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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

El principal objetivo de este estudio es estandarizar y probar el método neumático (air stripping) de la recogida de huevos de trucha arco iris y trucha marrón. Este método permite colección eficaz y simple de los huevos sin la necesidad de masaje de abdomen del pez.

Resumen

Colección de huevo es uno de los procedimientos más importantes durante la reproducción de peces en criaderos de salmónidos. Métodos clásicos implican el uso de masaje de la mano en el abdomen de pescado para expulsar los huevos. Un método alternativo utiliza la presión del gas inyectado en la cavidad del cuerpo, que causa la liberación de los huevos. Este método se cree que tienen efectos menos negativos sobre la calidad del bienestar y el huevo de los lotes de reproductores. En el presente, se comparan los resultados de aire y remover métodos con respecto a la supervivencia de un año y la cantidad de huevo y calidad de dos peces salmónidos, trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) y trucha (Salmo trutta morpha fario). Nuestros resultados indican air stripping rindió una mejor calidad de huevos y una mayor tasa de supervivencia de un año en trucha arco iris. Además, extracción de aire dio lugar a la menor tasa de mortalidad que el grupo sometido a la extracción de la mano (25% vs. 35%). El índice pH y eclosión del grupo mano despojado fue inferior a los del grupo de aire despojado. En el caso de la trucha, la calidad de los óvulos obtenidos por métodos de extracción de aire y mano fue similar; sin embargo, las pérdidas de un año en peces fueron superiores en aire despojado grupo (15% frente a 0% en peces de mano despojado). Aunque las ventajas de aire desmontaje método mano pelando en términos de calidad del huevo no se pueden observar en todas las especies de salmónidos, el procedimiento de extracción de aire podría ser una opción prometedora a adoptarse en los criaderos ya que asegura un alto nivel de reproducibilidad y la eficiencia.

Introducción

La trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) y trucha café (Salmo trutta morpha fario) pertenecen a la familia Salmonidae Salmoniformes1. La producción de estas dos especies en la acuicultura mundial ha ganado rápido crecimiento, debido a su importancia comercial y recreativa. En Polonia, producción de peces salmónidos se encuentra en alrededor de 20 000 toneladas, con trucha arco iris, siendo la especie dominante. Por otro lado, la trucha marrón representa una importante fuente de recursos de peces de agua dulce en Europa debido a su valor comercial en importancia para la pesca y la acuicultura. En muchos ecosistemas acuáticos, se ve amenazada la existencia de poblaciones de trucha marrón. Como resultado, reproducción artificial se ha aplicado para reponer las poblaciones locales de esta especie2.

Trucha arco iris y trucha marrón alcanzar madurez sexual generalmente en la edad de tres, con la maduración de un año antes que las hembras1machos. Bajo condiciones artificiales, óvulos y espermatozoides de trucha arco iris y trucha marrón son generalmente recogidos por masaje abdominal suave. En la práctica, en pequeña escala, un método de extracción de mano de la recogida de huevos es rentable. Sin embargo, a gran escala, el método de desmontaje a mano puede ser intensivo y agotador. Como resultado, esta técnica puede producir huevos rotos debido a la fatiga de los trabajadores del criadero. Rotura de huevos a menudo conduce a una disminución en el pH del fluido ovárico y el lanzamiento de yema de huevo, los cuales afectan negativamente a la fecundación de huevos3. Además, este método tradicional de colección de huevo (pulsando del abdomen) puede resultar también en reproductores mortalidad causada por la infección de la piel asociada con el deterioro de la barrera protectora de moco.

Método neumático de colección de huevo fue utilizado primero en Australia en 19574. El método se basa en la inyección de gases (aire, nitrógeno u oxígeno) en la cavidad del cuerpo para expulsar huevos usando la presión del gas. Esta técnica rápida y fácil se ha aplicado con éxito en peces salmónidos sin efectos secundarios negativos en los peces4. Recientemente, este método fue utilizado en especies silvestres (Lucio, Esox lucius) para recoger huevos maduros en condiciones artificiales5. Fue demostrado que aire despojado huevos tuvieron mayor fertilización y eclosión tarifas en comparación con mano despojado huevos, independientemente de la solución utilizada para fertilización (solución Woynarovich, Billard buffer o criadero agua)5.

El principal objetivo de este estudio era poner a prueba el método neumático (air stripping) de la recogida de huevos de trucha arco iris y trucha marrón en comparación con el tradicional método de desmontaje de la mano. Se compararon la eficacia de ambos métodos (volumen de huevos obtenidos) y el tiempo de colección, calidad de gametos (pH líquido ovárico), así como la eclosión posterior desove y tasa de mortalidad.

Protocolo

Los procedimientos fueron realizados según el Comité sobre el ética de los experimentos animales en Olsztyn, Polonia.

1 preparación de equipo

  1. Utilice una jeringa y aguja para la inyección del gas en la cavidad del cuerpo del pescado.
  2. La presión del gas en 0,5 bar y mantener esta presión por debajo de 1 bar a lo largo.
  3. Controlar el flujo de aire. Para los peces salmónidos, 1,5 L/min es la velocidad más eficiente de agotamiento de gas. Mantener la velocidad óptima porque velocidad no puede obtener todos los huevos, mientras que una velocidad más lenta puede prolongar innecesariamente el procedimiento.
  4. Conectar la jeringa con una aguja roscada (0.8-1.2 mm de diámetro) para evitar separación de aguja, causada por la presión del gas.

2. aire de desove

  1. Anestesiar el pez con 0,2% Propiscin. Coloque el pescado en un baño de agua con el 0.2% Propiscin y espere hasta que el pescado deja de responder.
  2. Secarse cuidadosamente antes de desove con un paño de algodón seco.
  3. Coloque el pescado en la cama de la inclinación de 35-40°, en su lado de la cola hacia abajo. Con un suave empuje del abdomen del pez, compruebe el flujo de huevos en el tracto genital. Si los huevos no están presentes, el pescado no debe ser generado.
  4. Coloque un recipiente cubierto con el acoplamiento debajo de la papila de peces a recoger los huevos.
  5. Inserte rápidamente la aguja por debajo de las aletas abdominales.
  6. Libremente, retirar los huevos por el gas hasta que sólo singular huevos se extraen del cuerpo de los pescados.
  7. Masajee suavemente el abdomen para eliminar el exceso de gas del cuerpo de los pescados.
  8. Después del desove, transferir suavemente el pez a un tanque con el flujo de agua. Peces liberados al tanque después aire de desove puede nadar inicialmente en la superficie del agua. Después de varios minutos el pescado libera el gas restante mientras nadas y comienza a nadar normalmente.
    Nota: Los huevos obtenidos son muy limpios y libres de contaminación de la sangre o las heces.

Resultados

Los machos maduros y las hembras de trucha arco iris (edad 2 +, 1700 ± g 328) y trucha (edad 3 +, 1900 ± 435 g) se obtuvieron del criadero de peces salmónidos (Rutki-Żukowo, interior pesquería Instituto en Olsztyn, Polonia). Los machos y las hembras se colocaron en tanques separados con un volumen de aproximadamente 5 m3. La temperatura del agua era 12±1 ° C. Antes de manipulación, los peces fueron anestesiados con 0,2% Propiscin. Los peces fueron divididos...

Discusión

El método neumático de la colección de huevos de peces, aunque más lento que el método tradicional (extracción de la mano), pueden garantizar una alta calidad de los ovocitos madurados (este trabajo). Esto se relaciona con el bajo riesgo de interrupción mecánica de los huevos mientras se aplica este procedimiento. PH alto del fluido de ovario, así como un aumento en la tasa de fertilización, avalan la utilidad del método neumático. En general, el aire extracción método de colección de huevo en la reproducc...

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

El estudio presentado fue apoyado por el proyecto "método neumático de extracción de peces - posible aplicación, influencia en la calidad de los gametos y la cantidad y el bienestar de los peces" (acrónimo: PNEUFISH) financiados por "operativa programa de desarrollo de la pesca Sector y áreas de la costa 2007-2013"(OR-61724-OR1400001/10), fondos asignados al Instituto de reproducción Animal y la investigación de alimentos Academia de Ciencias, Olsztyn, Polonia y la ayuda por gastos de oficina (de alimentos y agricultura costo acción FA1205: AQUAGAMETE ). Nos gustaría dar las gracias, Stanley Ifeanyi Ugwu por gran apoyo en la edición de inglés. Queremos agradecer también a los productores de animación "Estudio Filmowe Ruchome Obrazki".

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Glycine pure P.A.AVANTOR527560117sperm activating buffer
Trizma baseSigma AldrichT1503sperm activating buffer
Sodium chloride BioreagentSigma AldrichS5886sperm activating buffer
Calcium chloride anhydrousSigma AldrichC4901sperm activating buffer
Propiscin (0.2% etomidate solution)IRS Olsztyn, Polandnot indicated
compressorThomas  Sheboigan WI USA DT/SR 070800001882
reduction valveCamozzi cRJUS U7J
air hoseZEC T.P.U. SH.98 
syrgineEFD7012118
Air spawning stageBiopasz, PolandPNEU001
Orion Ross Ultra electrodeThermo Scientific, Waltham, MA, USA8102BNUWP

Referencias

  1. Nelson, J. S. . Fishes of the World. , (2006).
  2. García-Marín, J. L., Sanz, N., Pla, C. Proportions of native and introduced brown trout in adjacent fished and unfished Spanish rivers. Conservation Biology. 12, 313-319 (1998).
  3. Dietrich, G. J., Wojtczak, M., Slowinska, M., Dobosz, S., Kuzminski, H., Ciereszko, A. Broken eggs decrease pH of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ovarian fluid. Aquaculture. 273, 748-751 (2007).
  4. Zurbuch, P. E. A structure for easy fish recovery during drainage of an impoundment. Progressive FishCulturist. 27, 237-238 (1965).
  5. Cejko, B. I., et al. Effects of different stripping methods of female and activation medium on fertilization success in northern pike (Esox lucius). Czech Journal of Animal Sciences. 10, 481-486 (2016).
  6. Morisawa, S., Morisawa, M. Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon. Journal of Experimental Biology. 136, 13-22 (1988).
  7. Billard, R., Cosson, J., Perchec, G., Linhart, O. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. 129, 95-112 (1995).
  8. Iuchi, I., Ha, C. R., Sugiyama, H., Nomura, K. Analysis of chorion hardening of eggs of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Development Growth and Differentiation. 38, 299-306 (1996).
  9. Wojtczak, M. A., Kowalski, R. K., Dobosz, S., Goryczko, K., Kuźminski, H., Glogowski, J., Ciereszko, A. Assessment of water turbidity for evaluation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality. Aquaculture. 242, 617-624 (2004).
  10. Tabrizi, E. N., Khara, H., Nezami, S. A., Lorestani, R., Shamspour, S. Broken Eggs Influence on Fertilization Capacity and Viability of Eggs, Turbidity and pH of Ovarian Fluid and Fertilization Water in the Endangered Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius. International Journal of Biology. 3 (1), 161-166 (2011).
  11. Carl, G. C. Beware of the broken egg! A possible cause of heavy losses of salmon eggs. Progresive Fish-Culturist. 53, 30-31 (1941).

Reimpresiones y Permisos

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