The authors' work was supported by a grant from Ministry of Science and Technology (MOST 103-2320-B-002-068-MY2), the National Health Research Institute (NHRI-EX104-10418SC), and National Taiwan University (NTU 104R4000).

כל הניסויים בבעלי חיים נערכו בהתאם מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה, שפורסם על ידי המכון הלאומי האמריקאי לבריאות (NIH פרסום לא. 85-23, מתוקנת 1996). פרוטוקול זה אושר על ידי ובהתאם להנחיות שנקבעו על ידי הטיפול בבעלי החיים המוסדי הוועדה השתמשתי ב- National טייוואן האוניברסיטה. 1. ניתוח בעלי חיים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן מחט מזרק 22 G על ידי להקהות את קצה המחט על אבן השחזה. באמצעות צבת, plicate המחט לזווית ישרה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני הניתוח, להכין את מכשירי ניתוח הנדרשים וחומרים, וכן בכלוב התאוששות. חיטוי כל המכשירים ואספקה ​​כירורגית לפני השימוש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשמור על החולדות סביב 200 גרמו ולשמור אותם תחת 12 שעות אור / מחזורים כהים בטמפרטורה מבוקרת (21 ± 2 ° C) עם גישה חופשית למזון ומים. לכלול לפחות 6 חולדות בכל קבוצה. להרדים את החולדות עם pentobarbital(75 מ&quot;ג / ק&quot;ג ב 0.5 מ&quot;ל, IP) או סוכן אחר הרדמה המתאים. אשר את עומק ההרדמה על ידי בדיקת רפלקס הזנב. הערה: היעדר רפלקס הזנב מהווה אינדיקטור הרדמה נאותה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח חולדה במצב שכיבה על פלטפורמת ניתוח עם כרית חימום כדי לשמור על טמפרטורת הגוף. לגלח את אזור הבטן של חולדה עם גוזז שיער בעלי חיים ותחליב מסיר שיער כדי למנוע זיהומים כירורגית. שפשפו את הבטן-מגולח למשעי בבטאדין או אחר מגיב טיהור לפני הניתוח. הערה: חשוב לשמור על שדה סטרילי לאורך כל ההליך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע חתך 2 ס&quot;מ לאורך קו האמצע של הבטן עם אזמל. באמצעות מלח רגיל, לשמור על איברי הבטן לחות במהלך הניתוח. לעקור את אברי העיכול בזהירות לצד באמצעות כדורי צמר גפן כדי לחשוף את הווריד הנבוב הנח שנמצא באזור הצפק האחורי. זהה את אבי העורקים בבטן, השוכנת בצמוד ובדרך כלל עלהשמאלי של הווריד הנבוב הנח. הערה: אבי העורקים בבטן הוא כלי כי פועם בזמן עם קצב הלב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פירס הצפק עם זוג מלקחיים כדי לחשוף את הכלי מתחת. בעדינות לבודד את אבי העורקים בבטן סמוך לעורקי הכליה ומעבירה 8 ס&quot;מ באורך 4-0 תפר משי מתחת אבי העורקים בבטן בין מקורותיה של הזכות ועורקים כליות עזב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפוך קשר כפול רופף עם התפר; לעזוב לולאה בקוטר 3 מ&quot;מ, ומניח את מחט 22 G הקהה והתכופפה בתוך הלולאה. הדקו את הקשר סביב האאורטה המחט, ולאחר מכן להוציא את המחט מיד כדי להשיג כיווץ בקוטר 0.7 מ&quot;מ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את חלל הבטן עם 6-0 חומר תפר נספג. לתפור את החתכים השרירים או עור עם תפרי קטע פשוט. כדי למנוע הידבקות, לשפשף את האתר כירורגית עם תמיסת יוד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שים החיה בזהירות עד שהוא חוזר להכרה מספקת, כפי שצוין על ידי תנועה חופשיתואת צריכת מזון. אל תשאירו חיה ללא השגחה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. כדי למנוע את הכאב שלאחר הניתוח, לטפל החולדה עם פרצטמול (300 מ&quot;ג / ק&quot;ג ב 0.5 מ&quot;ל, ip). הערה חשובה: משתמשים צריכים לנהל משככי כאבים כפי שאושרו על ידי מדיניות מוסדית. </li></ol> 2. אוסף דוגמאות רקמות ודם <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בשעה 10 שבועות לאחר הניתוח, לשקול את העכברוש להרדים אותו עם pentobarbital (75 מ&quot;ג / ק&quot;ג ב 0.5 מ&quot;ל, ip). לפני הניתוח, לאשר את עומק ההרדמה על ידי בדיקת רפלקס זנב. מניחים את החולדה על מגש מתכת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע חתך 2 ס&quot;מ לאורך קו האמצע של הצוואר באמצעות אזמל. לעקור את השרירים בזהירות עם מלקחיים כדי לחשוף את קנה הנשימה. שימו לב בזהירות לזהות את העורק הראשי, אשר במקביל קנה הנשימה לפעום בזמן עם קצב הלב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אסוף את הדם בעורק התרדמה לתוך צינור איסוף דם מצופה EDTA. צנטריפוגות מידהדם במשך 15 דקות XG ב 2000 ולאסוף הפלזמה. אחסן את הפלזמה בדם ב -80 ° C עד הצורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע חתך 5 ס&quot;מ באזור החזה, סביב קו האמצע של תהליך xyphoid. פירס את הסרעפת עם מלקחיים חדים. בעזרת זוג מספריים, לחתוך ולהסיר כלוב הצלעות לאורך קווי אמצע clavicular משני הצדדים כדי לחשוף את הלב. ובלו הלב בזהירות לאורך גבולות לב וכלי דם. הסר את הלב בעדינות מבלי תופס את הרקמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הר לב על מנגנון זלוף Langendorff שונה על ידי קשירת המטען אבי העורקים אל המחט זלוף. Perfuse הלב עם חיץ קרבס (המכיל 110 mM NaCl, KCl 2.6 מ&quot;מ, 1.2 מ&quot;מ KH 2 4 PO, 1.2 4 מ&quot;מ MgSO, 25 מ&quot;מ NaHCO 3, ו -11 גלוקוז מ&quot;מ [pH 7.4]) כדי לשטוף את הדם. לשקול את הלב ואת לחשב את יחס לב-משקל ל-משקל גוף. תקן את הלב עם paraformaldehyde 4% על הקרח. זכור ללבוש מסכה, מאז אדי paraformaldehyde הוא toxic. </li></ol> 3. רקמות פיברוזיס כימות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את רקמת הלב קבוע paraformaldehyde במכשיר חתך רקמות לחתוך 2 מ&quot;מ חלקים עבים. מניח את סעיפי רקמות קלטת הטבעה. מייבש את רקמת דרך סדרה של אמבטיות אלכוהול מדורגים (50%, 75%, 95%, ו -100% עבור שעה 1 כל אחד). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחדור את הרקמה עם קסילן במשך שעה 1 ולבסוף בשעווה במשך שעה 1. הנח את הרקמה הסתננה קלטת הטבעה ולהטביע עם שעוות פרפין. אחסן את הרקמות המוטבעות בבלוקי פרפין בטמפרטורת חדר עד microtoming. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פורס את הרקמה מוטבעת לתוך 4 חלקים עבים מיקרומטר. מניחים את הסעיפים באמבט מים 45 ºC. טובלים שקופיות זכוכית לאמבטיה מים בזווית ובהדרגה להתקרב קצוות בסעיף פרפין כדי לאפשר התקשרות חלקית לשקופית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר את השקף פנימה וחוצה של האמבטיה כדי להסיר כיסי אוויר פוטנציאל תחת סעיף הרקמות כדי להקל מצורף טוב יותר. t יבשהוא מחליק על 37 ºC עבור שעה 1 ולאחסן אותם בטמפרטורת החדר למשך מכתים היסטולוגית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שים את השקופית לתוך טנק. Deparaffinize השקופית עם קסילן במשך 30 דקות ולאחר רעננותם זה באלכוהול מדולל ברצף (95%, 75%, ו -50% עבור 3 דקות כל אחד) ולבסוף במים מזוקקים. השתמש פתרון picrosirius אדום מספיק לכיסוי סעיפי רקמות לחלוטין עבור שעה 1. יש לשטוף את שקופיות פתרון חומצה אצטית 0.5% עבור שני שינויים, ולאחר מכן לבצע שתי שטיפות באלכוהול מוחלט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> האוויר יבש שקופיות ואת הר שקופית שרף סינטטי עם coverslip. צלם את השקופית בשדה האור הנראה. הערה: האזור האדום בתצלום מראה אזור חיובי אדום picrosirius במיקרוסקופ בהגדלת 200X. חישוב האחוזים באזור החיובי האדום picrosirius מעל השטח הכולל, אשר מצביע על מידת סיסטיק 11. </li></ol> 4. דם Troponin כימות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכמת רמות טרופונין פלזמהבאמצעות assay immunosorbent enzyme-linked (ELISA). Assay כל דגימה בשני עותקים. טען 50 μl של פלזמת דם 50 μl של קוקטייל נוגדנים לתוך הבארות המתאימות. חותם את הצלחת דגירה במשך שעה 1 בטמפרטורת החדר על שייקר צלחת ב 400 סל&quot;ד. הערה: טרופונין לב בפלסמה מהווה סמן בגין נזקי לב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב את הנוזל ולשטוף היטב עם כל 250 μl של חיץ לשטוף שלוש פעמים. לאחר לשטוף האחרון, להפוך את הצלחת ואת הכתם זה נגד מגבות נייר נקיות כדי להסיר את הנוזל מוגזם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת 100 μl של המצע tetramethylbenzidine היטב כל דגירה במשך 10 דקות בחושך על שייקר צלחת ב 400 סל&quot;ד. הוספת 100 μl של פתרון להפסיק היטב כל אחד. לנער את הצלחת על שייקר צלחת דקות 1 לערבב. רשום את הצפיפות האופטית (OD) ב -450 nm. הערה: ריכוז טרופונין הוא מידתי לערך OD. </li></ol>

<ol>
	<li>Houser, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+heart+failure:+a+scientific+statement+from+the+American+Heart+Association.">Animal models of heart failure: a scientific statement from the American Heart Association.</a> Circ Res. 111, 131-150 (2012).</li><li>Towbin, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inherited+cardiomyopathies.">Inherited cardiomyopathies.</a> Circ J. 78, 2347-2356 (2014).</li><li>Breckenridge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+failure+and+mouse+models.">Heart failure and mouse models.</a> Dis Model Mech. 3, 138-143 (2010).</li><li>van Bilsen, M., van Nieuwenhoven, F. A., van der Vusse, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metabolic+remodelling+of+the+failing+heart:+beneficial+or+detrimental?.">Metabolic remodelling of the failing heart: beneficial or detrimental?.</a> Cardiovasc Res. 81, 420-428 (2009).</li><li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+animal+models+of+heart+failure:+development+of+novel+therapies,+past+and+present.">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).</li><li>Gu, W. L., Chen, C. X., Huang, X. Y., Gao, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+angoroside+C+on+pressure+overload-induced+ventricular+remodeling+in+rats.">The effect of angoroside C on pressure overload-induced ventricular remodeling in rats.</a> Phytomedicine. 22, 705-712 (2015).</li><li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alteration+of+cardiac+ACE2/Mas+expression+and+cardiac+remodelling+in+rats+with+aortic+constriction.">Alteration of cardiac ACE2/Mas expression and cardiac remodelling in rats with aortic constriction.</a> Chin J Physiol. 57, 335-342 (2014).</li><li>Tardif, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nestin+upregulation+characterizes+vascular+remodeling+secondary+to+hypertension+in+the+rat.">Nestin upregulation characterizes vascular remodeling secondary to hypertension in the rat.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 308, H1265-H1274 (2015).</li><li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myeloid+mineralocorticoid+receptor+deficiency+inhibits+aortic+constriction-induced+cardiac+hypertrophy+in+mice.">Myeloid mineralocorticoid receptor deficiency inhibits aortic constriction-induced cardiac hypertrophy in mice.</a> PLoS One. 9, e110950 (2014).</li><li>Ku, H. C., Su, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DPP4+deficiency+preserved+cardiac+function+in+abdominal+aortic+banding+rats.">DPP4 deficiency preserved cardiac function in abdominal aortic banding rats.</a> PLoS One. 9, e85634 (2014).</li><li>Lee, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Caffeic+acid+ethanolamide+prevents+cardiac+dysfunction+through+sirtuin+dependent+cardiac+bioenergetics+preservation.">Caffeic acid ethanolamide prevents cardiac dysfunction through sirtuin dependent cardiac bioenergetics preservation.</a> J Biomed Sci. 22, 80 (2015).</li><li>Gs, A. K., Raj, B., Santhosh, K. S., Sanjay, G., Kartha, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ascending+aortic+constriction+in+rats+for+creation+of+pressure+overload+cardiac+hypertrophy+model.">Ascending aortic constriction in rats for creation of pressure overload cardiac hypertrophy model.</a> J Vis Exp. , e50983 (2014).</li><li>deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transverse+aortic+constriction+in+mice.">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. , e1729 (2010).</li><li>Schaefer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+New+Animal+Model+for+Investigation+of+Mechanical+Unloading+in+Hypertrophic+and+Failing+Hearts:+Combination+of+Transverse+Aortic+Constriction+and+Heterotopic+Heart+Transplantation.">A New Animal Model for Investigation of Mechanical Unloading in Hypertrophic and Failing Hearts: Combination of Transverse Aortic Constriction and Heterotopic Heart Transplantation.</a> PLoS One. 11, e0148259 (2016).</li><li>Rodriguez-Iturbe, B., Quiroz, Y., Kim, C. H., Vaziri, N. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypertension+induced+by+aortic+coarctation+above+the+renal+arteries+is+associated+with+immune+cell+infiltration+of+the+kidneys.">Hypertension induced by aortic coarctation above the renal arteries is associated with immune cell infiltration of the kidneys.</a> Am J Hypertens. 18, 1449-1456 (2005).</li><li>Ku, H. C., Lee, S. Y., Yang, K. C., Kuo, Y. H., Su, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modification+of+Caffeic+Acid+with+Pyrrolidine+Enhances+Antioxidant+Ability+by+Activating+AKT/HO-1+Pathway+in+Heart.">Modification of Caffeic Acid with Pyrrolidine Enhances Antioxidant Ability by Activating AKT/HO-1 Pathway in Heart.</a> PLoS One. 11, e0148545 (2016).</li><li>Bovill, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravenous+anesthesia+for+the+patient+with+left+ventricular+dysfunction.">Intravenous anesthesia for the patient with left ventricular dysfunction.</a> Semin Cardiothorac Vasc Anesth. 10, 43-48 (2006).</li><li>Inoko, M., Kihara, Y., Morii, I., Fujiwara, H., Sasayama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transition+from+compensatory+hypertrophy+to+dilated,+failing+left+ventricles+in+Dahl+salt-sensitive+rats.">Transition from compensatory hypertrophy to dilated, failing left ventricles in Dahl salt-sensitive rats.</a> Am J Physiol. 267, H2471-H2482 (1994).</li><li>Heyen, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural,+functional,+and+molecular+characterization+of+the+SHHF+model+of+heart+failure.">Structural, functional, and molecular characterization of the SHHF model of heart failure.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 283, H1775-H1784 (2002).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Hypertensive heart disease, a major health problem that contributes greatly to morbidity and mortality, can lead to cardiac hypertrophy and heart failure5. The pathogenesis and progression of hypertensive heart disease in humans is complex, so an appropriate animal model is critical to investigate the underlying mechanisms and to test novel therapeutics that aim to improve cardiac structure and function5. The abdominal aortic constriction model, which simulates chronic heart disease, is an effective...

אי ספיקת לב היא תסמונת קלינית מורכבת, הסימפטומים מהם כוללים עייפות, קוצר נשימה, לממש סובלנות, והצטברות נוזלים ברקמות פריפריה. זה הוא הגורם המוביל למוות במדינות מפותחות 1. מלבד קרדיומיופתיה בירושה נגרמת על ידי מוטציות בחלבונים sarcomere או יון ערוצי 2, תפקוד שריר הלב יכולה להיגרם על ידי מגוון רחב של מצבים רפואיים, כולל יתר לחץ דם, מחלות לב מסתמית, השמנת יתר וסוכרת 3. שינויים במבנה שריר הלב, הולכה חשמלית, ועופרת מטבוליזם האנרגיה עד אפס מקום השאיבה של הלב לא מספיק לענות על דרישות הדם, אשר בסופו של דבר התוצאות אי ספיקת לב 3,4. חוקר את המנגנונים אי ספיקת לב, אם כן, הוא קריטי בתחום מחקר לב וכלי דם. זיהוי מנגנונים מולקולריים מה שמובילים להתפתחות אי ספיקת לב בסופו של דבר יכול לסייע לגילוי מטרות טיפוליות חדשניות או סמנים ביולוגיים שימושיים <sעד&gt; 1. לכן חשוב לפתח מודלים של בעלי חיים באי ספיקת לב חולקות מאפיינים קליניים מפתח עם אי ספיקת לב בבני האדם 5. היפרטרופיה שיפוץ לב מלא תפקיד קריטי בהתפתחות של אי ספיקת לב. מחלות לב יתר לחץ דם הוא גורם התורם המרכזי של היפרטרופיה לבבית ואת השיפוץ הסתגלותי לראות בחולים אנושיים 1. כדי לחקות את התנאים האנושיים הללו, במודלים של בעלי חיים מבוססים לעתים קרובות באמצעות ניתוחים. בפרט, אב העורקים הרוחביים או בטן יכול להיות מכווץ כדי להגביר את ההתנגדות נגד החדר השמאלי, אשר מוביל בסופו של דבר עומס לחץ בלב. תופעה זו בדרך כלל תוצאה היא היפרטרופיה לבבית, פיצוי פיסיולוגי של cardiomyocytes כדי לענות על הביקוש התפקודי של מערכת הלב וכלי הדם. עם זאת, הביקוש הפונקציונלי עוקף את מנגנוני פיצוי הפיסיולוגיים, שמוביל סיסטיק לב contracליקוי אריח. התכווצות העורקים רוחבי (TAC) ניתוח כרוך לעתים קרובות הליכים מסובכים, כולל פתיחת בית החזה, הנשמה מלאכותית, והפרדה של התימוס ורקמות שומן מן קשת אבי העורקים. לעומת זאת, היצרות אבי העורקים בבטן דורש ניסיוני בטכניקות פשוטות 6-8. אב העורקים בבטן, בין השמאל עורק כליות תקינות, הוא מכווץ במהלך הניתוח. היפרטרופיה שיפוץ הלב ניתן לצפות כמה שבועות לאחר הניתוח היצרות אאורטלית בטנית 6-8; הם מייצרים מחלות לב יתר לחץ דם חזק דומות לזה שנוצר על ידי הניתוח הרוחבי אב העורקים היצרות 9,10. כאן אנו מתארים פרוטוקול לנהל התכווצות אאורטלית בטנית בחולדות באמצעות שיטה יעילה, פערים לשחזור, מינימאלי פולשנית. אבי העורקים בבטן סמוך לעורקי הכליה הוא מוגבל בגלל לולאה 0.72 מ&quot;מ נוצר על ידי חוט משי 4-0. עשרה שבועות לאחר הניתוח, היפרטרופיה לב remodelinניתן לצפות גרם. מודל החולדה של היפרטרופיה לבבית הנגרמת התכווצות אאורטלית בטנית מספק פלטפורמה ללימוד מנגנוני מחלה והפתופיזיולוגיה, כמו גם פיתוח תרופות פוטנציאליות.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="646">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">22-Gauge syringe needle&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">&#160;&#160; BD Biosciences&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td align="right" style="width:119px;">309572</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">EDTA Blood Collection Tubes</td>
			<td style="width:139px;">&#160;&#160; BD Biosciences&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">REF365974</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:223px;">4-0 silk suture&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">Sharpoint&#8482; Products&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">DC-2515N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:223px;">6-0 silk suture&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">Sharpoint&#8482; Products&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">DC-2150N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Pentobarbital&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">Sigma Aldrich&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td align="right" style="width:119px;">1507002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Paraformaldehyde&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">Sigma Aldrich&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td align="right" style="width:119px;">441244</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Acetaminophen</td>
			<td style="width:139px;">Sigma Aldrich&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">A7085</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Picrosirius red solution&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">Abcam&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">ab150681</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Cardiac troponin kit&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">&#160;Abcam&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">ab200016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:223px;">Imagequant</td>
			<td style="width:139px;">Molecular Dynamics</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:223px;">Langendorff&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:139px;">&#160;ADInstruments&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:119px;">ML870B2</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a model of cardiac remodeling through constriction of the abdominal aorta in rats

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and fluid retention. Changes in myocardial structure, electrical conduction, and energy metabolism develop with heart failure, leading to contractile dysfunction, increased risk of arrhythmias, and sudden death. Hypertensive heart disease is one of the key contributing factors of cardiac remodeling associated with heart failure. The most commonly-used animal model mimicking hypertensive heart disease is created via surgical interventions, such as by narrowing the aorta. Abdominal aortic constriction is a useful experimental technique to induce a pressure overload, which leads to heart failure. The surgery can be easily performed, without the need for chest opening or mechanical ventilation. Abdominal aortic constriction-induced cardiac pathology progresses gradually, making this model relevant to clinical hypertensive heart failure. Cardiac injury and remodeling can be observed 10 weeks after the surgery. The method described here provides a simple and effective approach to produce a hypertensive heart disease animal model that is suitable for studying disease mechanisms and for testing novel therapeutics.

10 שבועות לאחר הניתוח היצרות אאורטלית בטנית, הפתולוגיה לב וכתוצאה מכך נותחה. היסטולוגיה הלב נמדדה על ידי חישוב היחס בין משקל לב למשקל הגוף על ידי גילוי כמות הקולגן בלב. פציעת לב אושרה על ידי מדידת ריכוז טרופונין לבבי פלזמה. <p class="jove_content" fo:keep-together.withi...

Watch this Scientific Journal Video about A Model of Cardiac Remodeling Through Constriction of the Abdominal Aorta in Rats at JoVE.com

A Model of Cardiac Remodeling Through Constriction of the Abdominal Aorta in Rats

A rat model of abdominal aortic constriction that induces cardiac hypertrophy and remodeling is described. An efficient, highly-reproducible, and minimally-invasive method is used to provide a simple yet useful platform for research in myocardial hypertrophy and dysfunction.

מודל של שיפוץ לב באמצעות התכווצות של אבי העורקים בבטן בחולדות

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and ...

a-model-cardiac-remodeling-through-constriction-abdominal-aorta

Research

JoVE Journal

Medicine

9.9K Views.  National Taiwan University. A rat model of abdominal aortic constriction that induces cardiac hypertrophy and remodeling is described. An efficient, highly-reproducible, and minimally-invasive method is used to provide a simple yet useful platform for research in myocardial hypertrophy and dysfunction.

Video: A Model of Cardiac Remodeling Through Constriction of the Abdominal Aorta in Rats

Chronic Constriction of the Sciatic Nerve and Pain Hypersensitivity Testing in Rats

Chronic neuropathic pain, resulting from damage to the central or peripheral nervous system, is a prevalent and debilitating condition, affecting 7-18% of the population1,2. Symptoms include spontaneous (tingling, burning, electric-shock like) pain, dysaesthesia, paraesthesia, allodynia (pain resulting from normally non-painful stimuli) and hyperalgesia (an increased response to painful stimuli). The sensory symptoms are co-morbid with behavioural disabilities, such as insomnia and depression. To study chronic neuropathic pain several animal models mimicking peripheral nerve injury have been developed, one of the most widely used is Bennett and Xie's (1988) unilateral sciatic nerve chronic constriction injury (CCI)3 (Figure 1). Here we present a method for performing CCI and testing pain hypersensitivity.
CCI is performed under anaesthesia, with the sciatic nerve on one side exposed by making a skin incision, and cutting through the connective tissue between the gluteus superficialis and biceps femoris muscles. Four chromic gut ligatures are tied loosely around the sciatic nerve at 1 mm intervals, to just occlude but not arrest epineural blood flow. The wound is closed with sutures in the muscle and staples in the skin. The animal is then allowed to recover from surgery for 24 hrs before pain hypersensitivity testing begins.
For behavioural testing, rats are placed into the testing apparatus and are allowed to habituate to the testing procedure. The area tested is the mid-plantar surface of the hindpaw (Figure 2), which falls within the sciatic nerve distribution. Mechanical withdrawal threshold is assessed by mechanically stimulating both injured and uninjured hindpaws using an electronic dynamic plantar von Frey aesthesiometer or manual von Frey hairs4. The mechanical withdrawal threshold is the maximum pressure exerted (in grams) that triggers paw withdrawal. For measurement of thermal withdrawal latency, first described by Hargreaves et al (1988), the hindpaw is exposed to a beam of radiant heat through a transparent glass surface using a plantar analgesia meter5,6. The withdrawal latency to the heat stimulus is recorded as the time for paw withdrawal in both injured and uninjured hindpaws. Following CCI, mechanical withdrawal threshold, as well as thermal withdrawal latency in the injured paw are both significantly reduced, compared to baseline measurements and the uninjured paw (Figure 3). The CCI model of peripheral nerve injury combined with pain hypersensitivity testing provides a model system to investigate the effectiveness of potential therapeutic agents to modify chronic neuropathic pain. In our laboratory, we utilise CCI alongside thermal and mechanical sensitivity of the hindpaws to investigate the role of neuro-immune interactions in the pathogenesis and treatment of neuropathic pain.

Due to the simplicity of surgery and the robust behavioural outcome, chronic constriction of the sciatic nerve is one of the pre-eminent animal models of neuropathic pain. Within 24 hrs following surgery, pain hypersensitivity is established and can be quantitatively measured using a von Frey aesthesiometer (mechanical test) and plantar analgesia meter (thermal test).

היצרות כרונית של העצב Sciatic ואת רגישות יתר לכאב בדיקה אצל חולדות

Chronic neuropathic pain, resulting from damage to the central or peripheral nervous system, is a prevalent and debilitating condition, affecting 7-18% of ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

השתלת כבד Orthotopic בחולדות

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Ascending Aortic Constriction in Rats for Creation of Pressure Overload Cardiac Hypertrophy Model

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart failure. Here, we describe a detailed surgical procedure for creating pressure overload and cardiac hypertrophy in rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. After anesthesia, the trachea is intubated by inserting a cannula through a half way incision made between two cartilage rings of trachea. Then a skin incision is made at the level of the second intercostal space on the left chest wall and muscle layers are cleared to locate the ascending portion of aorta. The ascending aorta is constricted to 50&#8211;60% of its original diameter by application of a small sized titanium clip. Following aortic constriction, the second and third ribs are approximated with prolene sutures. The tracheal cannula is removed once spontaneous breathing was re-established. The animal is allowed to recover on the heating pad by gradually lowering anesthesia. The intensity of pressure overload created by constriction of the ascending aorta is determined by recording the pressure gradient using trans-thoracic two dimensional Doppler-echocardiography. Overall this protocol is useful to study the remodeling events and contractile properties of the heart during the gradual onset and progression from compensated cardiac hypertrophy to heart failure stage.

We describe a stepwise procedure for creating pressure overload and left ventricular hypertrophy in Wistar rats by constriction of the ascending aorta using a small metallic clip. This model is extensively used for studying remodeling changes during cardiac hypertrophy and for identifying and evaluating strategies for regression of such changes.

עולה אבי העורקים תעוקה בחולדות ליצירת עומס יתר לחץ לב היפרטרופיה הדגם

Ascending aortic constriction is the most common and successful surgical model for creating pressure overload induced cardiac hypertrophy and heart ...

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, the RV is significantly affected in pulmonary diseases such as pulmonary artery hypertension (PAH). In addition, the RV is remarkably sensitive to cardiac pathologies, including left ventricular (LV) dysfunction, valvular disease or RV infarction4. To understand the role of RV in the pathogenesis of cardiac diseases, a reliable and noninvasive method to access the RV structurally and functionally is essential.
A noninvasive trans-thoracic echocardiography (TTE) based methodology was established and validated for monitoring dynamic changes in RV structure and function in adult mice. To impose RV stress, we employed a surgical model of pulmonary artery constriction (PAC) and measured the RV response over a 7-day period using a high-frequency ultrasound microimaging system. Sham operated mice were used as controls. Images were acquired in lightly anesthetized mice at baseline (before surgery), day 0 (immediately post-surgery), day 3, and day 7 (post-surgery). Data was analyzed offline using software.
Several acoustic windows (B, M, and Color Doppler modes), which can be consistently obtained in mice, allowed for reliable and reproducible measurement of RV structure (including RV wall thickness, end-diastolic&#160;and end-systolic dimensions), and function (fractional area change, fractional shortening, PA peak velocity, and peak pressure gradient) in normal mice and following PAC.
Using this method, the pressure-gradient resulting from PAC was accurately measured in real-time using Color Doppler mode and was comparable to direct pressure measurements performed with a Millar high-fidelity microtip catheter. Taken together, these data demonstrate that RV measurements obtained from various complimentary views using echocardiography are reliable, reproducible and can provide insights regarding RV structure and function. This method will enable a better understanding of the role of RV cardiac dysfunction.

Right ventricle (RV) dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease, yet limited methodologies are available for its evaluation. Recent advances in ultrasound imaging provide a noninvasive and accurate option for longitudinal RV study. Herein, we detail a step-by-step echocardiographic method using a murine model of RV pressure overload.

הערכה של מבנה הנכון חדרית ותפקוד בעכבר הדגם של תעוקת עורק ריאה על ידי Transthoracic אקו

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, ...

Visualization of Streptococcus pneumoniae within Cardiac Microlesions and Subsequent Cardiac Remodeling

During bacteremia Streptococcus pneumoniae can translocate across the vascular endothelium into the myocardium and form discrete bacteria-filled microscopic lesions (microlesions) that are remarkable due to the absence of infiltrating immune cells. Due to their release of cardiotoxic products, S. pneumoniae within microlesions are thought to contribute to the heart failure that is frequently observed during fulminate invasive pneumococcal disease in adults. Herein is demonstrated a protocol for experimental mouse infection that leads to reproducible cardiac microlesion formation within 30 hr. Instruction is provided on microlesion identification in hematoxylin &#38; eosin stained heart sections and the morphological distinctions between early and late microlesions are highlighted. Instruction is provided on a protocol for verification of S. pneumoniae within microlesions using antibodies against pneumococcal capsular polysaccharide and immunofluorescent microscopy. Last, a protocol for antibiotic intervention that rescues infected mice and for the detection and assessment of scar formation in the hearts of convalescent mice is provided. Together, these protocols will facilitate the investigation of the molecular mechanisms underlying pneumococcal cardiac invasion, cardiomyocyte death, cardiac remodeling as a result of exposure to S. pneumoniae, and the immune response to the pneumococci in the heart.

Visualization of Streptococcus pneumoniae within Cardiac Microlesions and Subsequent Cardiac Remodeling

Streptococcus pneumoniae forms discrete non-purulent microscopic lesions in the heart. Outlined is the protocol for a murine model of cardiac microlesion formation. Instruction is provided on microlesion visualization using microscopy, discrimination between early and late microlesions, and methods to detect cardiac remodeling in hearts of convalescent animals.

ויזואליזציה של<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; בתוך Microlesions הלב וRemodeling לב לאחר

During bacteremia Streptococcus pneumoniae can translocate across the vascular endothelium into the myocardium and form discrete bacteria-filled ...

Assessment of Cardiac Morphological and Functional Changes in Mouse Model of Transverse Aortic Constriction by Echocardiographic Imaging

Transverse aortic constriction (TAC) in mice has been used as a valuable model to study mechanisms of cardiac hypertrophy and heart failure1. A reliable noninvasive method is essential to assess real-time cardiac morphological and functional changes in animal models of heart disease. Transthoracic echocardiography represents an important tool for noninvasive assessment of cardiac structure and function2. Here we used a high-resolution ultrasound imaging system to monitor myocardial remodeling and heart failure progression over time in a mouse model of TAC. B-mode, M-mode, and Doppler imaging were used to precisely assess cardiac hypertrophy, ventricular dilatation, and functional deterioration in mice following TAC. Color and pulse wave (PW) Doppler imaging was used to noninvasively measure pressure gradient across the aortic constriction created by TAC and to assess transmitral blood flow in mice. Thus transthoracic echocardiographic imaging provides comprehensive noninvasive measurements of cardiac dimensions and function in mouse models of heart disease.

The goal of this protocol is to noninvasively assess cardiac structural and functional changes in a mouse model of heart disease created by transverse aortic constriction, using B- and M-mode echocardiography and color/pulse wave Doppler imaging.

שינויים הערכה לב מורפולוגי תפקודי עכבר דגם של מועקה הרוחבית אב עורקים על ידי הדמית אקו

Transverse aortic constriction (TAC) in mice has been used as a valuable model to study mechanisms of cardiac hypertrophy and heart failure1. A reliable ...

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

מבוסס על בלון פציעה לזירוז היפרפלזיה Myointimal באבי העורקים בטן העכבר

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...

A Closed-chest Model to Induce Transverse Aortic Constriction in Mice

Research on cardiac hypertrophy and heart failure is frequently based on pressure overload mouse models induced by TAC. The standard procedure is to perform a partial thoracotomy to visualize the transverse aortic arch. However, the surgical trauma caused by the thoracotomy in open-chest models changes the respiratory physiology as the ribs are dissected and left unattached after chest closure. To prevent this, we established a minimally invasive, closed chest approach via lateral thoracotomy. Herein we approach the aortic arch via the 2nd intercostal space without entering the chest cavities, leaving the mouse with a less traumatic injury to recover from. We perform this operation using standard laboratory settings for open chest TAC procedures with equal survival rates. Apart from maintaining physiological breathing patterns due to the closed chest approach, the mice seem to benefit by showing rapid recovery, as the less invasive technique appears to facilitate a fast healing process and to reduce immune response after trauma.

Here, we present a protocol of Transverse Aortic constriction (TAC) via a lateral thoracotomy. This technique is a minimally invasive, closed chest surgical procedure aiming to simulate pressure overload and heart failure in mice utilizing standard TAC laboratory settings.

דגם סגור-החזה לזירוז רוחבי. התרחבות אבי העורקים בעכברים

Research on cardiac hypertrophy and heart failure is frequently based on pressure overload mouse models induced by TAC. The standard procedure is to ...

Ultrasound Imaging of the Thoracic and Abdominal Aorta in Mice to Determine Aneurysm Dimensions

Contemporary high-resolution ultrasound instruments have sufficient resolution to facilitate the measurement of mouse aortas. These instruments have been widely used to measure aortic dimensions in mouse models of aortic aneurysms. Aortic aneurysms are defined as permanent dilations of the aorta, which occur most frequently in the ascending and abdominal regions. Sequential measurements of aortic dimensions by ultrasound are the principal approach for assessing the development and progression of aortic aneurysms in vivo. Although many reported studies used ultrasound imaging to measure aortic diameters as a primary endpoint, there are confounding factors, such as probe position and cardiac cycle, that may impact the accuracy of data acquisition, analysis, and interpretation. The purpose of this protocol is to provide a practical guide on the use of ultrasound to measure the aortic diameter in a reliable and reproducible manner. This protocol introduces the preparation of mice and instruments, the acquisition of appropriate ultrasound images, and data analysis.

Ultrasound imaging has become a common modality to determine the luminal dimensions of thoracic and abdominal aortic aneurysms in mice. This protocol describes the procedure to acquire reliable and reproducible two-dimensional ultrasound images of the ascending and abdominal aorta in mice.

אולטראסאונד הדמיה של העורקים בית החזה והבטן בעכברים כדי לקבוע מידות מפרצת

Contemporary high-resolution ultrasound instruments have sufficient resolution to facilitate the measurement of mouse aortas. These instruments have been ...

Implantation of Human-Sized Coronary Stents into Rat Abdominal Aorta Using a Trans-Femoral Access

Percutaneous coronary intervention (PCI), combined with the deployment of a coronary stent, represents the gold standard in interventional treatment of coronary artery disease. In-stent restenosis (ISR) is determined by an excessive proliferation of neointimal tissue within the stent and limits the long-term success of stents. A variety of animal models have been used to elucidate pathophysiological processes underlying in-stent restenosis (ISR), with the porcine coronary and the rabbit iliac artery models being the most frequently used. Murine models provide the advantages of high throughput, ease of handling and housing, reproducibility, and a broad availability of molecular markers. The apolipoprotein E deficient (apoE-/- ) mouse model has been widely used to study cardiovascular diseases. However, stents must be miniaturized to be implanted into mice, involving important changes of their mechanical and (potentially) biological properties. The use of apoE-/- rats can overcome these shortcomings as apoE-/- rats allow for the evaluation of human-sized coronary stents while at the same time providing an atherogenic phenotype. This makes them an excellent and reliable model to investigate ISR after stent implantation. Here, we describe, in detail, the implantation of commercially available human coronary stents into the abdominal aorta of rats with an apoE-/- background using a trans-femoral access.

This protocol describes the implantation of human coronary stents into the abdominal aorta of rats with an apoE-/- background using a trans-femoral access. Compared with other animal models, murine models carry the advantages of high throughput, reproducibility, ease of handling and housing, and a broad availability of molecular markers.

השתלת סטנטים כליליים בגודל אנושי לתוך אב העורקים בטן עכברוש באמצעות גישה טרנס-ירך

Percutaneous coronary intervention (PCI), combined with the deployment of a coronary stent, represents the gold standard in interventional treatment of ...