagramm angezeigt. Hinweis: zum Beispiel Rührwerk Geschwindigkeit steigt schrittweise von 20 u/min ab 100 u/min bis 300 u/min, und jeder Wert bleibt für 4 Minuten um ein stabiles Drehmoment garantieren signal (siehe Diskussion unten). Die minimalen und maximalen Geschwindigkeiten sowie der Betrag der Erhöhung einstellbar für verschiedene Rührwerke und Schiffe. Hinweis: Wählen Sie den Drehzahlbereich sorgfältig hinsichtlich der Drehmoment-Sensor-Auflösung, das Nenndrehmoment und Wirbelbildung. Letztere oft tritt in unbaffled Bioreaktoren bei höheren Geschwindigkeiten unruhig und kann Schäden an das Drehmoment-Messgerät.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche " Speichern ", navigieren Sie zu der gewünschten Datei-Pfad und geben Sie einen Dateinamen in das Textfeld ein. Drücken Sie die OK -Taste, um die Datei zu speichern.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Installation der Drehmoment-sensor
Hinweis: Der experimentelle Aufbau ist schematisch in Abbildung 1dargestellt.
<ol><li>Installation die Drehmoment-Wandler in einem speziell entwickelten Halter, der beinhaltet die Luftlager (siehe Abbildung 1) mit zur Befestigung des Sensors einrastet Schrauben. In dieser Studie verwendete Luftlager hat eine poröse Carbon Material mit einem Innendurchmesser von 13 mm Buchse.<ol>
<li>Montieren Sie den bürstenlosen Servomotor Rührwerk auf der Oberseite des Halters. Fixieren Sie die Drehmoment-Wandler an den vertikalen Halter Befestigung mit vier Schrauben.</li>
		<li>Verbinden Sie die Motorwelle mit der Antriebswelle des Drehmoment Wandler mit Hilfe ein Metalls Balg-Kupplung, die kann kleine axiale Fehlstellungen der Achsen zu kompensieren und ziehen Sie die Kupplung mit Schrauben. Verbinden Sie die Rührwelle mit der Messung-Welle von der Drehmoment-Wandler mit einem anderen Metallfaltenbalg Kupplung. Hinweis: In dieser Studie speziell Laufrad Wellen mit einem Durchmesser von 13 mm (Toleranz:-0,0076 mm) mit einer Länge von 270 mm bis 520 mm dienten die verschiedenen Gefäße untersucht.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Befestigen Sie die Sensorhalterung auf der Bioreaktor-Kopfplatte und installieren Sie die Laufräder an der Rührwelle mit der gewünschten aus unteren Abstand zu. Montieren Sie Leitbleche und zusätzliche Installationen (z.B. Probenahme und Ernte Rohre, Elektrochemische Sensoren, etc.) innerhalb des Bioreaktors bei Bedarf.</li>
	<li>Installieren Sie die gewünschte Bioreaktor im Schiff-Halter zu, ggf. (Bioreaktoren #1, #3 bis #10) oder setzen Sie die Kopfplatte auf dem Bioreaktor Behälter (Bioreaktor #2) und ziehen Sie die Kopfplatte mit Schrauben.<ol>
<li>Legen Sie für Untersuchungen der Glas-Bioreaktoren Glas Bioreaktors in den Halter</li>
		<li>Für Untersuchungen von Einweg-Bioreaktoren Zerlegen der oben montierten Schläuche Häfen und Laufrad Welle Gehäuse aus Kunststoff Kopfplatten mithilfe geeigneter Werkzeuge. Stellen Sie das Kunststoff Gefäß in den Halter.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Legen Sie einen Temperatursensor innerhalb des Bioreaktors und verbinden Sie es mit der Control Unit. Schließen Sie den Schlauch für die Druckluft an die Gas-Einlassstutzen des Luftlager und ein Druck von etwa 5,5 Bar von einem Kompressor zur Verfügung gestellt. Die Drehmoment-Wandler an den A/D-Wandler und schalten Sie den Sender anschließen.</li>
</ol>(4) Konfigurationen in der Datenerfassungs-software
<ol><li>Öffnen Sie die Software für die Datenerfassung der Drehmoment-Sensor-Signal und konfigurieren Sie die Messung-Einstellungen zu.<ol>
<li>Stellen Sie sicher, dass die ersten beiden Kanäle in den DAQ-Kanäle -Fenster initialisiert und aktiv sind. In dieser Studie wurde die drehmomentsignals auf Kanal 0 und die Drehzahlsignal war auf Kanal 1 eingestellt.<ol>
<li>Klicken Sie auf den Live update -Button, um die aktuellen Messwerte anzuzeigen.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Die Drehmoment-Kanal-Signal auf NULL gesetzt, wenn die absolute drehmomentsignals ohne Rotation größer als 0,1 mN·m mit der rechten Maustaste klicken Sie auf das Kanal in der Kanalliste und mit der Option null auszugleichen .</li>
		<li>Navigieren Sie zur Registerkarte DAQ Job und definieren Sie eine Datenrate Erwerb von 2 Hz aus der Drop-Down-Menü-Liste. Verwenden Sie die Optionen sofort an die Arbeit zu beginnen und die Dauer aus den Dropdown-Listen für das starten und stoppen der Datenerfassung, beziehungsweise eingestellt.</li>
		<li>Definieren Sie eine Zeitspanne für die Dauer der Probe , die länger als die Zeit für die Messung (z. B. Verwendung 1 h 0 m 30 s nach einem einstündigen Rezept im zweiten Schritt definiert) zu beenden.</li>
		<li>Navigieren Sie zu der Datenspeicherung -Seite "Einstellungen" und wählen Sie die Option ASCII + Kanal Info aus der Dropdown-Liste auf die Datei-format , für die Daten speichern Datei festgelegt. Legen Sie einen Dateipfad auf der PC-Festplatte für die Messung Ausgabedatei.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. führen Sie die Drehmomentmessung
<ol><li>Starten Sie die Datenerfassung für die Drehmoment-Signal in der Steuerung und Software zur Datenerfassung für das Drehmoment-Messgerät durch Klicken auf die Start -Schaltfläche auf der Menüseite DAQ Job .</li>
	<li>Starten Sie die Datenerfassung für das Rührwerk-Geschwindigkeit und die Temperatur in der Steuerungssoftware Einheit Bioreaktor klickst du DAQ starten auf der Registerkarte Einstellungen .</li>
	<li>Starten Sie das Rührwerk-Steuerelement in der Steuerungssoftware Einheit mit einem manuellen Sollwert oder die vordefinierten Rezept-Regelung.<ol>
<li>Wenn eine einzelne Messung durchgeführt wird, verwenden Sie den Kontrolle Feld Eintrag auf der Registerkarte Main der Bioreaktor Steuerungssoftware. Geben Sie den gewünschten Sollwert in das Textfeld ein und klicken Sie auf das Element "Rührwerk Steuerung auf".</li>
		<li>Wenn mehrere Messungen mit einem Rezept durchgeführt werden, navigieren Sie zur Registerkarte Phasen und klicken Sie auf die Schaltfläche " starten ". Hinweis: Die Software wird automatisch deaktivieren alle manuelle Eingabe-Felder für die Dauer des Rezepts und ein Fenster öffnet sich automatisch, um das Ende des Prozesses zu bestätigen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>In der Datenerfassungs-Software ein Fenster öffnet sich automatisch nach den vorab definierten Messdauer. Sichern Sie die Daten für jede Messung auf den Bediener PC, vorzugsweise auf der Festplatte, indem Sie auf die Schaltfläche speichern Daten jetzt .</li>
	<li>Wiederholen Sie die Messung für jede gewünschte Rührwerk Drehzahl ohne und mit Flüssigkeit innerhalb des Bioreaktors.<ol>
<li>Gießen Sie Wasser (oder die Saccharoselösung) durch einen Trichter in den Bioreaktor. Hinweis: Stellen Sie sicher, dass die Flüssigkeit vollständig die Laufräder abdeckt, da (teilweise) ausgesetzt Laufräder unerwünschte Axialkräfte führen können, die den Drehmoment-Sensor beschädigen könnten.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. die Datenauswertung
Hinweis: Die erhaltenen Drehmomentwerte im leeren Behälter (tot Drehmoment) die verbleibende Reibungsverluste des Lagers entsprechen und müssen von den Werten in der Flüssigkeit bestimmt, um die wirksame Drehmomentwerte zu erhalten (siehe GL. 1) abgezogen werden.
<ol><li>Durchschnittlich erreicht die Drehmomentwerte für jedes Rührwerk Geschwindigkeit gemessen, nachdem ein quasi-stabiles Signal wurde (siehe Diskussion unten). Im Idealfall berechnen Sie den Mittelwert über einen Zeitraum von mindestens 2 min für jede Bedingung, 240 Datenpunkte mit einer Messung-Rate von 2 Hz entspricht.</li>
	<li>Verwenden Sie einen Matlab-Code für die Datenverarbeitung durch Ausführen des Codes aus der Software-Befehlszeile. Hinweis: Der Code wird im Abschnitt Ergänzung dieser Handschrift zum Download bereitgestellt. Dieses Skript importiert die raw-Daten-Datei aus der Datenerfassung, berechnet die durchschnittliche Drehzahl Phase, Reynolds-Zahl (von GL. 3 Basierend auf Eingaben des Benutzers) und Drehmoment-Werte für jede der Phasen, visualisiert die Ergebnisse und speichert die Ergebnisse in einem zweiten text Datei, die dann verwendet werden, um die Daten weiter zu verarbeiten.</li>
	<li>Subtrahieren Sie die Drehmomentwerte, die in den leeren Behälter von den gemessenen in der Flüssigkeit um die Drehmoment-Werte zu erhalten.</li>
	<li>Berechnen Sie die Leistungsaufnahme und die Anzahl der dimensionslose macht aus der Zeit gemittelt Drehmomentwerte nach GL. 1 und GL. 2.</li>
</ol>

<ol>
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C., Werner, S., Eibl, D., Eibl, R., Eibl, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CFD+as+tool+to+characterize+single-use+bioreactors.">CFD as tool to characterize single-use bioreactors.</a> Single-Use Technology in Biopharmaceutical Manufacture. , 264-279 (2010).</li><li>Liepe, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Verfahrenstechnische+Berechnungsmethoden+Teil+4:+Stoffvereinigen+in+fluiden+Phasen+-+Ausr&#252;stungen+und+ihre+Berechnung.">Verfahrenstechnische Berechnungsmethoden Teil 4: Stoffvereinigen in fluiden Phasen - Ausr&#252;stungen und ihre Berechnung.</a> VEB Deutscher Verlag f&#252;r Grundstoffindustrie. , (1988).</li><li>Kraume, M., Zehner, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experience+with+experimental+standards+for+measurements+of+various+parameters+in+stirred+tanks:+a+comparative+test.">Experience with experimental standards for measurements of various parameters in stirred tanks: a comparative test.</a> Chem. Eng. Res. Des. 79, 811-818 (2001).</li><li>Werner, S., Greulich, J., Geipel, K., Steingroewer, J., Bley, T., Eibl, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mass+propagation+of+Helianthus+annuus+suspension+cells+in+orbitally+shaken+bioreactors:+Improved+growth+rate+in+single-use+bag+bioreactors.">Mass propagation of Helianthus annuus suspension cells in orbitally shaken bioreactors: Improved growth rate in single-use bag bioreactors.</a> Eng. Life Sci. 14, 676-684 (2014).</li></ol>

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte erklärt.

Trotz der Bedeutung von (bestimmten) Leistungsaufnahme für die technische Charakterisierung und scaling-Up/Down von Bioreaktoren, nur wenige Veröffentlichungen über experimentelle Untersuchungen in Benchtop Skala Bioreaktoren, insbesondere Einweg-Systeme in der einstellige Liter Volumen Palette finden Sie in der Literatur. Ein Grund für diesen Mangel an Daten entnehmen bitte den Schwierigkeiten der genaue Eingabe Leistungsmessungen in solchen kleinen Maßstäben. Um einige dieser Schwierigkeiten zu überwinden, bietet die vorliegende Studie ein detailliertes Protokoll für Drehmoment basierte Eingabe Leistungsmessungen, die durch ein Luftlager, die Reibungsverluste im Lager zu minimieren unterstützt werden. Die Anwendbarkeit der Methode zeigte sich mit drei handelsüblichen Einweg-Bioreaktoren sowie Multi-Use Bioreaktoren in Maßstäben zwischen 1 L und 10 L Arbeitsvolumen.
Basierend auf unserer Erfahrung mit den Maßen Drehmoment basiert, sind die wichtigsten Faktoren zur Adresse: Bioreaktoren und (2) die Auswahl der Skalierung (1) Verringerung der Toten Drehmoment durch die Minimierung der Reibungsverluste in den Lagern und Dichtungen, insbesondere im Labor eine geeigneten Drehmoment m für die gewünschte Bioreaktor Größe und Unruhe. Wie frühere35gezeigt hat, kann durch die Verwendung von ein Luftlager tot Drehmoment drastisch. In der vorliegenden Studie wurde eine kostengünstige Luft-Buchse gemacht der poröse Carbon-Material verwendet. Restdrehmoment in die Leere Gefäße, die getestet wurden in der Regel unter 0,5 mN·m mit Agitation Raten von bis zu 900 u/min, Laufrad Umfangsgeschwindigkeiten von bis zu 3 M·s-1entspricht. Im Gegensatz dazu die Toten Drehmoment des Bioreaktors #6 mit dem eingebauten mechanischen Wellenlagerung war zum Beispiel zwischen 9,4 mN·m und 20 mN·m und vergleichbare Werte von etwa 3 mN·m haben auch berichtet, für den Bioreaktor #7-32. Dies ist etwa eine Größenordnung höher als die Werte, die in der vorgeschlagenen Versuchsaufbau.
Neben dem Luftlager ist das Drehmoment-Messgerät verwendet die kritischste Komponente. Ein kommerziell verfügbare Drehmoment-Messgerät, das dient zur Messung der statischen und dynamischen Drehmoment, Drehzahl und Drehwinkel wurde für diese Studie ausgewählt. In Anbetracht der Bioreaktoren von Interesse mit max. Arbeitsvolumen von 10 L und der entsprechenden Rührwerke wurde ein Nenndrehmoment von 0,2 nm gewählt. Es wurde festgestellt, dass hoher Reproduzierbarkeit mit relative Standardabweichung von < 5 repliziert % und zuverlässige Messungen Sie für so niedrig wie 2 mN·m erhalten, nur 1 % des Nennmomentes entsprechend wirksamen Drehmomente. Daher wurde der Messbereich des Sensors angewendet in der vorliegenden Studie deutlich breiter ist als Ergebnisse die veröffentlicht wurden, basierend auf einer laborübergreifenden Studie von Mitgliedern des Arbeitskreises deutsche GVC-VDI auf41mischen.
Das Leistungsspektrum der Rührer Geschwindigkeit sollte dennoch sorgfältig hinsichtlich der Drehmoment-Sensor-Auflösung, das Nenndrehmoment und Wirbelbildung ausgewählt werden. Letztere oft tritt in unbaffled Bioreaktoren bei höheren Geschwindigkeiten unruhig und kann Schäden an das Drehmoment-Messgerät. Sowohl die minimale und maximale machbar Rührwerk Geschwindigkeiten können Faktoren des in dieser Studie beschriebenen Verfahrens begrenzt. Neben unserer bisherigen Arbeiten Sie35, diese Studie beteiligten auch den Bioreaktor #3, das kleinste Mitglied in Glas-Bioreaktor-Familie des Herstellers, die durch zwei-Phasen-Laufräder mit einem Durchmesser von 42 mm aufgeregt ist. Ein vergleichbarer Leistung Merkmal, dass im geometrisch ähnlichen Bioreaktor #4 wurde mit der vorgestellten Versuchsaufbau erhalten. Dies ist bemerkenswert, da das Drehmoment M skaliert <img alt="Proportional to" src="/files/ftp_upload/56078/56078pro.jpg"> d5 für einen gegebenen flüssigkeitsdichte, Laufrad-Geometrie (d.h. macht Nummer) und Drehzahl (siehe GL. 1 und GL. 2). Infolgedessen eine ca. 40 % niedrigeres Laufrad Drehmoment ergibt sich aus einen 10 % geringeren Laufrad-Durchmesser, zum Beispiel. Dennoch bedurfte es höhere Drehzahlen in der 1 L-Skala als in der 2 L-Skala während des Betriebes, das erzeugte Drehmoment mit der zur Verfügung stehende Drehmoment-Messgerät zu lösen. Aufgrund der eingebauten Schikanen des Bioreaktors #3 keine Wirbelbildung beobachtet wurde, aber dies kann ein Problem mit unbaffled Schiffe werden. Es sollte betont werden, dass die Konstante offset in den Strom Zahlen, die zwischen den zwei Skalen gefunden wurde von Messungenauigkeiten, verursacht durch die begrenzte Sensorauflösung (neben geometrischen Unterschiede) führen könnte. Weitere Untersuchungen sind erforderlich, um endgültige Schlussfolgerungen auf den kleinsten Wert, an dem die vorgeschlagene Einrichtung noch machbar ist.
Dennoch diente das gleiche Protokoll Eingabe Leistungsmessungen in verschiedenen Glasgefäße von verschiedenen Herstellern mit Arbeitsvolumen von 1 L bis 10 L in unserem Labor. Dies unterstreicht die Übertragbarkeit der verwendeten Methode zur Charakterisierung der verschiedenen bioreaktorsystem. Die experimentellen Aufwand könnte durch automatisierte Messungen mit dem Rezeptmanagement in das Automatisierungssystem von der Steuerungssoftware Einheit zur Verfügung gestellt und die automatisierte Datenverarbeitung basierend auf der universellen Matlab-Sprache reduziert werden.
Ferner sei angemerkt, dass mithilfe der Saccharose, billiges Newtonschen Modell Medien, eine breite Palette von Reynolds-Zahlen enthalten (100 < Re < 6·104), je nach Maßstab und Rührwerk, bedeckt war. Es sollte auch betont werden, dass die untere Grenze des Bereichs Turbulenzen für tierische Zellkulturen mit Wasser-wie Medien, in der Regel nicht relevant ist, auch wenn sehr niedrige Laufrad Geschwindigkeiten verwendet werden. Jedoch deutliche Zuwächse in der Brühe Viskosität, die Ergebnisse in Turbulenzen Dämpfung und sogar nicht-Newtonsches Verhalten für Pilze beschrieben worden und zellbasierte Kulturen zu Pflanzen. Zum Beispiel waren offensichtlichste Viskositäten in Pflanzenkulturen von bis zu 400-fold im Vergleich zu Wasser gemeldeten42, die führt zu wesentlich niedrigeren Reynolds-Zahlen.
Schließlich wurde unter Verwendung des Bioreaktors #7 als eine erste Fallstudie, nachgewiesen, dass die vorgeschlagenen Versuchsaufbau verwendet werden kann, um die Wirkung von Design-Modifikationen auf die Leistungsaufnahme im Labormaßstab untersuchen. Dies kann in Kombination mit rapid-Prototyping-Techniken ein leistungsfähiges Werkzeug für Laufrad Designstudien, bilden Teile der künftigen Arbeit.

Leistungsaufnahme ist engineering Schlüsselparameter für die Charakterisierung und Skalierung von Bioreaktoren, denn es bezieht sich auf viele Grundoperationen, z. B. Homogenisierung1,2,3, Gas-Flüssigkeits-Dispersion2 , 4 , 5, Heat Transfer6 und solide Aufhängung7. Leistungsaufnahme ist Scherbeanspruchung, die besonders beeinflussen Wachstum und Produktbildung in Scherung sensible Zelle Kulturen8,9,10,11können auch zugeordnet.
Am häufigsten verwendeten Techniken ziehen für die Messung der Leistungsaufnahme in gerührten Bioreaktoren basieren auf elektrischen Strom12,13,14, Kalorimetrie12,15 (d.h. stationäre Wärme- Gleichgewicht oder dynamische Heizung durch die Agitation) oder das Drehmoment auf das Rührwerk. Letzteres kann experimentell bestimmt werden Dynamometer, Drehmoment m oder Dehnungsmessstreifen, die für eine Vielzahl von Rührwerken, einschließlich ein- oder mehrstufigen Rushton Turbinen1,16,17 angewendet wurden , 18 , 19 , 20 , 21 , 22 , 23 , 24 , 25, geneigte Klinge Laufräder19,20,23,26,27, InterMig19,21 und Scaba Laufräder28 , 29. eine detaillierte Überprüfung erfolgt durch Ascanio Et Al. (2004)30.
Aus dem Drehmoment (T) kann die Leistungsaufnahme (P) aus GL. 1, abschätzen, wo N die Drehzahl des Rührwerks ist.
<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/56078/56078eq1.jpg">(1)
Um Verluste in der Agitation (im Lager, Dichtungen und der Motor selbst) Rechnung zu tragen, sollte das wirksame Drehmoment (TEff) als die Differenz zwischen dem Wert, gemessen in den leeren Behälter (T-D) und in der Flüssigkeit (TL festgelegt werden ). Zu guter Letzt kann die dimensionslose macht Zahl (P0, auch bekannt als Newton Zahl), die durch GL. 2 wo ρL bezeichnet die Dichte die flüssige und d steht für das Laufrad-Durchmesser definiert ist, verschiedene Rührwerke vergleichen verwendet werden.
<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/56078/56078eq2.jpg">(2)
Es ist bekannt, dass die macht eine Funktion der Reynoldszahl (d. h. die Turbulenzen ist) und wird vollständig turbulente Bedingungen konstant. GL. 3, woL η die Viskosität der Flüssigkeit ist das Laufrad Reynoldszahl bestimmt.
<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/56078/56078eq3.jpg">(3)
Eingabe Leistungsmessungen in kleinem Maßstab Bioreaktoren sind jedoch durch die relativ hohe Reibungsverluste im Inneren mechanischen Lagern der Laufrad-Wellen und die begrenzte Genauigkeit von kommerziell verfügbaren Drehmoments m noch anspruchsvoll. Infolgedessen geben nur wenige Berichte über macht Messungen im Benchtop Maßstab Bioreaktoren wurden17,18,22,24,31,32veröffentlicht. Es gibt auch einen Mangel an Daten über die Leistungsaufnahme in Einweg-Bioreaktoren, die von den Herstellern vormontiert, sterilisiert und Ready-to-Use33,34geliefert werden. Im Gegensatz zu wiederverwendbaren Pendants sind die meisten Einweg-Bioreaktoren von speziell entwickelten Laufräder, erschwert Vergleiche aufgeregt.
Um diese Lücke zu schließen, wurde vor kurzem eine zuverlässige Methode zur Eingabe Leistungsmessungen mit speziellem Fokus auf Labor-Maßstab-Rührer35entwickelt. Die Drehmomentwerte gemessen in die Leere Gefäße, die durch die Reibungsverluste verursacht wurden, wurden durch den Einsatz von einem Luftlager effektiv reduziert. Folglich eine Vielzahl von Betriebsbedingungen mit niedrigen bis mäßigen Turbulenzen (100 < Re < 2·104) könnte untersucht werden, und die Leistungsaufnahme von mehreren Multi-Use und Einweg-Bioreaktoren zur Verfügung gestellt.
Die vorliegende Studie bietet eine detaillierte Messprotokolle der zuvor entwickelten Methode und beschreibt das Einrichten, durchführen und bewerten eine Drehmoment-basierte Eingabe Leistungsmessung im Labor-Maßstab-Bioreaktoren. Besonderer Fokus liegt auf kommerziell erhältliche Single - und multi - use-Systeme. Eine automatisierte Messverfahren wird verwendet, um den experimentellen Aufwand reduzieren.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>T20WN torque meter</td>
			<td>HBM Hottinger Baldwin 
			Messtechnik GmbH</td>
			<td></td>
			<td>Nominal torque 0.2 Nm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spider-8</td>
			<td>HBM Hottinger Baldwin 
			Messtechnik GmbH</td>
			<td></td>
			<td>HBM Spider8 is no longer available for sale. QuantumX 
			DAQ system (especially the QuantumX modules MX840A and MX440A) are recommended.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Catman easy software</td>
			<td>HBM Hottinger Baldwin 
			Messtechnik GmbH</td>
			<td></td>
			<td>Version 4.2.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Air bearing</td>
			<td>IBS precision engineering</td>
			<td></td>
			<td>13 mm air bushing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel impeller shaft</td>
			<td>Bioengineering AG</td>
			<td></td>
			<td>Shaft tolerance -0.0076 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Brushless motor AKM2</td>
			<td>Kollmorgen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metal bellow coupling</td>
			<td>Uiker AG</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Finesse RDPDmini control unit</td>
			<td>Finesse, a part of Thermo Fisher Scientific</td>
			<td></td>
			<td>No longer supported (the replacement product G3Lab universal controller can be used)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>Migros Schweiz AG</td>
			<td></td>
			<td>Food grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matlab software</td>
			<td>Mathworks</td>
			<td></td>
			<td>Version R2017a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Finesse &#956;TruBio PC software</td>
			<td>Finesse, a part of Thermo Fisher Scientific</td>
			<td></td>
			<td>Version 3.1 (no longer supported)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SmartGlass 1L</td>
			<td>Finesse, a part of Thermo Fisher Scientific</td>
			<td></td>
			<td>referred to as Bioreactor 1L in Table 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SmartGlass 3L</td>
			<td>Finesse, a part of Thermo Fisher Scientific</td>
			<td></td>
			<td>referred to as Bioreactor 3L in Table 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SmartVessel 3L</td>
			<td>Finesse, a part of Thermo Fisher Scientific</td>
			<td></td>
			<td>referred to as Single-Use 3L Bioreactor in Table 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mobius CellReady 3L</td>
			<td>Merck Millipore</td>
			<td></td>
			<td>referred to as Cell Ready Single-Use 3L Bioreactor in Table 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UniVessel SU 2L</td>
			<td>Sartorius Stedim Biotech</td>
			<td></td>
			<td>referred to as Single-Use 2L Bioreactor in Table 2</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

power input measurements in stirred bioreactors at laboratory scale

Die Leistungsaufnahme in gerührten Bioreaktoren ist ein wichtiger Parameter der Skalierung und durch das Drehmoment, das während der Drehung auf das Laufrad Welle wirkt gemessen werden kann. Allerdings ist die experimentelle Bestimmung der Leistungsaufnahme in kleinen Gefäßen aufgrund relativ hohe Reibungsverluste im Inneren in der Regel verwendeten Buchsen, Lager und/oder Wellendichtungen und die Genauigkeit von kommerziell verfügbaren Drehmoments m immer noch eine Herausforderung. So gibt es nur begrenzte Daten für kleinräumige Bioreaktoren, insbesondere Single-Use-Systeme in der Literatur, erschwert Vergleiche zwischen verschiedenen Single-Use-Systeme und ihre konventionellen Pendants.
Diese Handschrift enthält ein Protokoll zum Netzeingänge in Bioreaktoren Benchtop Skala über einen weiten Bereich von turbulenzbedingungen zu messen, die durch die dimensionslose Reynolds-Zahl (Re) beschrieben werden kann. Die oben genannten Reibungsverluste werden durch den Einsatz von einem Luftlager wirkungsvoll reduziert. Das Verfahren zum Einrichten, Durchführung und Auswertung einer Drehmoment-basierte macht Eingang Messung, mit besonderem Fokus auf Zelle typische Unruhe Kulturbedingungen mit niedrigen bis mäßigen Turbulenzen (100 < Re < 2·104), wird im Detail beschrieben. Die Leistungsaufnahme von mehreren Multi-Use und Einweg-Bioreaktoren erfolgt durch die dimensionslose macht Anzahl (auch genannt Newton Nummer, P0), bestimmt im Bereich von P0 ≈ 0,3 und P0 ≈ 4,5 für die maximale Reynolds-Zahlen werden in den verschiedenen Bioreaktoren.

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Power Input Measurements in Stirred Bioreactors at Laboratory Scale

Die Leistungsaufnahme in gerührten Bioreaktoren kann durch das Drehmoment gemessen werden, die während der Drehung auf das Laufrad Welle fungiert. Dieses Manuskript wird beschrieben, wie ein Luftlager verwendet werden kann, um effektiv reduzieren Reibungsverluste in Gleitringdichtungen beobachtet und verbessert die Genauigkeit der Eingabe Leistungsmessungen in kleinen Gefäßen.

Eingabe Leistungsmessungen in gerührten Bioreaktoren im Labormaßstab

The power input in stirred bioreactors is an important scaling-up parameter and can be measured through the torque that acts on the impeller shaft during ...

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17.6K Aufrufe.  Thermo Fisher Scientific. Die Leistungsaufnahme in gerührten Bioreaktoren kann durch das Drehmoment gemessen werden, die während der Drehung auf das Laufrad Welle fungiert. Dieses Manuskript wird beschrieben, wie ein Luftlager verwendet werden kann, um effektiv reduzieren Reibungsverluste in Gleitringdichtungen beobachtet und verbessert die Genauigkeit der Eingabe Leistungsmessungen in kleinen Gefäßen.

Serie: Power Input Measurements in Stirred Bioreactors at Laboratory Scale

High Throughput MicroRNA Profiling: Optimized Multiplex qRT-PCR at Nanoliter Scale on the Fluidigm Dynamic ArrayTM IFCs

The broad involvement of miRNAs in critical processes underlying development, tissue homoeostasis and disease has led to a surging interest among the research and pharmaceutical communities. To study miRNAs, it is essential that the quantification of microRNA levels is accurate and robust. By comparing wild-type to small RNA deficient mouse embryonic stem cells (mESC), we revealed a lack of accuracy and robustness in previous published multiplex qRT-PCR techniques. Here, we describe an optimized method, including purifying away excessive primers from previous multiplex steps before singleplex real time detection, which dramatically increases the accuracy and robustness of the technique. Furthermore, we explain how performing the technique on a microfluidic chip at nanoliter volumes significantly reduces reagent costs and permits time effective high throughput miRNA expression profiling.

Here we describe an optimized multiplex reverse transcriptase quantitative PCR (qRT-PCR) protocol in combination with a microfluidic platform as a cost and time effective high-throughput screening tool for microRNA (miRNA) expression levels, especially when working with limited amounts of sample.

High Throughput MicroRNA Profiling: Optimierte Multiplex qRT-PCR in Nanoliter-Maßstab auf dem Fluidigm Dynamische ArrayTM IFCs

The broad involvement of miRNAs in critical processes underlying development, tissue homoeostasis and disease has led to a surging interest among the ...

Forschung

Biotechnik

Synthetic Spider Silk Production on a Laboratory Scale

As society progresses and resources become scarcer, it is becoming increasingly important to cultivate new technologies that engineer next generation biomaterials with high performance properties. The development of these new structural materials must be rapid, cost-efficient and involve processing methodologies and products that are environmentally friendly and sustainable. Spiders spin a multitude of different fiber types with diverse mechanical properties, offering a rich source of next generation engineering materials for biomimicry that rival the best manmade and natural materials. Since the collection of large quantities of natural spider silk is impractical, synthetic silk production has the ability to provide scientists with access to an unlimited supply of threads. Therefore, if the spinning process can be streamlined and perfected, artificial spider fibers have the potential use for a broad range of applications ranging from body armor, surgical sutures, ropes and cables, tires, strings for musical instruments, and composites for aviation and aerospace technology. In order to advance the synthetic silk production process and to yield fibers that display low variance in their material properties from spin to spin, we developed a wet-spinning protocol that integrates expression of recombinant spider silk proteins in bacteria, purification and concentration of the proteins, followed by fiber extrusion and a mechanical post-spin treatment. This is the first visual representation that reveals a step-by-step process to spin and analyze artificial silk fibers on a laboratory scale. It also provides details to minimize the introduction of variability among fibers spun from the same spinning dope. Collectively, these methods will propel the process of artificial silk production, leading to higher quality fibers that surpass natural spider silks.

Despite the outstanding mechanical and biochemical properties of spider silks, this material cannot be harvested in large quantities by conventional means. Here we describe an efficient strategy to spin artificial spider silk fibers, which is an important process for investigators studying spider silk production and their use as next-generation biomaterials.

Synthetische Spinnenseide Produktion im Labormaßstab

As society progresses and resources become scarcer, it is becoming increasingly important to cultivate new technologies that engineer next generation ...

Hollow Fiber Bioreactors for In Vivo-like Mammalian Tissue Culture

Tissue culture has been used for over 100 years to study cells and responses ex vivo. The convention of this technique is the growth of anchorage dependent cells on the 2-dimensional surface of tissue culture plastic. More recently, there is a growing body of data demonstrating more in vivo-like behaviors of cells grown in 3-dimensional culture systems. This manuscript describes in detail the set-up and operation of a hollow fiber bioreactor system for the in vivo-like culture of mammalian cells. The hollow fiber bioreactor system delivers media to the cells in a manner akin to the delivery of blood through the capillary networks in vivo. The system is designed to fit onto the shelf of a standard CO2 incubator and is simple enough to be set-up by any competent cell biologist with a good understanding of aseptic technique. The systems utility is demonstrated by culturing the hepatocarcinoma cell line HepG2/C3A for 7 days. Further to this and in line with other published reports on the functionality of cells grown in 3-dimensional culture systems the cells are shown to possess increased albumin production (an important hepatic function) when compared to standard 2-dimensional tissue culture.

Hollow Fiber Bioreactors for In Vivo-like Mammalian Tissue Culture

The functional behavior of cells in culture can be improved by culturing in more in vivo-like 3-dimensional culture environments16-21. This manuscript describes the set-up and operation of a hollow fiber bioreactor system for in vivo-like mammalian tissue culture.

Hohlfaser-Bioreaktoren für<em&gt; In Vivo</em&gt; -ähnlichen Mammalian Gewebekultur

Tissue culture has been used for over 100 years to study cells and responses ex vivo. The convention of this technique is the growth of anchorage ...

Rapid Scan Electron Paramagnetic Resonance Opens New Avenues for Imaging Physiologically Important Parameters In Vivo

We demonstrate a superior method of 2D spectral-spatial imaging of stable radical reporter molecules at 250 MHz using rapid-scan electron-paramagnetic-resonance (RS-EPR), which can provide quantitative information under in vivo conditions on oxygen concentration, pH, redox status and concentration of signaling molecules (i.e., OH&#8226;, NO&#8226;). The RS-EPR technique has a higher sensitivity, improved spatial resolution (1 mm), and shorter acquisition time in comparison to the standard continuous wave (CW) technique. A variety of phantom configurations have been tested, with spatial resolution varying from 1 to 6 mm, and spectral width of the reporter molecules ranging from 16 &#181;T (160 mG) to 5 mT (50 G). A cross-loop bimodal resonator decouples excitation and detection, reducing the noise, while the rapid scan effect allows more power to be input to the spin system before saturation, increasing the EPR signal. This leads to a substantially higher signal-to-noise ratio than in conventional CW EPR experiments.

Rapid Scan Electron Paramagnetic Resonance Opens New Avenues for Imaging Physiologically Important Parameters In Vivo

A new electron paramagnetic resonance (EPR) method, rapid scan EPR (RS-EPR), is demonstrated for 2D spectral spatial imaging which is superior to the traditional continuous wave (CW) technique and opens new venues for in vivo imaging. Results are demonstrated at 250 MHz, but the technique is applicable at any frequency.

Rapid-Scan-Elektronenspinresonanz eröffnet neue Wege für Imaging Physiologisch Wichtige Parameter<em&gt; In Vivo</em

We demonstrate a superior method of 2D spectral-spatial imaging of stable radical reporter molecules at 250 MHz using rapid-scan ...

Studying Soft-matter and Biological Systems over a Wide Length-scale from Nanometer and Micrometer Sizes at the Small-angle Neutron Diffractometer KWS-2

The KWS-2 SANS diffractometer is dedicated to the investigation of soft matter and biophysical systems covering a wide length scale, from nm to &#181;m. The instrument is optimized for the exploration of the wide momentum transfer Q range between 1x10-4 and 0.5 &#197;-1 by combining classical pinhole, focusing (with lenses), and time-of-flight (with chopper) methods, while simultaneously providing high-neutron intensities with an adjustable resolution. Because of its ability to adjust the intensity and the resolution within wide limits during the experiment, combined with the possibility to equip specific sample environments and ancillary devices, the KWS-2 shows a high versatility in addressing the broad range of structural and morphological studies in the field. Equilibrium structures can be studied in static measurements, while dynamic and kinetic processes can be investigated over time scales between minutes to tens of milliseconds with time-resolved approaches. Typical systems that are investigated with the KWS-2 cover the range from complex, hierarchical systems that exhibit multiple structural levels (e.g., gels, networks, or macro-aggregates) to small and poorly-scattering systems (e.g., single polymers or proteins in solution). The recent upgrade of the detection system, which enables the detection of count rates in the MHz range, opens new opportunities to study even very small biological morphologies in buffer solution with weak scattering signals close to the buffer scattering level at high Q.
In this paper, we provide a protocol to investigate samples with characteristic size levels spanning a wide length scale and exhibiting ordering in the mesoscale structure using KWS-2. We present in detail how to use the multiple working modes that are offered by the instrument and the level of performance that is achieved.

Here, we present a protocol to investigate soft matter and biophysical systems over a wide mesoscopic length scale, from nm to &#181;m that involves the use of the KWS-2 SANS diffractometer at high intensities and an adjustable resolution.

Studieren weicher Materie und biologischer Systeme über eine Breite Länge-Skala von Nanometer- und Mikrometer Größen im Kleinwinkel Neutronendiffraktometer KWS-2

The KWS-2 SANS diffractometer is dedicated to the investigation of soft matter and biophysical systems covering a wide length scale, from nm to &#181;m. ...

Mammalian Cell Encapsulation in Alginate Beads Using a Simple Stirred Vessel

Cell encapsulation in alginate beads has been used for immobilized cell culture in vitro as well as for immunoisolation in vivo. Pancreatic islet encapsulation has been studied extensively as a means to increase islet survival in allogeneic or xenogeneic transplants. Alginate encapsulation is commonly achieved by nozzle extrusion and external gelation. Using this method, cell-containing alginate droplets formed at the tip of nozzles fall into a solution containing divalent cations that cause ionotropic alginate gelation as they diffuse into the droplets. The requirement for droplet formation at the nozzle tip limits the volumetric throughput and alginate concentration that can be achieved. This video describes a scalable emulsification method to encapsulate mammalian cells in 0.5% to 10% alginate with 70% to 90% cell survival. By this alternative method, alginate droplets containing cells and calcium carbonate are emulsified in mineral oil, followed by a decrease in pH leading to internal calcium release and ionotropic alginate gelation. The current method allows the production of alginate beads within 20 min of emulsification. The equipment required for the encapsulation step consists in simple stirred vessels available to most laboratories.

This video and manuscript describe an emulsion-based method to encapsulate mammalian cells in 0.5% to 10% alginate beads which can be produced in large batches using a simple stirred vessel. The encapsulated cells can be cultured in vitro or transplanted for cellular therapy applications.

Säugetierzellverkapselung in Alginatperlen unter Verwendung eines einfachen gerafften Gefäßes

Cell encapsulation in alginate beads has been used for immobilized cell culture in vitro as well as for immunoisolation in vivo. Pancreatic islet ...

A Tripeptide-Stabilized Nanoemulsion of Oleic Acid

We describe a method to produce a nanoemulsion composed of an oleic acids-Pt(II) core and a lysine-tyrosine-phenylalanine (KYF) coating (KYF-Pt-NE). The KYF-Pt-NE encapsulates Pt(II) at 10 wt. %, has a diameter of 107 &#177; 27 nm and a negative surface charge. The KYF-Pt-NE is stable in water and in serum, and is biologically active. The conjugation of a fluorophore to KYF allows the synthesis of a fluorescent nanoemulsion that is suitable for biological imaging. The synthesis of the nanoemulsion is performed in an aqueous environment, and the KYF-Pt-NE forms via self-assembly of a short KYF peptide and an oleic acids-platinum(II) conjugate. The self-assembly process depends on the temperature of the solution, the molar ratio of the substrates, and the flow rate of the substrate addition. Crucial steps include maintaining the optimal stirring rate during the synthesis, permitting sufficient time for self-assembly, and pre-concentrating the nanoemulsion gradually in a centrifugal concentrator.

This protocol describes an efficient method to synthesize a nanoemulsion of an oleic acids-platinum(II) conjugate stabilized with a lysine-tyrosine-phenylalanine (KYF) tripeptide. The nanoemulsion forms under mild synthetic conditions via self-assembly of the KYF and the conjugate.

Ein Tripeptid-stabilisierten Nanoemulsion Ölsäure

We describe a method to produce a nanoemulsion composed of an oleic acids-Pt(II) core and a lysine-tyrosine-phenylalanine (KYF) coating (KYF-Pt-NE). The ...

Protocols of 3D Bioprinting of Gelatin Methacryloyl Hydrogel Based Bioinks

Gelatin methacryloyl (GelMA) has become a popular biomaterial in the field of bioprinting. The derivation of this material is gelatin, which is hydrolyzed from mammal collagen. Thus, the arginine-glycine-aspartic acid (RGD) sequences and target motifs of matrix metalloproteinase (MMP) remain on the molecular chains, which help achieve cell attachment and degradation. Furthermore, formation properties of GelMA are versatile. The methacrylamide groups allow a material to become rapidly crosslinked under light irradiation in the presence of a photoinitiator. Therefore, it makes great sense to establish suitable methods for synthesizing three-dimensional (3D) structures with this promising material. However, its low viscosity restricts GelMA's printability. Presented here are methods to carry out 3D bioprinting of GelMA hydrogels, namely the fabrication of GelMA microspheres, GelMA fibers, GelMA complex structures, and GelMA-based microfluidic chips. The resulting structures and biocompatibility of the materials as well as the printing methods are discussed. It is believed that this protocol may serve as a bridge between previously applied biomaterials and GelMA as well as contribute to the establishment of GelMA-based 3D architectures for biomedical applications.

Presented here is a method for the 3D bioprinting of gelatin methacryloyl.

Protokolle des 3D-Bioprintings von Gelatine Methacryloyl Hydrogel-basierten Bioinks

Gelatin methacryloyl (GelMA) has become a popular biomaterial in the field of bioprinting. The derivation of this material is gelatin, which is hydrolyzed ...

Process Optimization using High Throughput Automated Micro-Bioreactors in Chinese Hamster Ovary Cell Cultivation

Optimization of bioprocesses to increase the yield of desired products is of importance in the biopharmaceutical industry. This can be achieved by strain selection and by developing bioprocess parameters. Shake flasks have been used for this purpose. They, however, lack the capability to control the process parameters such as pH and dissolved oxygen (DO). This limitation can be overcome with the help of an automated micro-bioreactor. These bioreactors mimic cultivation at a larger scale. One of the major advantages of this system is the integration of the Design of Experiment (DOE) in the software. This integration enables establishing a design where multiple process parameters can be varied simultaneously. The critical process parameters and optimum bioprocess conditions can be analyzed within the software. The focus of the work presented here is to introduce the user to the steps involved in process design in the software and incorporation of the DOE within the cultivation run.

Here, we present a detailed procedure to run a Design of Experiment in an automated micro-bioreactor followed by cell harvest and protein quantification using a Protein A column.

Prozessoptimierung mit automatisierten Mikro-Bioreaktoren mit hohem Durchsatz in der chinesischen Hamster-Ovarialzell-Kultivierung

Optimization of bioprocesses to increase the yield of desired products is of importance in the biopharmaceutical industry. This can be achieved by strain ...

Lipidico Injection Protocol for Serial Crystallography Measurements at the Australian Synchrotron

A facility for performing serial crystallography measurements has been developed at the Australian synchrotron. This facility incorporates a purpose built high viscous injector, Lipidico, as part of the macromolecular crystallography (MX2) beamline to measure large numbers of small crystals at room temperature. The goal of this technique is to enable crystals to be grown/transferred to&#160;glass syringes to be used directly in the injector for serial crystallography data collection. The advantages of this injector include the ability to respond rapidly&#160;to changes in the flow rate without interruption of the stream. Several limitations for this high viscosity injector (HVI) exist which include a restriction on the allowed sample viscosities to &#62;10 Pa.s. Stream stability can also potentially be an issue depending on the specific properties of the sample. A detailed protocol for how to set up samples and operate the injector for serial crystallography measurements at the Australian synchrotron is presented here. The method demonstrates preparation of the sample, including the transfer of lysozyme crystals into a high viscous media (silicone grease), and the operation of the injector for data collection at MX2.

The goal of this protocol is to demonstrate how to prepare serial crystallography samples for data collection on a high viscous injector, Lipidico, recently commissioned at the Australian synchrotron.

Lipidico Injektionsprotokoll für serielle Kristallographiemessungen am australischen Synchrotron

A facility for performing serial crystallography measurements has been developed at the Australian synchrotron. This facility incorporates a purpose built ...

Eingabe Leistungsmessungen in gerührten Bioreaktoren im Labormaßstab

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