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Neste Artigo

  • Resumo
  • Resumo
  • Introdução
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discussão
  • Divulgações
  • Agradecimentos
  • Materiais
  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

O principal objetivo deste estudo é padronizar e testar o método pneumático (retirar o ar) de coleta de ovos em truta arco-íris e truta. Esse método permite que simples e eficaz de recolha dos ovos, sem necessidade de massagem do abdômen de peixe.

Resumo

Recolha de ovos é um dos procedimentos mais cruciais durante a reprodução de peixes em incubadoras de salmonídeos. Métodos clássicos envolvem o uso de massagem da mão na abdomes peixe para expelir os ovos. Um método alternativo usa a pressão do gás injetado na cavidade do corpo, o que provoca a liberação subsequente dos ovos. Este método é acreditado para ter efeitos menos negativos sobre o bem-estar e o ovo qualidade do ostreicultor. Neste documento, podemos comparar os resultados do ar e mão stripping métodos com relação a qualidade e quantidade de ovos e sobrevivência de um ano em dois peixes salmonídeos, truta arco-íris (Oncorhynchus mykiss) e truta (Salmo trutta morpha fario). Nossos resultados indicam que esse ar de descascamento rendeu uma melhor qualidade de ovos e maior taxa de sobrevivência de um ano em truta arco-íris. Além disso, ar descascamento resultou em menor taxa de mortalidade que o grupo submetido a mão descascamento (25% vs. 35%). A taxa de pH e incubação do grupo mão despojado foi inferior do grupo ar despojado. No caso de truta, a qualidade dos ovos obtidos pela mão e ar-descascamento métodos foi semelhante; no entanto, as perdas de um ano em peixes foram maiores no grupo ar despojado (15% contra 0% na mão despojado de peixe). Embora as vantagens do ar descascamento método entreguem descascamento em termos de qualidade do ovo não podem ser observadas em todas as espécies de salmonídeos, o procedimento de remoção de ar pode ser uma opção promissora para ser adotado em incubadoras como garante um elevado nível de reprodutibilidade e eficiência.

Introdução

A truta arco-íris (Oncorhynchus mykiss) e truta (Salmo trutta morpha fario) pertencem à família Salmonidae Salmoniformes1. A produção dessas duas espécies na aquicultura global ganhou rápido crescimento, devido à sua importância comercial e de lazer. Na Polônia, produção de peixe é de cerca de 20 000 toneladas, com truta arco-íris, sendo a espécie dominante. Por outro lado, a truta representa uma importante fonte de recursos de peixes de água doce na Europa por causa de seu valor comercial em aquicultura e importância para a pesca. Em muitos ecossistemas aquáticos, a existência de populações de truta está ameaçada. Como resultado, a reprodução artificial tem sido aplicada para reabastecer as populações locais desta espécie2.

Truta arco-íris e truta atingir a maturidade sexual geralmente na idade de três, com os machos amadurecendo um ano mais cedo do que as fêmeas1. Sob condições artificiais, ovos e esperma de truta arco-íris e truta geralmente é recolhidas pela massagem abdominal suave. Na prática, em pequena escala, um método mão-descascamento de coleta de ovos é cost-effective. No entanto, em grande escala, o método mão-descascamento pode ser trabalhoso e cansativo. Como resultado, esta técnica pode resultar em ovos quebrados devido o cansaço dos trabalhadores incubatório. Quebra de ovos, muitas vezes, leva a uma diminuição do pH do fluido ovariano e a libertação de gema de ovo, os quais afetam negativamente a fertilização dos ovos3. Além disso, este método tradicional de recolha de ovos (pressionando repetidamente do abdômen) também pode resultar em reprodutores mortalidade causada por infecção de pele, associada com a deterioração da barreira protetora de muco.

Pneumático método de recolha de ovos foi usado primeiramente na Austrália em 19574. O método baseia-se a injeção de gases (ar, nitrogênio e oxigênio) na cavidade do corpo para expelir os ovos usando pressão de gás. Esta técnica rápida e fácil tem sido aplicada com sucesso no peixe sem quaisquer efeitos colaterais negativos sobre o peixe4. Recentemente, este método foi usado em espécies selvagens (Northern pike, Esox lucius) para coletar ovos maduros em condições artificiais5. Foi demonstrado que o ar despojado ovos tinham maior fertilização e taxas em comparação com a mão de incubação despojado ovos, independentemente da solução usada para fertilização (solução Woynarovich, água de buffer ou incubatório Billard)5.

O principal objetivo deste estudo foi testar o método pneumático (retirar o ar) de coleta de ovos em truta arco-íris e truta em comparação com o método de descascamento de mão tradicional. Eficiência de ambos os métodos (volume de ovos obtidos) e tempo de coleta, qualidade dos gâmetas (pH fluido ovariano), bem como a mortalidade taxa e pós desova de incubação foram comparada.

Protocolo

Os procedimentos foram realizados em conformidade com o Comitê Local sobre a ética de experimentos animais em Olsztyn, Polônia.

1. preparação do material

  1. Use uma seringa e uma agulha para a injeção do gás na cavidade do corpo do peixe.
  2. Ajustar a pressão de gás em 0,5 bar e manter esta pressão deve ser inferior a 1 bar ao longo.
  3. Controle o fluxo de ar. Para os peixes salmonídeos, 1,5 L/min é a mais eficiente velocidade de exaustão de gás. Manter a velocidade ideal, pois maior velocidade não pode obter todos os ovos, enquanto que uma velocidade mais lenta desnecessariamente pode prolongar o procedimento.
  4. Conectar a seringa com uma agulha parafusada (0.8-1.2 mm de diâmetro) para evitar o desprendimento de agulha causado pela pressão de gás.

2. ar desova

  1. Anestesiar o peixe com 0,2% Propiscin. Coloque o peixe em um banho de água com a 0,2% Propiscin e aguarde até que o peixe torna-se sem resposta.
  2. Seca-se cuidadosamente antes de desova esfregando com um pano de algodão seco.
  3. Coloque o peixe sobre a cama de inclinação de 35-40°, em seu lado de cauda para baixo. Com um empurrão suave do abdome do peixe, verificar o fluxo de ovo do tracto genital. Se os ovos não estão presentes, o peixe não deve ser gerado.
  4. Coloque um recipiente coberto com malha abaixo da papila de peixe para recolher os ovos.
  5. Inserir rapidamente a agulha abaixo as barbatanas abdominais.
  6. Livremente, retire os ovos pelo gás até apenas singular ovos são removidos do corpo de peixe.
  7. Massageie suavemente o abdome para remover o excesso de gás do corpo de peixe.
  8. Após a desova, delicadamente transferi os peixes de um tanque com volume de água. Peixe lançado para tanque após a desova de ar inicialmente pode nadar na superfície da água. Após vários minutos, o peixe libera o restante gás enquanto nadava e começa a nadar normalmente.
    Nota: Os ovos obtidos são muito limpas e livres de contaminação de sangue ou de fezes.

Resultados

Maduros machos e fêmeas de truta arco-íris (idade 2 +, 1700 ± 328 g) e truta (idade 3 +, 1900 ± 435 g) foram obtidas de peixes salmonídeos incubatório (Rutki-Żukowo, interior da pesca Instituto em Olsztyn, Polônia). Os machos e as fêmeas foram colocadas em tanques separados, com um volume de cerca de 5 m3. A temperatura da água era 12±1 ° C. Antes de manipulação, os peixes foram anestesiados com 0,2% Propiscin. Os peixes foram divididos em dois grupos...

Discussão

O método pneumático de recolha de ovos de peixes, embora mais demorada do que o método tradicional (descascamento de mão), podem garantir uma elevada qualidade de ovócitos amadurecidos (este trabalho). Isto está relacionado com o baixo risco de ruptura mecânica dos ovos durante a aplicação deste procedimento. PH elevado de fluido do ovário, bem como um aumento na taxa de fertilização, atestam a utilidade do método pneumático. No geral, o ar stripping método de recolha de ovos em reprodução de peixes pode...

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

O estudo apresentado foi apoiado pelo projeto "método pneumático de peixe stripping - possível aplicação, influência sobre o bem-estar dos peixes e a quantidade e a qualidade dos gametas" (sigla: PNEUFISH) financiadas ao abrigo do "operacional programa desenvolvimento of the Fisheries Sector e das zonas costeiras 2007-2013"(OR-61724-OR1400001/10), fundos apropriados de Instituto de reprodução Animal e pesquisa de alimentos polonês Olsztyn, Polônia, Academia das Ciências e suporte pelo escritório de custo (alimentação e agricultura custo ação FA1205: AQUAGAMETE ). Gostaríamos de agradecer, Stanley Ifeanyi Ugwu grande apoio na edição inglesa. Queremos reconhecer também os produtores de animação "Studio Filmowe Mobile do".

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Glycine pure P.A.AVANTOR527560117sperm activating buffer
Trizma baseSigma AldrichT1503sperm activating buffer
Sodium chloride BioreagentSigma AldrichS5886sperm activating buffer
Calcium chloride anhydrousSigma AldrichC4901sperm activating buffer
Propiscin (0.2% etomidate solution)IRS Olsztyn, Polandnot indicated
compressorThomas  Sheboigan WI USA DT/SR 070800001882
reduction valveCamozzi cRJUS U7J
air hoseZEC T.P.U. SH.98 
syrgineEFD7012118
Air spawning stageBiopasz, PolandPNEU001
Orion Ross Ultra electrodeThermo Scientific, Waltham, MA, USA8102BNUWP

Referências

  1. Nelson, J. S. . Fishes of the World. , (2006).
  2. García-Marín, J. L., Sanz, N., Pla, C. Proportions of native and introduced brown trout in adjacent fished and unfished Spanish rivers. Conservation Biology. 12, 313-319 (1998).
  3. Dietrich, G. J., Wojtczak, M., Slowinska, M., Dobosz, S., Kuzminski, H., Ciereszko, A. Broken eggs decrease pH of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ovarian fluid. Aquaculture. 273, 748-751 (2007).
  4. Zurbuch, P. E. A structure for easy fish recovery during drainage of an impoundment. Progressive FishCulturist. 27, 237-238 (1965).
  5. Cejko, B. I., et al. Effects of different stripping methods of female and activation medium on fertilization success in northern pike (Esox lucius). Czech Journal of Animal Sciences. 10, 481-486 (2016).
  6. Morisawa, S., Morisawa, M. Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon. Journal of Experimental Biology. 136, 13-22 (1988).
  7. Billard, R., Cosson, J., Perchec, G., Linhart, O. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. 129, 95-112 (1995).
  8. Iuchi, I., Ha, C. R., Sugiyama, H., Nomura, K. Analysis of chorion hardening of eggs of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Development Growth and Differentiation. 38, 299-306 (1996).
  9. Wojtczak, M. A., Kowalski, R. K., Dobosz, S., Goryczko, K., Kuźminski, H., Glogowski, J., Ciereszko, A. Assessment of water turbidity for evaluation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality. Aquaculture. 242, 617-624 (2004).
  10. Tabrizi, E. N., Khara, H., Nezami, S. A., Lorestani, R., Shamspour, S. Broken Eggs Influence on Fertilization Capacity and Viability of Eggs, Turbidity and pH of Ovarian Fluid and Fertilization Water in the Endangered Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius. International Journal of Biology. 3 (1), 161-166 (2011).
  11. Carl, G. C. Beware of the broken egg! A possible cause of heavy losses of salmon eggs. Progresive Fish-Culturist. 53, 30-31 (1941).

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