שיטת מכתים נוגדן שלם הר ב צ'יק

Summary

וידאו זה מדגים כל הר אימונוהיסטוכימיה, שיטה שבאמצעותה דפוס ביטוי במרחב ובזמן של אנטיגן ניתן דמיינו בעוברים אפרוח צעיר. שיטה זו הוצגה לראשונה על ידי ג'יין דוד וטום Jessell.

Abstract

עובר אפרוח הוא כלי רב ערך במחקר ההתפתחות העוברית המוקדמת. שקיפות, שלה נגישות וקלות מניפולציה, הופכים אותו לכלי אידיאלי ללימוד ביטוי הנוגדן בפיתוח, המוח צינור somite עצביים. סרט הווידאו הזה מדגים את השלבים השונים מכתים כל הר נוגדנים באמצעות נוגדנים HRP משני מצומדות: ראשית, העובר גזור מן הביצה ואת קבוע paraformaldehyde. Peroxidase שנית, אנדוגני הוא מובטל, העובר חשוף ואז נוגדן ראשוני. לאחר מספר שוטף, העובר הוא מודגרות עם נוגדנים משני מצומדות כדי HRP. פעילות peroxidase מתגלה באמצעות תגובה עם המצע diaminobenzidine. לבסוף, העובר מקובע ומעובד צילום חתך. היתרון של שיטה זו על השימוש של נוגדנים ניאון היא כי עוברי יכול להיות מעובד על חתך שעווה, ובכך לאפשר לימוד של אתרי אנטיגן חתך. שיטה זו הוצגה לראשונה על ידי ג'יין דוד וטום Jessell

Protocol

I. סקירה סכמטית:

סרט הווידאו הזה מדגים את השלבים השונים אימונוהיסטוכימיה הר שלם בעובר האפרוח. ראשית, העובר הוא קבוע PFA [IHC1]. ואז, פעילות peroxidase אנדוגני הוא הרווה [IHC2]. העובר הוא מודגרות אז הנוגדן העיקרי [IHC3]. לאחר מספר שוטף, העובר הוא מודגרות ב נוגדנים משני [IHC4]; התגובה צבע מתגלה באמצעות DAB [IHC5] ו מכתים נוגדן מופיע כתום [IHC6].

חלק 1: תיקון העוברים

1. כדי לבצע אימונוהיסטוכימיה הר שלם על עוברי חומוס, ביצה פותח לראשונה על ידי הקשה על פגז עם מלקחיים והסרת חתיכות של הקליפה.
2. הסר את אלבומין עבה עם מלקחיים, ו להטות את שק החלמון עם מלקחיים גס כל כך עובר את פניהם כלפי מעלה.
3. בעזרת מספריים בסדר, לחתוך ריבוע של שק חלמון סביב העובר. מוציאים את העובר מן החלמון עם כפית, ומניחים צלחת ובה PBS.
4. תחת מיקרוסקופ לנתיחה, להסיר בזהירות את הקרומים וחלמון והעברת עובר לצלחת טרי המכיל PBS.
5. הצמד את העובר למטה עם מלקחיים וסיכות חרקים, ואת לשאוב PBS. החלף את זה עם PFA 4% ב-PBS, ומאפשרים לעובר לתקן 1h ב RT.

חלק 2: עוברים הכנות לקראת השלב נוגדן

1. כדי למזער את זיהום מיקרוביאלי פוטנציאל, להשתמש DDH ₂ O בכל השלבים הבאים.
2. לאחר העובר הוא קבוע, לשאוב את הפתרון מקבע ועושה כראוי כמו פסולת כימית. מלאו את המנה עם PBS.
3. הבא, בעזרת סכין microdissection, לחתוך ריבוע סביב העובר להסיר ממברנות extraembryonic. הסר סיכות חרקים עם מלקחיים.
4. לאחר סיכות הוסרו, להשתמש סוף קהה פיפטה פסטר להעביר את העובר כדי בקבוקון המכיל scintillation עם PBT (PBS pH 7.4, טריטון X 0.5%).
5. לשטוף את העובר עם PBT, 3 פעמים במשך 10 דקות כל אחד.
6. הסר PBT מבקבוקון הנצנץ, ולהחליף PBTx המכיל 0.3% H ₂ O ₂ כדי להשבית peroxidase אנדוגני פוטנציאליים.
7. דגירה עבור שעה 2 ב RT על nutator.
8. לשטוף עם העובר PBT, 3 פעמים במשך 10 דקות כל אחד, ולאחר מכן 3 פעמים במשך 30 דקות כל אחד.

חלק 3: דגירה נוגדן

1. כדי להכתים את העובר עם נוגדנים, להתחיל לשטוף את העובר במשך שעה אחת במאגר חסימה או 1% BSA / NGS 1% / PBT (אנו משתמשים NGS כי נוגדנים משני גדל עז). לדגור על nutator למשך שעה אחת ב RT.
2. לדלל את הנוגדן העיקרי 01:01 במאגר חוסם, ואת העובר דגירה בפתרון זה עבור 2 ימים 4 ° C על nutator. הגורם העיקרי דילול נוגדן תלוי בבחירת הנוגדן הראשוני. כאן, אנו משתמשים נוגדן מן התפתחותית מחקרים Hybridoma הבנק, אשר כאמור supernatent. אנו לדלל אותה 01:01 בחסימת חיץ.
3. הבא, לבצע 3 10 דקות שוטף ב PBT, ואחריו 3 1 שעות שוטף של PBT.
4. לאחר כביסה, לדלל את הנוגדן 1:2500 משני חיץ חוסם (במקרה זה peroxidase מצומדות-עיזים אנטי עכבר IgG (H + L), ו העובר דגירה בפתרון זה O / N ב 4 ° C על nutator.
5. בצעו 3 10 דקות שוטף ב PBT, ואחריו 3 1 שעות שוטף ב PBT.

חלק 3: תגובת צבע

1. כדי לפתח את התגובה צבע של העובר מוכתם, תחילה לבצע 2 20 דקות שוטף של טריס חיץ (100mm טריס HCl, pH 7.4).
2. בינתיים לפזר מצע DAB (3,3 '-diaminobenzidine tetrahydrochloride) ב טריס חוצץ ב 500μg/ml מתחת למכסה המנוע קטר; לשמור על פתרון בחושך, על הקרח.
3. הסר האחרון לשטוף טריס חיץ מן העובר בקבוקון המכיל ולהחליף פתרון DAB 5 מ"ל משלב 3.2. שמור בחושך על nutator עבור 20 mn. השלך Eppendorf קצה בדלי המכיל פתרון אקונומיקה 10% על מנת לטהר DAB.
4. בינתיים להכין המניה 0.3% H ₂ O ₂ ב DH ₂ O על הקרח.
5. הוסף מניות 50μl H ₂ O ₂ ל בקבוקון המכיל עוברים DAB. שמור בחושך. אחרי 1-2 דקות, לפקח התגובה תחת מיקרוסקופ.

חלק 4: עיבוד העובר על צילום היסטולוגיה

1. כאשר התגובה צבע הושלמה, להיפטר DAB בדלי אקונומיקה. החלף עם 5 מ"ל מים מהברז.
2. בצע 2 10 דקות שוטף ב PBS.
3. כדי תהליך הצילום חתך שעווה, מייבשים בסדרה אתנול (25%, 50%, 75% ו 100%) במשך 10 דקות כל אחד.
4. החלף את אתנול עם 0.5-1 מ"ל שמן עץ הארז (זה יהפוך את השקוף העובר). תהליך לצילום בשמן עץ ארז.
5. בעקבות הצילום, לחזור אל העובר בקבוקון ולהחליף את שמן עץ ארז עם 100% אתנול. חזור על שלב אתנול.
6. החלף דוארthanol עם FCF 5% ירוק מהיר ב 100% אתנול, ו דגירה במשך 3 דקות (שלב זה יגרום עוברים גלוי עבור היסטולוגיה). החלף פתרון מהיר ירוק FCF עם 100% אתנול ו תהליך היסטולוגיה.

נציג תוצאות:

בדוגמאות להלן, עוברים הם גזור בשלבים HH 10 (א), 12 (ב) ו -11 (ג); עוברים להראות ביטוי PAX 7 ב crestas עצביים המתעוררים גם somites ו בצינור העצבי (A, B); ב (ג), notochord התווית 15.3B9 (לא-1) (נוגדנים הניתנים על ידי התפתחותית מחקרים Hybridoma בנק).

Discussion

סרט הווידאו הזה מדגים את השלבים השונים בביצוע כל הר מכתים נוגדן בעוברים אפרוח צעיר. פרוטוקול זה משמש בעיקר לאפיון במרחב ובזמן של נוגדנים הרומן חומוס ^2,3, כמו גם לשימושם של סמנים antigenic ידוע כדי לקבוע מומים עובריים הבאים להעליב ^4.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Eggs		Charles River Laboratories	Premium Fertile	Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope	Microscope	Leica Microsystems	MZ9.5 or similar
Marsh Automatic Incubator	Other	Lyon	RX
Curved Forceps (1)	Tool	Electron Microscopy Sciences	72991-4C
Forceps (2)	Tool	Fine Science Tools	11002-13
Fine scissors	Tool	Fine Science Tools	14161-10
Plastic dishes	Tool	Falcon BD	353001
Rubber Bulb	Tool	Electron Microscopy Sciences	70980
Pasteur Capillary Pipette	Tool	Electron Microscopy Sciences	70950-12	round edge under flame
Microdissecting knife	Tool	Fine Science Tools	10056-12	Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base	Reagent	Dow Corning	0001986475	Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA	Reagent	Electron Microscopy Sciences	15710
30% H2O2	Reagent	Sigma-Aldrich	H1009
BSA	Reagent	Sigma-Aldrich	A3803
NGS	Reagent	Jackson ImmunoResearch	005-000-121
Primary Antibodies	Reagent	Developmental Studies Hybridoma Bank	4G11, 15.3B9, PAX7	For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L)	Reagent	Jackson ImmunoResearch	115-035-003
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride	Reagent	Pierce, Thermo Scientific	34001	Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oil	Reagent	Sigma-Aldrich	W522503
Fast green FCF	Reagent	Sigma-Aldrich	F7252
Minuten pins 0.2mm diam		Fine Science Tools	26002-20