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Method Article
Un chiaro, metodo standardizzato per la dissezione e l'isolamento del cuore zebrafish a più stadi di sviluppo sono descritti. Tecniche di annotazione e la quantificazione vengono anche discussi.
Zebrafish sono diventati un organismo modello utile e pratico per lo studio dello sviluppo embrionale cuore (vedi recensioni più recenti 1-6), tuttavia, il lavoro esaminando post-embrionale attraverso lo sviluppo cardiaco adulto è stato limitato 7-10. Esaminando la morfologia cambia del cuore maturazione e l'invecchiamento sono limitate dalla mancanza di tecniche disponibili per la stadiazione e isolare i cuori giovani che adulti. Al fine di analizzare lo sviluppo cuore oltre la durata della vita del pesce, si sezionano i cuori pesce zebra in numerose fasi e fotografarli per ulteriori analisi 11. Le caratteristiche morfologiche del cuore può essere facilmente quantificata e cuori individuali possono essere ulteriormente analizzati da una serie di metodi standard. Zebrafish crescere a tassi variabili e la maturazione si correla meglio con dimensione dei pesci di età, quindi, post-fissazione, abbiamo lunghezza pesce fotografare e misurare come un indicatore di maturazione di pesce. Questo protocollo spiega due distinte tecniche di dissezione dimensioni dipendenti per zebrafish, che vanno dalla lunghezza standard di larve da 3,5 mm (SL) con i cuori di lunghezza ventricolo 100μm (VL), agli adulti, con SL di 30mm e VL 1mm o più grandi. Larve e adulti hanno il corpo ben distinte e la morfologia degli organi. Le larve non sono solo molto più piccoli, hanno meno pigmento e ogni organo è visivamente molto difficile da identificare. Per questa ragione, usiamo tecniche di dissezione distinte.
Abbiamo usato pre-dissezione procedure di fissaggio, come abbiamo scoperto che il cuore sezionato direttamente dopo euthanization hanno una morfologia più variabile, con palloncino molto sciolto e, come atri rispetto al cuore rimosso fissazione seguente. Il pesce fisso prima di dissezione, trattenere in vivo la morfologia e la posizione della camera (dati non riportati). In aggiunta, a scopo dimostrativo, approfittiamo del cuore (infarto) specifiche GFP transgenici Tg (myl7: GFP) twu34 (12), che ci permette di visualizzare il cuore e il servizio è particolarmente utile nelle fasi iniziali di sviluppo quando la cardiaco morfologia è meno distinto dai tessuti circostanti. Dissezione del cuore fa un'ulteriore analisi della biologia cellulare e molecolare alla base dello sviluppo del cuore e con la maturazione di ibridazione in situ, immunoistochimica, estrazione di RNA o altri metodi analitici più facile in post-embrionale di zebrafish. Questo protocollo fornisce una valida tecnica per lo studio della maturazione dello sviluppo cardiaco e l'invecchiamento.
Zebrafish sono state sollevate utilizzando protocolli standard 13 nel Fondo Queens College di animali a 28 ° C. Coppie o singoli pesci accoppiamenti gruppo dovrebbe essere preformato e gli embrioni risultanti puliti e conservati in un incubatore 28 ° C. Salute dei pesci dovrebbero essere esaminati ogni giorno. A 5 giorni di fecondazione post (DPF), il pesce deve essere separata in vasche ad una densità 10-15 pesce ed è entrato in funzione il vivaio di pesci. Per il protocollo presentato qui zebrafish sono stati raccolti attraverso le fasi di larva adulto: 15, 30, 45, 60, 90, 180 dpf.
1. Zebrafish raccolta soggetto e la fissazione
2. Misura di pesce e la dissezione
Pesci più piccoli (inferiori a 12 millimetri SL):
I pesci più grandi (più grandi di 12mm SL):
3. Fotografia di cuori
4. Rappresentante dei risultati:
Un esempio di ben sezionato pulito cuore è mostrato in più orientamenti in Figura 6. Ogni centro avrà alcune differenze nella morfologia generale, ma il cuore deve essere completa, contenente un ventricolo integro, atrio e bulbo arterioso. Alcuni esempi di questa variazione nella morfologia generale sono mostrati in figura 7. Il nero macchiato tessuto epicardico può anche strappare dal cuore.
Figura 1. Misurare il pesce dal muso al peduncolo caudale utilizzando una pinza digitale millimetri.
Figura 2. Tenere il pesce con una pinza tra gli occhi e le branchie.
Figura 3 A cardiaco specifico marcatore fluorescente transgenici come il Tg (myl7: GFP). Twu34, qui, può aiutare a visualizzare cuore sezionato da pesci più piccoli.
Figura 4 Tre incisioni per rimuovere i muscoli pettorali e la pelle: 1 - trasversalmente attraverso le branchie 2 - taglio trasversale al ventre anteriore 3 - taglio sagittale sul lato ventrale che collega entrambi i tagli..
. Lettere Figura 5 Black Label le camere del cuore: bulbo arterioso (ba), ventricolo (v), e l'atrio (a).
A-La cavità superiore del corpo è aperto per mostrare il tessuto argenteo del pericardio.
B-Dopo aver rimosso il pericardio, il cuore è visibile e facilmente rimovibile.
Orientamenti Figura 6. Differenti del cuore sono mostrati. Lettere nere etichetta le camere del cuore: bulbo arterioso (ba), ventricolo (v), e l'atrio (a). Grigio frecce indicano la posizione e l'orientamento del cuore in riferimento alla sua posizione normale del corpo: anteriore (A), posteriore (P), dorsale (D), ventrale (V), sinistro (L) e destro (R). Bar scala indica 400μm.
A-ventrale vista del cuore
B-dorsale vista del cuore
C-vista laterale dal lato sinistro
D-laterale vista dal lato destro
Figura 7. Morfologia dei cuori di diverse dimensioni è indicato. Lettere nere etichetta le camere del cuore: bulbo arterioso (ba), ventricolo (v), e l'atrio (a). Barra di scala indicato 400 micron.
AC-Hearts forma di pesce con meno di 12 millimetri SL
DF-Hearts forma di pesce con SL più grandi di 12mm
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Questi metodi per la dissezione del cuore zebrafish di post-embrionale di pesce permette la rimozione completa di un cuore integro. Mentre questa tecnica è semplice e fornisce guide per tagli esterni che evitare di danneggiare il cuore, una mano ferma è essenziale per i più piccoli pesci.
Un passo fondamentale durante la dissezione è quello di identificare il pericardio argenteo come il cuore è direttamente all'interno di questa uscita. Visualizzando il pericardio fornisce un indica...
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Nessun conflitto di interessi dichiarati.
Grazie a Marie Birne, Areti Tsiola, Jaymie Estevez e Arelys Uribe. Questo lavoro è stato sostenuto in parte da CUNY Research Foundation e Howard Hughes Medical Institute programma estivo di sovvenzione per gli studenti universitari (SPUR) e NIH RO3 41702-00-01. La ricerca è stata sostenuta anche dal Queens College e alcuni degli esperimenti sono stati fatti su apparecchi dal Fondo Core for Imaging, Biologia Cellulare e Molecolare al Queens College.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Materiale | Azienda | Numero di catalogo | Commenti (opzionale) |
---|---|---|---|
Paraformaldeide | EMD | PX0055 | .04g/mL In PBS |
Pinza # 55 | FST | 11295-51 | |
Micro-forbici | FST | 15005-08 | |
Pin titolare | FST | 26016-12 | |
Micro-aghi | FST | 10130-10 | |
Nutrient Agar | BBL | 11472 | 23g / L in H 2 O distillata |
Petri | BD Falcon | 351029 | |
PCR 8-tubo strisce | USA scientifico | 1402-2500 | |
Calibro digitale | Fisher Scientific | 14-648-17 |
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