Questo lavoro è stato parzialmente supportato dal NIH RO1-EY019951 (AAF), Illinois Società per la Prevenzione della Cecità (JCC, AAF), i fondi non vincolati al Dipartimento di Oftalmologia di ricerca per prevenire la cecità (RPB), NY e RPB Medical Student Fellowship di Grant (CCM).

1. Preparazione della retina <ol><li> Enucleare l&#39;occhio mouse. Con una sola mano, aprire le palpebre in modo che l&#39;occhio è visibile. Con l&#39;altra mano, utilizzando una pinza curva (curva rivolta verso l&#39;alto), applicare una pressione su aspetti superiore e inferiore dell&#39;orbita fino sporge globo. Chiudere delicatamente forcipe nel lato posteriore dell&#39;occhio e sollevare in un movimento continuo di enucleare l&#39;occhio. </li><li> Fissare gli occhi con il 10% formalina tamponata neutra per almeno 24 ore. </li><li> Luogo occhio in soluzione PBS in una piccola scatola di Petri. </li><li> Sezionare retina attentamente al microscopio, facendo attenzione a non indurre grandi lacrime. Fai un primo taglio nella cornea con le forbici dissezione. Poi, mentre si tiene l&#39;area di taglio con pinze diritte, usare le forbici per tagliare lungo il bordo della cornea e la sclera rimozione della cornea. Utilizzando una pinza sottile curve e rette, togliere la sclera e coroide lontano dalla retina verso il nervo ottico. Questo passaggio richiede pazienza comeliberando rapidamente la retina può portare a rotture. Rimuovere la lente e di qualsiasi diaframma in eccesso e detriti dalla retina 16. </li></ol> 2. L&#39;acqua lava <ol><li> Posto retina in un piatto da 24 pozzetti e coprire con acqua (circa 500 pl, filtrata con un filtro almeno 45 micron). </li><li> Cambiare l&#39;acqua ogni 30 minuti-1 ora, almeno 4-5 volte. </li><li> Lasciare una notte in acqua con un leggero scuotimento a temperatura ambiente. </li></ol> Nota: Le fasi di lavaggio sono molto importanti in quanto aiutano separare gli strati della retina neurale dai vasi sanguigni. 3. Tripsina Digest <ol><li> Rimuovere l&#39;acqua ed retina incubare in una soluzione di 3% tripsina (Difco 1:250) in 0,1 M tampone Tris (pH 7,8) a 37 ° C con agitazione delicata per nessuna. Tripsina digest è completata quando il tessuto comincia a mostrare segni di disintegrazione (circa 1,5 ore). Nota: evitare di rapido scuotimentocome questo può danneggiare il sistema vascolare. </li><li> Con attenzione, pipetta fuori tripsina in un separato ben utilizzando un microscopio per evitare di toccare la retina. Questo eccesso tripsina può essere utilizzato in seguito, quando si manipolano i vasi sotto il microscopio, al passo 4.3. </li></ol> 4. Separare il sistema vascolare <ol><li> Aggiungere acqua filtrata alla retina. Quindi, tentare di rimuovere la membrana limitante interna con una pinza, usando le forbici se necessario. Agitare con lieve agitazione per 5 minuti. Attentamente, Pipetta fuori l&#39;acqua sotto il microscopio per evitare di danneggiare la retina. </li><li> Ripetere lavaggi con acqua (per 5 minuti ciascuno) per aiutare a liberare la rete di vasi dal tessuto retinico aderente. Lavaggi con acqua vengono completati quando vi è poca o nessuna detriti rimanendo in acqua dopo il lavaggio. </li><li> Manipolazioni attente al microscopio di dissezione sono ora necessari per liberare ulteriormente la rete di vasi. Qui di seguito sono diverse tecniche utili, che possono essere usati in sequenza o individually per ottenere il risultato desiderato in base alle preferenze tecnica: <ol class="lalpha"><li> Usando una pipetta 200 ml, pipettare con cura l&#39;acqua su e giù accanto alle navi, che soffia acqua a vasi, causando agitazione. </li><li> Utilizzando 200 microlitri pipetta, Pipetta la tripsina su e giù per le pareti cappotto della pipetta. Poi, Pipettare attentamente l&#39;intera rete nave su e giù una volta per aiutare a rompere il tessuto non vascolare. Nota: centraggio della punta della pipetta al nervo ottico, piuttosto che i bordi della rete vascolare può impedire al sistema vascolare di attaccarsi alla punta. </li><li> Sollevare delicatamente vascolare con una pinza sottile di acqua per rimuovere i componenti non-vascolari. </li><li> Se i passaggi precedenti non funzionano, aggiungere tripsina alla retina per aiutare abbattere il tessuto e incubare a 37 ° C per alcuni minuti. Quindi, rimuovere tripsina e ripetere i passaggi 4,1-4,3. </li></ol></li></ol> &lt;strong&gt; Nota: Assicurati di rivestire tutti gli strumenti che possono entrare in contatto con le navi in tripsina (ad esempio la punta di pipetta, pinze). Ciò contribuirà a evitare l&#39;adesione del sistema vascolare per l&#39;attrezzatura. 5. Visualizzare la vascolarizzazione <ol><li> Mettere una goccia d&#39;acqua su un vetrino pulito. Usando una pipetta 200 microlitri o pinze, trasferire i vasi digeriti in acqua. Assicurarsi che il piano di montaggio vascolare viene spiegato. La tensione superficiale dell&#39;acqua aiuta a spiegare la rete vascolare ora diafana. Se il tessuto non si dipana, aggiungere ulteriore acqua e scuotere delicatamente il vetrino per facilitare dispiegarsi. </li><li> Rimuovere l&#39;acqua in eccesso molto lentamente da pipettaggio o utilizzando un tovagliolo di carta. </li><li> Lasciare vetrini si asciughino completamente. </li><li> Colorare i vetrini tramite protocollo appropriato sia con PAS / ematossilina o H &amp; E macchia. Nota: PAS / ematossilina è utile per identificare parete del vaso e nuclei cellulari; H &amp; E è utile per demonstration di RBC pure. </li><li> Disidratarsi e montare (Permount mezzo di montaggio). </li></ol>

<ol>
	<li>Kuwabara, T., Cogan, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+of+retinal+vascular+patterns.+I.+Normal+architecture.">Studies of retinal vascular patterns. I. Normal architecture.</a> Arch. Ophthalmol. 64, 904-911 (1960).</li><li>Kuwabara, T., Cogan, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+vascular+patterns.+VII.+Acellular+change.">Retinal vascular patterns. VII. Acellular change.</a> Invest. Ophthalmol. 4, 1049-1064 (1965).</li><li>Bell, W. R., Green, W. R., Goldberg, M. 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Endothelial cell-pericyte ratio.</a> Ophthalmic Res. 21, 106-111 (1989).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+30.">Chapter 30.</a> Diabetic Retinopathy. , (2005).</li><li>Rosenblatt, B., Benson, W. E., Yannoff, M., Duker, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+6.19+Diabetic+Retinopathy.">Chapter 6.19 Diabetic Retinopathy.</a> Ophthalmology. , (2008).</li><li>Friedenwald, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+approach+to+some+problems+of+retinal+vascular+disease.">A new approach to some problems of retinal vascular disease.</a> Am. J. Ophthalmol. 32, 487-498 (1949).</li><li>Podesta, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bax+is+increased+in+the+retina+of+diabetic+subjects+and+is+associated+with+pericyte+apoptosis+in+vivo+and+in+vitro.">Bax is increased in the retina of diabetic subjects and is associated with pericyte apoptosis in vivo and in vitro.</a> Am. J. Pathol. 156 (10), 1025-1032 (2000).</li><li>Dagher, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+of+rat+and+human+retinas+predict+a+role+for+the+polyol+pathway+in+human+diabetic+retinopathy.">Studies of rat and human retinas predict a role for the polyol pathway in human diabetic retinopathy.</a> Diabetes. 53, 2404-2411 (2004).</li><li>Puro, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinovascular+physiology+and+pathophysiology:+new+experimental+approach/new+insights.">Retinovascular physiology and pathophysiology: new experimental approach/new insights.</a> Prog. Retin. Eye Res. 31, 258-270 (2012).</li><li>Roy, S., Nasser, S., Yee, M., Graves, D. T., Roy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+long-term+siRNA+strategy+regulates+fibronectin+overexpression+and+improves+vascular+lesions+in+retinas+of+diabetic+rats.">A long-term siRNA strategy regulates fibronectin overexpression and improves vascular lesions in retinas of diabetic rats.</a> Mol. Vis. 17, 3166-3174 (2011).</li><li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diabetic+eNOS-knockout+mice+develop+accelerated+retinopathy.">Diabetic eNOS-knockout mice develop accelerated retinopathy.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 51, 5240-5246 (2010).</li><li>Connor, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantification+of+oxygen-induced+retinopathy+in+the+mouse:+a+model+of+vessel+loss,+vessel+regrowth+and+pathological+angiogenesis.">Quantification of oxygen-induced retinopathy in the mouse: a model of vessel loss, vessel regrowth and pathological angiogenesis.</a> Nature Protocols. 4, 1565-1573 (2009).</li></ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Tripsina digest è un metodo standard per valutare la vascolarizzazione della retina. Purtroppo è tecnicamente impegnativo e può causare elevato tasso di perdita di campione, se non eseguite correttamente. Inoltre, la procedura è particolarmente difficile nei topi, che può limitare l&#39;applicazione di questa tecnica nei comunemente utilizzati modelli animali genetici di malattie oculari. Questo documento fornisce una guida su come eseguire la procedura efficace e coerente con gli occhi del mouse. <p class="jov...

Visualizzare la vascolarizzazione della retina è un approccio estremamente importante per sezionare i meccanismi delle varie malattie oculari come la retinopatia diabetica. Essa permette di valutare le prime anomalie vascolari, tra cui microaneurismi, degenerazione dei capillari, e perdita pericyte 8,9. Ad oggi, sono state sviluppate diverse tecniche per analizzare la vascolarizzazione della retina. Perfusione di vari coloranti è stato utilizzato per evidenziare i vasi, ma tutti hanno condiviso limitazioni simili. Iniezione evidenzia raramente l&#39;intero sistema vascolare della retina a meno dato ad alta pressione, che rischia di rompersi e danneggiare le navi 1. Immunostaining dell&#39;endotelio vascolare con fluoroforo marcato G isolectin B4 (Alexa Fluor 594 coniugato; I21413, Invitrogen; diluizione 1:100) e monta piatti della retina può evidenziare l&#39;architettura complessiva dei vasi, ma senza la visualizzazione dettagliata di capillari, membrane basali e periciti . È stato osservato dallaFriedenwald che le navi possono essere evidenziate dalla colorazione piatta-monti della retina con acido periodico di Schiff (PAS) o ematossilina ed eosina (H &amp; E) colorazione 10. Tuttavia, la colorazione era non-specifico ai vasi ed evidenziato il tessuto non vascolare pure, rendendo difficile distinguere i vasi. Nel 1960, Cogan e Kuwabara sviluppato la tecnica tripsina digest che ha reso più facile visualizzare la vascolarizzazione della retina da digerire componenti non vascolari della retina 1. Da quel momento, la tripsina digest è diventato il metodo gold standard nell&#39;analisi della vascolarizzazione della retina 2-5. Tuttavia, è importante notare che altre tecniche alternative per isolare il sistema vascolare sono stati descritti. L&#39;uso di lisi osmotica è stato usato per isolare il sistema vascolare e consentire studi biochimici del tessuto 11,12, ma la procedura non è stata utilizzata come metodo primario per studio anatomico. Il metodo di stampa dei tessuti è statautilizzato per isolare ampi segmenti microcircolo e permette la capacità di studiare l&#39;architettura elettrotoniche del sistema vascolare 13. In teoria, questa tecnica potrebbe essere utilizzata anche per studiare i cambiamenti anatomici, come la qualità dei vasi è elevata. Tuttavia, è solo in grado di isolare segmenti della intera rete vascolare. Sebbene questi metodi non possono sostituire tripsina digest, è importante notare che essi hanno diversi vantaggi e le carenze e sono complementari a questo riguardo. Il metodo digest tripsina è tecnicamente impegnativo e difficile da eseguire in modo coerente 6,7. Inoltre, è stato notato che la tripsina digest è particolarmente difficile in un modello di topo, in particolare quando la si vuole preservare l&#39;architettura complessiva vascolare della retina 6,7. Sfide includono (1) sopra-digestione della retina che causa la perdita sia del sistema vascolare così come il tessuto non vascolare, (2) sotto-digestione, richiedendodissezione estesa meccanico che porterebbe al danneggiamento del letto recipiente, (3) scarsa separazione del tessuto non vascolare dalla vascolatura conseguente colorazione aspecifica. Diversi manoscritti hanno evidenziato queste sfide, ma nessuno ha fornito un protocollo dettagliato e coerente per superarli 14,15. Questo manoscritto introdurrà una metodologia step-by-step dettaglio la tecnica per eseguire la tripsina digest su topo e ratto retine con consigli specifici su come gestire i passaggi particolarmente difficili. Una panoramica schematica è mostrata in Figura 1.

<table border="1">
	<tbody>
		<tr>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>REAGENTS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% neutral buffered formalin</td>
			<td>Fischer Scientific</td>
			<td>SF100-4</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin (1:250)</td>
			<td>Amresco</td>
			<td>0458-50G</td>
			<td>Make 3% trypsin in 0.1 M Tris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRIZMA base</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T1503-1KG</td>
			<td>Create 0.1 M Tris Buffer (pH 7.8 @ 37 &deg;C)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRIZMA</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T3253-500G</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steritop sterile vacuum bottle</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SCGPS05RE</td>
			<td>Create filtered water</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>EQUIPMENT</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting microscope</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Any microscope that allows good visualization of the retina is adequate. (10x is sufficient with working distance of 24 mm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Straight scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15024-10</td>
			<td>Cutting edge: 8 mm; Tip diameter: 0.2 mm; 10 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Straight Forceps (Inox)</td>
			<td>Dumont #5</td>
			<td>11252-20</td>
			<td>Biologie tip; 0.05 x 0.02 mm; 11 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Forcepts (Dumostar)</td>
			<td>Dumont #7</td>
			<td>11297-10</td>
			<td>Biologie tip; 0.07 x 0.04 mm; 11.5 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dubnoff Metabolic Shaker Incubator</td>
			<td>Precision Scientific</td>
			<td>BDG59442</td>
			<td>Shaker optional</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24-well dish</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353047</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope Slides</td>
			<td>VWR</td>
			<td>82027-132</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

trypsin digest protocol to analyze the retinal vasculature of a mouse model

Tripsina digest è il metodo gold standard per analizzare la retina vascolare 1-5. Permette la visualizzazione di tutta la rete di vasi complessi tridimensionali sanguigni e capillari retinici creando una bidimensionale TV a monte dei canali vascolari interconnessi dopo digestione dei componenti non vascolari della retina. Questo permette di studiare le varie alterazioni patologiche vascolari, come microaneurismi, degenerazione capillare e abnorme endoteliali ai rapporti di periciti. Tuttavia, il metodo è tecnicamente impegnativo, soprattutto nei topi, che sono diventati il modello animale più ampiamente disponibile per studiare la retina a causa della facilità di manipolazioni genetiche 6,7. Nell&#39;occhio topo, è particolarmente difficile da rimuovere completamente i componenti non vascolari mantenendo l&#39;architettura complessiva dei vasi sanguigni della retina. Ad oggi, vi è una carenza di letteratura che descrive la tecnica tripsina digest in dettaglio in il mouse. Questo manoscritto fornisce una metodologia dettagliata passo-passo della tripsina digest nel topo retina, fornendo anche suggerimenti sulla risoluzione dei passaggi difficili.

Il prodotto finale di una procedura di successo è una TV a monte di tutta la rete del mouse vascolarizzazione della retina, con l&#39;architettura mantenuto, colorate sia con PAS / ematossilina o H &amp; E, come mostrato nelle figure 2-4. Chiara differenziazione delle cellule endoteliali e periciti può essere visto come mostrato in Figura 3. Nella retina, i nuclei delle cellule endoteliali sono ovali o allungata e si trova interamente all&#39;interno della parete del vaso. Nuclei peri...

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Trypsin Digest Protocol to Analyze the Retinal Vasculature of a Mouse Model

Tripsina digest è uno dei metodi più comunemente utilizzati per analizzare vascolarizzazione retinica. Questo manoscritto descrive il metodo in dettaglio, comprese le alterazioni fondamentali per ottimizzare la tecnica e rimuovere il tessuto non vascolare preservando l&#39;architettura generale dei vasi.

Tripsina Digest protocollo per analizzare la vascolarizzazione della retina di un modello murino

Trypsin digest is the gold standard method to analyze the retinal vasculature 1-5. It allows visualization of the entire network of complex ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

18.2K Views.  Northwestern University Feinberg School of Medicine. Tripsina digest è uno dei metodi più comunemente utilizzati per analizzare vascolarizzazione retinica. Questo manoscritto descrive il metodo in dettaglio, comprese le alterazioni fondamentali per ottimizzare la tecnica e rimuovere il tessuto non vascolare preservando l'architettura generale dei vasi.