JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

קיימים מודלים שונים ומורכבים של בעלי חיים לחקר הפתופיזיולוגיה של תסמונת מצוקה נשימתית חריפה (ARDS). שטיפת סימפונות ופגיעה ריאתית הנגרמת על ידי הזרקת חומצה אולאית מתאימה כמודל חדש של בעלי חיים עם מכה כפולה לחקר תסמונת מצוקה נשימתית חריפה.

Abstract

הטיפול ב-ARDS ממשיך להציב אתגרים גדולים לרופאי טיפול נמרץ במאה ה-21 עם שיעורי תמותה שעדיין מגיעים ל-50% במקרים חמורים. יש צורך במאמצי מחקר נוספים כדי להבין טוב יותר את הפתופיזיולוגיה המורכבת של מחלה זו. ישנם מודלים שונים של בעלי חיים מבוססים היטב לגרימת פגיעה ריאתית חריפה, אך אף אחד מהם לא הצליח לחקות כראוי את הפתו-מנגנונים המורכבים של ARDS. הגורם המכריע ביותר להתפתחות מצב זה הוא הנזק ליחידת הנימים המכתשית. השילוב של שני מודלים מבוססים היטב של פגיעות ריאות מאפשר לנו לחקות ביתר פירוט את הפתו-מנגנון הבסיסי. שטיפת הסימפונות (BAL) מובילה לדלדול פעילי שטח כמו גם להתמוטטות המכתשית. החדרה חוזרת ונשנית של נפחי נוזלים גורמת להיפוקסמיה שלאחר מכן. דלדול פעילי שטח הוא גורם מפתח של ARDS בבני אדם. BAL משולב לעתים קרובות עם גישות אחרות של פגיעות ריאות, אך עדיין לא עם מכה שנייה ואחריה הזרקת חומצה אולאית (OAI). הזרקת חומצה אולאית מובילה לפגיעה חמורה בחילופי הגזים, הידרדרות במכניקת הריאות ושיבוש המחסום המכתשית-נימית. ה-OAI מחקה את רוב ההשפעות הצפויות של ARDS המורכבות מדלקת ממושכת של רקמת הריאה עם עלייה בדליפה המכתשית ופגיעה בחילופי גזים. חסרון בשילוב של מודלים שונים הוא הקושי לקבוע את ההשפעה על הפגיעה הריאתית הנגרמת על ידי BAL לבד, OAI לבד או שניהם יחד. המודל המוצג בדוח זה מייצג את השילוב של BAL ו-OAI כמודל חדש של פגיעת ריאות כפולה. מודל חדש זה קל ליישום ומהווה אלטרנטיבה לחקר גישות טיפוליות שונות ב-ARDS בעתיד.

Introduction

תסמונת מצוקה נשימתית חריפה (ARDS) היא מחלה המורכבת מפגיעה בחילופי גזים וחדירת ריאות, שלעתים קרובות זקוקה לטיפול נמרץ. התמותה מ-ARDS חמור נותרה גבוהה (עד 50%) ברחבי העולם למרות כמעט 50 שנות מחקר מקיף1. ה-ARDS מוגדר על ידי הגדרת ברלין, כולל קריטריונים אבחנתיים כמו תזמון, הדמיית חזה, מקור בצקת והיפוקסמיה2. כדי לסווג טוב יותר חולים עם רמות שונות של חומרת ARDS, מוגדרות שלוש דרגות שונות של היפוקסמיה: קלה (200 מ"מ כספית < PaO2/FIO2 ≤ 300 מ"מ כספית), בינונית (100 מ"מ כספית < PaO2/FIO2 ≤ 200 מ"מ כספית) וחמורה (PaO2/FIO2 ≤ 100 מ"מ כספית)2. מודלים שונים של בעלי חיים עם התמקדות בפגיעה ריאתית נמצאים בשימוש נרחב ומקובלים לבחינת השינויים הפתופיזיולוגיים וגישות טיפוליות שונות ב-ARDS3.

מודלים של בעלי חיים המשתמשים באנדוטוקסינים (למשל, עירוי תוך ורידי של חיידקים, קשירת צקל וניקוב כדי לחקות פגיעה ריאתית הנגרמת על ידי אלח דם), מודלים של איסכמיה/רפרפוזיה, מודלים של ARDS עשן/צריבה, עירוי של חומצה אולאית ומודלים של שטיפת סימפונותידועים 3. כל מודל מייצג רק כמה שינויים פתופיזיולוגיים עם יתרונות וחסרונות לתוצאות המחקר3. זה לא משקף את המורכבות של מחלת ARDS. השילוב של שני מודלים מוכחים מאפשר מסקנות טובות יותר לגבי הפתופיזיולוגיה של ARDS. במודל שהוצג, שילבנו שטיפת סימפונות ועירוי חומצה אולאית כדי לחקות את המורכבות של ה-ARDS האנושי. חומצה אולאית היא חומצת שומן בלתי רוויה ופועלת ישירות על היחידה המכתשית-נימית של הריאות על ידי הפעלת הפעלה של קולטנים חיסוניים מולדים וכתוצאה מכך גורמת להצטברות נויטרופילים, ייצור ציטוקינים פרו-דלקתיים ומוות תאים 4,5. עירוי חומצה אולאית גורם להיפוקסמיה קשה, עלייה בלחץ העורקי הריאתי והצטברות מי ריאות חוץ-וסקולריים. יתר לחץ דם ודיכאון שריר הלב עקב אי ספיקת חדר ימין מתרחשים לעתים קרובות. השראת פגיעה ריאתית על ידי שטיפת סימפונות חוזרת (BAL) עם תמיסת אלקטרוליטים מאוזנת מפחיתה את ריכוז השומנים פעילי השטח המכתשית3. חומרים פעילי שטח מפחיתים את מתח הפנים המכתשית ומונעים קריסה של המכתשית. BAL גורם להיפוקסמיה מיידית ולעלייה בהפרש החמצן המכתשית-עורקי3. ARDS אנושי קשור גם לדלדול של פעילי שטח3. החסרונות של מודל משולב זה הם הצורך בגישה לווריד מרכזי, אינטובציה והרדמה כללית. יתר על כן, הרלוונטיות המכאניסטית המפוקפקת (למשל, עירוי חומצה אולאית) להיבטים תרגומיים נותרה לא ברורה. לפחות, קשה לקבוע איזה חלק של הפגיעה הריאתית (BAL לעומת OAI, או שניהם יחד) תורם לנזק לריאות. היתרונות של מודל זה הם השימושיות שלו בבעלי חיים גדולים עם ניטור ומכשור מוכרים בדומה לחולים אנושיים (אין צורך בציוד מיוחד), שכפול טוב של ההיבטים העיקריים של ARDS והאפשרות לחקור ARDS מבודד ללא דלקת מערכתית (למשל, מודלים של אנדוטוקסין). במאמר הבא, אנו נותנים תיאור מפורט של פגיעת הריאות הכפולה (BAL ו-OAI) בחזירים ומספקים נתונים מייצגים לאפיון יציבות הפשרות בתפקוד הריאות.

Protocol

כל הניסויים בבעלי חיים המתוארים כאן אושרו על ידי הוועדה המוסדית והממלכתית לטיפול בבעלי חיים (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, גרמניה; מספר אישור G18-1-044) ונערכו בהתאם להנחיות האגודה האירופית והגרמנית למדעי חיות המעבדה.

1. הרדמה, אינטובציה ואוורור מכני

  1. הימנעו ממזון במשך 6 שעות לפני ההרדמה כדי להפחית את הסיכון לשאיפה, אך אפשרו גישה חופשית למים כדי להפחית את הלחץ.
  2. יש להזריק שילוב של קטמין (4 מ"ג∙ק"ג-1) ואזפרון (8 מ"ג∙ק"ג-1) תוך שרירית להרגעה בזמן שהחיה נמצאת בארגז החיות.
  3. יש ליצור קו ורידי עם קטטר ורידי היקפי משותף (20 גרם) בווריד האוזן לאחר חיטוי מקומי באלכוהול.
  4. התחל לנטר את ריווי החמצן ההיקפי (SpO2) על ידי הצמדת החיישן לאחת האוזניים או לזנב של החיה.
  5. הזריק פנטניל (4 מיקרוגרם∙ק"ג-1), פרופופול (3 מ"ג∙ק"ג-1) ואטרקוריום (0.5 מ"ג∙ק"ג-1) לזירוז הרדמה.
  6. הניחו את החזיר במצב שכיבה על האלונקה.
  7. אווררו את החזיר עם מסכה המתאימה לבעלי חיים עם לחץ נשימה שיא מתחת ל 20 ס"מ H2O, הצצה של 5 ס"מ H2O, תדר של 14-16 לדקה ו- FiO2 של 1.0.
  8. התחל עירוי רציף עם תמיסת אלקטרוליטים מאוזנת (5 מ"ל∙ק"ג-1h-1), פרופופול (8-12 מ"ג∙ק"ג-1h-1) ופנטניל (0.1-0.2 מ"ג∙ק"ג-1h-1) כדי לשמור על הרדמה.
  9. לצורך האינטובציה, השתמש בצינור אנדוטרכיאלי משותף המתאים לבעל החיים (למשל, משקל של 25-30 ק"ג, צינור אנדוטרכיאלי ID 6-7) חמוש במכניס צינור אנדוטרכיאלי, ובגרון נפוץ עם להב מקינטוש 4. שני אנשים נחוצים.
    1. אדם 1: משוך את הלשון ביד אחת ולחץ על החוטם כלפי מטה ביד השנייה.
    2. אדם 2: הכנס את הגרון וקדם אותו כרגיל עד שניתן יהיה לראות את האפיגלוטיס.
  10. משוך את הגרון כלפי מעלה כדי לדמיין את מיתרי הקול. לפעמים האפיגלוטיס "נדבק" לחך הרך. אם כן, גייס אותו עם קצה הצינור.
  11. הכנס את הצינור דרך מיתרי הקול ומשוך החוצה את המציג.
  12. חסום את בלון הצינור.
  13. חבר את הצינור למכונת ההנשמה ובדוק את המיקום הנכון באמצעות קפנוגרפיה והאזנה.
  14. התחל אוורור מכני (נפח גאות 6-8 מ"ל/ק"ג, PEEP 5 ס"מH 2O, FiO2 0.4, תדר לשמירה על etCO2 בין 35 - 45 מ"מ כספית).

2. מכשור

  1. משוך את הרגליים האחוריות בעזרת תחבושות לצנתור כלי דם נחוצים. יש צורך בקו עורקי, מעטפת מכניס עורקים, קו ורידי מרכזי ומעטפת מכניס ורידי להצבת קטטר עורק ריאה.
  2. יש לחטא בנדיבות את אזור הירך בחיטוי אלכוהולי. בהתאם לבדיקות המתוכננות, משתמשים בגישה אספטית פחות או יותר.
  3. הכן צנתרים על ידי שטיפתם במי מלח.
  4. הנח את בדיקת האולטרסאונד על הרצועה המפשעתית וסרוק אחר כלי הירך.
  5. סובב את הגשושית ב-90 מעלות כדי לדמיין באופן מלא את עורק הירך בציר הארוך. במידת הצורך, ניתן גם בנסיבות שונות להשתמש בתצוגת הציר הקצר כדי לדמיין באופן מלא את עורק הירך.
  6. קנולציה של עורק הירך תחת הדמיית אולטרסאונד מקוונת עם המחט של המכניס בטכניקה של סלדינגר. כאשר דם בהיר פועם זורם החוצה, הכנס את החוט המנחה ומשוך את המחט.
  7. דמיין את וריד הירך וקנה את הווריד תחת הדמיית אולטרסאונד מקוונת ושאיפה רציפה עם המחט של ערכת המציג. כאשר ניתן לשאוף דם ורידי, נתק את המזרק והכנס את חוט ההנחיה. משוך את המחט.
  8. בדוק את מיקום החוטים באמצעות אולטרסאונד.
  9. הכנס את העורק ואת הקו הוורידי מעל חוטי ההנחיה המונחים.
  10. חזור על סימני פיסוק עורקיים וורידיים בצד השני והכנס את מעטפת ההיכרות לפי הטכניקה של סלדינגר כמתואר לעיל.
  11. חבר את קו העורקים ואת הקו הוורידי כל אחד למתמר.
  12. מקם את שני המתמרים בגובה הלב והחלף את פקקי העצירה התלת-כיווניים של שני המתמרים הפתוחים לאטמוספירה כדי לכייל את המערכת לאפס.
    הערה: יש צורך להימנע מבועות אוויר וכתמי דם במערכת כדי ליצור ערכים מתקבלים על הדעת.
  13. החלף עירוי של פרופופול ופנטניל לאחת היציאות של קו הווריד המרכזי.
  14. כייל את הגשושית למדידות pO2 מהירות במיוחד והכנס אותה דרך מעטפת מכניס העורקים.
    הערה: מדידת pO2 עם הבדיקה למדידת pO2 מהירה במיוחד אינה חובה אך עוזרת להמחיש את השינויים בזמן אמת ב-pO2.

3. החדרת קטטר עורק ריאה

  1. בדוק את הבלון של קטטר עורק הריאה (PAC) לאיתור נזק.
  2. התחבר למתמר וכייל אותו.
  3. הכניסו את ה-PAC דרך מעטפת ההיכרות (הבלון מנופח).
  4. כאשר ה-PAC עבר דרך מעטפת ההיכרות (15-20 ס"מ), נפח את הבלון.
  5. קדם את ה-PAC ועקוב אחר צורות הגל האופייניות (כלי דם ורידיים, עלייה ימנית, חדר ימין, עורק ריאתי, לחץ טריז נימי ריאתי). רוקנו את הבלון ובדקו אם ניתן לשאוב דם דרך כל יציאות ה-PAC.

4. אינדוקציה של פגיעה בריאות: נפגעה ראשונה משטיפת סימפונות

  1. הכן תמיסת אלקטרוליטים מאוזנת סטרילית (למשל, Sterofundin) המחוממת ל-40 מעלות צלזיוס.
    הערה: תמיסת אלקטרוליטים מאוזנת סטרילית משמשת למניעת זיהום ריאתי.
  2. שנה את ה-FiO2 מ-0.4 ל-1.0 במשך 10 דקות לפני ביצוע שטיפת הסימפונות.
  3. התחל את מדידת ה-pO2 המהירה במיוחד.
  4. הכינו נוראדרנלין לעירוי רציף ולהזרקת בולוס (אם לחץ עורקי ממוצע < 60 מ"מ כספית). חבר את משאבת המזרק נוראדרנלין לאחת היציאות של הצנתר הוורידי המרכזי מבלי להפעיל אותה.
  5. מלאו 30 מ"ל∙kg-1 מתמיסת האלקטרוליטים המאוזנת הסטרילית המחוממת למשפך. בדוק שניתן לחבר את המשפך לצינור האנדוטרכיאלי.
  6. נתק את הצינור ללא אובדן PEEP בהשראת מכונת ההנשמה.
  7. חבר את המשפך לצינור האנדוטרכיאלי.
  8. הרם את המשפך 1 מ 'מעל החיה באופן ידני.
  9. פתח את המכסה והחדיר את כל הכמות של תמיסת האלקטרוליט המאוזנת המחוממת מהמשפך לתוך הצינור האנדוטרכאלי במשך 30 שניות באמצעות הלחץ ההידרוסטטי.
  10. לאחר 30 שניות, הסר את התמיסה המוחדרת על ידי הורדת המשפך מטר אחד מתחת לבעל החיים ונקז את נוזל השטיפה באופן פסיבי. חבר מחדש את החיה למכונת ההנשמה לצורך חמצון.
  11. אוספים את נוזל השטיפה שהוסר ומציינים את הכמות. יש צורך לחשב את פינוי הנוזל המכתשית.
    הערה: אין לעשות שימוש חוזר בתמיסת האלקטרוליטים המאוזנת לאחר שטיפה כדי למקסם את שטיפת פעילי השטח.
  12. שאפו את שאריות התמיסה בצינור באמצעות צנתרי יניקה.
  13. עקוב מקרוב אחר ההמודינמיקה לאחר שטיפת הסימפונות ושמור על נוראדרנלין בהישג יד. במידת הצורך, תן נוראדרנלין כבולוס או עירוי רציף לייצוב לחץ הדם (השווה לשלב 4.4).
  14. חזור על עירוי של תמיסת אלקטרוליטים מאוזנת של 30 מ"ל∙ק"ג-1 כמתואר בשלבים 4.5-4.13 עד שיחס PaO2/FiO2 נמוך מ-250 מ"מ כספית. ייתכן שיהיה צורך בארבע עד חמש חזרות על שטיפת הסימפונות.
  15. אם יחס PaO2/FiO2 נמוך מ-250 מ"מ כספית, התחל באינדוקציה של פגיעה ריאתית על ידי הזרקת חומצה אולאית. אל תשנה את הגדרות מכונת ההנשמה במהלך הליך זה.

5. אינדוקציה של פגיעה ריאתית: מכה שנייה על ידי הזרקת חומצה אולאית

  1. הכן תמיסת חומצה אולאית: 0.1 מ"ל∙ק"ג-1 של חומצה אולאית במזרק של 20 מ"ל וחבר אותה לתא עצירה תלת-כיווני. קח 2 מ"ל דם במזרק נוסף של 20 מ"ל. הוסף מי מלח לנפח כולל של 20 מ"ל בשני המזרקים וחבר את המזרק השני גם לתא העצירה התלת-כיווני.
    זהירות: השתמש בכפפות ובהגנה על העיניים בעת עבודה עם חומצה אולאית.
  2. הכינו נוראדרנלין לעירוי רציף ולהזרקת בולוס (אם לחץ עורקי ממוצע < 60 מ"מ כספית). חבר את משאבת המזרק נוראדרנלין לאחת היציאות של הצנתר הוורידי המרכזי מבלי להפעיל אותה.
  3. המשך לעקוב אחר מדידת ה-pO2 המהירה במיוחד שעדיין נמדדת. FiO2 הוא עדיין 1.0.
  4. חבר את תא העצירה התלת-כיווני ליציאה הפרוקסימלית של ה-PAC.
  5. מערבבים היטב את החומצה האולאית ותערובת הדם/מי מלח על ידי העברה חוזרת ונשנית של התמיסה ממזרק אחד למזרק השני ולהיפך דרך העצירה התלת-כיוונית וממשיכים לערבב כל הזמן. כאשר מדובר בתחליב הומוגני, הזריקו 2 מ"ל של האמולסיה והמשיכו לערבב.
    הערה: אם הערבוב נעצר, האמולסיה עלולה להיפרד לחלק ליפופילי והידרופילי.
  6. עקוב מקרוב אחר ההמודינמיקה לאחר הזרקת חומצה אולאית ושמור על נוראדרנלין בהישג יד. במידת הצורך, תן נוראדרנלין כבולוס או עירוי רציף לייצוב לחץ הדם (השווה לשלב 5.2).
    הערה: היו ערניים; בעלי החיים יכולים למות במהלך הליך זה.
  7. חזור על הזרקה של 2 מ"ל מהתמיסה כל 3 דקות עד שיחס PaO2/FiO2 נמוך מ-150 מ"מ כספית.
  8. אם המזרק ריק לפני יחס PaO2/FiO2 הוא בין 100 ל-200 מ"מ כספית, הכינו 2 מזרקים נוספים כמתואר בשלב 5.1. חזור על השלבים 5.5-5.8 עד שיחס PaO2/FiO2 נופל בין 100 ל-200 מ"מ כספית.
    הערה: בדרך כלל נדרש מזרק חצי עד מלא של החומצה האולאית ותערובת הדם/מי מלח.
  9. אם יחס PaO2/FiO2 הוא בין 100 ל-200 מ"מ כספית, המתן 30 דקות ובדוק שוב. אם הוא נמצא באופן עקבי מתחת ל-200 מ"מ כספית, התחל את הניסוי/טיפול; אחרת, הכינו 2 מזרקים נוספים כמתואר בשלב 5.1 וחזרו על שלבים 5.5-5.9.
    הערה: לאחר אינדוקציה של פגיעה ריאתית כמתואר, הפגיעה בתפקוד הריאות יכולה להישאר יציבה או להידרדר או אפילו להשתפר בגבולות מסוימים.

6. סיום הניסוי והמתת חסד

  1. יש להזריק 0.5 מ"ג פנטניל בנוסף להרדמה הרציפה ולהמתין 5 דקות. הזרקו 200 מ"ג פרופופול ו-40 מילימול אשלגן כלורי כדי להרוג את החיה בהרדמה עמוקה.

תוצאות

יחס PaO2/FiO2 יורד לאחר שטיפת סימפונות ויישום מקוטע של חומצה אולאית (איור 1). מכיוון שלא ברור לחזות את ההשפעה של שטיפת הסימפונות (למשל, ההשפעה של מינון חומצה אולאית מקוטעת) על יחס PaO2/FiO2, מומלץ לעקוב אחר יחס PaO2/FiO2 תוך גרימת הפגי...

Discussion

שיטת הפגיעה הכפולה המתוארת לגרימת פגיעה ריאתית חמורה בחזירים מתאימה לחקר אפשרויות טיפול שונות ב-ARDS. מודל הפגיעה הכפולה מחקה שני אלמנטים מרכזיים של הפתו-מנגנון של ARDS: אובדן היחידה המכתשית-נימית ושיבוש מחסום האנדותל7. בשל שתי הפגיעות, חשוב שיהיה פרוטוקול מחקר...

Disclosures

כל המחברים אינם מגלים שום ניגוד עניינים פיננסי או אחר.

Acknowledgements

המחברים רוצים להודות לדאגמר דירבונסקיס על התמיכה הטכנית המצוינת.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1 M Kaliumchlorid-Lösung 7.46% 20 mLFresenius, Kabi Deutschland GmbHpotassium chloride
Absaugkatheter Ideal CH14, 52 cm, geradeB. Braun Melsungen AG, Germanysuction catheter
Arterenol 1 mg/mL, 25 mLSanofi- Aventis, Seutschland GmbHnorepinephrine
Atracurium Hikma, 50 mg/5 mLHikma Pharma GmbH , Martinsriedatracurium
BD Discardit II Spritze 2, 5, 10, 20 mLBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spainsyringe
BD Luer ConnectaBecton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg, Schweden3-way-stopcock
BD Microlance 3 20 GBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spaincanula
Datex Ohmeda S5GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finlandhemodynamic monitor
Engström CarestationGE Heathcare, Madison USAventilator
Fentanyl-Janssen 0.05 mg/mLJanssen-Cilag GmbH, Neussfentanyl
Führungsstab, Durchmesser 4.3Rüschendotracheal tube introducer
Incetomat-line 150 cmFresenius, Kabi Deutschland GmbHperfusorline
Ketamin-Hameln 50 mg/mLHameln Pharmaceuticals GmbHketamine
laryngoscopeRüschlaryngoscope
logicath 7 Fr 3-lumen 30 cm langSmith- Medical Deutschland GmbHcentral venous catheter
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 USAperiphereal oxygen saturation
Neofox Oxygen sensor 300 micron fiberOcean optics Largo, FL USAultrafast pO2-measurements
Ölsäure reinst Ph. Eur NF C18H34O2 M0282.47g/mol, Dichte 0.9Applichem GmbH Darmstadt, Deutschlandoleic acid
Original Perfusor syringe 50 mL Luer LockB.Braun Melsungen AG, Germanyperfusorsyringe
PA-Katheter Swan Ganz 7.5 Fr, 110 cmEdwards Lifesciences LLC, Irvine CA, USAPAC
PE-Trichter, 60 mmAquintos-Wasseraufbereitung GmbH, Germanyfunnel
Percutaneous sheath introducer set 8.5 und 9 Fr, 10 cm with integral haemostasis valve/sideportArrow international inc. Reading, PA, USAintroducer sheath
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG, Germanysyringe pump
Propofol 2% 20 mg/mL (50 mL Flaschen)Fresenius, Kabi Deutschland GmbHpropofol
Radifocus Introducer II, Größe 5-8 FrTerumo Corporation Tokio, Japanintroducer sheath
Rüschelit Super Safety Clear 6.5 /7.0Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysiaendotracheal tube
Seldinger Nadel mit FixierflügelSmith- Medical Deutschland GmbHseldinger canula
Sonosite Micromaxx UltrasoundsystemSonosite Bothell, WA, USAultrasound
Stainless Macintosh Größe 4Welsch Allyn69604blade for laryngoscope
Sterofundin InfusionB. Braun Melsungen AG, Germanybronchoalveolar lavage
Stresnil 40 mg/mLLilly Deutschland GmbH, Abteilung Elanco Animal Healthazaperon
Vasofix Safety 22 GB.Braun Melsungen AG, Germanyvenous catheter

References

  1. Rubenfeld, G. D., et al. Incidence and Outcomes of Acute Lung Injury. New England Journal of Medicine. 353 (16), 1685-1693 (2005).
  2. The ARDS Definition Task Force. Acute Respiratory Distress Syndrome, The Berlin Definition. Journal of the American Medical Association. 307 (23), 2526-2533 (2012).
  3. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American Journal of Physiology - Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).
  4. Goncalves-de-Albuquerque, C. F., Silva, A. R., Burth, P., Castro-Faria, M. V., Castro-Faria-Neto, H. C. Acute Respiratory Distress Syndrome: Role of Oleic Acid-Triggered Lung Injury and Inflammation. Mediators of Inflammation. 2015, 260465 (2015).
  5. Ballard-Croft, C., Wang, D., Sumpter, L. R., Zhou, X., Zwischenberger, J. B. Large-animal models of acute respiratory distress syndrome. Annals of Thoracic Surgery. 93 (4), 1331-1339 (2012).
  6. Kamuf, J., et al. Oleic Acid-Injection in Pigs As a Model for Acute Respiratory Distress Syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), e57783 (2018).
  7. Ware, L. B., Matthay, M. A. The acute respiratory distress syndrome. New England Journal of Medicine. 342 (18), 1334-1349 (2000).
  8. Schuster, D. P. ARDS: clinical lessons from the oleic acid model of acute lung injury. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 149 (1), 245-260 (1994).
  9. Wang, H. M., Bodenstein, M., Markstaller, K. Overview of the pathology of three widely used animal models of acute lung injury. European Surgical Research. 40 (4), 305-316 (2008).
  10. Lachmann, B., Robertson, B., Vogel, J. In vivo lung lavage as an experimental model of the respiratory distress syndrome. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 24 (3), 231-236 (1980).
  11. Russ, M., et al. Lavage-induced Surfactant Depletion in Pigs as a Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome (ARDS). Journal of Visualized Experiments. (115), e53610 (2016).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

ARDS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved