Ce protocole imite non seulement l’apparition et le développement de la DFTC clinique, mais fournit également un modèle animal fiable pour évaluer les traitements thérapeutiques contre le FTCD. Mais cette technique est facile à réaliser et permet d’observer la croissance immédiatement après la blessure. Cette technique peut imiter avec succès les défauts cartilagineux cliniques en fournissant une plate-forme pour étudier le processus pathologique des défauts du cartilage et développer des médicaments thérapeutiques correspondants.
Cette méthode pourrait être appliquée pour étudier les défauts traumatiques du cartilage, à savoir l’arthrose post-traumatique. Lorsque vous essayez cette technique pour la première fois, il est important de fléchir le tibia et le péroné à un angle de 90 degrés pour exposer complètement la cochléaire du condyle fémoral et maintenir le foret perpendiculaire à la surface du cartilage. Commencez par placer un rat anesthésié sur la table d’opération en décubitus dorsal.
Placez un champ stérile sur le rat, exposant l’articulation du genou rasée et désinfectée. À l’aide d’une lame de scalpel numéro 11, faites une incision verticale d’un centimètre au milieu de l’articulation du genou. Et coupez la capsule articulaire et le tendon du quadriceps fémoral le long du bord médial de la rotule.
Ensuite, tournez la rotule vers l’extérieur et fléchissez le tibia et le péroné à un angle de 90 degrés, pour exposer le cochléaire du condyle fémoral. À l’aide d’un foret circulaire de 1,6 millimètre, on obtient un défaut cartilagineux de 0,1 millimètre de profondeur sur toute l’épaisseur du cochléaire du condyle fémoral. Essuyez le site chirurgical avec des boules de coton imbibées de solution saline à 0,9% et remplacez la rotule.
Ensuite, en gardant le genou en position étendue, suture l’incision couche par couche à l’aide de sutures 4-0 non résorbables. Pour mesurer le seuil de retrait mécanique ou MWT des rats, placez l’animal dans une seule chambre en plastique sur une plate-forme en treillis métallique. Placez la base en treillis métallique à 50 centimètres au-dessus d’une table.
Commencez la mesure MWT après 30 minutes d’adaptation. Ensuite, appuyez perpendiculairement sur le filament de Von Frey sur la surface de la jardinière de la patte postérieure du rat. Ensuite, pliez la brosse pendant deux secondes en évitant la partie la plus épaisse de la partie centrale de la patte.
Augmentez progressivement le poids de stimulus à partir de 4 grammes, jusqu’à ce qu’une réponse positive comme le retrait de la patte ou le léchage se produise. 3 jours après la modélisation, les rats du groupe modèle ont montré une TMM réduite par rapport au groupe simulé. Suggérant une hyperalgésie dans le groupe modèle.
Le MWT du groupe modèle est resté faible même après 17 jours. Indicatif de la durée de la sensibilité à la douleur. La coloration histopathologique du groupe simulé a montré une surface cartilagineuse articulaire et intacte claire, une distribution uniforme des chondrocytes et une expression élevée du collagène de type II.
En revanche, le groupe modèle démontre des surfaces cartilagineuses déprimées, des chondrocytes perdus, une expression accrue de la métalloprotéinase matricielle MMP13 et une diminution de l’expression du collagène de type II. La chose la plus importante à retenir est que la rotule doit être réduite avant la suture.
