This work is funded by NIH RO1 NS 40433 (K.J.J.).

כל הנהלים מבוצעים מאושרים על ידי בית הספר לרפואה של אוניברסיטת אינדיאנה מוסדית טיפול בבעלי חי ועדת שימוש ופעלו מכון הלאומי לבריאות הנחיות. 1. טכניקה כירורגית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשמור על טכניקת aseptic במהלך הליך זה על ידי שימוש בכפפות סטריליות, מכשירים, ותחום כירורגית סטרילית על פי הנחיות NIH 25. לעקר כלים לפני תחילת ניתוח על ידי המעוקר (ראה טבלה של חומרים כימיים / ציוד ספציפי לרשימה מלאה). השתמש מעקר חרוז זכוכית לעקר כלים במהלך המבצע. </li></ol> 2. הרדמה והכנה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכבר בתיבת הרדמה בתערובת של 0.9 L חמצן / דקה וisoflurane 2.5% באמצעות מערכת אידוי isoflurane וטרינרים. ודא שהעכבר אינו מגיב לשינויים בתנוחת גוף לפני הסרתו מהתיבה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל משחת עיניים לmouעיניו של se כדי להגן עליהם מהתייבשות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעבור את זרימת הגז מהתיבה לחרטום. מניחים את העכבר ישירות על צדו השמאלי על משטח לוהט מכוסה עם כרית כירורגית ונייר סופג ספסל עם האף שלה ופה בתוך חרוט. לפקח באופן רציף קצב הנשימה של העכבר ושיעור ולהתאים את רמות isoflurane לפי צורך (בין 2.5 - 3% isoflurane) כדי לשמור על רמה נאותה של הרדמה, ולהשתמש ברפלקס קמצוץ הבוהן כדי לאשר הרגעה כוללת. </li></ol> 3. גישה ניתוחית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יישר ולהתמקד stereoscope עם את שדה הניתוח. התאם את החרטום וקלט אותו כך שהוא נמצא בעמדה בשולי שדה הראייה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם העכבר שוכב על צידו השמאלי, תדביק את קצה אוזן ימין לחרטום, וחושף את האזור שמאחורי האוזן שבו החתך ייעשה. ודא שוריד אוזן האחורי נוסע אופקי על פני האוזן. שימו לב כי המיקום הנכון של tהוא חיה ומקליטה של ​​האוזן הן קריטיות כדי למצוא עצב הפנים במהירות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרטיב את הפרווה ובמאחורי האוזן עם 70% אתנול ו לגלח את האתר כירורגית באמצעות סכין גילוח או אזמל. טרום להרטיב את הפרווה הופך גילוח קל יותר במיקום האנטומי הזה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנקות את העור עם תמיסת יוד, כגון לשפשף פולידין כירורגית (7.5% povidone- יוד), ואחריו אתנול 70%. חזור על ניקוי זה פעמים נוספות כדי לחטא את האזור ביסודיות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לקבוע היכן לבצע את החתך, לעקוב אחר וריד אוזן האחורי מהאוזן caudally לאזור האחורי לבליטת האוזן. בעזרת מספריים האביב, לעשות חתך 4 מ&quot;מ - 2 מ&quot;מ אחורי 3 לבליטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח באמצעות השומן תת עורי וfascia באמצעות לנתיחה בוטה. הימנע חיתוך ישיר עם המספריים כי כלי דם או רקמת שריר יכולים להיפגע בקלות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם דימום מתרחש, להפעיל לחץ לאתר כירורגית עם מקלון צמר גפן סטרילילפחות 30 שניות. אם אובדן נוזלים משמעותי מתרחש, להזריק את העכבר intraperitoneally עם עד 0.5 מיליליטר של תמיסת מלח סטרילית 0.9% באמצעות 25 או 27 מחט G. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בכמה ציוני דרך מרכזיות, עצב אבזר השדרה, תעלת אוזן, וקדמיים שריר הדו-בטנים (שיפורט להלן), כדי לאתר את עצב הפנים. לנתח סביב ציוני הדרך הללו עד הסניפים של עצב הפנים הם דמיינו. העצב יופיע כמבנה לבן מוצק משמעותי כאשר הוא נחשף ושכבת fascia שומרת אותו למבנים שבבסיס. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מצא את עצב אבזר השדרה, אשר נוסע מחלק הזנב של הגולגולת למעצבב את שריר הטרפז, ברגע שהשומן תת עורי וfascia כבר גזור. עצב הפנים עמוק לעצב אבזר השדרה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מצא את תעלת אוזן הסחוסים שנראית פנינים לבנה וניתן לראות מקורי לעצב הפנים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מצא את שריר הבטן של השריר הדו-הבטנים הקדמית שנמצאת על גבי וגaudal לעצב הפנים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר הענפים העיקריים של עצב הפנים הם דמיינו, לעקוב אחר אותם dorsally למצוא מוצאם מנקב stylomastoid. באמצעות קנס היטה מלקחיים דומון # 5/45 להחזיק אתר כירורגית פתוח, לקדם את הטיפים מספריים האביב הבא הנתיב של העצב, ולאחר מכן להעביר את המלקחיים dorsally לשמור על האזור המתקדם החדש פתוחים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דמיינו את תא המטען של עצב הפנים עם הזיגומטית, buccal, וסניפים בלסת תחתונים, שוליים בנקודה זו. הערה: הסניף הזמני יימצא קרוב יותר לforamen. ענפי עצב הלסת תחתונים, השוליים לחלקיו העליונים ותחתונים קרובים ללסת, וכך בענפי עצב אלה לא יהיו גלויים ברמה זו. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם ביצוע חיתוך רוחב עצב, לייצב את העצב בעדינות עם המלקחיים טיפ הנאה וחתך את העצב עם המספריים באביב. הימנע מהפעלה יותר מדי מתיחה בעצב עם המלקחיים כדי למנוע avulsing העצבי מהמוח. Pushהגדמים אחד מהשני, או לחתוך ולהסיר חלק מהעצב הדיסטלי כדי לוודא ששום חיבור מחדש יכול להתרחש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם ביצוע פציעה למעוך, להשתמש דומון # 5/45 במלקחיים כדי לדחוס את העצב למשך 30 שניות באמצעות לחץ מתמיד לנתק את כל האקסונים, ולאחר מכן לחזור למחוץ זה בזווית שנייה בניצב לאתר למעוך הראשון. הימנע מהפעלת כמויות משתנות של לחץ במהלך למעוך 30 שניות, אחרת הפציעה תהיה עקבית בין בעלי החיים. </li></ol></li></ol> 4. סגירה ושחזור <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למקם מחדש את השומן ושרירים על מבני היסוד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקירוב את הקצוות של החתך ולסגור את הפצע באמצעות קליפ פצע 7.5 מ&quot;מ. תפרים או דבק מקובלים גם לסגירת פצעים. יכולים להיות מסופקים על משככי כאבים לאחר ניתוח בשלב זה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הסרט מאוזנו של העכבר. כבה את זרימת isoflurane ולאפשר העכבר כדי לנשום חמצן טהור למשך 30 שניות לדקות 1. Plאס העכבר בכלוב ריק ללא מצע להתאושש מהרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר העכבר הוא התאושש, לבחון את ההתנהגות שלה בחיפוש אחר סימנים לאישוש של שיתוק פנים. השפם יהיה משותק והזווית חזרה לכיוון הלחי, האף יהיה חרג, והעין לא למצמץ בתגובה למשב אוויר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעלי חיים במשותף הבית לאחר ניתוח אם הם ממין נקבה. הימנע דיור עכברי זכרים במשותף כי הם אגרסיביים יותר ונוטים להעביר בכפיית קליפים הפצע של cagemate, מה שמוביל לזיהום. לספק משככי כאבים לאחר ניתוח בשלב זה, במידת צורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפקח על העכברים פעם ביום במשך כמה ימים לאחר הניתוח כדי לוודא ששום זיהום או סיבוך אחר מתרחש לאחר הניתוח. הסר קליפים פצע 7-10 ימים לאחר הניתוח, אם הם לא נפלו החוצה בכוחות עצמם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל הסיכה משחה העין לעין המושפעת מדי יום כדי למנוע סיבוכים בקרנית, או עד שרפלקס מצמוץ העין הוא מחדשמכוסה או עד המתת חסד. </li></ol>

<ol>
	<li>Kaufman, M., Bard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Anatomical Basis of Mouse Development. , (1999).</li><li>Ashwell, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+adult+mouse+facial+nerve+nucleus:+morphology+and+musculotopic+organization.">The adult mouse facial nerve nucleus: morphology and musculotopic organization.</a> Journal of Anatomy. 135, 531-538 (1982).</li><li>Sunderland, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+classification+of+peripheral+nerve+injuries+producing+loss+of+function.">A classification of peripheral nerve injuries producing loss of function.</a> Brain : A Journal Of Neurology. 74, 491-516 (1951).</li><li>Beahrs, T., Tanzer, L., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+recovery+and+facial+motoneuron+survival+are+influenced+by+immunodeficiency+in+crush-axotomized+mice.">Functional recovery and facial motoneuron survival are influenced by immunodeficiency in crush-axotomized mice.</a> Experimental Neurology. 221, 225-230 (2010).</li><li>Mesnard, N. A., Haulcomb, M. M., Tanzer, L., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delayed+functional+recovery+in+presymptomatic+mSOD1G93A+mice+following+facial+nerve+crush+axotomy.">Delayed functional recovery in presymptomatic mSOD1G93A mice following facial nerve crush axotomy.</a> Journal of Neurodegeneration &amp; Regeneration. 4, 21-25 (2013).</li><li>Komiyama, M., Shibata, H., Suzuki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Somatotopic+representation+of+facial+muscles+within+the+facial+nucleus+of+the+mouse.+A+study+using+the+retrograde+horseradish+peroxidase+and+cell+degeneration+techniques.">Somatotopic representation of facial muscles within the facial nucleus of the mouse. A study using the retrograde horseradish peroxidase and cell degeneration techniques.</a> Brain Behav Evol. 24, 144-151 (1984).</li><li>Canh, M. Y., Serpe, C. J., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4(+)+T+cell-mediated+facial+motoneuron+survival+after+injury:+Distribution+pattern+of+cell+death+and+rescue+throughout+the+extent+of+the+facial+motor+nucleus.">CD4(+) T cell-mediated facial motoneuron survival after injury: Distribution pattern of cell death and rescue throughout the extent of the facial motor nucleus.</a> Journal of Neuroimmunology. 181, 93-99 (2006).</li><li>Isokawa-Akesson, M., Komisaruk, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Difference+in+projections+to+the+lateral+and+medial+facial+nucleus:+anatomically+separate+pathways+for+rhythmical+vibrissa+movement+in+rats.">Difference in projections to the lateral and medial facial nucleus: anatomically separate pathways for rhythmical vibrissa movement in rats.</a> Exp Brain Res. 65, 385-398 (1987).</li><li>Streit, W., Kreutzberg, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Response+of+endogenous+glial+cells+to+motor+neuron+degeneration+induced+by+toxic+ricin.">Response of endogenous glial cells to motor neuron degeneration induced by toxic ricin.</a> The Journal of Comparative Neurology. 268, 248-263 (1988).</li><li>Serpe, C. J., Tetzlaff, J. E., Coers, S., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+recovery+after+facial+nerve+crush+is+delayed+in+severe+combined+immunodeficient+mice.">Functional recovery after facial nerve crush is delayed in severe combined immunodeficient mice.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 16, 808-812 (2002).</li><li>Lal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+facilitates+rat+facial+nerve+recovery+from+a+crush+injury.+Otolaryngology--Head+And+Neck+Surgery.">Electrical stimulation facilitates rat facial nerve recovery from a crush injury. Otolaryngology--Head And Neck Surgery.</a> Official Journal Of American Academy Of Otolaryngology-Head And Neck Surgery. 139, 68-73 (2008).</li><li>Tomov, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Example+of+Neural+Plasticity+Evoked+by+Putative+Behavioral+Demand+and+Early+Use+of+Vibrissal+Hairs+after+Facial+Nerve+Transection.">An Example of Neural Plasticity Evoked by Putative Behavioral Demand and Early Use of Vibrissal Hairs after Facial Nerve Transection.</a> Experimental Neurology. 178, 207-218 (2002).</li><li>Skouras, E., Angelov, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+studies+on+post-transectional+facial+nerve+regrowth+and+functional+recovery+of+paralyzed+muscles+of+the+face+in+rats+and+mice.">Experimental studies on post-transectional facial nerve regrowth and functional recovery of paralyzed muscles of the face in rats and mice.</a> Anatomy (International Journal of Experimental and Clinical Anatomy). 4, 1-27 (2010).</li><li>Xin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IL-10+within+the+CNS+is+necessary+for+CD4++T+cells+to+mediate+neuroprotection).">IL-10 within the CNS is necessary for CD4+ T cells to mediate neuroprotection).</a> Brain, Behavior, And Immunity. 25, 820-829 (2011).</li><li>Mesnard, N. A., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+gene+expression+in+the+axotomized+facial+motor+nucleus+of+presymptomatic+SOD1+mice.">Differential gene expression in the axotomized facial motor nucleus of presymptomatic SOD1 mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. 519, 3488-3506 (2011).</li><li>Mesnard, N. A., Alexander, T. D., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+laser+microdissection+in+the+investigation+of+facial+motoneuron+and+neuropil+molecular+phenotypes+after+peripheral+axotomy.">Use of laser microdissection in the investigation of facial motoneuron and neuropil molecular phenotypes after peripheral axotomy.</a> Experimental Neurology. 225, 94-103 (2010).</li><li>Franchi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+motor+representation+related+to+facial+nerve+damage+and+regeneration+in+adult+rats.">Changes in motor representation related to facial nerve damage and regeneration in adult rats.</a> Experimental Brain Research. 135, 53-65 (2000).</li><li>Munera, A., Cuestas, D. M., Troncoso, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+facial+nerve+lesions+induce+changes+in+the+firing+properties+of+primary+motor+cortex+layer+5+pyramidal+cells.">Peripheral facial nerve lesions induce changes in the firing properties of primary motor cortex layer 5 pyramidal cells.</a> Neuroscience. 223, 140-151 (2012).</li><li>Liu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hereditary+absence+of+complement+C5+in+adult+mice+influences+Wallerian+degeneration,+but+not+retrograde+responses,+following+injury+to+peripheral+nerve.">Hereditary absence of complement C5 in adult mice influences Wallerian degeneration, but not retrograde responses, following injury to peripheral nerve.</a> Journal of the Peripheral Nervous System. 4, 123-133 (1999).</li><li>Ferri, C., Moore, F., Bisby, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+facial+nerve+injury+on+mouse+motoneurons+lacking+the+p75+low-affinity+neurotrophin+receptor.">Effects of facial nerve injury on mouse motoneurons lacking the p75 low-affinity neurotrophin receptor.</a> Journal of Neurobiology. 34, 1-9 (1997).</li><li>Zhou, R. Y., Xu, J., Chi, F. L., Chen, L. H., Li, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+sensitivity+to+rocuronium+among+orbicularis+oris+muscles+innervated+by+normal+or+damaged+facial+nerves+and+gastrocnemius+muscle+innervated+by+somatic+nerve+in+rats:+combined+morphological+and+functional+analyses.">Differences in sensitivity to rocuronium among orbicularis oris muscles innervated by normal or damaged facial nerves and gastrocnemius muscle innervated by somatic nerve in rats: combined morphological and functional analyses.</a> The Laryngoscope. 122, 1831-1837 (2012).</li><li>Jinno, S., Yamada, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+comparative+anatomy+in+the+axotomy+model+to+identify+distinct+roles+for+microglia+and+astrocytes+in+synaptic+stripping.">Using comparative anatomy in the axotomy model to identify distinct roles for microglia and astrocytes in synaptic stripping.</a> Neuron Glia Biology. 7, 55-66 (2011).</li><li>Jones, K. J., Serpe, C. J., Byram, S. C., Deboy, C. A., Sanders, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+the+immune+system+in+the+maintenance+of+mouse+facial+motoneuron+viability+after+nerve+injury.">Role of the immune system in the maintenance of mouse facial motoneuron viability after nerve injury.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 19, 12-19 (2005).</li><li>Moran, L. B., Graeber, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+facial+nerve+axotomy+model.">The facial nerve axotomy model.</a> Brain research. Brain research. 44, 154-178 (2004).</li><li>Council, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals: Eighth Edition. , (2011).</li><li>Serpe, C. J., Kohm, A. P., Huppenbauer, C. B., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exacerbation+of+Facial+Motoneuron+Loss+after+facial+nerve+transection+in+severe+combined+immunodeficient+(scid)+mice.">Exacerbation of Facial Motoneuron Loss after facial nerve transection in severe combined immunodeficient (scid) mice.</a> Neuroscience. 19, (1999).</li><li>Mesnard-Hoaglin, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SOD1(G93A)+transgenic+mouse+CD4(+)+T+cells+mediate+neuroprotection+after+facial+nerve+axotomy+when+removed+from+a+suppressive+peripheral+microenvironment.">SOD1(G93A) transgenic mouse CD4(+) T cells mediate neuroprotection after facial nerve axotomy when removed from a suppressive peripheral microenvironment.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 40, 55-60 (2014).</li><li>Wang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+and+assessment+of+the+perinatal+mouse+facial+nerve+axotomy+model+via+a+subauricular+incision+approach.">Establishment and assessment of the perinatal mouse facial nerve axotomy model via a subauricular incision approach.</a> Experimental Biology And Medicine. 237, 1249-1255 (2012).</li><li>Sharma, N., Moeller, C. W., Marzo, S. J., Jones, K. J., Foecking, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combinatorial+treatments+enhance+recovery+following+facial+nerve+crush.">Combinatorial treatments enhance recovery following facial nerve crush.</a> The Laryngoscope. 120, 1523-1530 (2010).</li><li>Lieberman, D. M., Jan, T. A., Ahmad, S. O., Most, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+corticosteroids+on+functional+recovery+and+neuron+survival+after+facial+nerve+injury+in+mice.">Effects of corticosteroids on functional recovery and neuron survival after facial nerve injury in mice.</a> Archives of Facial Plastic Surgery. 13, 117-124 (2011).</li><li>Serpe, C. J., Coers, S., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4++T,+but+not+CD8++or+B,+lymphocytes+mediate+facial+motoneuron+survival+after+facial+nerve+transection.">CD4+ T, but not CD8+ or B, lymphocytes mediate facial motoneuron survival after facial nerve transection.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 17, 393-402 (2003).</li><li>Haulcomb, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axotomy-induced+target+disconnection+promotes+an+additional+death+mechanism+involved+in+motoneuron+degeneration+in+ALS+transgenic+mice.">Axotomy-induced target disconnection promotes an additional death mechanism involved in motoneuron degeneration in ALS transgenic mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. , (2014).</li><li>Bauder, A. R., Ferguson, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducible+mouse+sciatic+nerve+crush+and+subsequent+assessment+of+regeneration+by+whole+mount+muscle+analysis.">Reproducible mouse sciatic nerve crush and subsequent assessment of regeneration by whole mount muscle analysis.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (60), (2012).</li><li>Richner, M., Bjerrum, O. J., Nykjaer, A., Vaegter, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+spared+nerve+injury+(SNI)+model+of+induced+mechanical+allodynia+in+mice.">The spared nerve injury (SNI) model of induced mechanical allodynia in mice.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (54), (2011).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

The critical step for this protocol is positioning the mouse properly before surgery is begun. If the mouse is not lying flat on its side, the ear is not taped at the correct angle, or the incision is made in an incorrect location, then finding the facial nerve becomes much more difficult. When this technique is mastered, surgeries will take only minutes per mouse. 
Either sutures, glue, or wound clips can be used to close the wound. Wound clips are preferred because of the small size of incis...

מודלים פגיעה עצבית היקפיים רבים קיימים, אבל אחד שבולט לחקר motoneurons הוא מודל axotomy עצב הפנים. עצב הפנים, הידוע גם בעצב גולגולת VII, מקורו בגשר המוח ומעצבב את שרירי הבעה בפנים 1,2. בפרוטוקול זה כירורגית, עצב הפנים חשוף ביציאתו מנקב stylomastoid וגם לחתוך או כתוש. חומרת פגיעה עצבית יכולה להיות מסווגת הבאה סנדרלנד 3 סיווגים, המבדיל את הפגיעה המבוססת על שלמותו של אקסונים, endoneurium, perineurium, וepineurium, שהם שכבות רקמת חיבור שרצף לעטוף את חבילות האקסון. בפציעה למחוץ (axonotmesis), אקסונים, נותקו, אבל perineurium וepineurium נשמרים. התאוששות תפקודית מלאה מלמעוך עצב פנים מתרחשת בכ -11 ימים בגלל נדן העצב שלם משמש כצינור שבתוכו האקסונים לגדל מחדש 4,5. בהיד השנייה, בפציעת החתך (neurotmesis), אקסונים וכל 3 שכבות רקמת החיבור נותקו, והעצב הדיסטלי כולו צריך לגדל מחדש כדי לשחזר עצבוב שרירים. חיבור מחדש של כירורגי epineurium מבוצע לעתים קרובות בחולים אנושיים עם פציעות חיתוך רוחב עצב, אולם תוצאות ההתאוששות הן לעתים רחוקות אופטימליות. נדרש מחקר נוסף על מנת להבין למה העצב לא מצליח להצמיח מחדש ליעד שלו ויכולים להיות מועסק מה טיפולים כדי לשפר ולהאיץ את תהליך ההתחדשות. ישנם יתרונות רבים ללימוד פגיעה עצבית באמצעות מודל axotomy עצב הפנים. ראשית, הליך axotomy עצב הפנים הוא מהיר, קל, ומאוד לשחזור; והשיתוק כתוצאה של שרירי הפנים אינו משפיע פונקציות חיוניות ונסבל היטב על ידי בעלי החיים. כיוון שמדובר במודל פגיעה בעצב גולגולת, לומד את גופי תא motoneuron הוא פשוטים כי motoneurons מתגורר באוכלוסייה הומוגנית יחסית בהגרעין מוטורי פנים דואר בפונס. האוכלוסייה אינה שונה המבוססת על תבנית subnuclear בתוך הגרעין המוטורי הפנים, כפי שיש שבע subnuclei כל ספציפי לinnervating קבוצה ספציפית של שרירים, ולכן הבדלי subnuclear בתגובה לaxotomy עשויים להשפיע על תוצאות 2,6,7. יתרון עיקרי של מודל פגיעה בעצב פנים הוא שצד unaxotomized יכול לשמש כבקרה פנימית לזווג כי עצבוב העצב הוא סימטרי מאוד ואין crosstalk בין הגרעינים המוטוריים הפנים 8. יתרון נוסף של שימוש בשיטה ניתוחית זו הוא חוסר טראומה ישירה למערכת העצבים המרכזית או השיבוש של מחסום דם מוח 9. סיבוכים כגון דימום וזיהום מוגזמים הם נדירים בהליך זה. מגוון רחב של ניתוחים ניתן לבצע כדי להעריך את התגובה הפיזיולוגית לפגיעה בעצב. ההתאוששות של רפלקס מצמוץ עין ופעילות זיף יכולה לשמש כהתנהגותמדד של 10,11 החלמה התפקודי. הקלטת וידאו של פעילות vibrissae היא כיום השיטה החזקה ביותר לאיתור התאוששות של עצבוב עצב הפנים 12,13. לאחר המתת חסד, ניתוח היסטולוגית של גזע המוח יכול להתבצע על גופי תא motoneuron בתוך הגרעין המוטורי הפנים. הגרעין מוטורי הפנים מחולק לשבע subnuclei, כל ספציפי לשרירי פנים מסוימים, המאפשר לבדיקת ההפרש של תגובות לפציעה 2,6. ניתן לספור motoneurons פנים לכמת הישרדות תא, או אימונוהיסטוכימיה יכולה לשמש לזיהוי סמנים ביולוגיים ואוכלוסיות תאים ספציפיות 14. הגרעין מוטורי הפנים יכול להיות microdissected במדויק באמצעות לכידת לייזר לניתוח מולקולרי של התגובה התאית לפגיעה בעצב 15,16. השפעות של axotomy עצב הפנים ניתן לנתח בקליפת המוח המוטורי 17,18. כמו כן, העצב יכול להיות גזור ללמוד ניוון Wallerian 19 אוהתחדשות האקסון 20, ואת השרירים ניתן להסיר ללמוד צמתים עצביים-שרירית 21. גם axotomy עצב הפנים יכול לשמש כדי לחקור את תאי גליה מרכזיים והיקפיים הנלווים 22, למקד את המערכת החיסונית תגובת 23 שרירים 21, ו. למרות שדברים רבים הושג בלימוד מודל axotomy עצב פנים 24, נדרש מחקר נוסף של פגיעה עצבית היקפית כי נזק עצבי היא בעיה משמעותית עבור חולים וטיפולים שוטפים לא מצליחים לייצר תוצאות אופטימליות. מודל זה הוא כלי רב עוצמה לבחינת התגובה הפיזיולוגית לפגיעה בעצב וניתוח היעילות של טיפולי התחדשות עצבים.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="980">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:167px;">Company</td>
			<td style="width:176px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:256px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Stereo Microscope</td>
			<td style="width:167px;">Leica</td>
			<td style="width:176px;">M60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Labeling tape</td>
			<td style="width:167px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:176px;">15-952</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:381px;">Vannas-T&#252;bingen Spring Scissors - Straight/Sharp/8.5cm/5mm cutting edge</td>
			<td style="width:167px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:176px;">15003-08</td>
			<td>Sterilize before use</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:381px;">Dumont #5/45 Forceps - Standard tips/Angled 45&#176;/Dumoxel/11cm</td>
			<td style="width:167px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:176px;">11251-35</td>
			<td>Sterilize before use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Michel Suture Clips - 7.5mm x 1.75 mm</td>
			<td style="width:167px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:176px;">12040-01</td>
			<td>Described as &#34;wound clip&#34; in protocol, sterilize before use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Hagenbarth Cross Action Wound Clip Applier 5&#34;</td>
			<td style="width:167px;">George Tiemann &#38; Co</td>
			<td style="width:176px;">160-910</td>
			<td>Used to apply wound clip, sterilize before use</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:381px;">Michel Suture Clip Applicator &#38; Remover - For 7.5 mm Clips</td>
			<td style="width:167px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:176px;">12029-12</td>
			<td>Used to remove wound clip</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">0.9% Sodium Chloride Injection, USP</td>
			<td style="width:167px;">Hospira</td>
			<td style="width:176px;">0409-4888-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Betadine, 16 oz, with dispenser</td>
			<td style="width:167px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:176px;">19-027132</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">70% Ethanol</td>
			<td style="width:167px;"></td>
			<td style="width:176px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:381px;">Glass Bead Sterilizer</td>
			<td style="width:167px;"></td>
			<td style="width:176px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

facial nerve axotomy in mice: a model to study motoneuron response to injury

המטרה של פרוטוקול כירורגית זו היא לחשוף את עצב הפנים, שמעצבב את שרירי פנים, ביציאתו מנקב stylomastoid וגם לחתוך או לרסק אותו כדי לגרום לפגיעה עצבית היקפית. יתרונותיו של ניתוח זה הם הפשטות שלו, שחזור גבוה, וחוסר ההשפעה על תפקודים חיוניים או ניידות משיתוק הפנים שלאחר מכן, ובכך וכתוצאה מכך תוצאות ניתוחיות קלות יחסית בהשוואה לדגמי פגיעה עצבית אחרים. יתרון עיקרי של שימוש במודל פגיעה בעצב גולגולת הוא שmotoneurons מתגורר באוכלוסייה הומוגנית יחסית בגרעין המוטורי הפנים בפונס, לפשט את המחקר של גופי תא motoneuron. בגלל האופי סימטרי של עצבוב עצב פנים וחוסר crosstalk בין הגרעינים מוטורי פנים, הפעולה יכולה להתבצע באופן חד צדדי עם צד unaxotomized משמש כבקרה פנימית לזווג. מגוון רחב של ניתוחים ניתן לבצע לאחר הניתוח לישבניםזה התגובה הפיזיולוגית, אשר פרטיו הן מעבר להיקף של מאמר זה. לדוגמא, התאוששות של תפקוד שרירים יכולה לשמש כסמן להתנהגות reinnervation, או ניתן לכמת motoneurons למדוד הישרדות תא. בנוסף, motoneurons ניתן ללכוד במדויק באמצעות microdissection לייזר לניתוח מולקולרי. בגלל axotomy עצב הפנים הוא פולשנית ונסבלת היטב, זה יכול להיות מנוצל על מגוון רחב של עכברים מהונדסים גנטי. כמו כן, מודל ניתוח זה יכול לשמש כדי לנתח את האפקטיביות של טיפולי פגיעה עצבית היקפיים. פגיעה בעצב פנים מספקת אמצעי לחקירה לא רק motoneurons, אלא גם את תגובותיהם של מייקרו-הסביבה המרכזית וההיקפי גליה, המערכת חיסונית, ושרירי יעד. מודל פגיעה בעצב פנים הוא מודל פגיעה עצבי היקפי מקובל שמשמש ככלי רב עוצמה ללימוד פגיעה עצבית והתחדשות.

לאחר axotomy עצב הפנים מתבצע, אובדן motoneuron מתרחש כתוצאה מהפגיעה. הישרדות Motoneuron לאחר פציעה תלויה במשתנים רבים, כגון מין, גיל בעלי חיים בזמן הניתוח, ונקודה זמן שבה סעיפי motoneuron נעשים, ומורן וסקירת Graeber 24 וJinno וסקירת Yamada 22 שני לסכם נתונים הישרדות motoneuron. בדרך כלל, כ -86%...

Watch this Scientific Journal Video about Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury at JoVE.com

Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques.

Axotomy פנים עצב של עכברים: דגם לחקר תגובת Motoneuron לפגיעה

The goal of this surgical protocol is to expose the facial nerve, which innervates the facial musculature, at its exit from the stylomastoid foramen and ...

facial-nerve-axotomy-mice-model-to-study-motoneuron-response-to

Research

JoVE Journal

Medicine

12.8K Views.  Indiana University School of Medicine. We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques. 

Video: Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged mechanical ventilation, contributes to morbidity and mortality of critical illness, and studies on novel genetic or pharmacological targets are areas of intense investigation (1-3, 5, 8, 26, 30, 33-36). ALI is defined by the acute onset of the disease, which leads to non-cardiac pulmonary edema and subsequent impairment of pulmonary gas exchange (36). We have developed a murine model of ALI by using a pressure-controlled ventilation to induce ventilator-induced lung injury (2). For this purpose, C57BL/6 mice are anesthetized and a tracheotomy is performed followed by induction of ALI via mechanical ventilation. Mice are ventilated in a pressure-controlled setting with an inspiratory peak pressure of 45 mbar over 1 - 3 hours. As outcome parameters, pulmonary edema (wet-to-dry ratio), bronchoalveolar fluid albumin content, bronchoalveolar fluid and pulmonary tissue myeloperoxidase content and pulmonary gas exchange are assessed (2). Using this technique we could show that it sufficiently induces acute lung inflammation and can distinguish between different treatment groups or genotypes (1-3, 5). Therefore this technique may be helpful for researchers who pursue molecular mechanisms involved in ALI using a genetic approach in mice with gene-targeted deletion.

A murine model for ventilator induced lung injury is an important tool to study an acute lung injury in vivo. Here, we report an easy applicable in situ model for acute lung injury using high-pressure mechanical ventilation to induce acute failure of the lung.

לחץ אוורור מבוקר כדי לגרום פגיעה ריאות חריפה על עכברים

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

The Spared Nerve Injury (SNI) Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

Peripheral neuropathic pain is a severe chronic pain condition which may result from trauma to sensory nerves in the peripheral nervous system. The spared nerve injury (SNI) model induces symptoms of neuropathic pain such as mechanical allodynia i.e. pain due to tactile stimuli that do not normally provoke a painful response [1]. 
The SNI mouse model involves ligation of two of the three branches of the sciatic nerve (the tibial nerve and the common peroneal nerve), while the sural nerve is left intact [2]. The lesion results in marked hypersensitivity in the lateral area of the paw, which is innervated by the spared sural nerve. The non-operated side of the mouse can be used as a control. The advantages of the SNI model are the robustness of the response and that it doesn&#x2019;t require expert microsurgical skills.
The threshold for mechanical pain response is determined by testing with von Frey filaments of increasing bending force, which are repetitively pressed against the lateral area of the paw [3], [4]. A positive pain reaction is defined as sudden paw withdrawal, flinching and/or paw licking induced by the filament. A positive response in three out of five repetitive stimuli is defined as the pain threshold. 
As demonstrated in the video protocol, C57BL/6 mice experience profound allodynia as early as the day following surgery and maintain this for several weeks.

The Spared Nerve Injury SNI Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

The Spared Nerve Injury animal model is described here as a mouse model of peripheral neuropathic pain following partial denervation of the sciatic nerve by lesioning the tibial and common peroneal nerve branches, leaving the remaining sural nerve intact. Behavioral modification resulting from mechanical allodynia is quantified by von Frey filaments.

פגיעה ניצלו עצב (SNI) דגם Allodynia מכונות המושרה עכברים

Peripheral neuropathic pain is a severe chronic pain condition which may result from trauma to sensory nerves in the peripheral nervous system. The spared ...

The Measurement and Treatment of Suppression in Amblyopia

Amblyopia, a developmental disorder of the visual cortex, is one of the leading causes of visual dysfunction in the working age population. Current estimates put the prevalence of amblyopia at approximately 1-3%1-3, the majority of cases being monocular2. Amblyopia is most frequently caused by ocular misalignment (strabismus), blur induced by unequal refractive error (anisometropia), and in some cases by form deprivation.
Although amblyopia is initially caused by abnormal visual input in infancy, once established, the visual deficit often remains when normal visual input has been restored using surgery and/or refractive correction. This is because amblyopia is the result of abnormal visual cortex development rather than a problem with the amblyopic eye itself4,5 . Amblyopia is characterized by both monocular and binocular deficits6,7 which include impaired visual acuity and poor or absent stereopsis respectively. The visual dysfunction in amblyopia is often associated with a strong suppression of the inputs from the amblyopic eye under binocular viewing conditions8. Recent work has indicated that suppression may play a central role in both the monocular and binocular deficits associated with amblyopia9,10 .
Current clinical tests for suppression tend to verify the presence or absence of suppression rather than giving a quantitative measurement of the degree of suppression. Here we describe a technique for measuring amblyopic suppression with a compact, portable device11,12 . The device consists of a laptop computer connected to a pair of virtual reality goggles. The novelty of the technique lies in the way we present visual stimuli to measure suppression. Stimuli are shown to the amblyopic eye at high contrast while the contrast of the stimuli shown to the non-amblyopic eye are varied. Patients perform a simple signal/noise task that allows for a precise measurement of the strength of excitatory binocular interactions. The contrast offset at which neither eye has a performance advantage is a measure of the "balance point" and is a direct measure of suppression. This technique has been validated psychophysically both in control13,14 and patient6,9,11 populations.
In addition to measuring suppression this technique also forms the basis of a novel form of treatment to decrease suppression over time and improve binocular and often monocular function in adult patients with amblyopia12,15,16 . This new treatment approach can be deployed either on the goggle system described above or on a specially modified iPod touch device15.

Amblyopia is a developmental disorder of the visual cortex that is often accompanied by strong suppression of one eye. We present a new technique for measuring and treating interocular suppression in patients with amblyopia that can be deployed using virtual reality goggles or a portable iPod Touch device.

המדידה והטיפול בדיכוי בעין עצלה

Amblyopia, a developmental disorder of the visual cortex, is one of the leading causes of visual dysfunction in the working age population. Current ...

Tibial Nerve Transection - A Standardized Model for Denervation-induced Skeletal Muscle Atrophy in Mice

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of denervation-induced skeletal muscle atrophy in rodents. Although originally developed and used extensively in the rat due to its larger size, the tibial nerve in mice is big enough that it can be easily manipulated with either crush or transection, leaving the peroneal and sural nerve branches of the sciatic nerve intact and thereby preserving their target muscles. Thus, this model offers the advantages of inducing less morbidity and impediment of ambulation than the sciatic nerve transection model and also allows investigators to study the physiologic, cellular and molecular biologic mechanisms regulating the process of muscle atrophy in genetically engineered mice. The tibial nerve supplies the gastrocnemius, soleus and plantaris muscles, so its transection permits the study of denervated skeletal muscle composed of fast twitch type II fibers and/or slow twitch type I fibers. Here we demonstrate the tibial nerve transection model in the C57Black6 mouse. We assess the atrophy of the gastrocnemius muscle, as a representative muscle, at 1, 2, and 4 weeks post-denervation by measuring muscle weights and fiber type specific cross-sectional area on paraffin-embedded histologic sections immunostained for fast twitch myosin.

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of skeletal muscle atrophy. The model surgical protocol is described and demonstrated in C57Black6 mice. &#160;

חיתוך רוחב עצב הטיביאלי - מודל סטנדרטי לניוון שרירים שלד מושרה denervation בעכברים

The tibial nerve transection model is a well-tolerated, validated, and reproducible model of denervation-induced skeletal muscle atrophy in rodents. ...

A Murine Model of Cervical Spinal Cord Injury to Study Post-lesional Respiratory Neuroplasticity

A cervical spinal cord injury induces permanent paralysis, and often leads to respiratory distress. To date, no efficient therapeutics have been developed to improve/ameliorate the respiratory failure following high cervical spinal cord injury (SCI). Here we propose a murine pre-clinical model of high SCI at the cervical 2 (C2) metameric level to study diverse post-lesional respiratory neuroplasticity. The technique consists of a surgical partial injury at the C2 level, which will induce a hemiparalysis of the diaphragm due to a deafferentation of the phrenic motoneurons from the respiratory centers located in the brainstem. The contralateral side of the injury remains intact and allows the animal recovery. Unlike other SCIs which affect the locomotor function (at the thoracic and lumbar level), the respiratory function does not require animal motivation and the quantification of the deficit/recovery can be easily performed (diaphragm and phrenic nerve recordings, whole body ventilation). This pre-clinical C2 SCI model is a powerful, useful, and reliable pre-clinical model to study various respiratory and non-respiratory neuroplasticity events at different levels (molecular to physiology) and to test diverse putative therapeutic strategies which might improve the respiration in SCI patients.

Respiratory failure is the leading cause of death following a cervical spinal cord injury. Having a reproducible, quantifiable, and reliable pre-clinical animal model of respiratory failure induced by a partial cervical injury will help to understand the subsequent respiratory and non-respiratory neuroplasticity and allow testing putative repair strategies.

מודל Murine של חוט השדרה הצווארי פגיעה לחקר פוסט lesional הנשימה Neuroplasticity

A cervical spinal cord injury induces permanent paralysis, and often leads to respiratory distress. To date, no efficient therapeutics have been developed ...

Chronic Constriction Injury of the Rat's Infraorbital Nerve (IoN-CCI) to Study Trigeminal Neuropathic Pain

Animal models are important tools to study the pathophysiology and pharmacology of neuropathic pain. This manuscript describes the surgical and behavioral procedures to study trigeminal neuropathic pain in rats. To meet the specificity of trigeminal neuropathic pain syndromes, the infraorbital nerve (IoN) is subjected to a chronic constriction injury (CCI) by loosely ligating the nerve. An intra-orbital approach is presented here to expose and ligate the IoN in the orbital cavity. After IoN ligation, rats exhibit changes in spontaneous behavior and in response to von Frey hair stimulation that are indicative of persistent pain and mechanical allodynia. Two phases can be defined in the development of the behavioral changes. During the first week following IoN-CCI (phase 1), rats show an increased and asymmetric face grooming activity, i.e., with face wash strokes primarily directed to the nerve-injured IoN territory. A distinction is made between face grooming behavior that is part of a more general body grooming behavior, which remains largely unaffected by IoN-CCI, and face grooming that is neither preceded nor followed by body grooming, which is significantly increased after IoN-CCI. During this period, responsiveness to mechanical stimulation of the IoN territory is reduced. This hyporesponsiveness is abruptly replaced by an extreme hyperresponsiveness whereby even very weak stimulus intensities provoke nocifensive behavior (phase 2). The phenomenological similarities between these behavioral alterations and reported signs of facial pain (i.e., responses to noxious stimulation of the face) suggest the presence of dysesthesia/paresthesia and mechanical allodynia in the ligated IoN territory.

Chronic Constriction Injury of the Rat's Infraorbital Nerve IoN-CCI to Study Trigeminal Neuropathic Pain

This manuscript describes a rodent model to study trigeminal neuropathic pain. The methods described include surgical procedures to perform a chronic constriction injury of the rat&#8217;s infraorbital nerve and the post-surgical behavioral tests to measure the changes in spontaneous and evoked behavior that are indicative of persistent pain and allodynia.

התכווצות פציעה כרונית של עצב Infraorbital של העכברוש (יון-CCI) לחקר trigeminal נוירופתי כאב

Animal models are important tools to study the pathophysiology and pharmacology of neuropathic pain. This manuscript describes the surgical and behavioral ...

A Repetitive Concussive Head Injury Model in Mice

Despite the concussion/ mild traumatic brain injury (mTBI) being the most frequent occurrence of traumatic brain injury, there is still a lack of knowledge on the injury and its effects. To develop a better understanding of concussions, animals are often used because they provide a controlled, rigorous, and efficient model. Studies have adapted traditional animal models to perform mTBI to stimulate mild injury severity by changing the injury parameters. These models have been used because they can produce morphologically similar brain injuries to the clinical condition and provide a spectrum of injury severities. However, they are limited in their ability to present the identical features of injuries in patients. Using a traditional impact system, a repetitive concussive injury (rCHI) model can induce mild to moderate human-like concussion. The injury degree can be determined by measuring the period of loss of consciousness (LOC) with a sign of a transient termination of breathing. The rCHI model is beneficial to use for its accuracy and simplicity in determining mTBI effects and potential treatments.

Concussion presents the most common type of traumatic brain injury. Therefore, a repetitive concussive animal model, which replicates the important features of an injury in patients, may provide a means to study concussion in a rigorous, controlled, and efficient manner.

מודל פגיע ראש החוזרים מזעזע של עכברים

Despite the concussion/ mild traumatic brain injury (mTBI) being the most frequent occurrence of traumatic brain injury, there is still a lack of ...

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The "Wire-Injury" Model

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. Moreover, by rupture of the defective vascular wall, atherosclerosis induces occlusive thrombus formation, which represents the main cause of myocardial infarction or stroke and the most frequent cause of death. Despite the advances in the cardiovascular field, many questions remain unanswered, and additional basic research is essential to improve our understanding of the molecular mechanisms during atherosclerosis and its effects. Due to limited clinical studies, there is a need for representative animal models recreating atherosclerotic conditions such as neointima formation after stent implantation, balloon angioplasty, or endarterectomy. Since the mouse presents many advantages and is the most frequently used model for studying molecular processes, the current study proposes an invasive procedure of endothelial denudation, also known as the wire-injury model, which is representative of the human condition of neointima formation in arteries after revascularization procedures.

This study describes an invasive procedure for the induction of accelerated atherosclerosis in mice. In comparison to other methods using electric- or cryo-induced injury, mechanical-induced injury mimics the human condition of restenosis after revascularization therapies and is ideal for the study of the molecular mechanisms involved.

אינדוקציה של טרשת עורקים מואצת בעכברים: מודל "פגיעת חוט"

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. ...

A Tissue Displacement-based Contusive Spinal Cord Injury Model in Mice

Producing a consistent and reproducible contusive spinal cord injury (SCI) is critical to minimizing behavioral and histological variabilities between experimental animals. Several contusive SCI models have been developed to produce injuries using different mechanisms. The severity of the SCI is based on the height that a given weight is dropped, the injury force, or the spinal cord displacement. In the current study, we introduce a novel mouse contusive SCI device, the Louisville Injury System Apparatus (LISA) impactor, which can create a displacement-based SCI with high injury velocity and accuracy. This system utilizes laser distance sensors combined with advanced software to produce graded and highly-reproducible injuries. We performed a contusive SCI at the 10th thoracic vertebral (T10) level in mice to demonstrate the step-by-step procedure. The model can also be applied to the cervical and lumbar spinal levels.

We introduce a tissue displacement-based contusive spinal cord injury model that can produce a consistent contusive spinal cord injury in adult mice.

תולעת רקמות מבוססי חוט השדרה פגיעה בעמוד השדרה דגם עכברים

Producing a consistent and reproducible contusive spinal cord injury (SCI) is critical to minimizing behavioral and histological variabilities between ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and drugs. It is widely used in many studies on the physiological functions of vascular smooth muscle, the pathogenesis of vascular diseases such as hypertension, and the development of smooth muscle relaxant drugs. The mouse is a widely used model animal with a large pool of disease models and genetically modified strains. We introduced this method to measure the isometric contraction of mouse mesenteric artery in detail. A 1.4-mm segment of mouse mesenteric resistance artery was isolated and mounted on a myograph chamber by passing two steel wires through its lumen. After equilibration and normalization steps, the vessel segment was potentiated by a high-K+ solution twice prior to the contraction assay. As an example of the application of this method in drug development, we measured the relaxant effect of a novel natural substance, neoliensinine, isolated from a Chinese herb, embryos of the lotus seed (Nelumbo nucifera Gaertn.) on mouse mesenteric arteries. The vessel segments mounted on the myograph chamber were stimulated with a high-K+ solution. When the force tension reached a stable sustained phase, cumulative doses of neoliensinine were added to the chamber. We found that neoliensinine had a dose-dependent relaxant effect on smooth muscle contraction, thus suggesting that it bears potential activity against hypertension. In addition, as the vessel segment can survive at least 4 hours after mounting and maintain contractility induced by the high-K+ solution for many times, we suggest that the wire myograph system may be used for the time-consuming process of drug screening.

The wire myograph technique is used to investigate vascular smooth muscle functions and screen new drugs. We report a detailed protocol for measuring the isometric contractility of the mouse mesenteric artery and for screening new relaxants of vascular smooth muscle.

Contractility איזומטרי מדידה של עורק מצע המעי העליון העכבר באמצעות חוט Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...