בתור התחלה, לבשו ציוד מגן אישי, כולל מגן עיניים, מסכה כירורגית וכפפות ללא לטקס. הכינו 20 מיליליטר של נוירובלסטומה עכברית או תאי BHK-21 לריכוז של 3.0 כפול 10 לתאים החמישיים למיליליטר ב-EGM. שמור את התאים מוכנים קרים עד שהם מוכנים לשימוש.
לאחר מכן, להכין את וירוס CVS-11 על ידי דילול אותו EGM. הקפד לשמור על הנגיף מוכן קר עד לשימוש. נקו את תא מגלשות הלחות ואת מגלשות המיקרוסקופ המצופות היטב בפוליטטרה-פלואוראתילן עם אתנול 70% ואפשרו להן להתייבש באוויר בארון הבטיחות הביולוגית.
לאחר הניקוי, יש להוסיף מים מזוקקים לרצועות נייר הספיגה בתא ההחלקה כדי להבטיח לחות קבועה לאורך כל ההליך. באמצעות תווית עיפרון כל שקופית עם פרטי הזיהוי הנדרשים, כגון מספר לוט, תאריך וסוג תא. מקם את השקופיות המסומנות בתא השקופיות לאחסון.
לאחר מכן להחיל 50 מיקרוליטר של דילול וירוס על הבארות על שקופיות המיקרוסקופ באמצעות פיפטה חוזרת. החל 50 מיקרוליטר של דילול תאים על כל באר, נזהר לא לזהם את קצה פיפטה עם הנגיף כבר בבאר. לאחר מכן, סגרו את תא מגלשת הלחות והניחו אותו באינקובטור הלח בין 34 ל-36 מעלות צלזיוס.
לאחר מכן, הסירו את המגלשה מתא הלחות ושאפו בקפידה את הסופרנאטנט. שטפו את המגלשה במשך שתי דקות בצנצנת קופלין מלאה ב-PBS, ואז הניחו לה להתייבש באוויר. שים את המגלשה בצנצנת קופלין קרה מלאה אצטון כדי לתקן את הדגימה.
הכניסו את הצנצנת למקפיא בטמפרטורה של מינוס 20 מעלות צלזיוס המאושרת לחומרים דליקים למשך שעה לפחות. לאחר שהאצטון מתאדה והמגלשה מתייבשת, יש למרוח נוגדן פלואורסצנטי ישיר של כלבת מצומד לבארות המגלשה ולדגור על המגלשה במשך 30 דקות באינקובטור לח של 34 עד 36 מעלות צלזיוס. לאחר מכן שטפו את המגלשה פעמיים בצנצנת קופלין של PBS במשך שתי דקות כל אחת.
יבשו את המגלשה באוויר והרכיבו את החלקת הכיסוי עם תריס מולארי 0.05, נתרן כלורי 0.15 מולארי בהרכבה של 20% גליצרול. השתמש במיקרוסקופ פלואורסצנטי בהגדלה של פי 200 כדי להעריך את זיהום התא. לאחר מכן, הסר את השקופיות הנותרות מהאינקובטור ומתא הלחות.
שאפו את הסופרנאטנט מכל באר בזהירות. לאחר מכן הניחו את המגלשות בצנצנת קופלין עם PBS למשך דקה עד שתיים. הניחו למגלשות להתייבש באוויר במשך כ-30 דקות ולאחר מכן אחסנו אותן בטמפרטורה של מינוס 80 מעלות צלזיוס עד לשימוש.
