This work was supported by grants from the Deutsche Forschungsgemeinschaft to J.H. (FOR-1279, SFB-1078, B3). We thank Tom Resler and Bj&#246;rk S&#252;ss for helpful comments.

1. Aspectos generales de la muestra y la preparación del instrumento <ol><li> Utilice un comercial espectrómetro FT-IR equipado para mediciones de paso-scan con resolución temporal. Para obtener los mejores resultados sitúan el espectrómetro FT-IR en la parte superior de una mesa de vibración desacoplado. </li><li> Evacuar el alojamiento óptico a unos pocos mbar. Purgar el compartimento de la muestra con aire seco o nitrógeno. </li><li> Coloque un material transparente IR opaco a la radiación visible en frente del detector MCT de la espectrómetro de FT-IR. Esta precaución es esencial para evitar los artefactos del pulso láser emocionante durante los experimentos paso del análisis. Nota: Utilizamos una germanio (Ge) ventana de 25 mm de diámetro. Su alto índice de refracción hace que la intensidad indeseable pierde, evitado en gran medida el uso de un filtro con recubrimiento antirreflectante Ge. </li><li> Enfriar el dewar detector MCT con nitrógeno líquido. Nota: Se prefiere el uso de detectores de MCT fotovoltaica sobre photoconductives debido a su respuesta lineal y, por lo tanto, photometr superioresIC exactitud y fiabilidad de línea de base 31,53. </li><li> Pre-concentrar la muestra utilizada para los experimentos a por lo menos 2 mg de proteína / ml en un tampón de baja (&lt;20 mM) fuerza iónica para evitar la formación de cristales de sal, mientras que el secado de la suspensión de proteína para formar una película de proteína homogénea. Cuando las muestras de sedimentos, lavar / concentrarlos aplicando ultracentrifugación (por ejemplo, proteínas de membrana en liposomas o en parches de membrana celular). Utilice centricons de corte adecuado para las proteínas que no lo hacen los sedimentos (por ejemplo, detergentes proteínas de membrana solubilizadas). </li><li> Para obtener resultados óptimos utilice: a) las preparaciones de proteína pura y activa como sea posible; b) las relaciones de lípido / proteína ≤ 3 en el peso de las proteínas en parches de membrana celular o reconstituidas en liposomas; c) las relaciones de detergente / proteína ≤ 1 en el peso de las proteínas solubilizados con detergente. Evitar el uso de detergentes o lípidos cuyas bandas de vibración se superponen con los de la proteína (por ejemplo, CHAPS). </li></ol&gt; 2. Preparación del total atenuada Experimentos reflexión sobre Bacteriorhodopsin <ol><li> Monte el accesorio de ATR en el compartimiento de la muestra del espectrómetro FT-IR. Nota: Usamos un ATR ZnSe / diamante con 5 reflexiones activas. Evitar materiales semiconductores tales como germanio o silicio como elemento de reflexión interna (IRE) del accesorio de ATR, ya que sus propiedades ópticas se ven afectados por la emocionante láser visible. </li><li> Mida un amplio alcance (aprox. 4,000-800 cm -1) espectro de energía a los 4 cm -1 de resolución de la superficie IRE limpia por espectroscopia FT-IR convencional rápido-scan. Utilice este espectro como un espectro de referencia para calcular los espectros de absorción en una etapa posterior. </li><li> Cubra la superficie IRE del ATR con 20 l de buffer usado más tarde para rehidratar la muestra (por ejemplo, NaCl 4 M y 100 mM NaPi a pH 7,4). Medir la absorción de IR de la memoria intermedia. </li><li> Retire el amortiguador, y enjuague la superficie wi IREth agua. Evite tocar la superficie. Retire el líquido residual de la superficie IRE por una intensa corriente de aire. </li><li> Corre ~ 3 l de bacteriorhodopsin (BR) en las membranas de color púrpura (~ 6 mg de proteína / ml en agua desionizada) en la parte superior de la superficie de IRE (~ 0.2 cm 2 de área). Se seca la suspensión de proteína bajo una corriente suave de aire seco hasta que se alcanza una película. </li><li> Medir el espectro de absorción de la película seca (véase la Figura 1). </li><li> Añadir suavemente 20-40 l de un tampón de alta fuerza iónica para rehidratar la película seca (por ejemplo, 4 M NaCl y 100 mM NaPi a pH 7,4). Nota: La alta fuerza iónica previene la hinchazón excesiva de la película de la membrana, lo que permite conservar la mayor cantidad de proteínas de lo posible cerca de la superficie palpada (Figura 2). </li><li> Cubrir el titular de ATR con una tapa para evitar la evaporación del agua. Opcionalmente, colocar una chaqueta de cubierta conectado a un baño circulatorio ajustado a 25 ° C para el control de la temperatura. Para las proteínas con photocycles largos (y #62; segundo), control de la temperatura podría aumentar la estabilidad de la línea de base. </li><li> Medir un espectro de absorbancia. Estimar el porcentaje de muestra restante cerca de la superficie después de la rehidratación de la película restando el espectro de absorción del tampón (Figura 3). </li><li> Confirmar la estabilización de la película de la hinchazón mediante el registro de espectros de absorción a intervalos de 5-20 min después de la rehidratación (Figura 4). Este paso es opcional, pero se recomienda. </li></ol> 3. Realización de experimentos de transmisión de detergente disuelto canalrodopsina-2 <ol><li> Añadir 10 l de ChR2 (~ 10 mg de proteína / ml) disueltos en NaCl 5 mM, 5 mM de HEPES (pH 7,4) y decil-maltósido (DM) en el centro de una ventana de BaF 2 de 20 mm de diámetro. Corre con la ayuda de la punta de la micropipeta a un diámetro de 6-8 mm (densidad de superficie de la proteína de ~ 200 g / cm 2). </li><li> Formar una usi películang un flujo suave de aire seco. Para obtener los mejores resultados de asegurar que la película es homogénea y tiene un diámetro más o menos coincide con el tamaño del haz IR en la abertura más grande. </li><li> Hidratar la película mediante la adición de 3-5 l de una mezcla de glicerol / agua distribuida en 3-5 gotas alrededor de la película seca, y se cierran con una segunda ventana utilizando una silicona O-anillo plano de ≥ 1 mm de espesor. Nota: La relación de la mezcla de glicerol / agua controla la humedad relativa entre las ventanas 54. Para las muestras higroscópicos utilizan una relación de 3/7 o 2/8 de glicerol / agua (W / W). Las gotas de glicerol / agua nunca debe estar en contacto directo con la película de proteína. </li><li> Inserte los BaF 2 ventanas intercaladas en un soporte. Prevenir la luz directamente de llegar al detector, cubriendo la ventana de muestra con un material opaco de IR, tal como papel, con un agujero que coincide con el tamaño de la película hidratada. Coloque el soporte en el compartimiento de la muestra. </li><li> Controlar la temperatura del soporte a 25 °C por una camisa termostática conectado a un baño de temperatura controlada circulatorio. </li><li> Medir un espectro de absorción. Asegúrese de que la absorción máxima en la región de amida I (~ 1,700-1,620 cm-1) está en el intervalo de 0,6-1,0. </li><li> Estimar la masa y la relación molar de la proteína / detergente / agua del espectro de absorción de la película hidratada (Figura 5) usando la extinción de referencia coeficiente de espectros para el agua, DM, y proteínas de la membrana representativos (Figura 6). </li><li> Espere hasta que el nivel de hidratación se estabilice antes de realizar experimentos paso del análisis (≥ 1 hr). </li></ol> 4. Ajuste y sincronización del láser Emocionante Para los experimentos sobre bR utilizan la segunda emisión de armónicos de un láser pulsado de Nd: YAG (λ = 532 nm) para activar el fotociclo. Para los experimentos con ChR2, utilice una excitación de λ = 450 nm a lo dispuesto por una oposcilador paramétrico vertical (OPO) impulsado por el tercer armónico (λ = 355 nm) de un láser de Nd: YAG. Asegúrese de que el pulso de láser es suficientemente corto (~ 10 ns) para reducir al mínimo la foto-excitación secundaria. Nota: La energía de los pulsos de láser debe ser lo más constante posible. En nuestra configuración, la intensidad del láser fluctúa ≤ 10% en torno al valor medio, según lo confirmado por la medición de un reflejo del láser por un fotodiodo conectado a un registrador de transitorios y la integración de la respuesta (Figura 8). <ol><li> Pareja el láser para la muestra. Ajustar la densidad de energía del láser en la muestra a 2-3 mJ / cm 2 por pulso usando una potencia-metros. <ol><li> Para la configuración de ATR, utilizar una fibra óptica colocada en lo alto de la tapa de ATR. </li><li> Para los experimentos de transmisión, utilizar espejos para llevar el láser a la muestra y, si se requiere, ya sea lentes para colimar o divergir el haz de láser a un diámetro ligeramente por encima del tamaño de la película de muestra. </li></ol></li><li> Sincronizar la laseR pulso con el registro de datos por el espectrómetro. Utilice la Q-interruptor de sincronización de salida de impulsos TTL de la electrónica del láser Nd: YAG para activar el espectrómetro. Ajuste la velocidad de excitación del láser Nd: YAG a 10 Hz para bR y 0,25 Hz para ChR2, respectivamente. </li><li> Utilice un generador de retardo de pulso (PDG) para controlar la velocidad de excitación de láser si la tasa de repetición del láser de Nd: YAG no es fácilmente ajustable. <ol><li> Conecte la lámpara de sincronización de salida del láser de Nd: YAG a la entrada de disparo externo PDG. El PDG proporciona una salida de ~ 190 microsegundos pulso TTL retraso a la Q-interruptor de sincronización en la entrada del láser Nd: YAG para desencadenar la acción láser. Puerta de la PDG para aceptar un disparador externo sólo después de cierto período de tiempo desde el último disparador aceptada (100 ms para bR o 4 segundos para ChR2). </li></ol></li></ol> 5. Preparaciones y Configuración Paso-scan resueltos en tiempo <ol><li> Coloque un filtro óptico de paso bajo en el trayecto óptico. Para realizar las mediciones de paso de barrido con resolución temporal en el 1,800-850 cm -1 rango espectral, utilizan un filtro opaco por encima de 1950 cm -1 y con una buena transmisión (&gt; 50-80%) por debajo de 1800 cm-1 (Figura 7). </li><li> Cambiar el detector de CA a modo de acoplamiento de CC. Nota: Después de este ajuste la señal de interferograma ya no oscilará en torno a cero, pero alrededor de un valor conocido como el nivel de CC. </li><li> Utilice la abertura más grande posible del haz del espectrómetro para mayor flujo de fotones y, por lo tanto, una mejor relación señal-ruido, pero dentro de los límites de la linealidad del detector. </li><li> Llevar el nivel de corriente continua del interferograma a cero y vuelva a ajustar la ganancia electrónica para hacer un mejor uso de la gama dinámica del convertidor analógico digital, convertido (ADC). Lograr compensado por la aplicación de una polarización de tensión de la señal proporcionada por el pre-amplificador de nivel de DC. Nota: Esta opción se incluye en los modernos espectrómetros FT-IR. De lo contrario, un dispositivo externo hecho en casa se ​​puede utilizar en lugar, colocado entre el preamplificador y el ADC 38. El cuidado es entoncesnecesaria para asegurar que la electrónica de dicho dispositivo son rápido y lineal. </li><li> Inicie el menú de pasos-scan del espectrómetro FT-IR. Ajuste el ancho de banda espectral de destino para la medición de paso-scan para 1,975.3-0 cm -1. Ajuste el ancho de banda espectral a una fracción del número de onda láser de He-Ne (1/8 º en el presente caso), ligeramente superior a la de corte del filtro óptico. </li><li> Desactive cualquier filtro electrónico de paso alto para evitar distorsiones de la cinética en épocas posteriores. Un filtro electrónico de paso bajo puede ser beneficioso cuando su frecuencia de corte es del orden o por encima de la frecuencia de muestreo del ADC (aliasing reduce el ruido). </li><li> Ajuste la resolución espectral y de fase a 8 cm -1 y 64 cm -1, respectivamente. Ajuste el modo de adquisición interferograma a una sola cara hacia adelante. Con estas opciones se interferograma requiere alrededor de 500 puntos. </li><li> Establezca la frecuencia de muestreo del ADC a la más alta disponible en el espectrómetro (por ejemplo, 160 kHZ, o 6,25 microsegundos). Ajuste el &quot;detonante de experimento&quot; a &quot;externa&quot;, es decir, el láser es el maestro. Establecer el número de puntos de datos linealmente espaciados a grabar: 7000 para bR (hasta 42 ms) y 20.000 para ChR2 (hasta 125 ms). Nota: las escalas de tiempo más largas pueden ser cubiertos sin desbordar la memoria ADC usando un cuasi-logarítmicamente pulsos TTL externos espaciados en el tiempo a partir de un generador de onda para activar la adquisición de datos 38, o mediante el uso de dos registradores de transitorios paralelas como sustitutos de la ADC interno 31, 32. </li><li> Ahorra aproximadamente 100 puntos previos al disparo como una referencia para el estado oscuro de la muestra. Nota: En la escala de tiempo de milisegundos la calidad de los datos es a menudo limitada por las fluctuaciones en el espejo móvil. El aumento de los puntos de pre-activación por encima de 100 es, por lo tanto, no se espera para mejorar significativamente la calidad de los datos. </li><li> Establecer el número de compañeros de adiciones, es decir, el número de promedios del fotorreacción por espejo positde iones. Para bR, utilice 20 compañeros de adiciones (20 min de tiempo de medición a las 10 tasa de excitación Hz). Para ChR2 utilice 2 compañeros de adiciones (70 min de medir el tiempo en 0.25 tasa de excitación Hz) </li><li> Repita el experimento 10 veces para bR, y 35x en tres diferentes películas de la muestra para ChR2, que finalmente ~ 200 compañeros de sumas por posición del espejo. </li></ol> 6. Proceso de Datos <ol><li> Confirmar el estado de la muestra comparando el espectro de diferencia IR inducida por la luz obtenida a partir de la primera y la última medición. Considere la posibilidad de descartar cualquier mediciones en las que la intensidad del espectro de diferencia cae por debajo de 60% de la primera medición. </li><li> La media de los interferogramas grabados. <ol><li> Usando el software OPUS del espectrómetro FTIR seleccionar los interferogramas con resolución temporal para promediar y añadirlos a la &quot;Spectrum Calculator&quot;. </li><li> Haga clic en &quot;=&quot; para obtener el promedio de los interferogramas. Nota: Cuando la fase del interferogramaes constante durante la medición es indiferente a interferogramas medias o espectros de un solo canal. Una fase constante se puede confirmar mediante el cálculo y comparando el espectro de fase para la primera y la última interferograma registrada. </li></ol></li><li> Realizar la transformada de Fourier de los interferogramas con resolución temporal promediados para obtener un promedio de solo espectros canal con resolución temporal. <ol><li> Utilizando el mismo software que en el paso 6.2.1, seleccione el interferograma resuelta en el tiempo promedio y haga clic en el icono de &quot;interferograma de espectros&quot;. Utilice el método Mertz de corrección de fase, factor de llenado de cero de 2 (dos puntos digitales por resolución instrumental), y una función de apodización (por ejemplo, un triángulo, Blackmann-Harris 3-términos, etc.) </li><li> Haga clic en la &quot;conversión&quot; de abajo para transformar el interferograma resuelta en el tiempo en los espectros de resolución temporal. </li></ol></li><li> Exportar los datos de un solo canal con resolución temporal como una &quot;tabla de puntos de datos&quot; o una &quot;; &quot;Archivo con el&quot; matlab guardar como &quot;icono en el software OPUS. Continuar el tratamiento de datos en un programa externo. <ol><li> Promediar los espectros de un solo canal antes de que el láser, y convertir los datos de un solo canal con resolución temporal de los espectros de absorción de la diferencia de resolución temporal. </li><li> Calcular un vector para la desviación estándar del ruido esperado en los espectros de diferencia como una función del número de onda (Figura 12), usando la desviación estándar del ruido, ε, y la media, S 0 (ν), de la 100 única espectros de canal anterior a la de láser: ε / S 0 (ν). El valor de ε se calcula restando espectros de un solo canal consecutivo y el cálculo de la desviación estándar corregido por √ 2. </li><li> Retire las regiones espectrales demasiado ruidosos para ser de utilidad (por ejemplo, por encima de 1825 cm -1 y 850 cm por debajo de -1). </li><li> Realice una cuasi-logarítmica promedio (por ejemplo, 20 década espectros / hora). El appearance de los datos mejorará y el número de espectros se redujo de 4 a 10 ~ ~ 10 2, sin ninguna información significativa perdido (Figura 9). </li><li> Aumenta cuatro veces la densidad espectral de puntos (1 punto / cm-1) usando la interpolación de Fourier (post-llenado cero). Nota: Realice los pasos 6.4.1 al 6.4.4 en un programa de fabricación casera que se ejecuta en MATLAB. </li></ol></li><li> Procesar los espectros de resolución temporal obtenida (Figura 10A) con la descomposición de valor singular, SVD, (Figura 13). Lograr eliminación de ruido de datos mediante la reconstrucción de los datos con un número limitado de componentes SVD significativas (Figura 10B). Nota: Nosotros realizamos SVD en MATLAB, utilizando la función &quot;svd&quot; incorporado. </li></ol>

Los autores declaran no tener ningún interés financiero en competencia.

Uno de los aspectos primero que necesita consideración a la hora de realizar el paso de escaneo experimentos FT-IR resueltas en el tiempo en una proteína es la preparación de una muestra en una forma adecuada para la espectroscopia de IR. La absorción de IR de sustancias distintas de la proteína de interés debe ser reducido, sobre todo que a partir de agua. El enfoque más común es para evaporar el agua a granel de la muestra para formar una película. La película puede ser rehidratado ya sea mediante la adición de algunas gotas de una solución acuosa o mediante la exposición de la película a una atmósfera de humedad controlada. Hemos mostrado cómo en ambos casos es posible estimar el nivel de hidratación obtenida por medio de la espectroscopia de absorción de IR (véase la Figura 3 y la Figura 5). Aunque los niveles de hidratación obtenidos pueden aparecer bajo en comparación con aquellos en solución, que son en realidad cerca de las que se encuentran en las células vivas 70, por lo que el estudio de las películas hidratadas de proteínas funcionalmente relevantes. Además de agua,También es importante conocer y controlar la cantidad de lípidos o detergente en la muestra. Tanto debe mantenerse lo suficientemente baja para tener un impacto espectroscópico reducida en la absorción de IR, pero lo suficientemente alta para preservar la integridad y la funcionalidad de la proteína de interés. Espectroscopia de paso del escaneo de resolución temporal es sólo francamente aplicable a las proteínas que muestran reacciones reversibles que se pueden activar de forma reproducible por la luz (pero ver el progreso en el acoplamiento de la etapa de exploración con el intercambio de tampón rápido) 71. En la etapa-escanear la reacción tiene que ser reproducible para al menos ~ 500x, el número mínimo para completar un interferograma que cubre el 1,800-850 cm -1 región a 8 cm -1 resolución. En la práctica, sin embargo, con un promedio adicional de datos generalmente se requiere para impulsar el nivel de ruido. Por 200 posición co-additions/mirror (10 5 repeticiones de la reacción) un espectro 6,25 microsegundos resolución diferencia de absorción puede mostrar una estación de ruidodesviación ndard entre 2 x 10 -5 y 2 x 10 -4 para un ATR y entre 5 x 10 -6 y 3 x 10 -5 para un experimento de transmisión (Figura 15). Gracias a su mayor rendimiento de fotones, la transmisión permite ~ 7 niveles de ruido más bajos que los ATR, un aspecto clave para el estudio de muestras en las que con éxito los cambios de absorción débiles como ChR2. Por otro lado, ATR requiere de 5 a 25 veces menos que muestra un experimento de transmisión. La aplicación de la etapa de exploración espectroscopia FT-IR resuelta en el tiempo es un problema para proteínas que muestra photocycles lentos: la grabación de un interferograma a paso-scan puede llegar a ser poco práctico larga. Algunas soluciones se han presentado para hacer frente a estos casos 72,73, a menudo basadas en el uso de múltiples muestras intercambiables para acelerar las medidas a costa de un mayor consumo de proteínas y la complejidad experimental 27,74. En algunos casos es posible eludir este problema por el excitando la muestra antes de la fotociclo está estrictamente completó. Para ChR2, con un fotociclo requiere después de la foto-excitación 60 seg para la recuperación de 99%, la recuperación en 4 seg ya de 80% es 48. Con una eficiencia de excitación de 10% por pulso láser, 98% de las moléculas de Chr2 están en la oscuridad estado 4 seg después de la foto-excitación, lo que hace posible llevar a cabo experimentos a una tasa de repetición del láser a 0,25 Hz. Tratamiento de la información es un aspecto técnico final necesario para alcanzar los mejores resultados posibles. Promedio logarítmico reduce el ruido y, también importante, reduce el tamaño de los datos sin distorsiones, una característica esencial para el análisis de datos posteriores utilizando la descomposición de valor singular o ajuste global. Promedio logarítmico es, sin embargo, no es muy exitosa en un promedio de las fluctuaciones en el tiempo-huellas causadas por las oscilaciones en el espejo móvil y otras fuentes de ruido 1 / f durante las mediciones (Figura 9). Estas fluctuaciones en la línea de basepuede superar el ruido en el rango de milisegundos y corrupto de la calidad de los datos. Descomposición de valor singular se aprovecha de la redundancia de los datos para reducir el ruido, y con algunas modificaciones 57 que puede reducir así las fluctuaciones en la línea de base. Finalmente, la mayor parte más difícil y requiere mucho tiempo de un paso de exploración de FT-IR experimento resuelta en el tiempo corresponde a la asignación de bandas y para la interpretación espectral y cinética de los datos. Para bacteriorhodopsin muchas de las bandas que aparecen en los espectros de diferencia IR han sido asignados o interpretado gracias al trabajo acumulado de muchos grupos de investigación en las últimas décadas. Para una proteína mucho menos estudiado, como canalrodopsina-2, los experimentos de IR con resolución temporal anteriormente presentados tienen que ser acompañados por experimentos paralelos en mutantes dirigidos al sitio y se combinan con la información de técnicas complementarias para llegar a una interpretación mecanicista 48.

Para dilucidar plenamente cómo las proteínas realizan su función, se requiere para medir mientras trabajan, es decir, a lo largo de un camino de reacción que implica a menudo una serie de productos intermedios y se extiende varios órdenes de tiempo. Los pasos clave de la función de proteínas a menudo tienen lugar en el microsegundo de milisegundos rango de tiempo 1, en ​​particular la columna vertebral cambios conformacionales y reacciones transferencias de protones en las proteínas de membrana. La cristalografía de rayos X, sin duda el pilar de la biología estructural, proporciona (promediada en el tiempo) densidades electrónicas estáticas de bienestar de difracción de cristales de proteína, muy difícil de crecer con proteínas de la membrana 2. Un modelo atómico 3D puede ser construido en base a la densidad de electrones, aunque rara vez incluida la ubicación de los átomos de hidrógeno. El notable avance en la cristalografía de rayos X con resolución temporal, basándose ya sea en Laue difracción 3 o en pulsos de rayos X de femtosegundos 4, añade la dimensión temporal a la gran información estructural eninherente a la cristalografía de rayos X 5. Pero dejando a un lado desafíos técnicos y analíticos, la red cristalina puede afectar la columna vertebral cambios conformacionales y alterar la dinámica de proteínas, un inconveniente inevitable de métodos basados ​​en cristales de proteínas 5. En consecuencia, los aspectos dinámicos de proteínas están aún mejor cubiertas por métodos ópticos, ya que por primera vez por el flash fotólisis 6,7, aunque con el inconveniente general de visión estructural limitado. Espectroscopia de infrarrojos por transformada de Fourier (FT-IR) combina la resolución temporal de espectroscopias ópticas con una sensibilidad valiosa a la estructura de la proteína, la última característica explotada en innumerables investigaciones estructurales y funcionales estáticas en proteínas de la membrana 8-11. En particular, la espectroscopia de diferencia FT-IR ha demostrado ser una herramienta ideal para estudiar pequeños cambios espectrales como tránsitos de proteínas de un estado metaestable a otro 12-19. Studies sobre la dinámica de proteínas, excepto en el único nivel de molécula 20,21, requieren un proceso de activación para la sincronización. Una reacción está convenientemente inició rápida y no invasiva utilizando la luz como disparador, como se hizo en el estudio de las proteínas con fotorreacciones cíclicos. Un reto importante asociado con estudios de tiempo-resuelto es la consecución de suficiente resolución de tiempo manteniendo una buena resolución espectral y la relación adecuada de señal a ruido. También es esencial para cubrir una gama suficientemente amplia espectral y temporal. Paso de barrido Tiempo de resolver la espectroscopia FT-IR sobresale en todos estos aspectos 22, con ejemplos publicados que cubren los rangos espectrales tan amplia como 3,900-850 cm -1 y la dinámica que se extiende ~ 9 órdenes de tiempo, con un máximo de 3,5 cm -1 espectral y 30 de la resolución temporal ns 23-28. Espectrómetros de transformación de Fourier de infrarrojos muestran ruido reducido y mayor precisión fotométrica sobre los dispersivos 29. Sin emer, en el modo de grabación rápida exploración normal espectrómetros FT-IR sufren de un tiempo de resolución limitado a ≥ 5-10 mseg como consecuencia de el tiempo mínimo el espejo móvil del interferómetro requiere para completar una exploración. Con la técnica de paso de escaneado, en contraste, la dependencia del tiempo del evento dinámico está desacoplada de la duración de la exploración del interferómetro. En pocas palabras, el espejo se mueve móviles en pasos discretos en lugar de escanear continuamente para realizar la exploración. En cada uno de estos pasos el espejo (móvil) se mantiene fijo y un transitorio se registra. Por lo tanto, el tiempo de resolución está limitada por el tiempo de subida del mercurio de teluro de cadmio (MCT) detector, que está típicamente en el intervalo de 10-100 nseg. En la práctica, la gran gama dinámica del interferograma (que contiene una señal intensa en las señales centerburst y pequeños en las alas), requiere de digitalización adecuado un convertidor analógico / digital (ADC) con un máximo de 16 a 24 bits que lleva a un muestreo tasas no superiores a 200 kHz ~(5 microsegundos) 30. Nanosegundo tiempo-resolución puede llevarse a cabo mediante la medición de sólo los cambios en el interferograma, para el que un bit ADC 8-12 es suficiente 23,31-33. Aspectos técnicos 30,34,35 y aplicaciones 36-38 de paso-scan con resolución temporal se han discutido en detalle en otra parte. El propósito de la contribución actual es proporcionar un protocolo que describe los aspectos prácticos de la etapa de exploración espectroscopía FT-IR resuelta en el tiempo en proteínas de la membrana fotosensibles. Aquí, el rendimiento de la técnica se muestra para dos métodos de muestreo: de transmisión y reflexión total atenuada (ATR). El uso de ATR, permite trabajar en la presencia de exceso de agua, que no sólo garantiza condiciones de hidratación completa para la proteína, pero también permite el control agudo de la muestra de pH y fuerza iónica 49,50. Experimentos escanear a paso se ilustran en dos sistemas seleccionados: bacteriorrodopsina y canalrodopsina-2. 39,40, por lo que es la proteína de membrana mejor entendido hasta ahora. Entre las numerosas técnicas aplicadas al estudio de la funcionalidad bR espectroscopia FT-IR ha ejercido sin duda uno de los impactos más grandes. A saber, la espectroscopia FT-IR ha sido la clave para resolver los grupos involucrados en la transferencia de protones a través de la membrana como en otros lugares representaron 13,41,51. Canalrodopsina (CHR) es el primer canal de iones de luz cerrada que se encuentra en la naturaleza 42,43. Luz de excitación de ChR conduce a la apertura transitoria de un canal iónico. Su descubrimiento se estableció el camino para el desarrollo de la optogenética, donde los procesos moleculares son controlados por la luz 44,45. ChR pertenece, como bR, a la familia de rhodopsins microbiana pero en contraste con bR, y mucho menos se sabe acerca de su mecanismo funcional 52. ChR2 combina su función como ion con la actividad del canal de protones bombeo 46,47. Recientemente, hemos aplicado paso-scan espectroscopia FT-IR de resolución temporal para resolver las reacciones de transferencia de protones dentro de la proteína y la dinámica de las proteínas de backbone cambios de conformación en ChR2 48.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="750">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:248px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:216px;">FT-IR spectrometer</td>
			<td style="width:248px;">Bruker</td>
			<td style="width:119px;">Vertex 80v</td>
			<td>Equipped with photovoltaic-MCT detector, an external global, and an oil-free pump. Firmware 2.3.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">BaF2 windows</td>
			<td style="width:248px;">korth Kristalle</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">diamond ATR accesory</td>
			<td style="width:248px;">Smiths detection</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Nine-reflection DuraDisk</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">thermostatic bath</td>
			<td style="width:248px;">Julabo&#160;</td>
			<td style="width:119px;">F25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">vibration decoupled table</td>
			<td style="width:248px;">OPTA</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Pulsed Nd:YAG laser with a second harmonic generator</td>
			<td style="width:248px;">Continuum electro-Optics</td>
			<td style="width:119px;">Minilite&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Optical parametric oscillator (OPO)</td>
			<td style="width:248px;">OPTA</td>
			<td style="width:119px;">BBO-355-VIS/IR S/N 1009</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Digital delay/pulse generator&#160;</td>
			<td style="width:248px;">Stanford Research Systems</td>
			<td style="width:119px;">DG535</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Pulsed Nd:YAG laser with a third harmonic generator</td>
			<td style="width:248px;">Spectra-Physics</td>
			<td style="width:119px;">Quanta-Ray</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Various optical mirrors and lenses</td>
			<td style="width:248px;">ThorLabs</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">OPUS 7.0&#160;</td>
			<td style="width:248px;">Bruker</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Software to control Vertex 80v spectrometer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Matlab run time</td>
			<td style="width:248px;">Mathworks</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Used to run home-made executable programs to preprocess the data</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

proton transfer and protein conformation dynamics in photosensitive proteins by time-resolved step-scan fourier-transform infrared spectroscopy

Monitoreo de la dinámica de protonación y proteínas backbone cambios de conformación durante la función de una proteína es un paso esencial hacia la comprensión de su mecanismo. De protonación y conformacionales cambios afectan el patrón de vibración de las cadenas laterales de aminoácidos y del enlace peptídico, respectivamente, ambos de los cuales se puede probar por infrarrojos (IR) espectroscopia de diferencia. Para las proteínas cuya función puede ser repetitiva y reproducible provocada por la luz, es posible obtener espectros de diferencia de infrarrojo, con (sub) Resolución de microsegundos en un amplio rango espectral usando la técnica infrarroja paso a escanear la transformada de Fourier. Con ~ 10 2 -10 3 repeticiones de la fotorreacción, el número mínimo para completar una exploración a una resolución espectral razonable y ancho de banda, el nivel de ruido en los espectros de diferencia de absorción puede ser tan bajo como ~ 10 - 4, suficiente para seguir la cinética de cambios de protonación de un único aminoácido. Inferiorlos niveles de ruido se puede lograr por más de promediado de datos y / o procesamiento matemático. La cantidad de proteína requerida para obtener resultados óptimos es entre 5-100 mg, dependiendo de la técnica de muestreo utilizada. En cuanto a requisitos adicionales, la proteína necesita ser concentrado primero en un tampón de fuerza iónica baja y después se seca para formar una película. La película de proteína se hidrata antes del experimento, o bien con pequeñas gotas de agua o bajo la humedad atmosférica controlada. El nivel de hidratación alcanzado (g de agua / g de proteína) se mide a partir de un espectro de absorción IR. Para mostrar la técnica, se estudió la fotociclo del bacteriorhodopsin la bomba de protones impulsada por la luz en su entorno membrana púrpura nativa, y del canal de iones canalrodopsina-2 la luz cerrada solubilizada en detergente.

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Proton Transfer and Protein Conformation Dynamics in Photosensitive Proteins by Time-resolved Step-scan Fourier-transform Infrared Spectroscopy

Key steps of protein function, in particular backbone conformational changes and proton transfer reactions, often take place in the microsecond to millisecond time scale. These dynamical processes can be studied by time-resolved step-scan Fourier-transform infrared spectroscopy, in particular for proteins whose function is triggered by light.

Transferencia de Protones y Proteína Conformación Dinámica de proteínas fotosensibles por Time resuelto-Step-scan transformada de Fourier espectroscopia de infrarrojo

Monitoring the dynamics of protonation and protein backbone conformation changes during the function of a protein is an essential step towards ...

proton-transfer-protein-conformation-dynamics-photosensitive-proteins

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17.8K vistas.  Freie Universität Berlin. Key steps of protein function, in particular backbone conformational changes and proton transfer reactions, often take place in the microsecond to millisecond time scale. These dynamical processes can be studied by time-resolved step-scan Fourier-transform infrared spectroscopy, in particular for proteins whose function is triggered by light.

Video: Proton Transfer and Protein Conformation Dynamics in Photosensitive Proteins by Time-resolved Step-scan Fourier-transform Infrared Spectroscopy

Investigating Single Molecule Adhesion by Atomic Force Spectroscopy

Atomic force spectroscopy is an ideal tool to study molecules at surfaces and interfaces. An experimental protocol to couple a large variety of single molecules covalently onto an AFM tip is presented. At the same time the AFM tip is passivated to prevent unspecific interactions between the tip and the substrate, which is a prerequisite to study single molecules attached to the AFM tip. Analyses to determine the adhesion force, the adhesion length, and the free energy of these molecules on solid surfaces and bio-interfaces are shortly presented and external references for further reading are provided. Example molecules are the poly(amino acid) polytyrosine, the graft polymer PI-g-PS and the phospholipid POPE (1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine). These molecules are desorbed from different surfaces like CH3-SAMs, hydrogen terminated diamond and supported lipid bilayers under various solvent conditions. Finally, the advantages of force spectroscopic single molecule experiments are discussed including means to decide if truly a single molecule has been studied in the experiment.

A protocol to couple a large variety of single molecules covalently onto an AFM tip is presented. Procedures and examples to determine the adhesion force and free energy of these molecules on solid supports and bio-interfaces are provided.

Investigando individual molécula de adhesión por espectroscopia de fuerza atómica

Atomic force spectroscopy is an ideal tool to study molecules at surfaces and interfaces. An experimental protocol to couple a large variety of single ...

Investigación

Ingeniería

Detection and Recovery of Palladium, Gold and Cobalt Metals from the Urban Mine Using Novel Sensors/Adsorbents Designated with Nanoscale Wagon-wheel-shaped Pores

Developing low-cost, efficient processes for recovering and recycling palladium, gold and cobalt metals from urban mine remains a significant challenge in industrialized countries. Here, the development of optical mesosensors/adsorbents (MSAs) for efficient recognition and selective recovery of Pd(II), Au(III), and Co(II) from urban mine was achieved. A simple, general method for preparing MSAs based on using high-order mesoporous monolithic scaffolds was described. Hierarchical cubic Ia3d wagon-wheel-shaped MSAs were fabricated by anchoring chelating agents (colorants) into three-dimensional pores and micrometric particle surfaces of the mesoporous monolithic scaffolds. Findings show, for the first time, evidence of controlled optical recognition of Pd(II), Au(III), and Co(II) ions and a highly selective system for recovery of Pd(II) ions (up to ~95%) in ores and industrial wastes. Furthermore, the controlled assessment processes described herein involve evaluation of intrinsic properties (e.g., visual signal change, long-term stability, adsorption efficiency, extraordinary sensitivity, selectivity, and reusability); thus, expensive, sophisticated instruments are not required. Results show evidence that MSAs will attract worldwide attention as a promising technological means of recovering and recycling palladium, gold and cobalt metals.

Because of the importance and extensive use of palladium, gold and cobalt metals in high-technology equipment, their recovery and recycling constitute an important industrial challenge. The metal recovery system described herein is a simple, low-cost means for the effective detection, removal, and recovery of these metals from the urban mine.

Detección y recuperación de paladio, oro y cobalto Metales de la Mina Urbana utilizando sensores Novela / adsorbentes designados con nanoescala Los poros en forma de rueda-Wagon

Developing low-cost, efficient processes for recovering and recycling palladium, gold and cobalt metals from urban mine remains a significant challenge in ...

Integration of Light Trapping Silver Nanostructures in Hydrogenated Microcrystalline Silicon Solar Cells by Transfer Printing

One of the potential applications of metal nanostructures is light trapping in solar cells, where unique optical properties of nanosized metals, commonly known as plasmonic effects, play an important role. Research in this field has, however, been impeded owing to the difficulty of fabricating devices containing the desired functional metal nanostructures. In order to provide a viable strategy to this issue, we herein show a transfer printing-based approach that allows the quick and low-cost integration of designed metal nanostructures with a variety of device architectures, including solar cells. Nanopillar poly(dimethylsiloxane) (PDMS) stamps were fabricated from a commercially available nanohole plastic film as a master mold. On this nanopatterned PDMS stamps, Ag films were deposited, which were then transfer-printed onto block copolymer (binding layer)-coated hydrogenated microcrystalline Si (&#181;c-Si:H) surface to afford ordered Ag nanodisk structures. It was confirmed that the resulting Ag nanodisk-incorporated &#181;c-Si:H solar cells show higher performances compared to a cell without the transfer-printed Ag nanodisks, thanks to plasmonic light trapping effect derived from the Ag nanodisks. Because of the simplicity and versatility, further device application would also be feasible thorough this approach.

A viable transfer printing-based methodology to introduce plasmonic metal nanostructures in solar cells is described. Using nanopillar poly(dimethylsiloxane) stamps, an Ag-based ordered nanodisk array was integrated with standard hydrogenated microcrystalline Si solar cells, which led to improved device performances due to plasmonic light trapping.

Integración de luz de captura de plata de nanoestructuras en células solares de silicio hidrogenado microcristalina por transferencia Impresión

One of the potential applications of metal nanostructures is light trapping in solar cells, where unique optical properties of nanosized metals, commonly ...

Characterizing Far-infrared Laser Emissions and the Measurement of Their Frequencies

The generation and subsequent measurement of far-infrared radiation has found numerous applications in high-resolution spectroscopy, radio astronomy, and Terahertz imaging. For about 45 years, the generation of coherent, far-infrared radiation has been accomplished using the optically pumped molecular laser. Once far-infrared laser radiation is detected, the frequencies of these laser emissions are measured using a three-laser heterodyne technique. With this technique, the unknown frequency from the optically pumped molecular laser is mixed with the difference frequency between two stabilized, infrared reference frequencies. These reference frequencies are generated by independent carbon dioxide lasers, each stabilized using the fluorescence signal from an external, low pressure reference cell. The resulting beat between the known and unknown laser frequencies is monitored by a metal-insulator-metal point contact diode detector whose output is observed on a spectrum analyzer. The beat frequency between these laser emissions is subsequently measured and combined with the known reference frequencies to extrapolate the unknown far-infrared laser frequency. The resulting one-sigma fractional uncertainty for laser frequencies measured with this technique is &#177; 5 parts in 107. Accurately determining the frequency of far-infrared laser emissions is critical as they are often used as a reference for other measurements, as in the high-resolution spectroscopic investigations of free radicals using laser magnetic resonance. As part of this investigation, difluoromethane, CH2F2, was used as the far-infrared laser medium. In all, eight far-infrared laser frequencies were measured for the first time with frequencies ranging from 0.359 to 1.273 THz. Three of these laser emissions were discovered during this investigation and are reported with their optimal operating pressure, polarization with respect to the CO2 pump laser, and strength.

We describe the generation of far-infrared radiation using an optically pumped molecular laser along with the measurement of their frequencies with heterodyne techniques. The experimental system and techniques are demonstrated using difluoromethane (CH2F2) as the laser medium whose results include three new laser emissions and eight measured laser frequencies.

Caracterización de Emisiones láser infrarrojo lejano y la medición de sus frecuencias

The generation and subsequent measurement of far-infrared radiation has found numerous applications in high-resolution spectroscopy, radio astronomy, and ...

Emission Spectroscopic Boundary Layer Investigation during Ablative Material Testing in Plasmatron

Ablative Thermal Protection Systems (TPS) allowed the first humans to safely return to Earth from the moon and are still considered as the only solution for future high-speed reentry missions. But despite the advancements made since Apollo, heat flux prediction remains an imperfect science and engineers resort to safety factors to determine the TPS thickness. This goes at the expense of embarked payload, hampering, for example, sample return missions. 
Ground testing in plasma wind-tunnels is currently the only affordable possibility for both material qualification and validation of material response codes. The subsonic 1.2MW Inductively Coupled Plasmatron facility at the von Karman Institute for Fluid Dynamics is able to reproduce a wide range of reentry environments. This protocol describes a procedure for the study of the gas/surface interaction on ablative materials in high enthalpy flows and presents sample results of a non-pyrolyzing, ablating carbon fiber precursor. With this publication, the authors envisage the definition of a standard procedure, facilitating comparison with other laboratories and contributing to ongoing efforts to improve heat shield reliability and reduce design uncertainties.
The described core techniques are non-intrusive methods to track the material recession with a high-speed camera along with the chemistry in the reactive boundary layer, probed by emission spectroscopy. Although optical emission spectroscopy is limited to line-of-sight measurements and is further constrained to electronically excited atoms and molecules, its simplicity and broad applicability still make it the technique of choice for analysis of the reactive boundary layer. Recession of the ablating sample further requires that the distance of the measurement location with respect to the surface is known at all times during the experiment. Calibration of the optical system of the applied three spectrometers allowed quantitative comparison. At the fiber scale, results from a post-test microscopy analysis are presented.

Development of new ablative materials and their numerical modeling requires extensive experimental investigation. This protocol describes procedures for material response characterization in plasma flows with the core techniques being non-intrusive methods to track the material recession along with the chemistry in the reactive boundary layer by emission spectroscopy.

Investigación capa de emisión espectroscópica de límites durante el ablativo de Ensayo de Materiales en Plasmatron

Ablative Thermal Protection Systems (TPS) allowed the first humans to safely return to Earth from the moon and are still considered as the only solution ...

Free-form Light Actuators &#8212; Fabrication and Control of Actuation in Microscopic Scale

Liquid crystalline elastomers (LCEs) are smart materials capable of reversible shape-change in response to external stimuli, and have attracted researchers&#39; attention in many fields. Most of the studies focused on macroscopic LCE structures (films, fibers) and their miniaturization is still in its infancy. Recently developed lithography techniques, e.g., mask exposure and replica molding, only allow for creating 2D structures on LCE thin films. Direct laser writing (DLW) opens access to truly 3D fabrication in the microscopic scale. However, controlling the actuation topology and dynamics at the same length scale remains a challenge.
In this paper we report on a method to control the liquid crystal (LC) molecular alignment in the LCE microstructures of arbitrary three-dimensional shape. This was made possible by a combination of direct laser writing for both the LCE structures as well as for micrograting patterns inducing local LC alignment. Several types of grating patterns were used to introduce different LC alignments, which can be subsequently patterned into the LCE structures. This protocol allows one to obtain LCE microstructures with engineered alignments able to perform multiple opto-mechanical actuation, thus being capable of multiple functionalities. Applications can be foreseen in the fields of tunable photonics, micro-robotics, lab-on-chip technology and others.

Free-form Light Actuators &amp;#8212; Fabrication and Control of Actuation in Microscopic Scale

Here, we fabricate 3D polymeric micro/nano structures in which both the shape and the molecular alignment can be engineered with nanometer scale accuracy by the use of direct laser writing. Light induced deformation of several types of liquid crystalline elastomer microstructures can be controlled in the microscopic scale.

De forma libre actuadores de luz - Fabricación y Control de la Actuación en la escala microscópica

Liquid crystalline elastomers (LCEs) are smart materials capable of reversible shape-change in response to external stimuli, and have attracted ...

The Evolution of Silica Nanoparticle-polyester Coatings on Surfaces Exposed to Sunlight

Corrosion of metallic surfaces is prevalent in the environment and is of great concern in many areas, including the military, transport, aviation, building and food industries, amongst others. Polyester and coatings containing both polyester and silica nanoparticles (SiO2NPs) have been widely used to protect steel substrata from corrosion. In this study, we utilized X-ray photoelectron spectroscopy, attenuated total reflection infrared micro-spectroscopy, water contact angle measurements, optical profiling and atomic force microscopy to provide an insight into how exposure to sunlight can cause changes in the micro- and nanoscale integrity of the coatings. No significant change in surface micro-topography was detected using optical profilometry, however, statistically significant nanoscale changes to the surface were detected using atomic force microscopy. Analysis of the X-ray photoelectron spectroscopy and attenuated total reflection infrared micro-spectroscopy data revealed that degradation of the ester groups had occurred through exposure to ultraviolet light to form COO&#903;, -H2C&#903;, -O&#903;, -CO&#903; radicals. During the degradation process, CO and CO2 were also produced.

Two types of surfaces, polyester-coated steel and polyester coated with a layer of silica nanoparticles, were studied. Both surfaces were exposed to sunlight, which was found to cause substantial changes in the chemistry and nanoscale topography of the surface.

La evolución de sílice recubrimientos de nanopartículas-poliéster sobre superficies expuestas al sol

Corrosion of metallic surfaces is prevalent in the environment and is of great concern in many areas, including the military, transport, aviation, ...

Recombination Dynamics in Thin-film Photovoltaic Materials via Time-resolved Microwave Conductivity

A method for investigating recombination dynamics of photo-induced charge carriers in thin film semiconductors, specifically in photovoltaic materials such as organo-lead halide perovskites is presented. The perovskite film thickness and absorption coefficient are initially characterized by profilometry and UV-VIS absorption spectroscopy. Calibration of both laser power and cavity sensitivity is described in detail. A protocol for performing Flash-photolysis Time Resolved Microwave Conductivity (TRMC) experiments, a non-contact method of determining the conductivity of a material, is presented. A process for identifying the real and imaginary components of the complex conductivity by performing TRMC as a function of microwave frequency is given. Charge carrier dynamics are determined under different excitation regimes (including both power and wavelength). Techniques for distinguishing between direct and trap-mediated decay processes are presented and discussed. Results are modelled and interpreted with reference to a general kinetic model of photoinduced charge carriers in a semiconductor. The techniques described are applicable to a wide range of optoelectronic materials, including organic and inorganic photovoltaic materials, nanoparticles, and conducting/semiconducting thin films.

A Time Resolved Microwave Conductivity technique for investigating direct and trap-mediated recombination dynamics and determining carrier mobilities of thin film semiconductors is presented here.

La recombinación Dinámica de capa fina en materiales fotovoltaicos a través de conductividad de microondas resuelta en el tiempo

A method for investigating recombination dynamics of photo-induced charge carriers in thin film semiconductors, specifically in photovoltaic materials ...

Measurements of Soil Carbon by Neutron-Gamma Analysis in Static and Scanning Modes

The herein described application of the inelastic neutron scattering (INS) method for soil carbon analysis is based on the registration and analysis of gamma rays created when neutrons interact with soil elements. The main parts of the INS system are a pulsed neutron generator, NaI(Tl) gamma detectors, split electronics to separate gamma spectra due to INS and thermo-neutron capture (TNC) processes, and software for gamma spectra acquisition and data processing. This method has several advantages over other methods in that it is a non-destructive in situ method that measures the average carbon content in large soil volumes, is negligibly impacted by local sharp changes in soil carbon, and can be used in stationary or scanning modes. The result of the INS method is the carbon content from a site with a footprint of ~2.5 - 3 m2 in the stationary regime, or the average carbon content of the traversed area in the scanning regime. The measurement range of the current INS system is &#62;1.5 carbon weight % (standard deviation &#177; 0.3 w%) in the upper 10 cm soil layer for a 1 hmeasurement.

Here, we present the protocol for in situ measurement of soil carbon using the neutron-gamma technique for single point measurements (static mode) or field averages (scanning mode). We also describe system construction and elaborate data treatment procedures.

Mediciones de carbono del suelo por neutrón-Gamma análisis en estática y modos de exploración

The herein described application of the inelastic neutron scattering (INS) method for soil carbon analysis is based on the registration and analysis of ...

Quantitative Analysis of Vacuum Induction Melting by Laser-induced Breakdown Spectroscopy

Vacuum induction melting is a popular method for refining high purity metal and alloys. Traditionally, standard process control in metallurgy involves several steps, include drawing samples, cooling, cutting, transport to the laboratory, and analysis. The whole analysis process requires more than 30 minutes, which hinders on-line process control. Laser-induced breakdown spectroscopy is an excellent on-line analysis method that can satisfy the requirements of vacuum induction melting because it is fast and noncontact and does not require sample preparation. The experimental facility uses a lamp-pumped Q-switched laser to ablate melted liquid steel with an output energy of 80 mJ, a frequency of 5 Hz, a FWHM pulse width of 20 ns, and a working wavelength of 1,064 nm. A multi-channel linear charge coupled device (CCD) spectrometer is used to measure the emission spectrum in real time, with a spectral range from 190 to 600 nm and a resolution of 0.06 nm at a wavelength of 200 nm. The protocol includes several steps: standard alloy sample preparation and an ingredient test, smelting of standard samples and determination of the laser breakdown spectrum, and construction of the elements concentration quantitative analysis curve of each element. To realize the concentration analysis of unknown samples, the spectrum of a sample also needs to be measured and disposed with the same process. The composition of all main elements in the melted alloy can be quantitatively analyzed with an internal standard method. The calibration curve shows that the limit of detection of most metal elements ranges from 20-250 ppm. The concentration of elements, such as Ti, Mo, Nb, V, and Cu, can be lower than 100 ppm, and the concentrations of Cr, Al, Co, Fe, Mn, C, and Si range from 100-200 ppm. The R2 of some calibration curves can exceed 0.94.

During vacuum induction melting, laser-induced breakdown spectroscopy is used to perform real-time quantitative analysis of the main-ingredient elements of a molten alloy.

Análisis cuantitativo de fusión por inducción de vacío mediante espectroscopía de ruptura inducida por láser

Vacuum induction melting is a popular method for refining high purity metal and alloys. Traditionally, standard process control in metallurgy involves ...