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Method Article
Mediciones y la aplicación directa de las fuerzas sobre las neuronas en el rango de Microdyne 2000-1000 se logran con alta precisión utilizando agujas de vidrio calibrado. Esta metodología se puede utilizar para controlar y medir varios aspectos del desarrollo axonal, incluyendo la iniciación axonal, la tensión axonal, la velocidad de elongación axonal, y vectores de fuerza.
Manipulación de células y la extensión de los axones neuronales se puede lograr con vidrio calibrado micro fibras capaces de medir y la aplicación de fuerzas en el rango de 1,2 10-1000 μdyne. Las medidas de fuerza se obtienen mediante la observación de la Hookean flexión de las agujas de cristal, que son calibrados por un método directo y empírico 3. Necesidades de equipo y procedimientos para la fabricación, la calibración, el tratamiento y el uso de las agujas de las células se describen con detalle. La fuerza de los regímenes anteriores, los diferentes tipos de células a las que estas técnicas se han aplicado pruebas de la flexibilidad de la metodología y se dan como ejemplos para la investigación futura 4.6. Las ventajas técnicas son las continuas 'visualización' de las fuerzas producidas por la manipulación y la capacidad de intervenir directamente en una variedad de procesos celulares. Estos incluyen la estimulación directa y regulación del crecimiento axonal y la retracción del 7, así como el desprendimiento y mediciones mecánicas en cualquier tipo de cultivo celular 8.
1. Que las agujas de cristal.
2. Decisiones y la calibración de una aguja metálica
3. Calibración de las agujas de vidrio intermedia
4. Calibración de la aguja de vidrio de trabajo utilizado para manipular las neuronas
5. Las agujas son tratados previamente con los factores de unión
6. Equipo establecido
7. La alineación de las agujas
8. Una a las células
9. Ampliación de un proceso de axón o celular
10. Análisis de Datos
11. Los resultados representativos:
La fuerza de calibrado agujas de vidrio se puede aplicar fácilmente a cualquier región celular, por lo general el cono de crecimiento, tal como se visualiza directamente por microscopía de luz. Con el tratamiento apropiado de la aguja para obtener adhesión celular, la tensión mecánica puede ser experimentalmente aplicadas en la región celular de interés, o las fuerzas producidas por la región se puede medir. Un experimento representativo neuronal de remolque se muestra en la Figura 1, donde se ha duplicado el axón remolcado de longitud en dos horas.
Figura 1. A raíz dorsal cultivadas de pollo de las células ganglionares de la orientación preferida para el remolque que se elija. La distancia inicial de referencia cero entre las agujas se registra antes de la manipulación experimental se inicia (A). El 'push up' maniobra se aplica al cono de crecimiento (B). Remolque comienza con la carga de fuerza mayor según lo indicado por la separación de las agujas (C). Remolque se ha extendido el axón, las alineaciones "horizontal" y perpendicular del axón y la aguja de arrastre de trabajo han facilitado buenas medidas de fuerza (D). Bar = 40 micras. Calibración de la aguja = 6,9 μdyne / m.
Técnicas a aplicar y medir fuerzas celulares tienen una larga historia 9. Nuestro método fue motivada inicialmente por el trabajo de Dennis Bray, que utiliza agujas de vidrio similar a la nuestra a 'remolque' las neuronas a un ritmo constante, utilizando un dispositivo motorizado hidráulico 10. Hay muchos medios alternativos de la aplicación de fuerzas a las células que son: motores paso a paso 11, 12 bolas magnéticas, rayos microfabricated 13 y los flujos de flu...
Agradecemos las importantes contribuciones del Dr. Robert E. Buxbaum en el desarrollo de esta metodología.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
R-6 cap. Tube | Drummond Scientific | 9-000-3111 | R-6 glass OD 0.9mm, ID 0.6 mm, 8" |
BB-CH puller | Mecanex S.A., Geneva, Switzerland | BB-CH puller | Use Mode 4 Alt by CP=100, PP=10, SP1=1000, SP2=1000 |
0.001" Chromel wire | Omega Engineering, Inc. | SPCH-001-50 | unsheathed, themocouple wire, 50ft spool now called Chromega |
0.003" Constatan wire | Omega Engineering, Inc. | SPCI-003-50 | unsheathed, themocouple wire, 50 ft spool |
fine forceps | Fine Science Tools | 91150-20 | Dumont Inox #5 |
universal microscope boom stand | Nikon Instruments | 76135 or 90430 | most brands or types of boom stand will work for this use |
mechanical micromanipulator | Narishige International | M-152 | three-axis direct-drive coarse micromanipulator |
hydraulic micromanipulator | Narishige International | MO-203 | now available as MMO-203, three movable axis type |
needle holder | Leica Microsystems | 11520145 | set of 3 |
single instrument holder | Leica Microsystems | 11520142 | |
double instrument holder | Leica Microsystems | 11520143 | |
mechanical micromanipulator | Leica Microsystems | 39430001 | post mount,1 prob holder, RH Model 430001 |
joystick mech. micromanipulator | Leica Microsystems | 11520137 | |
Leica DM IRB | Leica Microsystems | inverted microscope | |
Vibraplane isolation table | Kinetic Systems | 1200 series | ours is model 1201-02-12 |
Ringcubator | Home made (see reference 19) | reference 19, requires updated controller listed below | |
programable temperature controller | Instrumart.com | Fuji Electric PXR3 | replaces the retired PXV3 temperature controller |
Nikon Diaphot TMD | Nikon Instruments | inverted microscope, circa 1980 | |
Nikon SMZ-10 binocular dissecting | Nikon Instruments | other dissecting microscopes will work |
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