JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה למעקב אחר התקדמות זאבת בעכברים. שני הליכים נוספים מוצגים כדי לאפיין זאבת נפריטיס בהתבסס על חדירת תאים ותצהיר חלבון בכליות.

Abstract

זאבת אדמנתית מערכתית (SLE) היא הפרעה אוטואימונית ללא תרופה ידועה ומאופיינת בדלקת מתמשכת באיברים רבים, כולל הכליות. בנסיבות כאלה, הכליה מאבדת את יכולתה לנקות פסולת מהדם ולווסת את ריכוזי המלח והנוזלים, מה שמוביל בסופו של דבר לאי ספיקת כליות. נשים, במיוחד אלה בגיל הפוריות, מאובחנות פי תשעה יותר מאשר גברים. מחלת כליות היא הגורם המוביל לתמותה בחולי SLE. הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה מהירה ופשוטה למדידת רמות החלבון המופרש בשתן שנאסף, תוך מעקב אחר התקדמות הזאבת לאורך זמן. בנוסף, גישה לבידוד תאים חד-גרעיניים בכליות מסופקת על בסיס בחירת גודל וצפיפות כדי לחקור חדירה כלייתית של לויקוציטים. יתר על כן, פותחה שיטה אימונוהיסטוכימית לאפיון תצהיר חלבונים בחדירת גלומרולי ולויקוציטים במרחב הטובולואינטרסטיציאלי. יחד, שיטות אלה יכולות לעזור לחקור את ההתקדמות של דלקת כרונית הקשורה לכליות של עכברי MRL/lpr המועדים לזאבת.

Introduction

תפקידה העיקרי של הכליה הוא חיסול חומרים רעילים באמצעות שתן תוך שמירה על הומאוסטזיס של מים ומלחים1. פונקציה זו מאוימת בחולים עם זאבת אדמנתית מערכתית (SLE), מה שמוביל למה שמכונה זאבת נפריטיס (LN). LN הוא תוצאה של מערכת החיסון התוקפת את הכליה, מה שמוביל לדלקת כליות מתמשכת, ולכן מאבד את יכולתו לנקות פסולת מהדם ולווסת את ריכוזי המלח והנוזלים. זה יוביל בסופו של דבר לאי ספיקת כליות, אשר יכול להיות קטלני. במהלך התהליך הנפריטי, תאי B במחזור, תאי T ומונוציטים מגויסים לכליה, ומפרישים כימוקינים, ציטוקינים ונוגדנים עצמיים יוצרי קומפלקס חיסוני. התוצאה היא בסופו של דבר נזק לתאי האנדותל, פציעות ממברניות, ניוון צינורית הכליה ופיברוזיס2.

עכברי MRL/Mp-Faslpr (MRL/lpr) הנוטים לזאבת הם מודל עכברים קלאסי המציג סימנים קליניים דמויי זאבת הדומים ל-SLE3 אנושי. מודל זה סייע בהבנת אחד הגורמים המובילים לתמותה בחולי SLE, זאבת נפריטיס (LN)4. הן ב- SLE אנושי והן בעכבר, LN מאופיין בדלקת הדרגתית המופעלת על ידי תצהיר כלייתי של מתחמי חיסון, ואחריו הפעלה משלימה, גיוס תאי דלקת ואובדן תפקוד כלייתי5. תצהיר הקומפלקס החיסוני הוא הצעד הראשון להשראת ייצור כימוקין וציטוקינים על ידי תאי כליה פנימיים, המרחיבים את התגובה הדלקתית על ידי גיוס תאי חיסון6. הפרוטוקול הנוכחי מציג מספר טכניקות למעקב אחר התקדמות מחלת כליות המנתחות חדירת תאים ותצהיר קומפלקס חיסוני.

שתן שנאסף מדי שבוע מאפשר זיהוי והדמיה של מהלך הזמן של פרוטאינוריה לפני, במהלך ואחרי הופעת זאבת. פרוטאינוריה כסמן ביולוגי יכולה לקבוע את ההתקדמות הביולוגית של LN. יתרונות נוספים של טכניקה זו הם שהיא לא פולשנית, חסכונית וקלה ליישום7. כאשר הכליה פועלת בצורה מושלמת, רמת הפרוטאינוריה נמוכה באופן עקבי; עם זאת, בעכברי MRL/lpr, לאחר 8-9 שבועות של גיל, נצפתה עלייה הדרגתית של רמת הפרוטאינוריה, שבסופו של דבר גבוהה מספיק כדי לגרום לאי ספיקת כליות8. רצועות ריאגנטים מרובות וריאגנטים צבעוניים זמינים מסחרית לניטור הבעיה. עם זאת, מבחן ברדפורד הוא זול ומדויק מאוד בקביעת הופעת פרוטאינוריה ואת מהלך זאבת נפריטיס. בדיקה זו היא מהירה, והמגיב אינו מושפע מנוכחותם של ממסים, מאגרים, חומרים מחזרים וחומרים מטאליים שעשויים להיות במדגםשלך 9,10,11.

היבט חשוב אחד שיש לקחת בחשבון הוא חדירת תאים לכליה. חדירות אלה מקדמות פתוגנזה על ידי הפעלת הפרשת גורמים מסיסים כגון ציטוקינים כדי להחמיר את הדלקת12. כדי להבין טוב יותר אילו אוכלוסיות תאים נמצאות בחדירות, שיטה שימושית היא לבודד לויקוציטים13. כאן, זיהוי של חדירה כלייתית של תאי B משמש כדוגמה. ההליך מתחיל בתהליך עיכול עם deoxyribonuclease (DNase) ו collagenase, ואחריו הפרדת גרדיאנט צפיפות המסירה פסולת, כדוריות דם אדומות, גרנולוציטים צפופים. הסיבה לבידוד תאי B (CD19+) ותאי פלזמה (CD138+) היא שכליות זאבת יכולות לרכז את התאים האלה14. הוא הציע כי נוכחות של תאי B באגרגטים קטנים בכליה יכולה להצביע על התרחבות clonal, וכתוצאה מכך, ייצור אימונוגלובולין (Ig). ידוע כי תאי פלזמה נמצאים באגרגטים אלה גם15. לאחר בידוד לויקוציטים, ניתן להשתמש במיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנציה (FACS) כדי לנתח את התאים המעניינים בעת צביעה בנוגדנים מצומדים פלואורסצנטיים שונים.

אימונופלואורסצנציה היא אחת משיטות הזיהוי האימונוהיסטוכימיה (IHC) המאפשרת הדמיה פלואורסצנטית של חלבונים בדגימות רקמת כליה בעובי 4 מיקרומטר. שיטות גילוי IHC אחרות תלויות באופי האנליטים, בכימיה המחייבת ובגורמים אחרים16. אימונופלואורסצנציה היא שיטת זיהוי מהירה החושפת את האנטיגן לנוגדן מקבילו המסומן בפלואורוכרום ספציפי (או צבע פלואורסצנטי). כאשר הוא מתרגש, הוא מייצר אור שמיקרוסקופ פלואורסצנטי יכול לזהות. טכניקה זו יכולה לשמש כדי לבחון את התצהיר של משלים C3 ו IgG2a17. הפעלה מוגזמת של מפל משלים יכולה להיות קשורה לתגובה חיסונית בלתי מבוקרת ולאובדן תפקוד18. תצהיר חיסוני של נוגדנים עצמיים נגד דנ"א דו-גדילי (anti-dsDNA) בכליה הוא דאגה מרכזית19, כאשר אלה עם איזוטיפ IgG2a נקשרו ל-LN20. באופן ספציפי, נוגדנים נגד dsDNA מפגינים יותר פתוגניות וזיקה לחומרים גרעיניים, ויוצרים קומפלקסים חיסוניים21. כאשר IgG2a קיים, מפל המשלים, כולל C3, מופעל כדי לנקות את מתחמי החיסון22. ניתן לכמת את סמני C3 ו- IgG2a בנפרד או לכסות אותם כדי לבסס את המתאם ביניהם.

יש לציין כי מדידת קריאטינין בסרום היא טכניקה אמינה נוספת שניתן להשתמש בה יחד עם המטוריה מיקרוסקופית וביופסיות כליות לאבחון LN23. עם זאת, נוכחות של פרוטאינוריה היא אינדיקטור חזק של נזק גלומרולרי. במובן זה, ניטור רמת הפרוטאינוריה במהלך זאבת יכול לזהות התפרצות מחלה ולהשלים שיטות אחרות לאבחון זאבת. בנוסף, קומפלקסים חיסוניים שהופקדו glomeruli יכול לעורר תגובה דלקתית, להפעיל את מערכת המשלים, ולגייס תאים דלקתיים נוספים. נקודה נוספת ראויה לציון של פרוטוקול זה היא חדירת תאי B לכליה. זה, יחד עם תאי ה-T החודרים, מגביר את התגובות החיסוניות המקומיות שגורמות נזק לאיברים. חשוב לציין כי הסיווג של LN אינו מבוסס רק על שינויים מורפולוגיים גלומרולריים הנראים במיקרוסקופיה, אלא גם על משקעים חיסוניים שנצפו עם אימונופלואורסצנציה. לכן, בפרוטוקול זה, שיטות מדויקות וחסכוניות לניתוח תפקוד הכליות מוצעות במסגרות מעבדה.

Protocol

הפרוטוקול הנוכחי מאושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) בווירג'יניה טק. מאחר שלמחלת הזאבת יש שכיחות גבוהה יותר אצל נקבות, נעשה שימוש רק בנקבות עכברי MRL/lpr. איסוף הדגימות החל בגיל 4 שבועות והסתיים בגיל 15 שבועות. העכברים התקבלו ממקורות מסחריים (ראו טבלת חומרים) וגודלו ותוחזקו בסביבה ספציפית נטולת פתוגנים בהתאם להנחיות המוסדיות.

1. בדיקת פרוטאינוריה

  1. לאסוף שתן בעקבות השלבים הבאים.
    1. יש לעקר את מכסה המנוע על ידי ריסוס 70% אתנול. מניחים יריעת פלסטיק סטרילית על פני השטח. הכינו טיפים, צינורות 1.5 מ"ל ופיפטה לאיסוף כ-20 מיקרון ליטר מהנוזל.
      הערה: טיפים וצינורות חייבים להיות סטריליים וללא כל טיפול מקדים.
    2. קח את הכלוב ורסס 70% אתנול לפני שתכניס אותו לתוך מכסה המנוע.
    3. החזיקו את העכבר ביד אחת והשתמשו ביד השנייה כדי לעסות בעדינות את אזור הגחון מלמעלה למטה.
    4. השתמש בצינור 1.5 מ"ל או פיפטה כדי לאסוף את השתן ישירות, או אם הדגימה טיפה, לאסוף אותו מיריעת פלסטיק. השתמש בכפפות, סדינים וטיפים טריים עבור כל דוגמה.
      הערה: אם זה לא עובד, השתמש בכוס סטרילית כדי לבודד את העכבר, ולאחר מכן אסוף את השתן מהכוס לאחר שהעכבר משתין.
    5. החזירו את העכבר לכלוב. הוצא עכבר נוסף וחזור על שלבים 1.1.3-1.1.4.
      הערה: נקו תמיד את יריעת הפלסטיק ואת הכוס עם 70% אתנול לאחר איסוף הדגימה עבור כל עכבר. לפחות חמישה עכברים לקבוצה נחוצים למובהקות סטטיסטית. דגימות שתן ניתן לאחסן בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס עד לשימוש עד 12 חודשים.
  2. כימות החלבונים בשיטת ברדפורד24.
    1. אפשרו לדגימות שתן, לתקן אלבומין ולמגיב ברדפורד להגיע לטמפרטורת החדר (RT) על ידי השארתם מחוץ למקפיא למשך 10-20 דקות.
      הערה: מגיב ברדפורד ותקן אלבומין כלולים בערכה הזמינה מסחרית (ראה טבלת חומרים). הריכוז ההתחלתי של תקן אלבומין הוא 2 מ"ג/מ"ל. דילולים סדרתיים (1:2 שש פעמים) חייבים להיעשות עם מים.
    2. הוסיפו את מגיב ברדפורד לצלחת של 96 בארות (200 μL/well), ללא דילול.
    3. פיפטה 5 μL של דגימת שתן לא מדולל לכל באר ולהשתמש בקצה כדי פיפטה למעלה ולמטה מספר פעמים כדי לערבב כראוי.
    4. הוסף תקנים (400, 200, 100, 50, 25, 12.5 mg/dL) בכפילויות. השאירו כמה בארות כריקים.
      הערה: הוספת דוגמאות ותקנים צריכה להיעשות במהירות.
    5. תן לזה לעמוד במשך 5-10 דקות ב- RT.
    6. קרא את הלוחית בגודל 595 ננומטר בקורא צלחות בהתאם לפרוטוקול היצרן (ראה טבלת חומרים).

2. בידוד של תאי הכליה

  1. המתת העכבר באמצעות CO2 (קצב זרימה: 30%-70% נפח/דקה, כדי להשיג חוסר הכרה או מוות) בתא ואחריו נקע צוואר הרחם. המשך עם דיסקציה כדי לאסוף את שתי הכליות. מניחים כליה וחצי במדיום C10 קר כקרח. שים את חצי הכליה השנייה ב- OCT (שלב 3.1.1).
    הערה: C10 מיוצר עם RPMI 1640 בתוספת 10% סרום בקר עוברי, 1 mM של נתרן פירובט, 1% של 100x חומצות אמינו לא חיוניות MEM, 10 mM של HEPES, 55 μM של 2-mercaptoethanol, ו 100 U/mL של פניצילין-סטרפטומיצין (ראה טבלת חומרים).
  2. חותכים את הכליות לגודל דגנים (1-2 מ"מ3 חתיכות) ומתעכלים ב-5 מ"ל של מאגר עיכול המכיל 1 מ"ג/מ"ל של קולגן ו-0.2 מ"ג/מ"ל של DNase I (ראו טבלת חומרים) במדיום RPMI 1640 המכיל 10 mmol /L של HEPES למשך שעה אחת עם רעידות עדינות מתמשכות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס.
    הערה: יש להוסיף חיץ עיכול של 1 מ"ל בצינור סטרילי של 2 מ"ל ולהשתמש במספריים סטריליים כדי לקצוץ את הכליה.
  3. הוסיפו 10 מ"ל של PBS קר כקרח המכיל 10 מ"מ של חומצה אתילנדיאמינטטראציטית (EDTA) ודגרה במשך 10 דקות על קרח. ואז מערבלים את ההשעיה פעמיים.
  4. סנן את מתלה התא דרך מסננת 100 μM ושטוף עם 10 מ"ל של HBSS מלא.
    הערה: HBSS-full מכיל 5 mM של EDTA, 0.1% BSA ו-10 mM של HEPES.
  5. צנטריפוגה ב 350 x גרם במשך 10 דקות ב RT.
  6. הכן פתרון 30%, 37% ו-70% סטוק איזוטוני פרקול (SIP).
    הערה: ערבבו נפח חלק אחד של 10x PBS ונפח של 9 חלקים של Percoll להכנת SIP (ראו טבלת חומרים); השתמש ב-HBSS-full כדי לדלל את SIP ל-30%, 37% ו-70% SIP.
  7. יש לתלות תאים ב-5 מ"ל של 30% SIP ולטעון 37% מ-5 מ"ל (למעלה) ו-70% מ-5 מ"ל (למטה), מה שהופך את SIP לשיפוע, לאט לאט עם פיפטה פאסטר.
  8. צנטריפוגה עם Up9 down0 (או בלם 0) ב-1000 x גרם למשך 30 דקות ב-RT.
  9. לאסוף לויקוציטים מן הממשק 37%-70% ולחדש אותם ב 5 מ"ל של C10.
  10. צנטריפוגה ב 350 x גרם במשך 10 דקות ב 4 מעלות צלזיוס.
  11. השהה את גלולת התא ב-3 מ"ל של מאגר FACS. התאים מוכנים לצביעת FACS.
    הערה: מאגר FACS מכיל PBS אחד ואלבומין בסרום בקר (BSA) של 0.1%.
  12. צנטריפוגה ב 350 x גרם במשך 5 דקות ב 4 מעלות צלזיוס ולהשליך את supernatant (SN), משאיר כ 50 μL.
    הערה: כדי להסיר את הסופרנטנט, יש לשפוך בזהירות או לפטם את התמיסה הרחק מהמוצק או להשתמש בוואקום חצי-אוטומטי כדי לשאוף את הסופרנטנט.
  13. הוסף 50 μL של בלוק FcR (ראה טבלת חומרים) לכל שפופרת (מדולל מראש 1/50 ב 1x PBS); מערבבים ודוגרים על קרח בחושך במשך 10 דקות.
  14. יש להוסיף 2 מ"ל של מאגר FACS לשטיפה.
  15. צנטריפוגה ב 350 x גרם במשך 5 דקות ב 4 מעלות צלזיוס ולהשליך SN, משאיר כ 50 μL.
  16. הוסיפו 20 μL של הצבע הפלואורסצנטי המתאים (דיללו 1/100 עם 1x PBS, ראו טבלת חומרים) ותנו לו לעמוד במשך 15-30 דקות על קרח.
  17. הוסף 50 μL של תערובת נוגדנים15 לכל צינור: CD138-BV711 (1/200 ב-PBS אחד) ו-CD45-AF700 (1/200 ב-PBS אחד) (ראה טבלת חומרים).
  18. דגרו על קרח בחושך במשך 15-30 דקות והוסיפו 3 מ"ל של חיץ FACS.
  19. צנטריפוגה ב 350 x גרם במשך 5 דקות ב 4 °C ו ואקום SN, משאיר כ 50 μL. השעיה ב 200 μL של 1x PBS. זה עכשיו מוכן להיות מנותח על ידי ציטומטריה זרימה.

3. מכתים אימונופלואורסצנטיים

  1. בצע את איסוף הדגימות.
    1. הטמע את חצי הכליה בקריומולד הפלסטי הקטן עם תרכובת טמפרטורת החיתוך האופטימלית (OCT) (ראו טבלת חומרים).
    2. הוסיפו קרח יבש לקופסת קצף פוליסטירן (ראו טבלת חומרים), והניחו בזהירות את הקריומולד על גבי הקרח היבש. ודא כי cryomolds ממוקמים שטוח.
      הערה: לוקח 3-4 דקות עד שתרכובת OCT מתמצקת והופכת ללבנה.
    3. מוציאים את הקריומולד ועוטפים אותו בנייר אלומיניום. יש לאחסן בטמפרטורה של -80°C עד לשימוש נוסף.
      הערה: ניתן לאחסן אותו ב-80°C- למשך שנה אחת לפחות.
  2. בצע חיתוך ותיקון של המדגם.
    1. חותכים את הדגימות למקטעים של 4 מיקרומטר, ממתינים לפחות 2-3 שעות לייבוש, ואז מתקנים עם אצטון קר (ב-4 מעלות צלזיוס) למשך 10 דקות.
      הערה: היזהר בעת שימוש באצטון, הדורש מכסה מנוע כימי מיוחד.
    2. לאחר תיקון המגלשות, יש לייבש באוויר למשך 0.5-1 שעות ולאחסן אותן לזמן קצר ב-20°C-, או למשך זמן רב ב-80°C-.
  3. להכתים את הדגימות.
    1. תקן את השקופיות באצטון קר במשך 5-10 דקות.
    2. אפשרו למקטעים להתחמם ל-RT. השתמשו בעט PAP (ראו טבלת חומרים) מסביב למקטע ותנו לו להתייבש.
      הערה: ניתן להשתמש גם באמייל הציפורן. שלב זה מונע מדילול נוגדנים לצוף על כל המגלשה.
    3. הניחו את השקופיות ב-1x Tris-buffered saline (TBS) בצנצנת קופלין (ראו טבלת חומרים) למשך 20 דקות, הניחו את הצנצנת על השייקר ונערו בעדינות.
    4. מוזגים 1x TBS וממלאים את הצנצנת ב-1x TBS, 5% BSA ו-0.1% Tween 20. לדגור במשך 20 דקות על השייקר, לנער בעדינות.
    5. הוציאו את המגלשות ונגבו את תחתית השקופיות לייבוש. במידת הצורך, נערו את המגלשות לייבוש. הוסף 100 μL של נוגדנים מצומדים25 C3-FITC (1/100) ו- IgG2a-PE (1/100) לסעיף (ראה טבלת חומרים). דגירה ב- RT בתא לחות למשך שעה אחת.
    6. יש לשטוף את הקטע 3 פעמים ב-1x TBS, 5% BSA ו-0.1% Tween 20 למשך 10 דקות על השייקר.
    7. יש לייבש את המגלשות ולהרכיב את הקטע עם מגיב אנטי-פאדי (ראו טבלת חומרים) ולאחר מכן עם כיסוי כיסוי.
    8. אחסן את השקופיות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס עד לצפייה מתחת למיקרוסקופ (למשל, מיקרוסקופ קונפוקלי או מיקרוסקופ מערכת הדמיה). כימות תמונות באמצעות תוכנה והפחת אותות רקע בעת השוואת עוצמת הפלואורסצנטיות בין אזורים.
    9. לניתוח תמונות באמצעות תוכנת ImageJ (ראה טבלת חומרים), התווה את האזור הרצוי.
    10. הגדר פרמטרים סטנדרטיים על ידי לחיצה על נתח, ולאחר מכן הגדר מדידות ומדידת שטח כדי לקבל את התוצאות.
    11. העבר את הנתונים המתקבלים מחלונות המדידה לגיליון אלקטרוני.
      הערה: ניתן לבחור שטח קטן מהתמונה כרקע; זה לא צריך להיות שום פלואורסצנציה.
    12. לאחר שתסיים, לחץ על נתח כדי למדוד את האזור ולהעביר נתונים שוב לגיליון האלקטרוני הקודם.
    13. חזור על שלבים 3.3.11-3.3.12 עבור מספר אזורים.
    14. חישוב הפלואורסצנציה הממוצעת כפלואורסצנציה של תא מתוקן (CCF) = צפיפות משולבת - (אזור תא נבחר x פלואורסצנטיות רקע ממוצעת).
    15. חשב עבור כל אזור ונתח נתונים באמצעות תוכנת הגרפים והסטטיסטיקה (ראה טבלת חומרים).

תוצאות

הפרוטוקול משתמש במספר שיטות כדי להעריך עכברי MRL/lpr עבור זאבת נפריטיס. ראשית, מתואר הליך לחקר רמות פרוטאינוריה מוגברות עקב תפקוד לקוי של הכליות לאורך זמן. כפי שמוצג באיור 1, נקבות עכברים טופלו בנטילת שתן פומית של 200 μL של מי מלח עם מאגרי פוספט (1x PBS) כקבוצת הביקורת ולקטובצילוס ...

Discussion

LN הוא גורם מוביל לתמותה בחולי SLE, והגורמים המחמירים את המחלה עדיין אינם ברורים. היישום של פרוטוקול זה הוא לאפיין את תפקוד הכליות באמצעות שיטות מרובות, כולל מדידה של פרוטאינוריה, ניתוח FACS של לויקוציטים בכליות מבודדות, והכתמה אימונופלואורסצנטית של מקטעי כליות קפואים.

נקודה חש...

Disclosures

המחברים מצהירים כי אין ניגוד עניינים.

Acknowledgements

אנו מודים למתקן הליבה של ציטומטריה של זרימה, למעבדה היסטופתולוגית, למרכז ההדמיה של פרלין במכון הפוליטכני של וירג'יניה ולאוניברסיטת המדינה על התמיכה הטכנית. עבודה זו נתמכת על ידי מענקים שונים של NIH ומענקים פנימיים.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
10x Tris-Buffered Saline (TBS)Thermo Fisher ScientificJ60764.K2
2-mercaptoethanolThermo Fisher Scientific21985-023
Anti-Human/Mouse C3CedarlaneCL7632F
Anti-Mouse CD138 BV711Biolegend142519
Anti-Mouse CD45 AF700Biolegend103127
Bovine Serum AlbuminSigma-AldrichA9418-100G
Collagenase DSigma-Aldrich11088882001
Confocal Microscope LSM 880ZeissLSM 880
Coplin jarFisher Scientific50-212-281
CryomoldFisher ScientificNC9511236
Density gradient mediumGE Healthcare17-1440-02Percoll
DEPC-Treated waterThermo Fisher ScientificAM9906
DNase ISigma-AldrichD4527
dsDNA-ECInvivoGentlrl-ecdna
Ethylenediaminetetraacetic AcidFisher ScientificS311-500EDTA
EVOS M5000 Microscope imaging systemThermo Fisher ScientificAMF5000
FACS Fusion Cell sorterBD BiosciencesFACS Fusion
Fetal Bovine Serum - Premium, Heat InactivatedR&D systemsS11150H
Fisherbrand 96-Well Polystyrene PlatesFisher Scientific12-565-501
Graphpad prismGraphPadN/A
Hank’s Balanced Salt SolutionThermo Fisher Scientific14175-079
HEPESThermo Fisher Scientific15630-080
ImageJ softwareNational Institutes of HealthN/A
Lactobacillus reuteri Kandler et al.ATCC23272
MEM non-essential amino acidsThermo Fisher Scientific11140-050
MRL/MpJ-Fas lpr /J Mice (MRL/lpr)Jackson Lab485
Nail enamelN/AN/AAny conventional store
O.C.T compoundTisse-Tek4583
PAP penSigma-AldrichZ377821
Peel-A-Way Disposable Embedding MoldsPolysciencesR-30
Penicillin-StreptomycinThermo Fisher Scientific15140-122
Phosphate-buffered saline (PBS)Thermo Fisher Scientific70011069
Pierce 20x TBS BufferThermo Fisher Scientific28358
Pierce Coomassie Plus (Bradford) Assay kitThermo Fisher Scientific23236Albumin standard included
ProLon Gold Antifade MountantThermoFisherP36934
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32BD Biosciences553141FcR block
RPMI 1640Thermo Fisher Scientific11875-093
Sodium pyruvateThermo Fisher Scientific11360-070
SpectraMax M5Molecular DevicesN/ASoftMax Pro 6.1 software
Sterile cell Strainers 100 µMFisher Scientific22363549
Tween 20Fisher ScientificBP337-500
Vancomycin HydrochlorideGoldbioV-200-1
Zombie AquaBiolegend423102fluorescent dye for flow cytometry analysis

References

  1. Tsokos, G. C. Systemic Lupus Erythematosus. New England Journal of Medicine. 365 (22), 2110-2121 (2011).
  2. Davidson, A., Aranow, C. Lupus nephritis: lessons from murine models. Nature Reviews Rheumatology. 6 (1), 13-20 (2010).
  3. Maldonado, M. A., et al. The role of environmental antigens in the spontaneous development of autoimmunity in MRL-lpr mice. Journal of Immunology. 162 (11), 6322-6330 (1999).
  4. Lech, M., Anders, H. J. The pathogenesis of lupus nephritis. Journal of the American Society of Nephrology. 24 (9), 1357-1366 (2013).
  5. Bagavant, H., Fu, S. M. Pathogenesis of kidney disease in systemic lupus erythematosus. Current Opinion in Rheumatology. 21 (5), 489-494 (2009).
  6. Li, Q. Z., et al. Identification of autoantibody clusters that best predict lupus disease activity using glomerular proteome arrays. Journal of Clinical Investigation. 115 (12), 3428-3439 (2005).
  7. Aragón, C. C., et al. Urinary biomarkers in lupus nephritis. Journal of Translational Autoimmunity. 3, 100042 (2020).
  8. Mu, Q., et al. Control of lupus nephritis by changes of gut microbiota. Microbiome. 5 (1), 73 (2017).
  9. Lu, T. -. S., Yiao, S. -. Y., Lim, K., Jensen, R. V., Hsiao, L. -. L. Interpretation of biological and mechanical variations between the Lowry versus Bradford method for protein quantification. North American Journal of Medical Sciences. 2 (7), 325-328 (2010).
  10. Lamb, E. J., MacKenzie, F., Stevens, P. E. How should proteinuria be detected and measured. Annals of Clinical Biochemistry. 46, 205-217 (2009).
  11. Viswanathan, G., Upadhyay, A. Assessment of proteinuria. Advances in Chronic Kidney Disease. 18 (4), 243-248 (2011).
  12. Hsieh, C., et al. Predicting outcomes of lupus nephritis with tubulointerstitial inflammation and scarring. Arthritis Care & Research. 63 (6), 865-874 (2011).
  13. Hill, G. S., Delahousse, M., Nochy, D., Mandet, C., Bariéty, J. Proteinuria and tubulointerstitial lesions in lupus nephritis. Kidney International. 60 (5), 1893-1903 (2001).
  14. Chang, A., et al. In situ B cell-mediated immune responses and tubulointerstitial inflammation in human lupus nephritis. Journal of Immunology. 186 (3), 1849-1860 (2011).
  15. Schrezenmeier, E., Jayne, D., Dörner, T. Targeting B Cells and plasma cells in glomerular diseases: translational perspectives. Journal of the American Society of Nephrology. 29 (3), 741 (2018).
  16. Fitzgibbons, P. L., et al. Principles of analytic validation of immunohistochemical assays: Guideline from the college of American pathologists pathology and laboratory quality center. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 138 (11), 1432-1443 (2014).
  17. Lewis, M. J., Botto, M. Complement deficiencies in humans and animals: links to autoimmunity. Autoimmunity. 39 (5), 367-378 (2006).
  18. Watanabe, H., et al. Modulation of renal disease in MRL/lpr mice genetically deficient in the alternative complement pathway factor B. Journal of Immunology. 164 (2), 786-794 (2000).
  19. Yin, Z., et al. IL-10 regulates murine lupus. Journal of Immunology. 169 (4), 2148-2155 (2002).
  20. Singh, R. R., et al. Differential contribution of IL-4 and STAT6 vs STAT4 to the development of lupus nephritis. Journal of Immunology. 170 (9), 4818-4825 (2003).
  21. van Bavel, C. C., Fenton, K. A., Rekvig, O. P., vander Vlag, J., Berden, J. H. Glomerular targets of nephritogenic autoantibodies in systemic lupus erythematosus. Arthritis & Rheumatism. 58 (7), 1892-1899 (2008).
  22. Zuniga, R., et al. Identification of IgG subclasses and C-reactive protein in lupus nephritis: the relationship between the composition of immune deposits and FCgamma receptor type IIA alleles. Arthritis & Rheumatism. 48 (2), 460-470 (2003).
  23. Wang, S., Wang, F., Wang, X., Zhang, Y., Song, L. Elevated creatinine clearance in lupus nephritis patients with normal creatinine. International Journal of Medical Sciences. 18 (6), 1449-1455 (2021).
  24. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72 (1), 248-254 (1976).
  25. Cabana-Puig, X., et al. Phenotypic drift in lupus-prone MRL/lpr Mice: potential roles of micrornas and gut microbiota. Immunohorizons. 6 (1), 36-46 (2022).
  26. Wang, S., Wang, F., Wang, X., Zhang, Y., Song, L. Elevated creatinine clearance in lupus nephritis patients with normal creatinine. International Journal of Medical Sciences. 18 (6), 1449-1455 (2021).
  27. Kienzle, N., Young, D., Zehntner, S., Bushell, G., Sculley, T. B. DNaseI treatment is a prerequisite for the amplification of cDNA from episomal-based genes. Biotechniques. 20 (4), 612-616 (1996).
  28. Park, J. G. -., et al. Immune cell composition in normal human kidneys. Scientific Reports. 10 (1), 15678 (2020).
  29. Im, K., Mareninov, S., Diaz, M. F. P., Yong, W. H. An introduction to performing immunofluorescence staining. Methods in Molecular Biology. 1897, 299-311 (2019).
  30. Okutucu, B., Dınçer, A., Habib, &. #. 2. 1. 4. ;., Zıhnıoglu, F. Comparison of five methods for determination of total plasma protein concentration. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 70 (5), 709-711 (2007).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

184SLEB

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved