Esta lista puede ayudarnos con preguntas clave en el campo de la neuro-rehabilitación. Con respecto al síndrome de vigilia insensible y estados conscientes mínimos después de una lesión cerebral traumática cerebral. La principal ventaja de esta técnica es que, los pacientes con deformación del tejido cerebral como, atrofia, hinchazón, agrandamiento y encogimiento de espacios ventriculares pueden ser asistidos en la etapa crónica.
Demostrando el procedimiento estarán Tomoki Uchida, nuestro farmacéutico, Kazuaki Yokoyama, nuestro hábil operador, Mizuho Kamezawa, nuestra enfermera, Shinji Onodera y Yoshihiro Ozaki, radio tecnólogo de mi laboratorio. Comience a fabricar kits de reactivos para la producción automatizada de FDG, adaptados al sintetizador en uso. Ajuste las jeringas para los kits de reactivos de fabricación en los controladores de jeringa correspondientes en el sintetizador FDG automatizado.
Asegúrese de utilizar el programa automático para comprobar la movilidad del sistema de bombeo. Compruebe el volumen del agua Oxygen-16 y 18, y el volumen de gases de helio, hidrógeno y nitrógeno. Asegúrese también de que el agua del grifo esté por debajo de los 25 grados centígrados para la refrigeración primaria y por debajo de los 22 grados centígrados para la refrigeración secundaria.
Después de una hora, asegúrese de que el aire no pueda salir del kit de reactivos. Establecer viales de acetonitrilo, triflato de manosa, etanol y solución tampón PH. Comience la irradiación preliminar de Oxígeno-16 en el ciclotrón.
Compruebe que dos o tres mililitros de agua esté irradiado en condiciones óptimas en el área objetivo. A continuación, comenzar la irradiación de oxígeno-18 agua en el ciclotrón 90 minutos después de arrancar. Establezca el tiempo de bombardeo de hasta 20 minutos, y la energía de los protones que afectan a 16,5 mega voltios de electrones.
Asegúrese de que la lámpara se enciende cuando el ciclotrón está en marcha. Después de la irradiación, utilice gas helio para transferir de dos a tres mililitros de agua de oxígeno-18 desde el ciclotrón al receptor de polipropileno del sintetizador FDG. Enganche las jeringas a los controladores de jeringa correspondientes y a los viales de reactivos presurizados.
Luego, disolver el triflado de la manosa en un vial de 99.5 por ciento de acetonitrilo puro, luego enjuagar el casete con acetonitrilo. Transfiera el agua irradiante Oxygen-18 al sintetizador FDG. Luego, después de transferir el eluyente al contenido Fluorine-18 sin líquido a los vasos de reacción.
Deje que los disolventes se evaporen hasta que se sequen. Durante el proceso de secado, añadir 80 microlitros de acetonitrilo al recipiente de reacción tres veces. Realice la evaporación a 95 grados centígrados bajo el flujo de nitrógeno y el vacío.
Disolver 25 miligramos de precursor de triflato de manosa en aproximadamente 3,5 mililitros de 99,5 por ciento de acetonitrilo puro, luego añadirlo al residuo seco. Una reacción de sustitución nucleófila ocurre a 85 grados Celsius en el sintetizador FDG. Como purificación preliminar, mezcló la solución etiquetada con 26 mililitros de agua destilada.
A continuación, envíe unos cuatro mililitros de la solución de etiquetado diluido de vuelta al recipiente de reacción para recuperar la actividad restante. A continuación, pase la solución a través del cartucho de fase inversa. A continuación, enjuague el cartucho que contiene el precursor etiquetado atrapado cuatro veces utilizando agua destilada.
Ahora, convierta el compuesto acetilado en FDG dentro del cartucho a través de hidrólisis alcalina. Uso de 750 microlitros de hidróxido de sodio de 2 N durante 90 segundos a temperatura ambiente. Una vez completada la hidrólisis, recoja la solución alcalina de FDG en 70 mililitros de agua y mezcle con una solución de neutralización.
A continuación, purifique la solución FDG neutralizada resultante. Pasar la solución FDG neutralizada a través de un segundo cartucho de fase inversa que retiene los compuestos parcialmente hidrolizados y los subproductos no bipolares. Luego, pásalo a través de un cartucho Alumina-N conservando el último rastro de iones de harinera F-18 no reaccionados, luego pásalo a través de un filtro de 0,22 micrómetros.
A continuación, enjuague el cassette y los cartuchos y filtre con 3 mililitros de agua para recuperar el FDG residual en las líneas. A continuación, escurra el FDG en el vial final que debe contener de 15 a 17 mililitros de líquido. Después de dos horas y 30 minutos desde el inicio de la preparación, realice un análisis cualitativo examinando el vial para confirmar que es transparente sin partículas.
Además, medir la cantidad de líquido usando una túnica gira el equilibrio. Y mida la radiactividad y la vida media usando un calibrador de dosis de radioisótopo. Ahora, mida el PH, así como la cripta residual y-22 usando papel de prueba.
Además, mida las endotoxinas con el dispositivo adecuado a través de la medición de absorbancia. A continuación, dispensar 0,5 mililitros del vial y realizar una prueba de pureza radioquímica a través de análisis de carbohidratos. Utilice columnas de 3,9 por 300 milímetros para cromatografía líquida de alto rendimiento para detectar la radiactividad máxima.
Finalmente, llenar el vial cubierto por plomo y tungsteno con el Tracer FDG, a una dosis de 5 megabecquerel por kilogramo de peso corporal. Luego, tres horas y 25 minutos después de la hora de inicio, transfiera el Tracer desde el Hot Lab a la sala de trabajo. Comience preparando la vía intravenosa para la administración de FDG Tracer.
Asegure una aguja de calibre 22 a 24 con 5 mililitros de heparina sódica, en una de las extremidades inferiores. El paciente debe acostarse durante 30 minutos antes de entrar en el área controlada por radiación. A continuación, vuelva a comprobar la patencia de la vía intravenosa extrayendo sangre y mida el nivel de glucosa en sangre del paciente.
A continuación, transfiera el Tracer FDG desde el Hot Lab a la sala de trabajo a través de la ventana. Ajuste el trazador en el sistema de dosificación e inyección automática. Compruebe la aspiración del trazador FDG del vial del monitor.
Conecte el tubo entre el paciente y el sistema de inyección de dosificación automática. Empuje la parte inferior e inyecte el trazador FDG al paciente. En este punto, deténgase para confirmar la cantidad y el número de lote de Tracer, la radiactividad programada, el tiempo de inyección, la velocidad de inyección y el nivel de radiactividad medido.
Ahora, registre la medición automática de la radiactividad preinyeccionado que aparece en la pantalla del sistema de inyección y visualización automática. A continuación, inyecte el Tracer por vía intravenosa a las tres horas y 30 minutos, después del inicio. Pida al paciente que espere en la sala de espera del área controlada por radiación durante 50 minutos.
Luego, cuatro horas y 30 minutos después de la hora de inicio, transfiera al paciente de la sala de espera a la máquina PET/CT y grabe imágenes cerebrales durante 10 minutos. Después de la toma de imágenes, compruebe si el área de inyección es de extravasación. Una vez que se adquieren todos los datos, evalúe todos los datos de imagen para una medición estandarizada del valor de captación utilizando software de imágenes y compare la evaluación clínica con las imágenes FDG-PET/CT.
Esta figura muestra una imagen cerebral representativa de FDG-PET/CT. Aquí se muestra la medición del metabolismo de la glucosa talámica derecha en un navegador de imágenes en 3 dimensiones. Aquí vemos una imagen representativa mapeada en color después de la fusión FDG-PET y CT.
El nivel de glucosa en sangre en el momento de la exploración como se describe como rojo con un umbral máximo de SUV del 50 por ciento. Este panel muestra imágenes representativas de la superficie cerebral tridimensional FDG-PET. Las regiones rojas tienen un metabolismo de glucosa más alto que las regiones verdes.
El nivel de glucosa en sangre en el momento de la exploración se muestra en rojo. Al intentar este procedimiento, es importante que el tiempo de bombardeo y la energía se ajusten de acuerdo con el número de pacientes. Además, se debe prestar atención al tubo cryptand-222, ya que se puede detener fácilmente por la cristalización.
También sepa que el gancho de las jeringas debe manipularse cuidadosamente porque se puede romper fácilmente. Además, ten en cuenta que un paciente con lesión cerebral traumática cerebral a veces puede realizar movimientos imprevistos durante la adquisición de imágenes. Siga este procedimiento, añadir de muchas maneras varias pruebas radiactivas se pueden aplicar con el fin de responder a preguntas adicionales que implican el metabolismo de aminoácidos.
No olvide que trabajar con materiales radiactivos puede ser extremadamente peligroso y que siempre se deben tomar precauciones como la protección contra la radiación durante la realización de este procedimiento.
