מחקר זה מומן על ידי NSFC 81570244, Foko 23/2013, SFB 1116 / B01 ועל ידי מכון המחקר לב וכלי דם דיסלדורף (CARID).

כל הניסויים אושרו על ידי סוכנות הרגולציה המקומית ( LANUV של Nordrhein-Westfalen, גרמניה) בוצעו על פי הנחיות השימוש בבעלי חיים. בעלי החיים היו מוזנים בדיאטה סטנדרטית של צ&#39;או וקיבלו את מי הברז. כל הציוד והכימיקלים הדרושים לכל שלב של הניסוי זמינים בטבלה של חומרים . 1. הכנת כובע לטקס ו בלון Intraventricular <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יצירת עובש אלומיניום באמצעות מכונת כרסום התואמת את הגודל הממוצע של הלב חולדה (bodyweight של 300-350 גרם). פולנית תבנית עם נייר superfine (10/0) ​​אמרי. הערה: המדדים המפורטים של התבנית מוצגים בתרשים 1A . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אנכית לתקן את הצוואר של עובש אלומיניום למכונת כרסום כדי להכין את כובע לטקס. הערה: מכונת הטחינה גורמת לעובי להסתובב לאט. לחלופין, מנוע חשמלי יכול לשמש. </<html> Li&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים 20 מ&quot;ל של לטקס נוזלי (רכש מסחרית, ראה טבלה של חומרים ) לתוך כוס זכוכית 50 מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להנמיך את עובש עד הגוף כולו של עובש שקוע הפתרון לטקס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרם לאט את התבנית (5 ס&quot;מ לדקה) תוך כדי סיבוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור סיבוב עובש במשך 15 דקות נוספות, עד לטקס על פני השטח של עובש הוא solidified. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף על 1 גרם של אבקת טלק על פני השטח של עובש (כבר מכוסה על ידי סרט לטקס דק) כדי למנוע נזק בעת ניתוק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לנתק עם האצבעות כבר מיובש כובע לטקס משטח עובש; כובע לטקס מוכן כעת לשימוש ( איור 1 ב ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את שקע לטקס ל -15 ס&quot;מ צינורות סיליקון (ID = 0.2 מ&quot;מ), המשמש מאוחר יותר עבור אוסף של CT. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממלאים את הבלון לטקס חדרית עם מים בתקיפות לתקן אותו על צינור מתכת בצורת L מחובר מזרק 1 מ&quot;ל, מלא מים (&gt; איור 1 ג). הערה: זה ישמש כדי להבטיח את מיקום זקוף של הלב (ראה להלן). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא כי הבלון הוא אטום על ידי ביצוע מספר ניפוח / ניפוח בדיקות עם המזרק המצורף 1 מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את הצינורית, דרך לעצור שלוש פעמים, כדי מתמר הלחץ למדידה העתידית של הלחץ פיתחה intraventricular ( איור 1C ). </li></ol> 2. הכנת קרבס- Henseleit הצפת (KHB) ואת מערכת Langendorff זלוף <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת מערכת זלוף Langendorff באמצעות זרימה קבועה (מונע על ידי משאבת הרים) או קבוע הלחץ (שנוצר על ידי לחץ סטטי בעמודה זכוכית) במצב. הערה: פרטים על הכנת Langendorff הלב תוארו בעבר 12 . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 2 L של KHB שונה (ב mM: 116.02 NaCl, 4.63 KCl, 1.10 MgSO 4 · 7H 2 O, 1.21 K 2 HPO 4 </suB&gt;, 2.52 CaCl 2 · 2H 2 O, 24.88 NaHCO 3 , 8.30 D גלוקוז, ו 2.0 נתרן pyruvate). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשקול את כל הכימיקלים אבל CaCl 2 ו לפזר אותם 1.8 L של מים מזוקקים פעמיים בקבוק 2-L. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הבועה המדיום עם carbogen (95% O 2 /5% CO 2 ) במשך 5 דקות לפחות עבור איזון (pH: 7.4) תחת ערבוב מגנטי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 0.74 גרם של CaCl 2 .2H 2 O ולהעלות את נפח הכולל ל 2 עם מים מזוקקים פעמיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המשך ערבוב מבעבע בינוני עם פחמן במשך 5 דקות נוספות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סינון KHB דרך מסנן 0.2 מיקרומטר לחסל חלקיקים קטנים שעלולים לחסום את microcirculation של הלב. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנת מערכת זלוף Langendorff. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את KHB מסונן לתוך אמבט מים מחומם מראש (38 ° C); לשמור מבעבע עם carbogen כדי ליצור לחץ של 100 ס&quot;מ 2 O InsidE מאגר KHB. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את המאגר לעמודה זכוכית להקים 100 cmH 2 O לחץ הידרוסטטי עבור זלוף Langendorff עם KHB; להמשיך מבעבע KHB בתוך הטור עם carbogen. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את הטמפרטורה של מערכת ההתחממות, כך הטמפרטורה בבית השקע אבי העורקים הוא 37 מעלות צלזיוס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא כי מערכת צינורות הוא ללא בועה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחמצן את KHB עם פחמן במשך 5 דקות נוספות, עד PO 2 ב KHB מגיע 500-600 מ&quot;מ כספית (נמדדת על ידי מנתח גז בדם). </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת מערכת זלוף לרוץ או בלחץ קבוע של 100 cmH 2 O או בזרימה קבועה של כ 10-20 מ&quot;ל / דקה באמצעות מיתוג ידני. לחלופין, להשתמש בקר משאבת STH להחלפה כדי לעבור באופן מיידי למצב זלוף. </li></ol> 3. בידוד ו cannulation של הלב הערה: חולדות Wistar זכר עם משקולות של 300-350 גרם שימשו כך גדלים של לבבות תאמו מראש הטלת לטקס. חולדות עברו גם קשירת של העורקים השמאלית יורד (LAD) במשך 50 דקות, ואחריו reperfusion או הופעלו הונאה. פרטים על המתודולוגיה של אינדוקציה של אוטם שריר הלב (MI) דווחו במקום אחר 13 . ניסויי הלב הפוכים בחיות האינפריות בוצעו 5 ימים לאחר הניתוח. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים חולדות באמצעות מאדה isoflurane (2% V / V) מחובר לחדר בעל חיים מחזיק (20 L). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את החולדות לטבלת הניתוח (לא טמפרטורה מבוקרת) לאחר הרדמה עמוקה הוא הגיע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרם את העור ואת השריר ממש מתחת לחזה באמצעות מלקחיים לחתוך סביב השוליים התחתונים של הצלעות עם מספריים כבדים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים בסדר, לעשות חתך קטן לתוך הסרעפת, על שולי צלעות. חותכים את הצלעות caudally לעשות דש של הקיר החזה כולו הגחון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לתפוס את הלב עם האגודל אNd אינדקס ואצבעות באמצע לאט להרים אותו כלפי מעלה, כך כלי הדם להיות מתוח מעט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הבלו את הלב עד אבי העורקים נחשף במלואו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הלב בתוך כוס 100 מ&quot;ל המכיל 50 מ&quot;ל של KHB קר כקרח (4 מעלות צלזיוס) ולהעביר אותו למנגנון זלוף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מיד לעלות על הלב דרך אבי העורקים על צינורית נוטף בבטחה להדק אותו עם תפר (4-0). הימנע בועות אוויר נכנסים ללב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל לחץ זלוף קבוע (100 ס&quot;מ 2 O). לחלופין, קצב זרימה מלא (החל מ 20 מ&quot;ל / דקה) ניתן להחיל. הערה: הזמן מפתיחת בית החזה כדי המצורף של הלב צינורית זלוף צריך לקחת בערך 3 דקות בידיו של מפעיל מנוסה. </li></ol> 4. הפוך לב דגם <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לסובב את צינורית אבי העורקים עד הקיר האחורי של הלב הוא בפנים אל פנים . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את רקמת החיבור במספרייםכדי לחשוף את הפתיחה של אטריום שמאל, מה שהופך אותו מוכן cannulation intraventricular. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את בלון לטקס deflated מחוברת קטטר נוקשה דרך אטריום שמאל לתוך החדר השמאלי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנפח את הבלון עד שהוא ממלא את חלל החדר כולו (נפח מנפח מסומן מראש על המזרק). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפוך את הלב עד שהוא הפוך, תומך בו על ידי קטטר בלון תוך תוך ורידי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כפי שמוצג בתרשים 1C , לייצב באופן מכני את הלב הפוכה במצב זקוף באמצעות בלון תוך intraventricular עם קטטר מתכת נוקשה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את המיקום של הלב כדי למנוע פיתול מוגזם של שורש אבי העורקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את הלחץ diastolic ל 3-5 מ&quot;מ כספית (נמדדת על ידי בלון תוך חדרתי, ראה איור 1C ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צפו על פני השטח של הלב של הלב ולוודא כי טיפות קטנות הטופס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את כובע לטקס oאל פני השטח של הלב על ידי דחיפה בעדינות אותו כדי לכסות את הלב כולו באמצעות האצבעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא כי מכסה לטקס מכסה את רוב השטח החדר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את בועות אוויר, אם בכלל, בתוך הכובע ואת צינורות על ידי מציצה בעדינות עם מזרק 1 מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את הפתיחה הדיסטלית של צינור ה- CT לתת עד 10 ס&quot;מ מתחת לרמה האופקית של הלב. הערה: הליך זה מבטיח מציצה קלה על ידי לחץ הידרוסטטי שלילי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף טיפות של CT בצינור 1.5 מ&quot;ל צינור להציב בקרח מעורב 1: 1 עם NaCl. איסוף על 0.15-1.5 מ&quot;ל של CT. הערה: תערובת הקרח / NaCl מייצבת את הטמפרטורה בצינור האיסוף מתחת לאפס (כ -4 ° C). הערה: זמן הדגימה תלוי במטרות הניסוי. קצב הזרימה של CT הוא כ 27 ± 20 μL / min בחיות המופעלות בדם (n = 3) ו 100 ± 47 μL / min עבור בעלי חיים ligated כלילית (n = 11). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשקול ו-להקפיא דגימות CTב חנקן נוזלי ולאחסן אותם ב -80 מעלות צלזיוס למדידות מאוחר יותר. </li></ol> 5. ניתוח של CT <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש נוזל CT לניתוח של מטבוליטים, בהתאם לשאלה המדעית. הערה: הנתונים המוצגים באיור 2 איור 3 נאספו מתוך זלוף לחץ מתמיד (100 ס&quot;מ 2 O), ועל 0.15-1.5 מ&quot;ל של נוזל CT נאסף בתוך תקופה של 10 דקות. הפעם והנפח היו מספיק עבור proteomic (מינימום: 50 μL, איור 2 ) 14 ו HPLC (מינימום: 20 μL, איור 3 ) 15 ניתוח של purines שונים. </li></ol>

<ol>
	<li>Henkel, D. M., Redfield, M. M., Weston, S. A., Gerber, Y., Roger, V. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Death+in+heart+failure:+a+community+perspective.">Death in heart failure: a community perspective.</a> Circ Heart Fail. 1 (2), 91-97 (2008).</li><li>Limana, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+induces+embryonic+reprogramming+of+epicardial+c-kit(+)+cells:+role+of+the+pericardial+fluid.">Myocardial infarction induces embryonic reprogramming of epicardial c-kit(+) cells: role of the pericardial fluid.</a> J Mol Cell Cardiol. 48 (4), 609-618 (2010).</li><li>Brunner, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+tissue+endothelin-1+levels+under+basal,+stimulated,+and+ischemic+conditions.">Cardiac tissue endothelin-1 levels under basal, stimulated, and ischemic conditions.</a> J Cardiovasc Pharmacol. 26, S44-S46 (1995).</li><li>de Lannoy, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Renin-angiotensin+system+components+in+the+interstitial+fluid+of+the+isolated+perfused+rat+heart.+Local+production+of+angiotensin+I.">Renin-angiotensin system components in the interstitial fluid of the isolated perfused rat heart. Local production of angiotensin I.</a> Hypertension. 29 (6), 1240-1251 (1997).</li><li>Strupp, M., Kammermeier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interstitial+Lactate+And+Glucose-Concentrations+Of+the+Isolated-Perfused+Rat-Heart+before,+during+And+after+Anoxia.">Interstitial Lactate And Glucose-Concentrations Of the Isolated-Perfused Rat-Heart before, during And after Anoxia.</a> Pflugers Arch. 423 (3-4), 232-237 (1993).</li><li>Wienen, W., Jungling, E., Kammermeier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enzyme-Release+into+the+Interstitial+Space+of+the+Isolated+Rat-Heart+Induced+by+Changes+in+Contractile+Performance.">Enzyme-Release into the Interstitial Space of the Isolated Rat-Heart Induced by Changes in Contractile Performance.</a> Cardiovasc Res. 28 (8), 1292-1298 (1994).</li><li>De Deckere, E. A., Ten Hoor, ., P, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+modified+Langendorff+technique+for+metabolic+investigations.">A modified Langendorff technique for metabolic investigations.</a> Pflugers Arch. 370 (1), 103-105 (1977).</li><li>Tschubar, F., Rose, H., Kammermeier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fatty+acid+transfer+across+the+myocardial+capillary+wall.">Fatty acid transfer across the myocardial capillary wall.</a> J Mol Cell Cardiol. 25 (4), 355-366 (1993).</li><li>Wienen, W., Kammermeier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-+and+extracellular+markers+in+interstitial+transudate+of+perfused+rat+hearts.">Intra- and extracellular markers in interstitial transudate of perfused rat hearts.</a> Am J Physiol. 254 (4 Pt 2), H785-H794 (1988).</li><li>Sasse, A., Ding, Z. P., Wallich, M., Godecke, A., Schrader, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+transfer+of+adenovirus+is+augmented+by+nitric+oxide+in+the+rat+heart.">Vascular transfer of adenovirus is augmented by nitric oxide in the rat heart.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 287 (3), H1362-H1368 (2004).</li><li>Gnecchi, M., Zhang, Z., Ni, A., Dzau, V. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Paracrine+mechanisms+in+adult+stem+cell+signaling+and+therapy.">Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy.</a> Circ Res. 103 (11), 1204-1219 (2008).</li><li>Herr, D. J., Aune, S. E., Menick, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+and+Assessment+of+Ischemia-reperfusion+Injury+in+Langendorff-perfused+Rat+Hearts.">Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts.</a> J Vis Exp. (101), e52908 (2015).</li><li>Ding, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epicardium-Derived+Cells+Formed+After+Myocardial+Injury+Display+Phagocytic+Activity+Permitting+In+Vivo+Labeling+and+Tracking.">Epicardium-Derived Cells Formed After Myocardial Injury Display Phagocytic Activity Permitting In Vivo Labeling and Tracking.</a> Stem Cells Transl Med. 5 (5), 639-650 (2016).</li><li>Hartwig, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Secretome+profiling+of+primary+human+skeletal+muscle+cells.">Secretome profiling of primary human skeletal muscle cells.</a> Biochim Biophys Acta. 1844 (5), 1011-1017 (2014).</li><li>Smolenski, R. T., Lachno, D. R., Ledingham, S. J. M., Yacoub, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determination+of+sixteen+nucleotides,+nucleosides+and+bases+using+high-performance+liquid+chromatography+and+its+application+to+the+study+of+purine+metabolism+in+hearts+for+transplantation.">Determination of sixteen nucleotides, nucleosides and bases using high-performance liquid chromatography and its application to the study of purine metabolism in hearts for transplantation.</a> J Chromatogr. 527 (2), 414-420 (1990).</li><li>Decking, U. K., Juengling, E., Kammermeier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interstitial+transudate+concentration+of+adenosine+and+inosine+in+rat+and+guinea+pig+hearts.">Interstitial transudate concentration of adenosine and inosine in rat and guinea pig hearts.</a> Am J Physiol. 254 (6 Pt 2), H1125-H1132 (1988).</li><li>Heller, L. J., Mohrman, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimates+of+interstitial+adenosine+from+surface+exudates+of+isolated+rat+hearts.">Estimates of interstitial adenosine from surface exudates of isolated rat hearts.</a> J Mol Cell Cardiol. 20 (6), 509-523 (1988).</li></ol>

המחברים מצהירים כי אין להם אינטרסים פיננסיים מתחרים.

מודל הלב הפוכה מבוסס על טכניקת זלוף הלב המבוצעת היטב של Langendorff 12 , והיא מבוצעת על ידי הפיכת הלב למצב הפוך ולהחזקה בתנוחה זו באמצעות קטטר נוקשה בתוך חדר הבלון. בדרך זו, transudate interstitial הלב יכול להיות מופרד פיזית מן perfusate כלילי ורידי, נוטף על ידי כוח הכבידה מן הב?...

אי ספיקת לב (HF) היא הגורם המוביל למוות בבני אדם בעולם 1 . HF מתרחשת לעיתים קרובות עקב דלקת שריר הלב, עלבונות איסכמיים בשריר הלב, ושיפוץ חדרי החדר, מה שמוביל להידרדרות הדרגתית של תפקוד הלב וכלי הדם של המטופלים. למרות ההתקדמות הקרדיולוגית וניתוח לב הורידו באופן משמעותי את תמותה HF, הם רק לשמש &quot;מעכבים&quot; חולף של תהליך מחלה מתקדמת באופן בלתי נמנע, כי יש תחלואה משמעותית. לכן, היעדר הטיפול היעיל הנוכחי מדגיש את הצורך לזהות מטרות מולקולריות חדשות שיכולות למנוע או אפילו להפוך HF. הדבר כולל שינויים במטריצה ​​החוץ-תאית, תגובה חיסונית בלתי מבוקרת של הלב, ואינטראקציות בין תאי לב ולא-לב 2 . חשוב להכיר כי microenvironment כי תאים לב חשופים direcTly צורות התגובה החיסונית והתחדשות של הלב הפגוע. בלב המבודד, המלוח-מלוח, נוצר CT על פני השטח בצורת טיפות קטנות הנגזרות מחלל הנוזלים הבין-ממדי ( כלומר, מיקרו-סביבה), הן בתנאים פיזיולוגיים והן בפאתופיזיולוגיים 3 , 4 , 5 . לכן, ניתוח של CT ( כלומר, נוזל interstitial) עשוי לעזור לזהות גורמים המווסתים את חילוף החומרים של הלב ואת תפקוד התכווצות 6 או להשפיע על תפקודי התא החיסונית לאחר המעבר אל הלב הפגוע. פוטנציאל זה עשוי להוביל לפיתוח אסטרטגיות טיפוליות חדשות לטיפול ב- HF. אוסף CT מ לבבות Murine הוא מאתגר מבחינה טכנית. ב Langendorff-perfused לבבות רגילים, את האוסף הבלעדי של CT קשה כי תערובת של CT עם קורונארY ורידי שפכים ורידי באופן בלתי צפוי מדלל כל ריכוז של מטבוליטים / אנזימים ששוחררו מן החלל interstitial. אחת האסטרטגיות האפשריות להתגבר על הגבלה זו היא להוציא את השפכים הוורידים על ידי חשיפת הריאתי ובאותו זמן ליגנציה של הווריד הריאתי. עם זאת, שיטה זו עומדת בפני קשיים הקשורים cannulation ו קשירת של העורק הריאתי ואת הווריד, גרימת דליפה פוטנציאלית של שפכים ורידי לתוך transudate הלב. הרעיון של שימוש במודל לב הפוכה הוצג לראשונה על ידי קבוצת קמרמאייר, שהפכה את הלב המבודד והמבודד למצב הפוך, והניחה כובע לטקס דק על משטח האפיכארדיאל כדי למדוד ללא הרף את ה- CT ללא זיהום של שפכים ורידיים 8 , 9 . באמצעות הליך זה, CT הוצגה לספק מדד רגיש מאוד של מטבוליטים שוחרר מהלב 9 ,העברה נימית של חומצות שומן 8 , וחלקיקים נגיפיים 10 . לאחרונה, גורמי פרקרין שיכולים להסדיר את התגובה החיסונית המקומית ולהגדיל את אנגיוגנזה לב 11 היו מעורבים בהשפעות החיוביות של טיפול מבוסס תאי גזע למחלות לב. הניתוח של CT בלב הפוך עשוי לסייע לזהות את הגורמים הפרקריים האישיים הללו באופן כימי. בנוסף, CT עשוי לעזור לזהות את הגורמים המעורבים ההפעלה vivo של תאים חיסוניים בלב. התיאור המפורט של אוסף ה- CT ממשטח הלב, הניתן כאן, הוא שימושי עבור חוקרים החוקרים את יחסי הגומלין בין תאי החיסון, fibroblasts, תאי האנדותל, ואת cardiomyocytes ביחס לתפקוד הלב הכולל. כפי שצוין לעיל, נוזל interstitial נושאת את המידע לתקשורת תא אל תוך התא, בתוך הלב, WHIch ניתן להעריך בנוחות על ידי אוסף של CT. תיאור טכני מפורט, כולל פרוטוקול וידאו של איך לאסוף CT מן הלב הפוכה, צריך להקל על היישום העתידי של טכניקה ייחודית זו.

<table><tbody><tr><td>Latex Solution</td><td>ProChemie</td><td>Z-Latex LA-TZ</td><td>http://kautschukgesellschaft.de/%E2%80%A8z-latex-la-tz</td></tr><tr><td>Aluminum Mold</td><td>Home made</td><td>-</td><td>Reverse heart model</td></tr><tr><td>Universal Ovens</td><td>Memmert</td><td>UNB 400</td><td>Reverse heart model</td></tr><tr><td>Latex Balloon</td><td>Hugo Sachs</td><td>Size 4</td><td>Reverse heart model</td></tr><tr><td>Milling Machine</td><td>Proxxon</td><td>MF70</td><td>Reverse heart model</td></tr><tr><td>Sodium Chloride</td><td>Sigma</td><td>SZBD0810V</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>Sodium Hydrogen Carbonate</td><td>Roth</td><td>68852</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>Potassium Chloride</td><td>Merck</td><td>49361</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>Magnesium Sulphate Heptahydrate</td><td>Merck</td><td>58861</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>Potassium Dihydrogen Phosphate</td><td>Merck</td><td>48731</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>D(+)-Glucose Anhydrous</td><td>Merck</td><td>83371</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>Calcium Chloride Dihydrate</td><td>Fluka</td><td>21097</td><td>Chemicals</td></tr><tr><td>Balance</td><td>VWR</td><td>SE 1202</td><td>Weighing chemicals</td></tr><tr><td>Double Distilled Water</td><td>Millpore</td><td>-</td><td>Disolving chemicals</td></tr><tr><td>Medical Pressure Transducer</td><td>Gold</td><td>-</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Medical Flow Probe</td><td>Transonic</td><td>3PXN</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Heating Circulating Bath</td><td>Haake&amp;nbsp;</td><td>B3 ; DC1</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Laboratory and Vaccum Tubing</td><td>Tygon</td><td>R-3603</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Animal Research Flowmeters</td><td>Transonic</td><td>T206</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>PowerLab Data Acquisition Device</td><td>AD Instruments</td><td>Chart 7.1</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>LabChart Data Acquisition Software</td><td>AD Instruments</td><td>Chart 7.1</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Peristaltic Pump</td><td>Glison</td><td>MINIPULS 3</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Glass Water Column</td><td>home made</td><td>-</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Water Bath Protective Agent</td><td>VWR</td><td>462-7000</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Sterile Disposable Filters (0.2 &amp;micro;m)</td><td>Thermo Scientific</td><td>595-4520</td><td>Langendorff apparatus</td></tr><tr><td>Blood gas analyzers</td><td>Radiometer</td><td>ABL90 FLEX PLUS</td><td>Gas analyzer</td></tr><tr><td>70% ethanol</td><td>VWR</td><td>UN1170</td><td>Cleaning&amp;nbsp; tubings</td></tr><tr><td>100% ethanol</td><td>Merck</td><td>64-17-5</td><td>Cleaning tubings</td></tr><tr><td>Wistar Rats</td><td>Janvier</td><td>-</td><td>Animals</td></tr><tr><td>Stainless Scissors</td><td>AESCULAP</td><td>BC702R</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Stainless Scissors</td><td>AESCULAP</td><td>BC257R</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>Big Forceps</td><td>AESCULAP</td><td>-</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>8m/m Stainless Forceps</td><td>F.S.T</td><td>11052-10</td><td>Surgical Instruments</td></tr><tr><td>superfine (10/0) emery paper</td><td>3M</td><td>051111-11694</td><td>Reverse heart model</td></tr></tbody></table>

the inverted heart model for interstitial transudate collection from the isolated rat heart

הפרוטוקול הנוכחי מתאר גישה ייחודית המאפשרת אוסף של transudate לב (CT) מן הלב מבודד, מלוחים perfused חולדה. לאחר בידוד ו זלילה מדרדר של הלב על פי טכניקת Langendorff, הלב הוא הפוך למצב הפוך הפוכה מיוצב מכנית על ידי קטטר בלון מוכנס לתוך החדר השמאלי. ואז, כובע לטקס דק - בעבר יצוק כדי להתאים את הגודל הממוצע של הלב חולדה - ממוקם מעל פני השטח epichardial. השקע של כובע לטקס מחובר צינורות סיליקון, עם פתיחת דיסטלי 10 ס&quot;מ מתחת לרמת הבסיס של הלב, יצירת יניקה קלה. CT מיוצר ברציפות על פני השטח אפיקארדיאל נאסף בקבוקונים מקורר כקרח לניתוח נוסף. שיעור היווצרות ה- CT נע בין 17 ל -147 μL / min (n = 14) בשליטה ובליבות לא מקובעות, המייצגות 0.1-1% מהפרפוראטציה הקולית הוורידית. ניתוח פרוטאומי ופרפו גבוהRmance נוזל כרומטוגרפיה (HPLC) גילה כי CT שנאספו מכיל מגוון רחב של חלבונים ו metinerolic purinergic.

<html> מודל הלב הפוכה מאפשר איסוף של transstate interstitial הלב בלב מבודד, רטרו perfused חולדה ( איור 1A- C ). כאשר perfused בלחץ קבוע של 100 cmH 2 O, שיעור היווצרות נוזל interstitial נע בין 17 ו 147 μL / min, בהיקף של 0.1-1% של שפכים ורידי הלב כליל בלב בודד. <p class="j...

Watch this Scientific Journal Video about The Inverted Heart Model for Interstitial Transudate Collection from the Isolated Rat Heart at JoVE.com

The Inverted Heart Model for Interstitial Transudate Collection from the Isolated Rat Heart

פרוטוקול זה מתאר שיטה לאסוף נוזל interstitial לב מבודדים, בלב עכברוש perfused. כדי להפריד פיזית transudate interstitial מ perfossate כלילי ורידי לב, הלב Langendorff perfused הוא הפוך, ואת transudate (נוזל interstitial) נוצר על פני הלב נאסף באמצעות כובע לטקס רכה.

מודל הלב הפוכה עבור אוסף transstate Interstitial מן הלב עכברוש מבודד

The present protocol describes a unique approach that enables the collection of cardiac transudate (CT) from the isolated, saline-perfused rat heart. ...

the-inverted-heart-model-for-interstitial-transudate-collection-from

Research

JoVE Journal

Medicine

8.3K Views.  Second Military Medical University.  פרוטוקול זה מתאר שיטה לאסוף נוזל interstitial לב מבודדים, בלב עכברוש perfused. כדי להפריד פיזית transudate interstitial מ perfossate כלילי ורידי לב, הלב Langendorff perfused הוא הפוך, ואת transudate (נוזל interstitial) נוצר על פני הלב נאסף באמצעות כובע לטקס רכה. 

Video: The Inverted Heart Model for Interstitial Transudate Collection from the Isolated Rat Heart

An Isolated Working Heart System for Large Animal Models

Since its introduction in the late 19th century, the Langendorff isolated heart perfusion apparatus, and the subsequent development of the working heart model, have been invaluable tools for studying cardiovascular function and disease1-15. Although the Langendorff heart preparation can be used for any mammalian heart, most studies involving this apparatus use small animal models (e.g., mouse, rat, and rabbit) due to the increased complexity of systems for larger mammals1,3,11. One major difficulty is ensuring a constant coronary perfusion pressure over a range of different heart sizes &#8211; a key component of any experiment utilizing this device1,11. By replacing the classic hydrostatic afterload column with a centrifugal pump, the Langendorff working heart apparatus described below allows for easy adjustment and tight regulation of perfusion pressures, meaning the same set-up can be used for various species or heart sizes. Furthermore, this configuration can also seamlessly switch between constant pressure or constant flow during reperfusion, depending on the user&#8217;s preferences. The open nature of this setup, despite making temperature regulation more difficult than other designs, allows for easy collection of effluent and ventricular pressure-volume data.

Most studies involving the Langendorff apparatus use small animal models due to the increased complexity of systems for larger mammals. We describe a Langendorff system for large animal models that allows for use across a range of species, including humans, and relatively easy data acquisition.

מערכת העבודה לב מבודדת למודלים בבעלי חיים גדולים

Since its introduction in the late 19th century, the Langendorff isolated heart perfusion apparatus, and the subsequent development of the working heart ...

Isolation of Endocardial and Coronary Endothelial Cells from the Ventricular Free Wall of the Rat Heart

It has been shown that endocardial endothelial cells (EECs) and coronary endothelial cells (CECs) differ in origin, development, markers, and functions. Consequently, these two cell populations play unique roles in cardiac diseases. Current studies involving isolated endothelial cells investigate cell populations consisting of both EECs and CECs. This protocol outlines a method to independently isolate these two cell populations for cell-specific characterization. Following the collection of the left and right ventricular free wall, endothelial cells from the outer surface and inner surface are separately liberated using a digestion buffer solution. The sequential digestion of the outer surface and the inner endocardial layer retained separation of the two endothelial cell populations. The separate isolation of EECs and CECs is further verified through the identification of markers specific to each population. Based on previously published single cell RNA profiling in the mouse heart, the Npr3, Hapln1, and Cdh11 gene expression is unique to EECs; while Fabp4, Mgll, and Cd36 gene expression is unique to CECs. qPCR data revealed enriched expression of these characteristic markers in their respective samples, indicating successful EEC and CEC isolation, as well as maintenance of cell phenotype, enabling further cell-specific functional analysis.

We present a protocol for the isolation of endocardial and coronary endothelial cells from rat hearts through sequential tissue digestion in a digestion buffer, cell collection from recurrent centrifuge cycles, and cell purification using anti-rat CD31 microbeads.

בידוד של תאי כלילית ותאים כליליים מהקיר החופשי של לב החולדה

It has been shown that endocardial endothelial cells (EECs) and coronary endothelial cells (CECs) differ in origin, development, markers, and functions. ...

Developmental Biology

An Immunological Model for Heterotopic Heart and Cardiac Muscle Cell Transplantation in Rats

Heterotopic heart transplantation in rats has been a commonly used model for diverse immunological studies for more than 50 years. Several modifications have been reported since the first description in 1964. After 30 years of performing heterotopic heart transplantation in rats, we have developed a simplified surgical approach, which can be easily taught and performed without further surgical training or background.
After dissection of the ascending aorta and the pulmonary artery and ligation of superior and inferior caval and pulmonary veins, the donor heart is harvested and subsequently perfused with ice-cold saline solution supplemented with heparin. After clamping and incising the recipient abdominal vessels, the donor ascending aorta and pulmonary artery are anastomosed to the recipient abdominal aorta and inferior vena cava, respectively, using continuous running sutures.
Depending on different donor-recipient combinations, this model allows analyses of either acute or chronic rejection of allografts. The immunological significance of this model is further enhanced by a novel approach of in-ear injection of vital cardiac muscle cells and subsequent analysis of draining cervical lymphatic tissue.

We describe a model of heterotopic abdominal heart transplantation in rats, implying modifications of current strategies, which lead to a simplified surgical approach. Additionally, we describe a novel rejection model by in-ear injection of vital cardiac muscle cells, allowing further transplant immunological analyses in rats.

מודל אימונוולוגי עבור הלב הטרוולפית ושריר הלב השתלת תא בחולדות

Heterotopic heart transplantation in rats has been a commonly used model for diverse immunological studies for more than 50 years. Several modifications ...

Immunology and Infection

Optocardiography and Electrophysiology Studies of Ex Vivo Langendorff-perfused Hearts

Small animal models are most commonly used in cardiovascular research due to the availability of genetically modified species and lower cost compared to larger animals. Yet, larger mammals are better suited for translational research questions related to normal cardiac physiology, pathophysiology, and preclinical testing of therapeutic agents. To overcome the technical barriers associated with employing a larger animal model in cardiac research, we describe an approach to measure physiological parameters in an isolated, Langendorff-perfused piglet heart. This approach combines two powerful experimental tools to evaluate the state of the heart: electrophysiology (EP) study and simultaneous optical mapping of transmembrane voltage and intracellular calcium using parameter sensitive dyes (RH237, Rhod2-AM). The described methodologies are well suited for translational studies investigating the cardiac conduction system, alterations in action potential morphology, calcium handling, excitation-contraction coupling and the incidence of cardiac alternans or arrhythmias.

The objective of this study was to establish a method for investigating cardiac dynamics using a translational animal model. The described experimental approach incorporates dual-emission optocardiography in conjunction with an electrophysiological study to assess electrical activity in an isolated, intact porcine heart model.

אופקרדיוגרפיה ולימודי אלקטרופיזיולוגיה של לשעבר Vivo נגדורף

Small animal models are most commonly used in cardiovascular research due to the availability of genetically modified species and lower cost compared to ...

A Simplified Model for Heterotopic Heart Valve Transplantation in Rodents

There is an urgent clinical need for heart valve replacements that can grow in children. Heart valve transplantation is proposed as a new type of transplant with the potential to deliver durable heart valves capable of somatic growth with no requirement for anticoagulation. However, the immunobiology of heart valve transplants remains unexplored, highlighting the need for animal models to study this new type of transplant. Previous rat models for heterotopic aortic valve transplantation into the abdominal aorta have been described, though they are technically challenging and costly. For addressing this challenge, a renal subcapsular transplant model was developed in rodents as a practical and more straightforward method for studying heart valve transplant immunobiology. In this model, a single aortic valve leaflet is harvested and inserted into the renal subcapsular space. The kidney is easily accessible, and the transplanted tissue is securely contained in a subcapsular space that is well vascularized and can accommodate a variety of tissue sizes. Furthermore, because a single rat can provide three donor aortic leaflets and a single kidney can provide multiple sites for transplanted tissue, fewer rats are required for a given study. Here, the transplantation technique is described, providing a significant step forward in studying the transplant immunology of heart valve transplantation.

This protocol describes a simple and efficient method for the transplantation of aortic valve leaflets under the renal capsule to allow for the study of alloreactivity of heart valves.

מודל פשוט להשתלת מסתם לב הטרוטופי במכרסמים

There is an urgent clinical need for heart valve replacements that can grow in children. Heart valve transplantation is proposed as a new type of ...

Rodent Working Heart Model for the Study of Myocardial Performance and Oxygen Consumption

Isolated working heart models have been used to understand the effects of loading conditions, heart rate and medications on myocardial performance in ways that cannot be accomplished in vivo. For example, inotropic medications commonly also affect preload and afterload, precluding load-independent assessments of their myocardial effects in vivo. Additionally, this model allows for sampling of coronary sinus effluent without contamination from systemic venous return, permitting assessment of myocardial oxygen consumption. Further, the advent of miniaturized pressure-volume catheters has allowed for the precise quantification of markers of both systolic and diastolic performance. We describe a model in which the left ventricle can be studied while performing both volume and pressure work under controlled conditions. 
In this technique, the heart and lungs of a Sprague-Dawley rat (weight 300-500 g) are removed en bloc under general anesthesia. The aorta is dissected free and cannulated for retrograde perfusion with oxygenated Krebs buffer. The pulmonary arteries and veins are ligated and the lungs removed from the preparation. The left atrium is then incised and cannulated using a separate venous cannula, attached to a preload block. Once this is determined to be leak-free, the left heart is loaded and retrograde perfusion stopped, creating the working heart model. The pulmonary artery is incised and cannulated for collection of coronary effluent and determination of myocardial oxygen consumption. A pressure-volume catheter is placed into the left ventricle either retrograde or through apical puncture. If desired, atrial pacing wires can be placed for more precise control of heart rate. This model allows for precise control of preload (using a left atrial pressure block), afterload (using an afterload block), heart rate (using pacing wires) and oxygen tension (using oxygen mixtures within the perfusate).

Isolated working heart models can be used to measure the effect of loading conditions, heart rate, and medications on myocardial performance and oxygen consumption. We describe methods for preparation of a rodent left heart working model that permits study of systolic and diastolic performance and oxygen consumption under various conditions.

מכרסם עבודת לב דגם לחקר ביצועי שריר לב ואת צריכת חמצן

Isolated working heart models have been used to understand the effects of loading conditions, heart rate and medications on myocardial performance in ways ...

Biology

A Heterotopic Rat Heart Transplantation Model using Circulatory Death Donor Hearts

The objective of this protocol is to set up a rat heterotopic heart transplantation model with donation after circulatory death (DCD) donor hearts. There are two setups for this protocol: heart donor setup and recipient setup. In the heart donor setup, Sprague Dawley rats are anesthetized, endotracheally intubated, and ventilated. The right carotid artery is cannulated to deliver heparin and the paralytic agent vecuronium-bromide. The DCD process is initiated by terminating the ventilation. After 20 min, the heart is exposed and the aorta distal to the brachiocephalic branch is clamped. At 25 min from terminating the ventilator, ice-cold University of Wisconsin (UW) solution is perfused through the carotid catheter to flush the heart. The heart is procured by dividing the aorta, pulmonary artery, venae cavae, and pulmonary veins and stored in UW solution for implantation. In the recipient setup, the Lewis rat is anesthetized with isoflurane. Slow-release buprenorphine is administered subcutaneously to facilitate a smooth postoperative recovery. Through a midline abdominal incision, the infra-renal aorta and the inferior vena cava are isolated and clamped with an atraumatic vascular clamp. The donor heart aorta and pulmonary artery are sutured to the recipient abdominal aorta and vena cava, respectively, with a running 8-0 Prolene. The vascular clamp is removed to reperfuse the heart. The abdominal wall is closed and the rat is recovered. After a set interval (24 h to 2 weeks), the recipient rat is anesthetized, the transplanted heart is exposed, and a balloon-tip-catheter is inserted into the left ventricle via the apex to record developed pressure and dP/dt using a data acquisition system. The heart tissue is collected for histology, immunology, or molecular analysis. A successful DCD donor rat heart transplantation model will allow further studies on the cardioprotective approaches to improve heart transplantation outcomes from DCD donors.

<meta charset="utf8"></head><body>מודל השתלת לב חולדה הטרוטופי באמצעות לבבות תורמי מוות במחזור הדם

Here, we describe the preparation and technical details of murine heterotopic heart transplantation utilizing a circulatory death donor heart.

מודל השתלת לב חולדה הטרוטופי באמצעות לבבות תורמי מוות במחזור הדם

The objective of this protocol is to set up a rat heterotopic heart transplantation model with donation after circulatory death (DCD) donor hearts. There ...

A Model of Long-Term Ventricular Fibrillation in Isolated Rat Hearts

Ventricular fibrillation (VF) is a fatal arrhythmia with a high incidence in cardiac patients, but VF arrest under perfusion is a neglected method of intraoperative arrest in the field of cardiac surgery. With recent advances in cardiac surgery, the demand for prolonged VF studies under perfusion has increased. However, the field lacks simple, reliable, and reproducible animal models of chronic ventricular fibrillation. This protocol induces long-term VF through alternating current (AC) electrical stimulation of the epicardium. Different conditions were used to induce VF, including continuous stimulation with a low or high voltage to induce long-term VF and stimulation for 5 min with a low or high voltage to induce spontaneous long-term VF. The success rates of the different conditions, as well as the rates of myocardial injury and recovery of cardiac function, were compared. The results showed that continuous low-voltage stimulation induced long-term VF and that 5 min of low-voltage stimulation induced spontaneous long-term VF with mild myocardial injury and a high rate of recovery of cardiac function. However, the low-voltage, continuously stimulated long-term VF model had a higher success rate. High-voltage stimulation provided a higher rate of VF induction but showed a low defibrillation success rate, poor recovery of cardiac function, and severe myocardial injury. On the basis of these results, continuous low-voltage epicardial AC stimulation is recommended for its high success rate, stability, reliability, reproducibility, low impact on cardiac function, and mild myocardial injury.

This protocol presents a model of long-term ventricular fibrillation in rat hearts induced by continuous stimulation with low-voltage alternating current. This model has a high success rate, is stable, reliable, and reproducible, has a low impact on cardiac function, and causes only mild myocardial injury.

מודל של פרפור חדרים ארוך טווח בלבבות חולדות מבודדים

Ventricular fibrillation (VF) is a fatal arrhythmia with a high incidence in cardiac patients, but VF arrest under perfusion is a neglected method of ...

Rat Model of Normothermic Ex-Situ Perfused Heterotopic Heart Transplantation

Heart transplantation is the most effective therapy for end-stage heart failure. Despite the improvements in therapeutic approaches and interventions, the number of heart failure patients waiting for transplantation is still increasing. The normothermic ex situ preservation technique has been established as a comparable method to the conventional static cold storage technique. The main advantage of this technique is that donor hearts can be preserved for up to 12 h in a physiologic condition. Moreover, this technique allows resuscitation of the donor hearts after circulatory death and applies required pharmacologic interventions to improve donor function after implantation. Numerous animal models have been established to improve normothermic ex situ preservation techniques and eliminate preservation-related complications. Although large animal models are easy to handle compared to small animal models, it is costly and challenging. We present a rat model of normothermic ex situ donor heart preservation followed by heterotopic abdominal transplantation. This model is relatively cheap and can be accomplished by a single experimenter.

Here, we present an assessment protocol of a heterotopically implanted heart after normothermic ex situ preservation in the rat model.

מודל עכברוש של השתלת לב הטרוטופית נורמומית לשעבר

Heart transplantation is the most effective therapy for end-stage heart failure. Despite the improvements in therapeutic approaches and interventions, the ...

מודל הלב הפוכה עבור אוסף transstate Interstitial מן הלב עכברוש מבודד

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

מערכת העבודה לב מבודדת למודלים בבעלי חיים גדולים

בידוד של תאי כלילית ותאים כליליים מהקיר החופשי של לב החולדה

מודל אימונוולוגי עבור הלב הטרוולפית ושריר הלב השתלת תא בחולדות

אופקרדיוגרפיה ולימודי אלקטרופיזיולוגיה של לשעבר Vivo נגדורף

מודל פשוט להשתלת מסתם לב הטרוטופי במכרסמים

מכרסם עבודת לב דגם לחקר ביצועי שריר לב ואת צריכת חמצן

מודל השתלת לב חולדה הטרוטופי באמצעות לבבות תורמי מוות במחזור הדם

מודל השתלת לב חולדה הטרוטופי באמצעות לבבות תורמי מוות במחזור הדם

מודל של פרפור חדרים ארוך טווח בלבבות חולדות מבודדים

מודל עכברוש של השתלת לב הטרוטופית נורמומית לשעבר