המחברים רוצים להודות Kami האריס לעיצוב פריימר, אשלי McKibbon, ג'סיקה תומאס-Ebbett עבור הצילומים, ג'ון בלייקלי, אלכסנדרה פולי-Eby, כריס לאנגלי, ג'ולי לואיס, קלסי מקנטייר, אשלי McKibbon, כריס אלוהים ואני רוזי את הכלב על הופעה וידאו. א צברי נתמכה על ידי קרן המחקר הקנדי של מחלת ליים, מימון הפרויקט נמסר על-ידי מדעי הטבע, הנדסה מחקר המועצה של קנדה (NSERC). M. K. B. W קיבל משכורת המימון של קרן חדשנות ניו ברנזוויק (NBIF).

1. DNA בידוד מפני קרציות
<ol><li>רוכשים קרציות דרך שדה אוסף או מעקב סביל וטרינרים, הציבור. קרציות צריכים להיות נהרג על ידי הקפאת, להציב בשקית אטומה, שלח בטמפרטורת החדר.<ol>
<li>באמצעות טופס ההגשה, לאסוף מידע על תאריך, מיקום גיאוגרפי של המפגש, מצב קובץ מצורף שנתות, המארח מינים, נסיעות להיסטוריה של המחשב המארח.</li>
		<li>מאז ה-PCR מקונן הוא מטבעו פגיעים לזיהום, ודא כי סביבת העבודה מעבדה מוגדרת כדי למזער את הצלב-חשיפה של דגימות. פעולה זו כוללת ביצוע אלמנטים שונים של הפרוטוקול בקובץ נפרד חללים טוב מבודדים אחד מהשני הם מנקים ביסודיות את מחוטא, ולהבטיח כי כל כלים חופשיים של מזהמים.</li>
		<li>עם קבלת הדגימה, לצלם את תקתוק ולקבוע מינים, שלב התפתחותי, מין ומצב engorgement על ידי השוואה זיהוי מפתח32 .</li>
		<li>בתנאים aseptic, קטיעות השניה באמצעות גילוח סטרילי או אזמל, למקם את השברים שנתות שני צינורות microcentrifuge נפרדים.</li>
	</ol>
</li>
	<li>כדי לחלץ סך ה-DNA, להשתמש בכל הליך בידוד המניבה PCR תואמי תבנית; פרוטוקול זה מדגים גישה מבוססת קלאציה פשוטה.<ol>
<li>התחל על-ידי הוספת אמצעי אחסון המתאים (לעיתים קרובות בין 50-200 µL) של ריאגנט קלאציה lytic למקטע שנתות. הסכום הספציפי תלוי הדגימה הגודל engorgement ומצב; הנחיות צריך להינתן על ידי היצרן. Homogenize באמצעות כבעלי microtube.</li>
		<li>דגירה בדגימות באמבט מים ב 60 מעלות צלזיוס במשך 45 דקות, ו מערבולת בקצרה.</li>
		<li>צנטריפוגה דגימות במשך 4 דקות ב x 16,276 g (ומכרה כ-13,300 סל ד) ב- microcentrifuge שולחן העבודה.</li>
		<li>העברה תגובת שיקוע microtube טריים, שכותרתו המכיל 50 אלכוהול איזופרופיל µL, שילוב על-ידי היפוך ולאחר centrifuge מחדש כמו (1.2.3).</li>
		<li>Decant את תגובת שיקוע, ולשטוף את צניפה DNA עם 50 µL של 70% אתנול.</li>
		<li>להסיר את עודף אתנול עם פיפטה, ולאפשר בגדר מילה נהדרת. למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
		<li>Resuspend DNA, להוסיף 50 µL של 1 מ מ טריס pH 7.0 של דגירה בדגימות באמבט מים עבור h 1-60 ° C. עכשיו ניתן לאחסן את ה-DNA ב-20 ° C לבדיקה מולקולרית בעתיד.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. PCR לזיהוי של Borrelia OspA , FlaBמקונן.
הערה: סקירה כללית של כללי PCR עקרונות ושיטות מסופק על ידי לורנץ, 201233.
<ol><li>לסנתז או להשיג Borrelia גנים ספציפיים החיצוני והפנימי לנוקלאוטידים. ראה טבלה 1 פריימר ערכות שלהם גדלים אמפליקון בהתאמה, טמפרטורות ההיתוך.</li>
</ol><table border="1"><tbody>
<tr>
<td>פריימר שם</td>
			<td>ג'ין היעד</td>
			<td colspan="2">רצף (5' - 3')</td>
			<td>גודל אמפליקון</td>
			<td>חישול טמפרטורה</td>
		</tr>
<tr>
<td>FlaB החוצה Fw</td>
			<td>FlaB</td>
			<td colspan="2">gcatcactttcagggtctca</td>
			<td rowspan="2">503 bp</td>
			<td rowspan="2">55° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>FlaB החוצה Rv</td>
			<td>FlaB</td>
			<td colspan="2">tggggaacttgattagcctg</td>
		</tr>
<tr>
<td>FlaB ב- Fw</td>
			<td>FlaB</td>
			<td colspan="2">ctttaagagttcatgttggag</td>
			<td rowspan="2">447 bp</td>
			<td rowspan="2">58° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>FlaB ב Rv</td>
			<td>FlaB</td>
			<td colspan="2">tcattgccattgcagattgt</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA אאוט Fw</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">cttgaagttttcaaagaagat</td>
			<td rowspan="2">487 bp</td>
			<td rowspan="2">55° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rv OspA החוצה</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">caactgctgacccctctaat</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA ב Fw</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">acaagagcagacggaaccag</td>
			<td rowspan="2">350 bp</td>
			<td rowspan="2">58° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA ב Rv</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">ttggtgccatttgagtcgta</td>
		</tr>
</tbody></table>טבלה 1: הפנימיים והחיצוניים צבעי יסוד nPCR של Borrelia burgdorferiFlaB, OspA. בפועל, לזהות תחל FlaB burgdorferi בי אס מקרוב נלווים אחרים Borrelia genospecies, בעוד OspA תחל ללכוד רק burgdorferi נולד ב- אס הגברה של שני לוקוסים יצביע B. burgdorferi. אס
<ol start="2"><li>מראש לעקר את ארון PCR עם UV אור ו- 70% אתנול. הערה: כדי לצמצם אפשרות של זיהום הדגימה, סביבת עבודה זו צריכה להיות ברורים מהמיקום של שנתות לנתיחה, הפקת דנ א, והוא ג'ל אלקטרופורזה.<ol>
<li>לריצה PCR הראשונית, להשתמש את תחל החיצוני בשילוב עם תבנית ה-DNA התאושש בשלב 1.0 לעיל, ולהגדיר את תערובת התגובה כמפורט בטבלה מס ' 2. במקביל, לבצע חיובי הבקרה פועל המורכב מאומת Borrelia DNA, ופועל שליטה שלילי כולל תגובות לא-תבנית כדי לזהות זיהום ריאגנט, תרסיס. להוסיף את הדנ א בסוף כדי לצמצם אפשרות של ריאגנטים זיהום. ודא שכל שפופרת סגורה בכלל פעמים כאשר ריאגנטים אינן מתווספות וסגור צינורות מיד לאחר תוספת ה-DNA, ולפני צינורות אחרים נפתחים.</li>
		<li>תוכנית הצנטרפוגה תרמי כדלקמן: 95 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות; 40 מחזורי 95 ° C 15 s, חישול טמפרטורה ל 30 s, 72 מעלות צלזיוס במשך 45 s; 72 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות; ולהחזיק ב 4 º C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>ביצוע השלב השני של ה-PCR הדומה התגובה הראשונה, אלא להשתמש תחל פנימי עם 2 µL של המוצר הראשון PCR (מיוצר 2.2.2). הערה: התגובה כרכים ניתנים שוב בטבלה 2. יש לנקוט כדי למנוע זיהום של amplicons על-ידי תבנית ה-DNA מתווסף אחרונה מבטיחות כי צינורות היחיד המתאים דוגמא אחת פתוחות בו-זמנית. 
	 
	<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>רכיב</td>
				<td>PCR # 1 כרכים</td>
				<td>PCR # 2 כרכים</td>
			</tr>
<tr>
<td>Taq מיקס מאסטר פולימראז 2 X</td>
				<td>12.5 ΜL</td>
				<td>12.5 ΜL</td>
			</tr>
<tr>
<td>נוקלאז ללא מים</td>
				<td>8.5 ΜL</td>
				<td>8.5 ΜL</td>
			</tr>
<tr>
<td>10 מיקרומטר תחל לפנים ולא לאחור</td>
				<td>תחל החיצוני 1.0 µL</td>
				<td>1.0 µL תחל פנימי</td>
			</tr>
<tr>
<td>תבנית ה-DNA</td>
				<td>µL 2.0, בין מדגם החילוץ (1.2.7)</td>
				<td>µL 2.0, סיבוב 1 של ה-PCR (2.2.2)</td>
			</tr>
</tbody></table>
טבלה 2: ה-PCR התגובה תערובות amplifications הראשון והשני. 
	 
	<ol>
<li>תוכנית הצנטרפוגה תרמי כמו קודם, אבל להתאים את טמפרטורת מחזק כדי להתאים את צבעי יסוד הפנימי (ראה טבלה 1).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Agarose בג'ל והדמיה
הערה: לקבלת הוראות בסיסיות המפריד בין ה-DNA על ידי אלקטרופורזה, ראה לי et al., 201234.
<ol><li>הכנת ג'ל 1.2% agarose באמצעות מאגר X SB 20 (0.2 מ' NaOH, pH פנמיות 0.8 מ' 8), מדולל 1 X, ולהוסיף כ 5 µL של כתם דנ א, לפני לשפוך, אם מראש מכתים של הג'ל רצוי.</li>
	<li>לטעון 10 µL של המוצר מן התגובה השנייה PCR (הפנימי) של כל ניסיוני, ולטעום שליטה, לצד סולם bp 100 (5 µL).<ol>
<li>Electrophorese עבור 1 h 107 V (5V/ס מ).</li>
	</ol>
</li>
	<li>להציג ולתעד את הג'ל באמצעות transilluminator ו המשויכים מצלמה ותוכנות.</li>
</ol>

המחברים אין לחשוף.

במשך עשרות שנים של שימוש, טכניקות מבוססות PCR בעקביות הוכיחו את ערכם זיהוי Borrelia של דגימות arthropod, יונקים, אם Borrelia לבוא ממקורות סביבתיים או קליניים. PCR מציע שיפורים רבים קיימות גישות מעקב. ראוי לציין, שזה לא מסתמך על פיתוח, הביצועים של נוגדן ריאגנטים, במקום זאת ניתן להתאים בקלות לזהות מטרות חדשות עניין פשוט על ידי שינוי רצף פריימר. PCR להכיל גם הערכת לוקוסים מרובות במקביל, או באופן עצמאי או באמצעות תגובת מולטיפלקס. ניתן להחיל אותה על תשומות הדגימה מגוונים, כולל קרציות בארכיון ורענן22, חיה או בנוזלי הגוף האנושי של רקמת resected25. PCR גם התשואות amplicons זה יכול להיות מעובד יותר, לדוגמה על-ידי אנזים הגבלה עיכול, בדיקה הכלאה או רצף, כדי לספק תובנות זהות מיקרוביאלי21מוגברת.
ככלי קליני, PCR עדיפה מבחינה מושגית על האבחון סרולוגית רגיל, כפי שהיא מספקת מהווה אינדיקציה ישירה של נוכחות חיידקית, במקום להסתמך על התגובה החיסונית מארח כאמצעי משני לזיהום. לעומת זאת, ליים borreliosis מזוהה עם עומס מיקרוביאלי צנוע יחסית (< אורגניזמים 50/mL של שתן או פלזמה) ותוצאות spirochetemia ארעי, אשר יכולים להצמיח שלילית25. הרגישות של טכניקה זו במרפאה משתנה במידה ניכרת בהתאם לסוג הרקמה, שלב של זיהום, ובכל תנאי לדוגמה, נופל בין 12.5% ל- 62% במחקרים קיימים של דם, נוזל מוחי שדרתי הרקמה ביופסיה36. רגישות מולקולרית מגבלות אינם מעניינו של אם PCR נעשית לאחר התרבות חיידקי, אולם התאוששות של קיימא והחיידקים דגימות קליני הוכיח באופן דומה מאתגר. רק לאחרונה יש פרוטוקולים כבר אופטימיזציה עבור תשואה גבוהה יותר35. בינתיים, הכרס קרצייה נגועה למבוגרים יכול הנמל בממוצע בכל מקום מ- 2,000 ל מעל 50,000 Borrelia37,38,39, אשר באופן יציב בטווח זיהוי של nPCR. לפיכך, הפרוטוקול הוא גם מתאים למאמצים מעקב שנתות.
למרות יתרונותיה הרבים, nPCR מציבים אתגרים מסוימים, והיכולת של טכניקה זו לדווח במדויק שנתות זיהום ולכן תלויה הבחירה האסטרטגית של הגנים ושל amplicons, מוקפד זרימות עבודה ניסויית לשחזר איכות דנ א מ דגימות תוך מזעור קרוס-חשיפה של דגימות, ושימוש של הפקדים המתאימים ידווח מזהמים סביבת מעבדה, ריאגנטים. לפני כל ניסוי, והיקפה, הכוונות של החקירה צריכה כל כך ברור כך אתרים המקודדים גנטי המתאים ואזורים, ניתן לבחור אם המטרה היא לספק ומציג מסך לא משוחדת ס גורמי ליים Borrelia burgdorferi מורכבים, תחל ליצור כדי לזהות את כל של זנים הקשורים עם זיקה דומה, הגברה יעילות, ללא לכידת בלא אורגניזמים25. יכול להיות מעוצב חדשה תחל ועל המוערך סיליקו באמצעות כלי תוכנה כמו פריימר-הפיצוץ40, למרות שהם גם לאמת השפעול נגד הפניה רגיל מבודד לפני שחל דגימות uncharacterized. המטרה של ההליך מיצוי הדנ א היא להתאושש תבנית חיידקים שלמים מדגם הסביבה מעורב (שנתות homogenate). שלב אופציונלי לפני שתמשיך עם ה-PCR היא להעריך את תקינות ה-DNA שחולץ. בנוסף, ריאקציות מקבילות יכול להגדיר את היעד גנים משק הבית ב תקתוק. השיטה השנייה יכול גם להצביע על קיומו של מעכבי בתערובת התגובה, מתן ביטחון מוגבר כי Borrelia תגובות שליליות הן בשל העדר של האורגניזם, ולא על נוכחות מזהם מעכבות.
רגישות מוגברת של הגישה PCR מקוננים בא על חשבון זיהום פוטנציאליים שיוצר תוצאות חיוביות שגויות. יכול להיות מוצג תבנית אקסוגני מדגם במהלך שנתות ניתוח ושחזור DNA, או בתהליך של הגדרת את התגובות הגברה חיצוניות ופנימיות. לכן חשוב במיוחד לעקוב אחר פרוטוקולים האימון הטוב ביותר עבור PCR להימנע תבנית או אמפליקון זיהום צולב. אלה כוללים את השימוש תחנות עבודה נפרד עם ליאורה פרידמן עצמאית, בלימה ב- PCR וארונות בטיחות ביולוגית, ובמידת יסודית כימית פיזית ומנקה עיקור של משטחים, ריאגנטים, וטיפול זהיר של דנ א 41. הפקדים מתבנית לא חיוניים גם בזיהוי של ריאגנטים מניות זיהום. פגיעות מסוג מסוים של nPCR הוא אמפליקון טיפול זה מתרחשת בעת העברת המוצרים של התגובה הראשונה לתוך כלי ה-PCR שני. מאז המטרה DNA כבר עברה העשרה מעריכי הדגימות החיוביות, השלב זה נוטה במיוחד כדי זיהום צולב, נוהל בודדת-הצינור nPCR פותחה כדי לעקוף מגבלה זו. בגישה זו, שתי קבוצות של צבעי יסוד גן נתון יתווספו יחד צינור התגובה נשאר אטום עבור שני סיבובים של PCR31. זוגות תחל החיצוני והפנימי חייב להיות ברור למה, כזה כי הזוג החיצוני מגביר את תבנית בטמפרטורה מחזק גבוהה זה אוסרני עבור תחל הפנימית. בסיבוב השני, הטמפרטורה מחזק הוא הוריד כדי להכיל את זוג פנימי. לא רק האם זה לעקוף את צעד שעשוי להיות מבלבלים, הוא גם מאפשר שימוש נוסף נגד זיהום מודד31,42. עם זאת, שינוי זה עשוי להקריב רגישות וזמינותו. ללא קשר הגישה, הגדלת מספר משכפל הטכנית לבצע באופן עצמאי על מדגם תסייע לזהות זיהום כדין.
טכניקות מולקולריות המשיכו להתפתח מאז כניסתה של nPCR, גישות חדשות אלה מציעים יתרונות בחר העיצובים המקוריים, אמנם על הגדילה בהוצאה כספית. כפי שהשם מרמז, ה-PCR כמותי (qPCR או אמת זמן (RT)-PCR) מאפשר הספירה של פתוגנים במדגם, ואילו טכניקות שגרתיות איכותי בטבע43. הרגישות של qPCR אמנם הדיווחים דומה לזה של nPCR38, זה יכול להשתנות בהתאם פריימר מאפיינים28. וריאציה של qPCR המשתמשת משואות מולקולרית (MB) במקום קונבנציונאלי הגששים TaqMan הראו גם מבטיחה זיהוי Borrelia ב דגימות קליניות-44,-45,-46. בשל מבנה שניוני הייחודי שלהם, משואות מולקולרית לייצר הדיווחים התחתון רקע זריחה, אותות לגיטימי גבוה יותר, ובכך מספק רגישות מעולה47. הערכות קליניים מראים את הסף זיהוי פוטנציאל של בין עשרה ואחד והחיידקים44,45. יתר על כן, הטכניקה יושם בהצלחה בתגובות מולטיפלקס בו-זמנית לזהות גנים המארח בתרבית של44 ו אחרים שנוטלים פתוגנים45, אשר אינו בר השגה בחפץ-לב עם nPCR. שינויים עיצוב אחרים כוללים טכנולוגיה PCR (ddPCR) דיגיטלי רביב, אשר יכולים לכמת DNA ללא שימוש עיקול רגיל39,48. הגבול התחתון זיהוי של טכניקה זו עבור Borrelia הוא גם שמרכז/לדוגמה בערך עשרה39. בהשוואה nPCR, גישות אלה יש גם את היתרון של צמצום פוטנציאל זיהום, כפי שהם דורשים רק נוהל בודדת הגברה.
אם מטרת המעקב במקום לעשות פרופיל תכולת חיידקי מגוונת קרצייה, מטוסי אף-16 rRNA metagenomic ההקרנה היא אפשרות אטרקטיבית49. אף על פי גישה זו היא costlier, דורש מיוחדים סקוונסרים דנ א לא נמצאו כל מעבדות ביולוגיה מולקולרית, מחייבת פרשנות המבוססת על ביואינפורמטיקה מתוחכמים יותר, הוא יכול ללכוד קשת רחבה של חיידקים יותר במדויק מייצגים את העומס הפתוגן של וקטור.
בעוד qPCR ונגזרותיו הן שיטות של בחירה עבור יישומים כמותית, metagenomics מספקים מלאי רחב של microbiome שנתות, מאמצי המעקב יישוב מודאגים לעתים קרובות עם דיווח בינארי של נוכחות או היעדרות של פתוגנים אחד או כמה בוקטור. בנסיבות כאלה, גישות אלה חדשה יותר, משוכלל יותר עשויים להציג המורכבות מיותר ואת הנטל הכלכלי לתוך התהליך. מסיבות אלו, nPCR יש מהתעמולה במבחן הזמן כמו טכניקה מרכזית ב שנתות בדיקות.

מחלת ליים (LD) הוא הזיהום בעקיצות וקטורי הנפוץ ביותר בחצי הכדור הצפוני, שכיחותה ממשיך לגדול1. מחלה מתישה זו נגרמת על ידי פתוגנים spirocheteal של ליים borreliosis (LB) מורכבים (בדרך כלל מכונה לאטו. שאתה Borrelia burgdorferi , או ס), אשר מבחינה היסטורית כוללת את הפתוגן בצפון אמריקה הדומיננטית, B. burgdorferi . שאתה stricto (אס), בנוסף afzelii ב' garinii ב', אשר נפוץ ברחבי אירופה ואסיה, ויש מינים של המתעוררים הרלוונטיות הקלינית2,3. חיידקים אלה מועברים לבני אדם באמצעות הנשיכה של נגוע Ixodes קרציות2. למרות הווקטורים בצפון אמריקה המרכזית scapularis ט וט pacificus, מרובות בתוך הסוג התגלו הנמל ולהעביר את החיידק4. בבני אדם, נולד ב- burgdorferi יכול לגרום לסימפטומים מכשל המשפיעים על העור המפרקים, הלב, מערכת העצבים, בלוטות אנדוקריניות, מערכת העיכול, האיברים הפנימיים5,6,7, 8,9,10. המרכז לבקרת מחלות ומניעתן הערכות כיום מעל 300,000 מקרים אנושיים חדשים מדי שנה בארצות הברית11,12. בזמן האבחנה היא חיובית לעיתים קרובות כאשר המחלה מאובחנים ומטופלים בשלבים המוקדמים, מחקרים הראו כי בכל מקום בין 10% ו- 60% מהחולים אשר קיבלו את משטר אנטיביוטי המומלצת המשיך לחוות סימפטומים לאחר טיפול הפסקת, בתופעה כינה תסמונת מחלת ליים טיפול פוסט (PTLDS)13,14,15. יתר על כן, עיכובים בהתערבות קלינית יכול להיווצר עקב חוסר המודעות של קרצייה, שאינם ספציפיים במצגת של המחלה הראשונית, ואת הרגישות הנמוכה של מסורתי באבחון מבוסס סרולוגיה בעת שימוש עם תחילת הזיהום. כשל לטפל במהירות והולם מאפשר התקדמות סימפטום זה יכול להתבטא יותר ויותר מתישה סיבוכים16,17. מניעת מחלת ליים לכן אבן יסוד של ניהול סיכונים. אסטרטגיות כדי להתמודד עם האיום הגוברת כוללת מעקב חזקים אמצעים כדי לציין את השכיחות הפתוגן קרציות וזהה אזורים גיאוגרפיים של דאגה.
מאמר זה מדגים את התועלת של תגובת שרשרת של פולימראז מקוננים (nPCR) ככלי מיון המולקולרי שבאמצעותו לזהות קרציות נגועים. כדי להגדיל ירידה לפרטים, שני גנים Borrelia משמשים עבור הגברה מקבילים. Flagellin B (FlaB) מקודד חלבון פילמנט הגדולות שוטון18, הגן ממוקם בכרומוזום ליניארי יחיד, בעוד שהמוצר ליפופרוטאין החיצון משטח חלבון א' (OspA) שמתווכת קרציות-פיתול קולוניזציה, הוא פלסמיד מקודד19,20. זרימת העבודה מורכב אוסף שנתות, הפקת דנ א, ולאחר מכן התחלתית של ה-PCR לזיהוי Borrelia-לוקוסים ספציפיים. PCR עוקבות משתמש המוצר של התגובה הראשונה תבנית חדשה להפקת רסיסים קטנים, פנימי הגברה. קרציה נחשב חיובי עבור Borrelia burgdorferi כאשר ניתן להבחין amplicons הפנימי של שני הגנים Borrelia agarose בג'ל.
הטכניקה nPCR, ולא של FlaB וגם מטרות הגן OspA , היה בשימוש נרחב עבור מעקב אקולוגית וזיהוי קליני של החיידק ליים מאז תחילת שנות ה-9021,22,23 ,24,25. לפני הפיתוח של פרוטוקולים מולקולרית, קרציות היו העריכו במינים תוכן הבטן אנטי -Borrelia immunofluorescence (אם) מכתים, התרבות חיידקים או שילוב הימנו26. גישות אלה סובלים מגבלות הטבועות, כולל את הצמיחה האיטית והטבע בררן27 Borrelia, בעיות ביצועים נוגדן ואת הדרישה של קרציות בשידור חי אם עיבוד21. PCR לאחר מכן אומץ כדי לספק זיהוי מהיר, רגיש, וספציפי של וקטורים נגועים. הוא הציע שיפורים מסומן על המתודולוגיה מסורתיים, כולל יישום ישיר תלויית תרבות לסוגי הדגימה מגוונים, כמו קרציות בארכיון ומתה שאחרת היה מתאים לבדיקה21,22 . עיצובים מוטוריים מקוננות נוספות להשתפר ירידה לפרטים, ורגישות של ה-PCR קלאסית על ידי העסקת שתי מערכות נפרדות של גנים ספציפיים תחל בשני סבבים רצופים של הגברה25,28.
ניסיוני ההצלחה תלויה באופן ביקורתי בחירה אסטרטגית גנים ועיצוב אמפליקון. כדי לאמוד במדויק את הנוכחות של Borrelia burgdorferi, תחל אמור לזהות פתוגנים הרלוונטי ללא cross-reacting עם חום relapsing והחיידקים גם של הסוג Borrelia . במקרה של FlaB, סגוליות זה מושגת על ידי מיקוד משתנה אזור פנימי של הגן, יותר מאשר את רצפי איגוף יחסית שנשמרת שמשותפות מגוונות חיידקים (איור 1)24,29 , 30.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56471/56471fig1.jpg"> איור 1: הרעיון של nPCR, כמופיע באמצעות Borrelia FlaB ג'ין כמטרה. טרמיני 5' ו 3' של הגן נפוצים לאורגניזמים מעבר ס Borrelia burgdorferi , טיוח אזורים אלה מתאימים להערכה ספציפית של פתוגנים הגורמים ליים. באמצעות הרצף פנים והתפאורה פחות כמטרות פריימר, שני סיבובים של PCR מתבצעות כדי לזהות אמפליקון גמר, פנימי. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56471/56471fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
בבדיקה של קיבולת המפלה שלהם, תחל FlaB הפנים היו קיצוניות מעל 80 מבודד Borrelia שונים, וניתן למצוא כדי לזהות רק אלה הקשורים במחלת ליים24. הגבול התחתון של זיהוי של nPCR תועד ב בין שישה24 וחיידקים31 עשר מתרבות טהור, למרות הרגישות ניתן לשפר עוד יותר על ידי הדרומי סופג את אמפליקון, hybridizing radiolabelled או בדיקה chemiluminescent. צימוד הטכניקות מפחית את סף גילוי שמחולל יחיד31. על ידי השוואה ישירה, PCR יחיד-עגולים המקובלת, unprobed נמצאה לדווח הנוכחות של מינימום של4 10 והחיידקים31. יצוין, עם זאת, כי רגישות assay יהיה נמוך יותר בעת עבודה עם דגימות קליניות וסביבתיות מורכבים, בשל נוכחותם המכריע של DNA שאינם קשורים וחומרים מעכבות פוטנציאליים. האתגרים הללו יכולים שיפרו במידה רבה על ידי שימוש nPCR.
למרות ההתקדמות הטכנולוגיות מולקולרית בעשורים האחרונים, nPCR נשאר טכניקה סיכות מאמצי המעקב המודרנית. אם הטיפול נלקח עיצוב, ביצוע של פרוטוקול זה, זה בגישה רב-עוצמה, יכולת הסתגלות, פשוטה יחסית כדי ללכוד את הנוכחות של פתוגנים בוקטורים שנתות.

<table><tbody><tr><td>LabGard Class II, Type A2 biological safety cabinet</td><td>Nuaire</td><td>ES AIR NU-543&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Razor blades</td><td>VWR</td><td>55411-050</td><td>0.22 mm thickness</td></tr><tr><td>Microfuge Tubes (Microtubes 1.5 mL)</td><td>Axygen</td><td>311-08-051</td><td></td></tr><tr><td>AquaGenomic&amp;nbsp;</td><td>MultiTarget Pharmaceuticals</td><td>2030</td><td>DNA extraction reagent</td></tr><tr><td>Microtube Pestle</td><td>Diamed</td><td>DIATEC610-1551</td><td>Designed for 1.5 ml tubes</td></tr><tr><td>Water bath - Isotemp 202</td><td>Fishse Scientific</td><td>15-462-2</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Labnet</td><td>S0100 CAN</td><td></td></tr><tr><td>Spectrafuge 24D Digital Microcentrifuge</td><td>Labnet</td><td>C2400</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>190764</td><td></td></tr><tr><td>BIS-TRIS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B9754</td><td></td></tr><tr><td>Primer Synthesis</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>OLIGO</td><td></td></tr><tr><td>PCR Cabinet</td><td>Misonix</td><td>PCR6-482</td><td></td></tr><tr><td>PCR tube with attached flat caps 0.2mL</td><td>VWR</td><td>20170-012</td><td></td></tr><tr><td>GoTaq Green Master Mix 2x</td><td>Promega</td><td>M7123</td><td></td></tr><tr><td>Nuclease-free water</td><td>Promega</td><td>M7123</td><td>The water comes with the GTG</td></tr><tr><td>Spectrafuge Mini</td><td>Labnet</td><td>C1301</td><td></td></tr><tr><td>SYBR Safe DNA Stain 10,000X Concentration</td><td>EDVOTEK</td><td>608</td><td></td></tr><tr><td>Froggarose LE (Molecular Biology Grade Agarose)</td><td>FroggaBio</td><td>A87-500G</td><td></td></tr><tr><td>GD 100 bp DNA Ladder</td><td>FroggaBio</td><td>DM001-R500&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Electrophoresis power pack&amp;nbsp;</td><td>VWR</td><td>VWR 105</td><td>EC Apparatus Corporation</td></tr><tr><td>Fluor-S MultiImager&amp;nbsp;</td><td>BioRad</td><td>170-7700 (Serial number 433B0154)</td><td></td></tr><tr><td>Quantity One 1-D Analysis Software (V. 4.5.2)</td><td>BioRad</td><td>1709600</td><td></td></tr></tbody></table>

detecting the lyme disease spirochete, borrelia burgdorferi, in ticks using nested pcr

מחלת ליים היא זיהום רציני בעקיצות וקטור הנגרם על ידי משפחת לאטו Borrelia burgdorferi כמו. שאתה והחיידקים, אשר מועברים לבני אדם באמצעות הנשיכה של קרציות Ixodes נגוע. הסוכן etiological ראשי בצפון אמריקה הוא stricto. שאתה Borrelia burgdorferi . אזורי הסיכון הגיאוגרפי הרחב, זה שקול לשם תמיכה בתוכניות מעקב חזקים יכולים למדוד שנתות זיהום המחירים, ולא לדווח ממצאים רופאים, וטרינרים, והציבור הרחב. הטכניקה מולקולרית של תגובת שרשרת של פולימראז מקוננים (nPCR) שימש זמן למטרה זו, והוא נותר בגישה המרכזי, זול וחזק זיהוי Borrelia קרציות והן חיות הבר.
מאמר זה מדגים את היישום של nPCR לסמן את תמציות דנ א כדי לזהות דגימות נגועים. שני עצמאית burgdorferi נולד ב- מטרות, גנים קידוד Flagellin B (FlaB) החיצון משטח חלבון א' (OspA), נעשה שימוש נרחב בטכניקה זו. הפרוטוקול כרוך אוסף שנתות, הפקת דנ א, ולאחר מכן התחלתית של ה-PCR לזהות כל אחד שני Borrelia-לוקוסים ספציפיים. תגובת שרשרת של פולימראז עוקבות (PCR) משתמש המוצר של התגובה הראשונה תבנית חדשה להפקת רסיסים קטנים, פנימי הגברה. הגישה מקוננים משפר על ירידה לפרטים והן רגישות של ה-PCR קונבנציונלי. קרציה נחשב חיובי עבור המחלה כאשר ניתן להבחין amplicons הפנימי של שני הגנים Borrelia agarose בג'ל.

nPCR היא גישה אלגנטית כדי להגביר את ירידה לפרטים ואת הרגישות של זיהוי הפתוגן, במיוחד כאשר הם דוגמאות סביבתיים מורכבים תחת חקירה. כמתואר באיור1, שני סיבובים של PCR פילוח אזור אסטרטגי של לוקוס Borrelia FlaB (וגם OspA, לא בתמונה) יכול לדווח על נוכחותם של חיידקים Borrelia burgdorferi באמצעות הדור של הפנימית קצר amplicons. כאשר נפתרה על ידי אלקטרופורזה בג'ל, המוצרים FlaB התגובה OspA מן כל שנתות יכול להיות חזותי הבקיע והשוו פקדים. איור 2, מזהים ייחודיים הדגימה מסופקים לאורך החלק העליון של כל ג'ל, ויש לא-תבנית בקרות תרסיס מיוצגים בצד השמאלי המרוחק וימינה, בהתאמה, סמוך הסולמות.
להקות אמפליקון חזקים הם נראים בבירור בדגימות נסיוני בחירה, והם בקלות להבחין בין תחל עודפים, שרידי דנ א (איור 2). בהתבסס על עקרונות עיצוב ניסיוני שנקבעו, קרצייה נחשב חיובי עבור Borrelia כאשר במקביל פקדים שלילי להפגין אין הגברה, amplicons הפנימית מיוצרים מ תחל גם FlaB וגם OspA . במקרה זה, דגימות T907, T604 ו- T606 פגש מעקב לקריטריונים המחלה ליים (איור 2). . By contrast, T923 היה רק חיובי עבור OspA, תוצאה אשר ישנם מספר הסברים אפשריים: א) תקתוק ממוצא יצא שלילי Borrelia, אך ההכנה OspA PCR החיצוני או הפנימי spuriously היה נגוע תבנית ה-DNA (שים לב זיהום מערכתי של ריאגנטים היה לשלול באמצעות פקדי שלילי), B) תקתוק נשא ליים Borrelia, אבל כמויות נמוכות תבנית או שגיאה ניסיוני מנעה הגברה של FlaBאו C) אורגניזם היה נוכח זה הכיל את רצף OspA שנשמרת, אבל חסרה Flagellin או היה אין די זהות באזור ממוקד FlaB כדי anneal כדי תחל. ואכן, כבר ציינו דמיון רצף OspA במגוון רחב של אורגניזמים, כולל צמחים ובעלי חיים28. המצב הנגד, הגברה של יותר והתפאורה ג'ין Flagellin , אבל לא את הגן OspA , יכול להצביע על זן Borrelia קשורים. בפועל, פרוטוקול זה מניב תוצאות יחיד-חיוביות יותר OspA מאשר תחל FlaB , רומז תרחיש 'A' הוא ההסבר שהכי פחות סביר. ללא ניתוח ניסיוני נוסף של הדגימה במחלוקת, זאת, לא ניתן לקבוע את המקור של התוצאה יחיד-חיובית. הגדלת מספר טכני משכפל המבוצעת על דגימות דו-משמעית עשוי לעזור ליישב את מעמדם האמיתי, מאז כל מזהמים שהוצגו spuriously על תגובות קודמות לא יהיה נוכח ב- DNA בארכיון. עם זאת, אם הבאים המגיבה תחל אלה ייכשלו לספק תוצאות חותכות, לוקוסים Borrelia אחרים יכול תיחקר על-ידי ה-PCR. Amplicons שנוצר מתוך תגובות אלו יכול להיות גם רציף, בהשוואה בין מבודד כדי לסייע להקצות זהות, להעריך את מידת המתח גאוס. Sapi ועמיתיו לספק דוגמה של זרימת עבודה זו באמצעות דגימות קליניות האנושי35.
כל הגורמים בחשבון, יש כבר מוערך הקריטריונים פרוטוקול ופרשנות מחולקת לרמות להניב כוזב חיובי ו- false שלילי המחירים של 0.17% ל- 0.0063%, בהתאמה.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56471/56471fig2.jpg"> איור 2 : זיהוי של Borrelia burgdorferi בשנתות בודדים על-ידי nPCR של FlaB ו OspA. קודי המוקצים לכל שנתות מיוצגים לרוחב החלק העליון היחסי של ג'ל, זהויות יישור אנכי לדווח הזיהוי של OspA ושל FlaB כל הדגימה. מסלולים זכאי B בחלק השמאלי של הפקדים מתבנית לא לייצג תמונה, אמנם תרסיס פקדים כדי ללכוד של מעבדה זיהום (סמטאות ימין). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56471/56471fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR at JoVE.com

Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR

PCR מקוננת היא טכניקה רגיש, ספציפית, וברור כי ניתן להחיל על שנתות ש-DNA תמציות כדי לחקור Borrelia burgdorferi, סוכן סיבתי של מחלת ליים. הניסוי הראשוני של ה-PCR משתמשת תחל גנים ספציפיים כדי ליצור amplicons ארוכה, אשר לאחר מכן הופכים תבניות עבור ריאקציה עוקבות באמצעות תחל פנימי.

זיהוי החיידק מחלת ליים, Borrelia Burgdorferi, בשנתות באמצעות PCR מקוננים

Lyme disease is a serious vector-borne infection that is caused by the Borrelia burgdorferi sensu lato family of spirochetes, which are transmitted to ...

detecting-lyme-disease-spirochete-borrelia-burgdorferi-ticks-using

Research

JoVE Journal

Biology

Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR

18.0K Views.  Mount Allison University. PCR מקוננת היא טכניקה רגיש, ספציפית, וברור כי ניתן להחיל על שנתות ש-DNA תמציות כדי לחקור Borrelia burgdorferi, סוכן סיבתי של מחלת ליים. הניסוי הראשוני של ה-PCR משתמשת תחל גנים ספציפיים כדי ליצור amplicons ארוכה, אשר לאחר מכן הופכים תבניות עבור ריאקציה עוקבות באמצעות תחל פנימי.

Video: Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR

Methods for Rapid Transfer and Localization of Lyme Disease Pathogens Within the Tick Gut

Lyme disease is caused by infection with the spirochete pathogen Borrelia burgdorferi, which is maintained in nature by a tick-rodent infection cycle 1. A tick-borne murine model 2 has been developed to study Lyme disease in the laboratory. While na&iacute;ve ticks can be infected with B. burgdorferi by feeding them on infected mice, the molting process takes several weeks to months to complete. Therefore, development of more rapid and efficient tick infection techniques, such as a microinjection-based procedure, is an important tool for the study of Lyme disease 3,4. The procedure requires only hours to generate infected ticks and allows control over the delivery of equal quantities of spirochetes in a cohort of ticks. This is particularly important as the generation of B. burgdorferi infected ticks by the natural feeding process using mice fails to ensure 100% infection rate and potentially results in variation of pathogen burden amongst fed ticks. Furthermore, microinjection can be used to infect ticks with B. burgdorferi isolates in cases where an attenuated strain is unable to establish infection in mice and thus can not be naturally acquired by ticks 5. This technique can also be used to deliver a variety of other biological materials into ticks, for example, specific antibodies or double stranded RNA 6. In this article, we will demonstrate the microinjection of nymphal ticks with in vitro-grown B. burgdorferi. We will also describe a method for localization of Lyme disease pathogens in the tick gut using confocal immunofluorescence microscopy.

Lyme disease research studies often require generation of ticks infected with the pathogen Borrelia burgdorferi, a process that typically takes several weeks. Here we demonstrate a microinjection-based tick infection procedure that can be accomplished within hours. We also demonstrate an immunofluorescence method for in situ localization of B. burgdorferi within ticks.

שיטות העברה מהירים לוקליזציה של פתוגנים מחלת ליים בתוך גוט טיק

Lyme disease is caused by infection with the spirochete pathogen Borrelia burgdorferi, which is maintained in nature by a tick-rodent infection cycle 1.  ...

Immunology and Infection

Visualization of Microbiota in Tick Guts by Whole-mount In Situ Hybridization

Infectious diseases transmitted by arthropod vectors continue to pose a significant threat to human health worldwide. The pathogens causing these diseases, do not exist in isolation when they colonize the vector; rather, they likely engage in interactions with resident microorganisms in the gut lumen. The vector microbiota has been demonstrated to play an important role in pathogen transmission for several vector-borne diseases. Whether resident bacteria in the gut of the Ixodes scapularis tick, the vector of several human pathogens including Borrelia burgdorferi, influence tick transmission of pathogens is not determined. We require methods for characterizing the composition of the bacteria associated with the tick gut to facilitate a better understanding of potential interspecies interactions in the tick gut. Using whole-mount in situ hybridization to visualize RNA transcripts associated with particular bacterial species allows for the collection of qualitative data regarding the abundance and distribution of the microbiota in intact tissue. This technique can be used to examine changes in the gut microbiota milieu over the course of tick feeding and can also be applied to analyze expression of tick genes. Staining of whole tick guts yield information about the gross spatial distribution of target RNA in the tissue without the need for three-dimensional reconstruction and is less affected by environmental contamination, which often confounds the sequencing-based methods frequently used to study complex microbial communities. Overall, this technique is a valuable tool that can be used to better understand vector-pathogen-microbiota interactions and their role in disease transmission.

Visualization of Microbiota in Tick Guts by Whole-mount In Situ Hybridization

Here, we present a protocol to spatially and temporally assess the presence of viable microbiota in tick guts using a modified whole-mount in situ hybridization approach.

ויזואליזציה של Microbiota במעיים שנתות על-ידי הכלאה כולה-הר בחיי עיר

Infectious diseases transmitted by arthropod vectors continue to pose a significant threat to human health worldwide. The pathogens causing these ...

Genetics

Evaluation of a Universal Nested Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction for the Detection of Lyssaviruses

To detect rabies virus and other member species of the genus Lyssavirus within the family Rhabdoviridae, the pan-lyssavirus nested reverse transcription polymerase chain reaction (nested RT-PCR) was developed to detect the conserved region of the nucleoprotein (N) gene of lyssaviruses. The method applies reverse transcription (RT) using viral RNA as template and oligo (dT)15 and random hexamers as primers to synthesize the viral complementary DNA (cDNA). Then, the viral cDNA is used as a template to amplify an 845 bp N gene fragment in first-round PCR using outer primers, followed by second-round nested PCR to amplify the final 371 bp fragment using inner primers. This method can detect different genetic clades of rabies viruses (RABV). The validation, using 9,624 brain specimens from eight domestic animal species in 10 years of clinical rabies diagnoses and surveillance in China, showed that the method has 100% sensitivity and 99.97% specificity in comparison with the direct fluorescent antibody test (FAT), the gold standard method recommended by the World Health Organization (WHO) and the World Organization for Animal Health (OIE). In addition, the method could also specifically amplify the targeted N gene fragment of 15 other approved and two novel lyssavirus species in the 10th Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV) as evaluated by a mimic detection of synthesized N gene plasmids of all lyssaviruses. The method provides a convenient alternative to FAT for rabies diagnosis and has been approved as a National Standard (GB/T36789-2018) of China.

A pan-lyssavirus nested reverse transcription polymerase chain reaction has been developed to detect specifically all known lyssaviruses. Validation using rabies brain samples of different animal species showed that this method has a sensitivity and specificity equivalent to the gold standard fluorescent antibody test and could be used for routine rabies diagnosis.

הערכה של מקונן אוניברסלי הפוכה תגובת שרשרת פולימראז לאיתור של Lyssaviruses

To detect rabies virus and other member species of the genus Lyssavirus within the family Rhabdoviridae, the pan-lyssavirus nested reverse transcription ...

Feeding of Ticks on Animals for Transmission and Xenodiagnosis in Lyme Disease Research

Transmission of the etiologic agent of Lyme disease, Borrelia burgdorferi, occurs by the attachment and blood feeding of Ixodes species ticks on mammalian hosts. In nature, this zoonotic bacterial pathogen may use a variety of reservoir hosts, but the white-footed mouse (Peromyscus leucopus) is the primary reservoir for larval and nymphal ticks in North America. Humans are incidental hosts most frequently infected with B. burgdorferi by the bite of ticks in the nymphal stage. B. burgdorferi adapts to its hosts throughout the enzootic cycle, so the ability to explore the functions of these spirochetes and their effects on mammalian hosts requires the use of tick feeding. In addition, the technique of xenodiagnosis (using the natural vector for detection and recovery of an infectious agent) has been useful in studies of cryptic infection. In order to obtain nymphal ticks that harbor B. burgdorferi, ticks are fed live spirochetes in culture through capillary tubes. Two animal models, mice and nonhuman primates, are most commonly used for Lyme disease studies involving tick feeding. We demonstrate the methods by which these ticks can be fed upon, and recovered from animals for either infection or xenodiagnosis.

Lyme disease is the most commonly-reported vector-borne disease in North America. The causative agent, Borrelia burgdorferi is a spirochete bacterium transmitted by Ixodid ticks. Transmission and detection of infection in animal models is optimized by the use of tick feeding, which we describe here.

האכלה של קרציות בבעלי חיים להילוכים וXenodiagnosis במחקר מחלת ליים

Transmission of the etiologic agent of Lyme disease, Borrelia burgdorferi, occurs by the  attachment and blood feeding of Ixodes species ticks on ...

Essential Components of Borreliella (Borrelia) burgdorferi In Vitro Transcription Assays

Borreliella burgdorferi is a bacterial pathogen with limited metabolic and genomic repertoires. B. burgdorferi transits extracellularly between vertebrates and ticks and dramatically remodels its transcriptional profile to survive in disparate environments during infection. A focus of B. burgdorferi studies is to clearly understand how the bacteria responds to its environment through transcriptional changes. In vitro transcription assays allow for the basic mechanisms of transcriptional regulation to be biochemically dissected. Here, we present a detailed protocol describing B. burgdorferi RNA polymerase purification and storage, sigma factor purification, DNA template generation, and in vitro transcription assays. The protocol describes the use of RNA polymerase purified from B. burgdorferi 5A4 RpoC-His (5A4-RpoC). 5A4-RpoC is a previously published strain harboring a 10XHis-tag on the rpoC gene encoding the largest subunit of the RNA polymerase. In vitro transcription assays consist of the RNA polymerase purified from strain 5A4-RpoC, a recombinant version of the housekeeping sigma factor RpoD, and a PCR-generated double-stranded DNA template. While the protein purification techniques and approaches to assembling in vitro transcription assays are conceptually well understood and relatively common, handling considerations for RNA polymerases often differ from organism to organism. The protocol presented here is designed for enzymatic studies on the B. burgdorferi RNA polymerase. The method can be adapted to test the role of transcription factors, promoters, and post-translational modifications on the activity of the RNA polymerase.

Essential Components of Borreliella Borrelia burgdorferi In Vitro Transcription Assays

In vitro transcription assays can decipher the mechanisms of transcriptional regulation in Borreliella burgdorferi. This protocol describes the steps to purify B. burgdorferi RNA polymerase and perform in vitro transcription reactions. Experimental approaches using in vitro transcription assays require reliable purification and storage of active RNA polymerase.

רכיבים חיוניים של Borreliella (Borrelia) burgdorferi בדיקות תמלול חוץ גופי

Borreliella burgdorferi is a bacterial pathogen with limited metabolic and genomic repertoires. B. burgdorferi transits extracellularly between ...

Phage-Mediated Genetic Manipulation of the Lyme Disease Spirochete Borrelia burgdorferi

Introducing foreign DNA into the spirochete Borrelia burgdorferi has been almost exclusively accomplished by transformation using electroporation. This process has notably lower efficiencies in the Lyme disease spirochete relative to other, better-characterized Gram-negative bacteria. The rate of success of transformation is highly dependent upon having concentrated amounts of high-quality DNA from specific backgrounds and is subject to significant strain-to-strain variability. Alternative means for introducing foreign DNA (i.e., shuttle vectors, fluorescent reporters, and antibiotic-resistance markers) into B. burgdorferi could be an important addition to the armamentarium of useful tools for the genetic manipulation of the Lyme disease spirochete. Bacteriophage have been well-recognized as natural mechanisms for the movement of DNA among bacteria in a process called transduction. In this study, a method has been developed for using the ubiquitous borrelial phage &#966;BB-1 to transduce DNA between B. burgdorferi cells of both the same and different genetic backgrounds. The transduced DNA includes both borrelial DNA and heterologous DNA in the form of small shuttle vectors. This demonstration suggests a potential use of phage-mediated transduction as a complement to electroporation for the genetic manipulation of the Lyme disease spirochete. This report describes methods for the induction and purification of phage &#966;BB-1 from B. burgdorferi, the use of this phage in transduction assays, and the selection and screening of potential transductants.

Phage-Mediated Genetic Manipulation of the Lyme Disease Spirochete Borrelia burgdorferi

The ability of bacteriophage to move DNA between bacterial cells makes them effective tools for the genetic manipulation of their bacterial hosts. Presented here is a methodology for inducing, recovering, and using &#966;BB-1, a bacteriophage of Borrelia burgdorferi, to transduce heterologous DNA between different strains of the Lyme disease spirochete.

מניפולציה גנטית בתיווך פאגים של מחלת ליים ספירוכטה בורליה בורגדורפרי

Introducing foreign DNA into the spirochete Borrelia burgdorferi has been almost exclusively accomplished by transformation using electroporation. This ...

Multiplex Immunoassay עבור IgG ו- IgM ספציפיים לבורליה בסרום

Simultaneous Detection of Different Antibody Classes in a Multiplexed Serological Test

To monitor the progression of infectious diseases, it is useful to assess immunoreactivity against various antigenic determinants, and measure different antibody isotypes because they appear at different stages of the host immune response. With Lyme borreliosis, the pathogenic agent can be one of the multiple members of the Borrelia species. Therefore, correct sample classification requires evaluating the immunoreactivity against different antigens of different Borrelia species. Additionally, anti-pathogen IgG and IgM responses can have different elicitation time courses during disease progression. Here we demonstrate the development of a two-reporter multiplex immunoassay that has utility in identifying Borrelia-specific immune response in human serum samples by simultaneously evaluating both IgG and IgM immunoreactivity against different bacterial antigens in the same reaction well. This dual-reporter approach retains the analytical performance of single-reporter methods while conserving time and resources and reducing sample size requirements. This assay allows essentially double the serological information to be generated from a blood sample in half the time.

זרקור המחבר: הרחבת היקף הבדיקות החיסוניות המרובות לאבחון בורליוזיס ליים ומחקר פתוגנים 

A three-channel dual-reporter fluorescence flow analysis system was used to develop a bead-based multiplex immunoassay that simultaneously evaluates serum samples for IgG and IgM elicited against multiple antigens of different Borrelia species that cause Lyme borreliosis in Europe and North America.

זיהוי סימולטני של סוגי נוגדנים שונים בבדיקה סרולוגית מרובת משתתפים

To monitor the progression of infectious diseases, it is useful to assess immunoreactivity against various antigenic determinants, and measure different ...

Tick Microbiome Characterization by Next-Generation 16S rRNA Amplicon Sequencing

In recent decades, vector-borne diseases have re-emerged and expanded at alarming rates, causing considerable morbidity and mortality worldwide. Effective and widely available vaccines are lacking for a majority of these diseases, necessitating the development of novel disease mitigation strategies. To this end, a promising avenue of disease control involves targeting the vector microbiome, the community of microbes inhabiting the vector. The vector microbiome plays a pivotal role in pathogen dynamics, and manipulations of the microbiome have led to reduced vector abundance or pathogen transmission for a handful of vector-borne diseases. However, translating these findings into disease control applications requires a thorough understanding of vector microbial ecology, historically limited by insufficient technology in this field. The advent of next-generation sequencing approaches has enabled rapid, highly parallel sequencing of diverse microbial communities. Targeting the highly-conserved 16S rRNA gene has facilitated characterizations of microbes present within vectors under varying ecological and experimental conditions. This technique involves amplification of the 16S rRNA gene, sample barcoding via PCR, loading samples onto a flow cell for sequencing, and bioinformatics approaches to match sequence data with phylogenetic information. Species or genus-level identification for a high number of replicates can typically be achieved through this approach, thus circumventing challenges of low detection, resolution, and output from traditional culturing, microscopy, or histological staining techniques. Therefore, this method is well-suited for characterizing vector microbes under diverse conditions but cannot currently provide information on microbial function, location within the vector, or response to antibiotic treatment. Overall, 16S next-generation sequencing is a powerful technique for better understanding the identity and role of vector microbes in disease dynamics.

Here we present a next-generation sequencing protocol for 16S rRNA sequencing which enables identification and characterization of microbial communities within vectors. This method involves DNA extraction, amplification and barcoding of samples through PCR, sequencing on a flow-cell, and bioinformatics to match sequence data to phylogenetic information.

אפיון Microbiome שנתות על-ידי מטוסי אף-16 הדור הבא rRNA אמפליקון רצף

In recent decades, vector-borne diseases have re-emerged and expanded at alarming rates, causing considerable morbidity and mortality worldwide. Effective ...

זיהוי החיידק מחלת ליים, Borrelia Burgdorferi, בשנתות באמצעות PCR מקוננים

Summary

Explore More Videos

שיטות העברה מהירים לוקליזציה של פתוגנים מחלת ליים בתוך גוט טיק

ויזואליזציה של Microbiota במעיים שנתות על-ידי הכלאה כולה-הר בחיי עיר

הערכה של מקונן אוניברסלי הפוכה תגובת שרשרת פולימראז לאיתור של Lyssaviruses

האכלה של קרציות בבעלי חיים להילוכים וXenodiagnosis במחקר מחלת ליים

רכיבים חיוניים של Borreliella (Borrelia) burgdorferi בדיקות תמלול חוץ גופי

מניפולציה גנטית בתיווך פאגים של מחלת ליים ספירוכטה בורליה בורגדורפרי

זיהוי סימולטני של סוגי נוגדנים שונים בבדיקה סרולוגית מרובת משתתפים

זיהוי סימולטני של סוגי נוגדנים שונים בבדיקה סרולוגית מרובת משתתפים

זיהוי סימולטני של סוגי נוגדנים שונים בבדיקה סרולוגית מרובת משתתפים

אפיון Microbiome שנתות על-ידי מטוסי אף-16 הדור הבא rRNA אמפליקון רצף