תרבית משותפת במגע ישיר של אסטרוציטים ותאי גליובלסטומה בדוגמת תבניות רב-שכבתיות של פוליאלקטרוליטים

Summary

פרוטוקול זה מתאר תרבית משותפת של מגע ישיר עם גליומה-אסטרוציטים המשתמשת בהדפסת מיקרו-מגע על רב-שכבות פוליאלקטרוליטים (PEMs) כדי לדפוס תאי U87 או A172 GBM ואסטרוציטים ראשוניים.

Abstract

גליובלסטומה מולטיפורמה (GBM) היא סרטן המוח הממאיר הנפוץ והקטלני ביותר. ישנם יותר מ-13,000 מקרים צפויים בארצות הברית בשנים 2020 ו-2021. גידולי GBM נובעים לרוב מאסטרוציטים ומאופיינים באופי הפולשני שלהם, ולעתים קרובות מגייסים רקמות בריאות לרקמת הגידול. הבנת התקשורת בין אסטרוציטים לתאי גליובלסטומה חיונית להבנה מולקולרית של התקדמות הגידול. פרוטוקול זה מדגים שיטת קו-תרבית חדשה לחקירת השפעות מתווכות מגע של אסטרוציטים על GBM תוך שימוש בהרכבה שכבה אחר שכבה ודפוס מונע כוח מיקרו-נימי. היתרונות כוללים סביבת תרבית תאים נטולת חלבון ובקרה מדויקת על האינטראקציה התאית המוכתבת על ידי ממדי התבנית. טכניקה זו מספקת פרוטוקול רב-תכליתי, חסכוני וניתן לשחזור לחיקוי אינטראקציה תאית בין גליומה לאסטרוציטים בגידולי גליומה. ניתן להשתמש במודל זה כדי להפריד בין שינויים בביולוגיה המולקולרית של GBM עקב מגע פיזי עם אסטרוציטים או עם תקשורת קופקטור מסיס ללא מגע.

Introduction

גליובלסטומה מולטיפורמה (GBM) הוא סרטן המוח הפורה והקטלני ביותר בארצות הברית עם זמן הישרדות חציוני של כ-15^חודשים. פחות מ-7% מחולי GBM שורדים יותר מ-5 שנים לאחר האבחנה ^1,2. ב-10 שנים, הנתון הזה יורד לפחות מ-1%^1,2. למרות שסוגי סרטן אחרים השיגו שיפורים ניכרים בהישרדות בעשורים האחרונים, הצלחתם של חולי GBM נופלת. כדי לפתח התערבויות טיפוליות מוצלחות, יש להשתמש במודל מתאים באתרו כדי לפתח הבנה מעמיקה יותר של הביולוגיה של גידול GBM. הבנה זו חיונית לשיפור התוצאות הקליניות עבור חולי GBM.

המוח מכיל מגוון גדול של סוגי תאים שכל אחד מהם ממלא נישות ספציפיות כדי לקדם את תפקוד האורגניזם והישרדותו. בנוסף לתאי עצב, ישנם מגוון תאי גליה, כולל אסטרוציטים, אוליגודנדרוציטים ומיקרוגליה. אסטרוציטים, במיוחד, היו מעורבים בצמיחה ופלישה של גידול GBM באמצעות הפרשת גורמים מסיסים פרו-נדידה³. יתר על כן, ישנם כמה דיווחים שמגע פיזי הוא הכוח המניע של נדידת תאי גליומה בתיווך אסטרוציטים^{ופלישה 4,5}. עם זאת, הבסיס המולקולרי המניע את השינוי הזה נותר ברובו לא ידוע.

על מנת לחקור את ההשפעות המתווכות במגע של אסטרוציטים על צמיחת הגידול, פרוטוקול זה מדווח על פיתוח שיטה ניתנת לשחזור ונטולת חלבון לדפוס תאים במבחנה. בשיטה זו, רב-שכבות פוליאלקטרוליטים (PEMs) מורכבות באופן שיטתי ליצירת משטח אחיד נטול חלבון. PEMs בנויים באמצעות מערכת פוליקיון-פוליאניון הכוללת פולי (דיאלמתילאמוניום כלוריד) (PDAC) ופולי סולפונטי (סטרן) (SPS), בהתאמה. פולימרים אלה נבחרו על סמך מחקרים קודמים שדיווחו על הצמדה מועדפת של תאים ל-SPS על פני PDAC 6,7,8,9,10. על משטחי PEM אלה, פרוטוקול זה משתמש בליתוגרפיה של כוח מיקרו-נימי כדי להנדס מודלים של תרבית משותפת של אסטרוציטים ראשוניים ותאי GBM.

הטכניקות המוצגות כאן מאפשרות הנדסה מדויקת של אינטראקציות תא-תא ספציפיות באמצעות בקרה על דפוסי פני השטח, ובכך תומכות בחקירה הניתנת לשחזור של תקשורת סלולרית. יתר על כן, המשטח הביומימטי הטמון בפלטפורמה זו מאפשר לחקור תקשורת ישירה בין תא לתא שהיא חיונית להעמקת ההבנה המכאניסטית של התקשורת בין סוגי תאים שונים. מעבר לכך, השיטה זולה ומעניקה יתרון משמעותי לביצוע מחקרי מבחנה לחקר התקשורת התאית. באופן ספציפי, פרוטוקול זה מנצל התקשרות דיפרנציאלית של GBM ב-SPS (-) על PDAC (+) כדי ליצור תרביות משותפות דפוסיות של קווי תאי GBM ואסטרוציטים ראשוניים.

Protocol

מחקר זה בוצע בהתאם להמלצות במדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה של המכונים הלאומיים לבריאות. הפרוטוקול אושר על ידי הוועדה לאתיקה של ניסויים בבעלי חיים של אוניברסיטת נברסקה-לינקולן (מזהה פרויקט: 1046). אסטרוציטים ראשוניים הוכנו מגורי חולדות Sprague-Dawley בני 1-3 ימים בהתאם לפרוטוקול IACUC 1046 של UNL ובהתאם לפרוטוקול עם שינויים קלים ^7,11.

1. הכנות

1. השג תבנית אב של הגיאומטריה הרצויה לפני שתתחיל בפרוטוקול זה.
   הערה: פרוסות סיליקון זמינות מסחרית שהוכנו בטכניקות פוטוליתוגרפיה סטנדרטיות משמשות בפרוטוקול זה. דפוס ההתחלה המומלץ הוא קווים של 100-200 מיקרומטר.
2. הכן מאגרים ומדיה.
   1. הכן תמיסות פולימר פולי (דיאלמתילאמוניום כלוריד) (PDAC) ופולי (סטרן) סולפונטי (SPS) לציפוי צלחות.
      1. תמיסת ציפוי PDAC היא 0.3 wt. % PDAC ו-0.1 M NaCl ב-ddH₂O.
      2. תמיסת ציפוי SPS היא 30 מיקרומטר SPS ו-0.1 M NaCl ב-ddH₂O.
         הערה: 1 ליטר של תמיסת ציפוי PDAC ו-1 ליטר של תמיסת ציפוי SPS מספיקים לציפוי שש צלחות 6 בארות. ניתן לעשות שימוש חוזר בתמיסות 2-5 פעמים. החלף את הפתרונות כאשר הם הופכים לעכורים.
   2. הכן מדיה סטנדרטית לתרבית תאים, במידת הצורך.
      1. אסטרוציטים ו-GBM טיפוסיים הם, בהתאמה, 10% סרום בקר עוברי (FBS) ו-1% פניצילין-סטרפטומיצין במדיום הנשר המותאם של דולבקו (DMEM).
3. השגה, הכנה או הפשרה של תאים.
   הערה: פרוטוקול זה מתואר עבור אסטרוציטים ראשוניים של חולדות שבודדו מחולדות יילודים של 1-3 ימים ותאי גליומה U87MG או A172-MG. ניתן להרחיב פרוטוקול זה לקווי תאים דומים לאחר אישור הצמדה דיפרנציאלית של קווי תאים מעניינים על משטחי פולימר.
   1. עקב אובדן תאים במהלך הצביעה, השתמש במינימום של 200,000 תאי GBM ביום 0 וב-400,000 אסטרוציטים ראשוניים חיים של חולדות ביום הראשון לבאר בצלחת של 6 בארות. התאם את מספרי התאים אם אתה משתמש בבאר או בצלחת בגודל שונה.
      הערה: אסטרוציטים ראשוניים מקטעים 2-4 שהוכנו כפי שתוארו על ידי וילסון ועמיתיו¹² מומלצים לפרוטוקול זה. תאי גליומה הושגו באופן מסחרי (ראה טבלת חומרים).

2. יציקת חותמת פולידימתילסילוקסן (PDMS).

1. במיכל חד פעמי, שקלו 12 חלקים (לפי משקל) של PDMS pre-polymer וחלק אחד (לפי משקל) של חומר ריפוי. מערבבים במרץ במשך 2-4 דקות עד שכל התערובת מתמלאת בבועות.
   הערה: 26 גרם מהתערובת מספיקים לצלחת פטרי אחת של 100 מ"מ.
2. הנח פלואורוסילן לתוך מייבש הפלואורוסילן. מניחים את המיכל החד פעמי עם תערובת הפולימר לתוך החומר היבש להסרת גז למשך 20 דקות.
   הערה: זה מאפשר לבועות לעלות מהתערובת. ייתכן שיהיה צורך בזמן נוסף אם בועות גדולות עדיין קיימות לאחר 20 דקות.
3. הניחו את מאסטר המבנה המעוצב מראש בצלחת פטרי. יוצקים את תערובת ה-PDMS לאט לתוך צלחת הפטרי מעל מאסטר המבנה המעוצב מראש, ומבטיחים לכסות לחלוטין את המאסטר. העומק האופטימלי של שכבת ה-PDMS הוא בעובי של כ-2-3 מ"מ.
   הערה: הימנע מיצירת בועות אוויר על ידי מזיגה איטית של התערובת. ודא שמאסטר הסיליקון מונח שטוח בצלחת הפטרי.
4. שמור את צלחת הפטרי במייבש הפלואורוסילן עד להסרת כל הבועות. מרפאים את צלחת הפטרי בתנור בחום של 60 מעלות למשך שעה. אם אין 60 מעלות צלזיוס, מרפאים את צלחת הפטרי ב-37 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
5. בעזרת אזמל חד, חותכים באופן שווה ובעדינות סביב המאסטר.
   אזהרה: יש לנקוט משנה זהירות בעת שימוש באזמל. לעולם אל תשאיר את הלהב החשוף ללא השגחה. אזמל חד. השתמש באמצעי זהירות מתאימים כדי למנוע פציעה.
6. הסר את החותמת באמצעות פינצטה והנח אותה על משטח חיתוך כגון קרש חיתוך. בעזרת אזמל חותכים את החותמות לגודל קטן מספיק כדי להתאים לצלחות של 6 בארות (כ -2.5 ס"מ על 2.5 ס"מ).

3. בניית פוליאלקטרוליטים רב שכבתיים (PEMs)

הערה: פרוטוקול זה מתאר ציפוי פלזמה עם מיכל חמצן בלחץ מחובר ואביזר ערבוב גז (ראה טבלת חומרים). כל שיטה לניקוי פלזמה שווה של משטח הפוליסטירן של תרבית הרקמה (TCPS) מתאימה. ייתכן שיהיה צורך לבצע אופטימיזציה של הזמן והעוצמה על ידי המשתמש בעת שימוש בשיטת ניקוי פלזמה אחרת.

1. נקה פלזמה צלחת 6 בארות למשך 7 דקות.
   1. דמם את החדר על ידי סיבוב השסתום התלת-כיווני בחזית הדלת ימינה עד שניתן יהיה לשמוע את השריקה משחרור האוויר. סובב את השסתום התלת-כיווני בחזרה למצב אנכי ברגע שקריאת הלחץ היא מעל 1800 mTorr.
   2. פתח את הדלת והכנס את צלחת 6 הבארות לתא. סגור את הדלת והפעל את משאבת הוואקום. פנה את החדר עד שהלחץ יציב סביב 100 mTorr.
      הערה: בזמן שהתא מתפנה, ודא שמיכל החמצן פתוח, ולחץ המוצא של החמצן הוא 10 psi.
   3. פתח את השסתום התלת-כיווני שמאלה כדי ליישר את הקו עם צינור כניסת החמצן. אפשר לגז החמצן לדמם לתוך התא עד שהלחץ מתייצב בין 400 ל-450 mTorr.
      הערה: ודא שלחץ הכניסה על מד הזרימה הוא 10 מ"מ והתאם במידת הצורך.
   4. הפעל את מתח ה-RF. המתן להיווצרות הפלזמה (~15 שניות), ולאחר מכן הפעל את הטיימר למשך 7 דקות.
   5. לאחר 7 דקות, כבה את מתח ה-RF וסובב את השסתום התלת-כיווני בחזרה למקומו האנכי. אפשר לתא להתפנות ל-150 mTorr.
   6. כבה את משאבת הוואקום והמתן עד שהלחץ יעלה ל-1500 mTorr. אוורור את החדר על ידי סיבוב השסתום התלת-כיווני ימינה עד שניתן יהיה לשמוע את השריקה משחרור האוויר. כאשר קריאת הלחץ היא מעל 1800 mTorr, סובב את השסתום התלת-כיווני בחזרה למקומו האנכי, פתח את הדלת ואחזר את הדגימה.
2. הנח צלחות מצופות פלזמה באמבטיות בטמפרטורת החדר באופן הבא: PDAC למשך 20 דקות, מי DI למשך 5 דקות, מי DI למשך 5 דקות, SPS למשך 20 דקות, מי DI למשך 5 דקות ומי DI למשך 5 דקות. ודא שכל משטח הצלחת שקוע.
   הערה: לחלופין, ניתן להשתמש במכתים שקופיות אוטומטי כדי להפחית את זמן הפעילות. יש להשתמש בערבול עדין, אם זמין.
3. חזור על השלב הקודם בסך הכל 10 פעמים. הניחו לצלחות להתייבש באוויר.
   הערה: ניתן לאחסן את הצלחות המיובשות בטמפרטורת החדר עד מספר שבועות לפני השימוש.

4. דפוס PEM באמצעות מיקרו-דפוס בנימים

1. שטפו את חותמות ה-PDMS עם סבון מעבדה עדין ואחריו מי DI. יבש את החותמות באמצעות מדחס אוויר והנח אותן על משטח שטוח וניתן להזזה כגון מכסה צלחת 6 בארות שאינו בשימוש.
   אופציונלי: ניתן גם לייבש את החותמות באוויר. יש לכסות את החותמות ולהגן עליהן מפני אבק בזמן הייבוש.
2. ציפוי פלזמה את החותמות, כמתואר בשלב 3, למשך דקה אחת. הסר מיד את החותמות ממנקה הפלזמה והנח אותן עם הפנים כלפי מטה על צלחות 6 הבארות המוכנות.
3. פיפטה 10 מיקרוליטר של תמיסת PDAC לאורך הקצה התחתון של החותמת, ומפזרת את הפולימר בהתמדה לאורך החותמת. הקפד להוסיף את הפולימר לצד החותמת עם פתחים מתבניות הקו כדי לאפשר פעולה נימית.
4. הניחו משקל של 350 גרם על גבי כל חותמת למשך 20 שניות כדי לעזור לאכוף את התבנית. הניחו לחותמות לנוח על הצלחות למשך 20 דקות.
5. טובלים את הצלחת במי DI ומקלפים את החותמות לכיוון דפוסי הקווים. שטפו את הצלחת פעמיים במשך 5 דקות כל אחת במי DI.
6. שוטפים את ה-amps עם סבון ומי DI ומייבשים עם מדחס אוויר. הניחו לצלחת להתייבש באוויר.
7. אם הם מוכנים לתרבית תאים, יש לעקר את הצלחות תחת אור UV בקולט אדים מסוג II למשך 8 שעות לפחות מיד לפני השימוש. מינון ה-UV-C הכולל המינימלי המומלץ הוא 400 mJ/cm² ב-265 ננומטר. אם אתה מדמיין דפוסים, דלג על שלב עיקור UV ובצע את שלב 5. אם מוכן לתרבית תאים, בצע את שלב 6 לאחר עיקור UV.

5. הדמיית דפוסים מוטבעים עם carboxyfluorescein (CFSE)

הערה: בצע הליך זה כדי לדמיין דפוסים מוטבעים או דלג על שלב זה ובמקום זאת הכן תבניות לתרבית תאים. ברגע שהתבניות מוכתמות, לא ניתן להשתמש בהן לתרבית תאים. לאחר שנרכש ביטחון מספיק בהטבעה, ניתן להשתמש בתבניות לתרבית תאים. קרבוקסיפלואורסצאין רגיש לאור. כתמים והובלה בחושך.

1. הנח דפוסים מיובשים ומוטבעים בתמיסת צביעת דפוס CFSE (0.1 מיקרומטר CFSE ב-0.1 M NaOH) למשך 60-90 דקות. שטפו דפוסים מוטבעים במשך 5 דקות ב-DI H₂O פעמיים.
   הערה: אם אתה משתמש בשקופיות זכוכית, הנח את כל השקופית לתוך צינור של 50 מ"ל המכיל את תמיסת הצביעה. אם משתמשים בצלחות באר, הוסף מספיק תמיסת מכתים כדי לכסות את כל התבנית.
2. דמיין דפוסים באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי מתאים.
   1. הפעל את נורת הפלורסנט כדי לאפשר לה להתחמם למשך 10 דקות. מאחר שדפוסים מוכתמים ב-CFSE, השתמש במסנן הכחול של ההפרעות (IB) כדי להמחיש את הדפוסים הירוקים. הצג את הדפוסים וצלם תמונות.

6. צביעה וזריעה של תאי גליובלסטומה עם קרבוקסיפלואורסצאין

הערה: יש לבצע את כל עבודות תרבית התאים בארון בטיחות ביולוגית Class II מתאים.

1. נתק את התאים משטח התרבית עם 0.25% טריפסין-EDTA, צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 4 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, והסר את הסופרנטנט.
2. השעו מחדש את התאים ב-1 מ"ל של מצע תרבית תאים ללא סרום (DMEM ו-1% פניצילין-סטרפטומיצין), צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 4 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, והסר את הסופרנטנט.
3. השעו מחדש את התאים ב-1 מ"ל של PBS והעבירו לצינור סטרילי של 1.5 מ"ל. מוסיפים 10 מיקרוליטר של 10 מיקרוגרם/מ"ל CFSE ומערבבים מיד היטב על ידי פיפטינג למעלה ולמטה. דוגרים בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות ומעבירים לצינור סטרילי של 15 מ"ל.
4. הוסף מינימום של 1 מ"ל של מדיום תרבית תאים (ראה שלב 1.2.2.1) כדי להרוות את תגובת הצבע CFSE. צנטריפוגה ב-400 x גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס והסר את הסופרנטנט. השעו מחדש את התאים במדיום תרבית תאים של 5 מ"ל והעבירו לצינור סטרילי טרי של 15 מ"ל.
5. צנטריפוגה ב-400 x גרם למשך 5 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, הסר את הסופרנטנט והשהה מחדש את התאים ב-5 מ"ל של מדיום תרבית תאים.
6. חזור על שלב הכביסה הקודם פעמיים.
7. זרעו את תאי הגליומה המוכתמים (100 תאים/מ"מ² או 100,000 תאים/באר) בצלחת תרבית רקמה מעוצבת של 6 בארות משלב 4 עם מצע תרבית אסטרוציטים. תרבו את התאים באינקובטור (37 מעלות צלזיוס, 5% CO₂) במשך 24 שעות לפני הוספת אסטרוציטים מוכתמים בשלב 7.

7. צביעה וזריעה של אסטרוציטים ראשוניים עם PKH26

הערה: יש לבצע את כל עבודת תרבית התאים בארון בטיחות ביולוגית Class II מתאים.

1. נתק את התאים משטח התרבית עם 0.25% טריפסין-EDTA, צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 4 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, והסר את הסופרנטנט.
2. השעו מחדש את התאים ב-1 מ"ל של מצע תרבית תאים ללא סרום (DMEM ו-1% פניצילין-סטרפטומיצין), צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 4 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, והסר את הסופרנטנט.
3. הכן תרחיף תאים פי 2 על ידי השעיית גלולת התא ב-0.5 מ"ל של מדלל C בטמפרטורת החדר מערכת PKH26.
4. הכן תמיסת צבע פי 2 (4 x ^10-6 מ') על ידי הוספת 2 מיקרוליטר של PKH26 ל-0.5 מ"ל של מדלל C בצינור סטרילי של 1.5 מ"ל. הכן את תמיסת הצבע ממש לפני השימוש.
5. הוסף תרחיף תאים 2x לתמיסת צבע 2x וערבב מיד על ידי פיפטינג למעלה ולמטה.
6. דגרו את תרחיף התאים למשך 1-5 דקות.
   הערה: הצביעה מתרחשת במהירות, ומדלל C מזיק לתאים. דגירה ארוכה יותר לא אומרת צביעה טובה יותר.
7. הרוו את הצביעה על ידי הוספת נפח מינימלי פי 5 של מדיום תרבית התאים ודגירה למשך דקה אחת כדי לקשור את עודפי הצבע.
8. צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס והסר בזהירות את הסופרנטנט. השעו מחדש את התאים ב-5 מ"ל של מצע תרבית תאים והעבירו לצינור סטרילי חדש של 15 מ"ל.
9. צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 5 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, הסר את הסופרנטנט והשהה מחדש ב-5 מ"ל PBS.
10. צנטריפוגה ב-200 x גרם למשך 5 דקות ב-4 מעלות צלזיוס, הסר את הסופרנטנט והשהה מחדש ב-5 מ"ל של אמצעי תרבית תאים.
11. חזור על שלבים 7.9 ו- 7.10 בסך הכל שלוש כביסות.
12. זרעו את האסטרוציטים המוכתמים (200 תאים/מ"מ² או 200,000 תאים/באר) במצע אסטרוציטים (ראה שלב 1.2.2.1) בצלחת תרבית רקמה מעוצבת בת 6 בארות שנזרעה מראש עם תאי גליומה משלב 6. תרבית התאים בחממת CO₂ של 37 מעלות צלזיוס, 5% למשך זמן ביצוע הניסויים.

8. הדמיה פלואורסצנטית של מונו-תרבית מעוצבת וקו-תרבית

1. הפעל את נורת הפלורסנט כדי לאפשר לה להתחמם למשך 10 דקות.
2. הסר את תרבית התאים מהחממה והניח אותה על הבמה של מיקרוסקופ הפוך המסוגל להדמיה פלואורסצנטית.
3. הכנס או חבר את המסנן המתאים. אם התאים המצולמים מוכתמים ב-CFSE, השתמש במסנן הכחול של ההפרעות (IB) כדי לדמיין את התאים הירוקים. אם התאים המצולמים מוכתמים ב-PKH26, השתמש במסנן רודמין כדי לדמיין את התאים האדומים.
4. צפו בדגימה וצלמו תמונות.
   הערה: כעת ניתן להפריד את התאים באמצעות זרימה ציטומטרית כדי לנתח את ההשפעות הביולוגיות של תקשורת מתווכת מגע.

תוצאות

הפרוטוקול כאן מתאר את ההנדסה של תרבית משותפת בתבנית מגע ישיר של תאי גליומה ואסטרוציטים. פלטפורמה זו מספקת מודל רב-תאי ביומימטי לחקר תפקידו של מגע ישיר בתקשורת בין אסטרוציטים לתאי גליומה בהתקדמות גליובלסטומה מולטיפורמה (GBM). איור 1 מספק סכימה של שינוי פני ?...

Discussion

צעדים קריטיים להבטחת הרכבה מוצלחת של קו-תרבית דפוסית הניתנת לשחזור כוללים: 1) דפוס מוצלח של פני השטח על ידי מיקרו-יציקה בנימים, 2) שטיפה מוצלחת של תאים מוכתמים, ו-3) ניתוח התרבות המשותפת בחלון "התרבית הבוגרת". ראשית, שכפול מוצלח של דפוסים עם מיקרו-יציקה בנימים הוא קריטי לשחזו?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.25% Trypsin-EDTA	Fisher Scientific	25200056
15 ml Nunc Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes	Fisher Scientific	12-565-268
5(6)-Carboxyfluorescein diacetate N-succinimidyl ester	Millipore Sigma	Cat#21888
50 ml Nunc Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes	Fisher Scientific	12-565-270
A172-MG GBM cell line	ATCC	CRL-1620
Bright-Line Hemacytometer	Sigma	Z359629	Or other suitable cell counting device
Cell Incubator	N/A	N/A
Cooled tabletop centrifuge for 15 mL tubes	N/A	N/A
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)	MP Biomedicals	ICN 1033120
Expanded Plasma Cleaner	Plasma Harrick	PDC-001-HP	With attached pressurized oxygen tank and PlasmaFlo Gas Mixer (PDC-FMG) accessory
Fetal Bovine Serum (FBS)	Atlanta Biologicals	S11550H
Fluorosilane	Sigma Aldrich	667420	Full chemical name: 1H,1H,2H,2H-Perfluorooctyltriethoxysilane
Inverted Tabletop Microscope	N/A	N/A	Microscope capable of fluorescent imaging with λex = 551 nm; λem 567 nm [e.g. Rhodamine filter] (PKH26 dye) and λex 492 nm; λem 517 nm [e.g. interference blue filter (IB)] (CFSE dye)
NaCl	Sigma Aldrich	S7653
NaOH	Sigma Aldrich	567530
Penicillin-Streptomicen	Fisher Scientific	15140122
PKH26 Red Fluorescent Cell Linker Mini Kit	Millipore Sigma	Cat#MINI26-1KT
Poly(diallyldimethylammonium chloride) solution (PDAC)	Sigma Aldrich	409014	20 wt. % in H2O
Poly(sodium 4-styrenesulfonate) (SPS)	Sigma Aldrich	243051	average MW ~70,000
Primary Astrocytes, isolated from Srague Dawley rats	Charles River	Crl:SD	Rats from Charles River; Lab isolated Cells
Scalpel	N/A	N/A
Sodium bicarbonate	Sigma Aldrich	S5761
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit	Dow Chemical	Cat#2646340
Trypan Blue Stain	Fisher Scientific	15-250-061
TryplE	Fisher Scientific	Gibco TrypLE
U87-MG GBM cell line	ATCC	HTB-14
Vacuum Desiccator	N/A	N/A