En raison de l’absence d’un modèle animal idéal, l’étude du CVST est grandement limitée. Maintenant, un nouveau type de modèle CVST de SD-Rat a été avec succès établi en insérant le fil-embolization self-made centripetally à l’emplacement initial de SSS qui a normalisé de divers facteurs d’interférence ou incontrôlables en condition clinique. Après que le rat ait été avec succès anesthésié par injection intra-péritonéale, appliquez le lubrifiant ophtalmique d’oeil de gel après que le rat soit mis sur l’image stereotaxic pour protéger les cornées du séchage pendant l’anesthésie.
Retirez les poils sur le dessus de la tête du rat. Afin d’effectuer ce processus plus efficacement, l’étape précédente peut être effectuée plus tôt dans la salle de préparation. Après que le rat ait été anesthésié avec succès par la machine anesthésique, appliquez également un lubrifiant ophtalmique stérile pour les yeux.
Stériliser la surface sur le dessus de la tête du rat avec 5% d’iode povidone. Alternez cela trois fois avec de l’éthanol à 75%. Faites une incision cutanée d’environ deux centimètres de long au milieu de la tête.
Le fascia est ouvert avec un scalpel. Et puis, décollez soigneusement le fascia supérieur et le périoste pour exposer complètement le crâne. Confirmer la position de la fontanelle antérieure, A et la fontanelle postérieure, B.Utilisez la zone entre la suture coronale et la suture du coude, comme zone d’observation du flux sanguin.
Pour empêcher le crâne d’affecter l’observation pendant l’imagerie du flux sanguin moucheté au laser, amincir le crâne dans la zone d’observation jusqu’à ce que les vaisseaux sanguins soient clairement visibles. Pendant le broyage du crâne, utilisez une seringue à température normale pour rincer la dura à plusieurs reprises, afin d’éviter un éclatement à haute température dans le cortex cérébral. Cette étape et ce qui suit sont tous réalisés sous un microscope de dissection.
Dans cette figure, la zone rectangulaire bordée de rouge est la zone d’observation du flux sanguin. La taille du crâne aminci devrait être d’environ un centimètre multiplié par un centimètre. Et la zone rectangulaire bordée de bleu est la fenêtre en os.
Environ six millimètres multipliés par quatre millimètres. La zone circulaire rouge est l’articulation pariétale et la flèche pointe vers le SSS. Lorsque le crâne peut être vu, utilisez une pince à épiler pour soigneusement les morceaux d’os restants de la fenêtre osseuse.
Choisissez une sonde de filetage appropriée, utilisez le point avant ou comme point de bouchon. Perforez-le soigneusement avec une aiguille de seringue de 2 millimètres et insérez rapidement une sonde de fil dans le point de préparation. À ce stade, l’angle entre l’extrémité de la sonde filetage et le SSS doit être d’environ 30 à 45 degrés.
Ajustez ensuite l’angle entre l’extrémité de la sonde de filetage et le SS à zéro à 10 degrés. Et insérez lentement le SSS dans la structure jusqu’à ce que la tête atteigne l’extrémité de la posteria de la confluence sinusale. La respiration rapide peut se produire quand le SSS est perforé.
Si l’extrémité de la sonde de fil ne peut pas être rapidement insérée dans le point de préparation en même temps, utilisez une petite gaze ou une boule de coton pour appuyer doucement sur le point de sonde tout en glissant lentement vers le bas pour exposer soigneusement le point de préparation. Cela est fait, insérez rapidement à l’extrémité du fil introduit dans le SSS. La flèche bleue indique l’état de l’insertion de la sonde dans le SSS à partir du point de prise.
La flèche blanche montre le corps de la sonde et la flèche rouge montre qu’il s’agit de la tête. Ensuite, coupez la partie excédentaire de la queue. Suturer la peau du rat.
Désinfectez la peau trois fois et retirez le rat du cadre stéréotaxique. Utilisez la source de lumière laser pour éclairer uniformément la zone d’observation du flux sanguin. L’image enregistre le processus dynamique de la sonde de thread dans le SSS.
Dans cette figure A et B montre une comparaison du flux sanguin avant et après l’insertion d’embolisation de fil. C prouve que le flux sanguin dans le SSS et les veines de cerveau ont été diminués de manière significative comparés à la fois dans l’artère cérébrale moyenne et les capillaires. Fixez l’animal sur la table de balayage IRM.
Calibrer la position du cerveau en positionnant le balayage et effectuer le balayage de séquence T2WI et MRI après avoir confirmé la position. Afin d’observer plus clairement l’état de la sonde de fil dans le SSS, la méthode montée sur la tête C2 a été utilisée pour afficher l’image T2WI du cerveau du rat. Sur cette figure, A, B et C montrent la sonde de fil dans le SSS à partir de la position horizontale, de la position sagittale et de la position crânienne.
L’image montre que la sonde de fil est en place, ce qui confirme l’embolisation du SSS. Comme le modèle de thrombose SSS du rat est facilement établi minimisant le traumatisme, offrant une bonne stabilité et permettant de contrôler avec précision le moment chimique et l’emplacement, c’est un nouveau type idéal de modèle CVST.
