Gli autori desiderano ringraziare Chris Morrow per l&#39;assistenza tecnica. Il finanziamento è stato fornito dal NIH SBIR (R43) concedere 1R43GM101859-01 (MPI) GRANT10940803.

1. Cella Cultura Preparazione <ol><li> Conservare le scorte di cellule NIH/3T3 in azoto liquido fino al momento dell&#39;uso. </li><li> Preparare completa supporti per cellule NIH/3T3 utilizzando Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) supplementato con 10% di siero fetale bovino, 10 mM tampone HEPES, 50 unità / ml di penicillina e 50 mg / ml di streptomicina. </li><li> Scongelare cellule per 2-3 minuti in un bagno d&#39;acqua a 37 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in 5 ml di mezzo completo e centrifugare a 1500 xg per 3 min. </li><li> Rimuovere il surnatante cellulare senza disturbare il pellet. </li><li> Risospendere le cellule in 5 ml di media e contare le cellule utilizzando un emocitometro. <ol><li> Rimuovere 10 ml di sospensione cellulare e posto in una provetta da 0,5 ml. </li><li> Aggiungere 10 ml di Trypan Blue alla sospensione cellulare e mescolare con la punta della pipetta. </li><li> Pipettare 10 ml di cellule colorate in una camera emocitometro. </li><li> Contare le celle in emocitometro a 10xingrandimento. <ol><li> Contare le cellule vive (piccole palline bianche) per 4 dei 9 grandi piazze. Contare solo le cellule vive che non appaiono blu scuro dalla macchia Trypan Blue. </li><li> Calcolare il numero medio di cellule per piazzale, causando il numero di cellule x 10 4 cellule / ml nel cellule sospensione originale. </li><li> Alveoli ad una densità di 1 x 10 5 cellule / ml con un totale di 5 ml in ciascuna beuta T25. </li></ol></li><li> Cellule di coltura tra il 70% e l&#39;80% di confluenza prima degli esperimenti di inizio. Aggiorna i media ogni 2-3 giorni o secondo necessità. </li></ol></li></ol> 2. Stampa Preparazione della superficie <ol><li> Mark un rettangolo con pennarello sul fondo di una cultura trattati tessuto polistirene (TCTPS) 12 pozzetti la dimensione della testina di stampa (7 mm x 19 mm). </li><li> Pipettare 50 microlitri di siero fetale bovino in area rettangolare e diffonderla sull&#39;intera regione con la punta. </li><li> Lasciare la piastra di Petriin una sterile biosicurezza cappuccio O / N per consentire al posto del siero si asciughi completamente. Queste piastre devono essere preparati non più di due giorni prima dell&#39;uso. </li></ol> 3. Stampa sommerso <ol><li> Lavare la testina di stampa con acqua distillata. <ol><li> Riempire una capsula di Petri 60 mm Con acqua distillata e ancorare la testina di stampa sulla superficie. </li><li> Fluire acqua distillata attraverso ciascuna delle linee per 2 min a 150 ml / min usando una pompa pneumatica. </li><li> Eliminare l&#39;acqua dalla piastra di Petri e riempirlo con acqua pulita. </li><li> Spostare la testina di stampa su e giù in acqua 3 volte. </li></ol></li><li> Ancorare il centro della testa di stampa sul posto siero rivestite in 12 piastra ben pre-preparati. </li><li> Prime la testina di stampa con i media completi pre-riscaldato, 300 ml per canale. </li><li> Stampa cellule sospeso ad una concentrazione di 50.000 cellule / ml sulla superficie e 60 microlitri / min, 100 microlitri per canale. </li><li> Posizionare la testina di stampa, a sinistra ancorata contro ilsuperficie, e il collettore in un incubatore di coltura cellulare impostato a 5% di CO 2 e 37 ° C per 2 h. </li><li> Dopo l&#39;incubazione 2 ore, rimuovere la testina di stampa e posizionare il coperchio sul piatto di coltura. Il momento in cui la testina di stampa rimosso è considerato il punto di tempo 0 ore. </li></ol> 4. Standard di coltura cellulare <ol><li> Aggiungere 1 ml di supporti preriscaldata a una piastra TCTPS 12 pozzetti siero-spotted preparato al punto 2. </li><li> Prelevare 1 ml della sospensione cellulare residua dal passaggio 2 e pipetta in un singolo pozzetto di una 12 pozzetti TCTPS piastra. Ciò produrrà una coltura contenente 50.000 cellule nel piatto. </li><li> Posizionare la piastra di coltura cellulare in un incubatore a 37 ° C per 2 h. </li><li> Dopo l&#39;incubazione 2 hr iniziare il cronometraggio; coerenza tra campioni stampati e di semina, questo è considerato il punto di tempo 0 ore. </li></ol> 5. Culture Visualization <ol><li> Dopo 0, 2, 24, e 48 hr cellule prese da ciascuno dei due metodi described sopra e immagine utilizzando un microscopio invertito standard. <ol><li> Colorare le cellule con ioduro di propidio, una macchia rosso fluorescente che è incorporato solo nel nucleo delle cellule morte. <ol><li> Lavare delicatamente le cellule 3 volte con 1 ml di tampone fosfato isotonico con calcio e magnesio (PBS + +) per rimuovere eventuali detriti. </li><li> Aggiungere 1 ml di pre-riscaldato PBS + + a ciascun recipiente di coltura. </li><li> Aggiungere 1 ml di soluzione di ioduro di propidio magazzino (1 mg / ml) per ogni nave cultura. </li><li> Incubare le cellule colorate con ioduro di propidio a 37 ° C per 10 min. </li></ol></li><li> Immagine le cellule utilizzando un microscopio invertito a 10x e 40x di ingrandimento. </li></ol></li><li> Eliminare le celle in un contenitore a rischio biologico appropriato. </li></ol>

<ol>
	<li>Fernandes, T. G., Diogo, M. M., Clark, D. S., Dordick, J. S., Cabral, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+cellular+microarray+platforms:+applications+in+drug+discovery,+toxicology+and+stem+cell+research.">High-throughput cellular microarray platforms: applications in drug discovery, toxicology and stem cell research.</a> Trends in Biotechnology. 27, 342-349 (2009).</li><li>Michelini, E., Cevenini, L., Mezzanotte, L., Coppa, A., Roda, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell-based+assays:+fuelling+drug+discovery.">Cell-based assays: fuelling drug discovery.</a> Anal Bioanal Chem. 398, 227-238 (2010).</li><li>Gao, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+developments+in+microfluidic+devices+for+in+vitro+cell+culture+for+cell-biology+research.">Recent developments in microfluidic devices for in vitro cell culture for cell-biology research.</a> TrAC Trends in Analytical Chemistry. 35, 150-164 (2012).</li><li>Geysen, H. M., Schoenen, F., Wagner, D., Wagner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combinatorial+compound+libraries+for+drug+discovery:+an+ongoing+challenge.">Combinatorial compound libraries for drug discovery: an ongoing challenge.</a> Nature Reviews Drug Discovery. 2, 222-230 (2003).</li><li>Xu, Y., Shi, Y., Ding, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+chemical+approach+to+stem-cell+biology+and+regenerative+medicine.">A chemical approach to stem-cell biology and regenerative medicine.</a> Nature. 453, 338-344 (2008).</li><li>Khademhosseini, A., Langer, R., Borenstein, J., Vacanti, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microscale+technologies+for+tissue+engineering+and+biology.">Microscale technologies for tissue engineering and biology.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 2480-2487 (2006).</li><li>Bhadriraju, K., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+cellular+microenvironments+to+improve+cell-based+drug+testing.">Engineering cellular microenvironments to improve cell-based drug testing.</a> Drug Discovery Today. 7, 612-620 (2002).</li><li>Castel, D., Pitaval, A., Debily, M. -. A., Gidrol, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+microarrays+in+drug+discovery.">Cell microarrays in drug discovery.</a> Drug Discov. Today. 11, 616-622 (2006).</li><li>Tsui, J. H., Lee, W., Pun, S. H., Kim, J., Kim, D. -. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microfluidics-assisted+in+vitro+drug+screening+and+carrier+production.">Microfluidics-assisted in vitro drug screening and carrier production.</a> Advanced Drug Delivery Reviews. , (2013).</li><li>Gottwald, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+chip-based+platform+for+the+in+vitro+generation+of+tissues+in+three-dimensional+organization.">A chip-based platform for the in vitro generation of tissues in three-dimensional organization.</a> Lab on a Chip. 7, 777-785 (2007).</li><li>Liu, R., Lee, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Integrated Biochips for DNA Analysis. , (2008).</li><li>Natarajan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Continuous-flow+microfluidic+printing+of+proteins+for+array-based+applications+including+surface+plasmon+resonance+imaging.">Continuous-flow microfluidic printing of proteins for array-based applications including surface plasmon resonance imaging.</a> Analytical Biochemistry. 373, 141-146 (2008).</li><li>Natarajan, S., Hatch, A., Myszka, D. G., Gale, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimal+Conditions+for+Protein+Array+Deposition+Using+Continuous+Flow.">Optimal Conditions for Protein Array Deposition Using Continuous Flow.</a> Anal. Chem. 80, 8561-8567 (2008).</li><li>Keighley, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+need+for+high+throughput+kinetics+early+in+the+drug+discovery+process.">The need for high throughput kinetics early in the drug discovery process.</a> , (2011).</li><li>Xu, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+three-dimensional+in+vitro+ovarian+cancer+coculture+model+using+a+high-throughput+cell+patterning+platform.">A three-dimensional in vitro ovarian cancer coculture model using a high-throughput cell patterning platform.</a> Biotechnol J. 6, 204-212 (2011).</li><li>Tuckwell, D. S., Weston, S. A., Humphries, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrins:+a+review+of+their+structure+and+mechanisms+of+ligand+binding.">Integrins: a review of their structure and mechanisms of ligand binding.</a> Symposia of the Society for Experimental Biology. 47, 107 (1993).</li><li>Roberts, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+mixed+self-assembled+monolayers+presenting+RGD+and+(EG)+3OH+groups+to+characterize+long-term+attachment+of+bovine+capillary+endothelial+cells+to+surfaces.">Using mixed self-assembled monolayers presenting RGD and (EG) 3OH groups to characterize long-term attachment of bovine capillary endothelial cells to surfaces.</a> Journal of the American Chemical Society. 120, 6548-6555 (1998).</li><li>Chandra, R. A., Douglas, E. S., Mathies, R. A., Bertozzi, C. R., Francis, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Programmable+cell+adhesion+encoded+by+DNA+hybridization.">Programmable cell adhesion encoded by DNA hybridization.</a> Angewandte Chemie. 118, 910-915 (2006).</li><li>Hsiao, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+cell+surface+modification+with+DNA+for+the+capture+of+primary+cells+and+the+investigation+of+myotube+formation+on+defined+patterns.">Direct cell surface modification with DNA for the capture of primary cells and the investigation of myotube formation on defined patterns.</a> Langmuir. 25, 6985-6991 (2009).</li><li>Black, C. B., Duensing, T. D., Trinkle, L. S., Dunlay, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell-Based+Screening+Using+High-Throughput+Flow+Cytometry.">Cell-Based Screening Using High-Throughput Flow Cytometry.</a> ASSAY and Drug Development Technologies. 9, 13-20 (2011).</li><li>Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioprinting:+inkjet+printing+proteins+and+hybrid+cell-containing+materials+and+structures.">Bioprinting: inkjet printing proteins and hybrid cell-containing materials and structures.</a> J. Mater. Chem. 18, 5717-5721 (2008).</li><li>Onoe, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+Microfabrication:+Observing+Intercellular+Interactions+Using+Lithographically-Defined+DNA+Capture+Sequences.">Cellular Microfabrication: Observing Intercellular Interactions Using Lithographically-Defined DNA Capture Sequences.</a> Langmuir. 28, 8120-8126 (2012).</li><li>Hsiao, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DNA-Coated+AFM+Cantilevers+for+the+Investigation+of+Cell+Adhesion+and+the+Patterning+of+Live+Cells.">DNA-Coated AFM Cantilevers for the Investigation of Cell Adhesion and the Patterning of Live Cells.</a> Angewandte Chemie International Edition. 47, 8473-8477 (2008).</li></ol>

Gli autori sono dipendenti e gli azionisti di Wasatch Microfluidics che produce reagenti e / o strumenti utilizzati in questo manoscritto.

La tecnologia di stampa 3D microfluidica qui descritta è l&#39;unica in grado di stampa microfluidically array di celle in un liquido riempito bene, cioè una superficie sommersa. Stampando sulle superfici sommerse, microarray di cellule possono essere prodotti che mantengono il fenotipo cellulare fisiologicamente rilevanti di cellule così come la capacità di multiplex cellule sul fondo di un singolo pozzetto Figura 4. I risultati di questo studio mostrano che microfluidically stampa cellule...

I recenti progressi nel settore farmaceutico hanno portato ad un crescente interesse nell&#39;utilizzo di microarray cellulari nel processo di scoperta della droga per lo screening di farmaci e analisi cytotoxicological 1,2,3. Lo sviluppo di test in vitro in high-throughput e metodi di screening utilizzando microarrays di cellule faciliterebbe lo sviluppo rapido ed efficace di farmaci candidati, così come anticipo la comprensione fondamentale della cella 1,4. L&#39;approccio tradizionale allo screening con celle utilizza piattaforme e piastre convenzionali; tuttavia questo approccio è limitata a causa del costo elevato, produttività limitata, e la limitata capacità di informazioni quantitative sulla funzione delle cellule 1,5. A causa di queste limitazioni, la ricerca nel campo delle tecnologie di microarray cellulare è fiorente per la caratterizzazione molecolare biologica, ingegneria dei tessuti, e la droga lo screening 1,6. I vantaggi di microarrays cellulari includono l&#39;uso campione più piccolo, effetti minimi difenotipo cellulare eterogeneità mascheratura informazioni, e soprattutto la capacità di automatizzare saggi per più applicazioni high-throughput 1,7,8. L&#39;industria farmaceutica utilizza attualmente high-throughput cell-based test di screening con colture monostrato di cellule 2D per lo screening di stupefacenti in pozzetti microtiter 9. Cellule multiplexing in pozzetti di piastre microtiter offre la possibilità di throughput più elevato con opzioni di sperimentazione uniche. Inoltre, le attuali tecnologie di microarray cellulari permettono alle cellule di asciugare in grado di modificare radicalmente il fenotipo delle cellule in vivo 10,11. Per superare questi problemi, la MFCA è stata progettata ed è mostrato in Figura 1. Il disegno dei fluidica MFCA 3D consente la punta della testina di stampa di figura 1 per essere abbassato in un bagno e compresso contro una superficie per formare un sigillo. La punta morbido silicone della testina di stampa si comporta come unguarnizione e forma una guarnizione reversibile. La tecnologia MFCA è in modo unico adatta per interfacciarsi con superfici sommerse, che è richiesto per entrambe le colture cellulari e sistemi fetta dei tessuti, ed è difficile o impossibile con la maggior parte degli altri approcci. Pins o stampa ink-jet non funzionano, e dispositivi microfluidici 2D non sono adatti per la deposizione o l&#39;interfacciamento con grandi array di punti discreti. Inoltre, da miniaturizzazione e localizzare l&#39;esperimento - il microarray cellulare - il MFCA supera i principali problemi connessi con high-throughput a base di cellule test di screening. Il CFM utilizza le reti di canali 3D per ciclo di piccoli campioni di fluido del volume oltre riprese piatte microscopici su una superficie di 12,13. Mediante stampa con flusso, biomolecole, cellule e altri reagenti sono mantenuti in un ambiente liquido durante il processo di stampa, consentendo la stampa di biomolecole e cellule sensibili senza esposizione all&#39;aria, che ostacola le tecniche di stampa cella corrente. E &#39;anche possibile stampare direttamente da materiale grezzo come ibridoma o surnatanti forniti vi è un meccanismo di cattura sulla superficie dell&#39;array. L&#39;obiettivo di questo manoscritto è spiegare in dettaglio la stampa sommersa di due tipi di cellule su una superficie.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="571">
	<tbody>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:215px;">Continuous Flow Microspotter</td>
			<td style="width:71px;">Wasatch Microfluidics</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">NIH/3T3 cells</td>
			<td style="width:71px;">ATCC</td>
			<td style="width:119px;">CRL-1658</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">Dubbleco&#39;s Modified Eagle Medium</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">11965-092</td>
			<td>base media for cells</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">HEPES buffer</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">15630-080</td>
			<td>cell media additive (control pH)</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">Sodium pyruvate</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">11360-070</td>
			<td>cell media additive</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">Penicillin-Streptomycin&#160;</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>cell media additive</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">Trypan blue</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">15250-061</td>
			<td>stain cell sfor counting</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Haemocytometer</td>
			<td style="width:71px;">Fisher</td>
			<td align="right" style="width:119px;">267110</td>
			<td>cell chamber to count cells</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Nikon Eclipse TS100</td>
			<td style="width:71px;">Nikon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Used to check on cells</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Nikon Eclipse TE2000-U</td>
			<td style="width:71px;">Nikon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Used for collecting images</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">Phosphate Buffered Saline (with calcium and magnesium)</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">14040-133</td>
			<td>rinsing cells before passaging and before staining with PI</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">TrypLE Express&#160;</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">A12177-01</td>
			<td>used to remove cells from surface</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;"></td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the submerged printing of cells onto a modified surface using a continuous flow microspotter

The printing of cells for microarray applications possesses significant challenges including the problem of maintaining physiologically relevant cell phenotype after printing, poor organization and distribution of desired cells, and the inability to deliver drugs and/or nutrients to targeted areas in the array. Our 3D microfluidic printing technology is uniquely capable of sealing and printing arrays of cells onto submerged surfaces in an automated and multiplexed manner. The design of the microfluidic cell array (MFCA) 3D fluidics enables the printhead tip to be lowered into a liquid-filled well or dish and compressed against a surface to form a seal. The soft silicone tip of the printhead behaves like a gasket and is able to form a reversible seal by applying pressure or backing away. Other cells printing technologies such as pin or ink-jet printers are unable to print in submerged applications. Submerged surface printing is essential to maintain phenotypes of cells and to monitor these cells on a surface without disturbing the material surface characteristics. By printing onto submerged surfaces, cell microarrays are produced that allow for drug screening and cytotoxicity assessment in a multitude of areas including cancer, diabetes, inflammation, infections, and cardiovascular disease.

Le cellule NIH/3T3 linea cellulare di fibroblasti sono stati stampati o seminate su una superficie immersa. Le cellule sono state coltivate ad una densità di 5 x 10 4 cellule per ml. Le cellule sono state seminate utilizzando tecniche di coltura cellulare tradizionali. Le cellule sono state stampate usando una grande formato, dodici flusso testina cella in cui i canali sono più grandi (~ 500 micron) che l&#39;CFM usato per proteine ​​e altre biomolecole. Le cellule sono state stampate o seminate su una ...

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The Submerged Printing of Cells onto a Modified Surface Using a Continuous Flow Microspotter

This 3D microfluidic printing technology prints arrays of cells onto submerged surfaces. We describe how arrays of cells are delivered microfluidically in 3D flow cells onto submerged surfaces. By printing onto submerged surfaces, cell microarrays were produced that allow for drug screening and cytotoxicity assessment in a multitude of areas.

La stampa Sommerso di celle su una superficie modificata utilizzando un flusso di Microspotter continua

The printing of cells for microarray applications possesses significant challenges including the problem of maintaining physiologically relevant cell ...

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

8.6K Views.  Wasatch Microfluidics. This 3D microfluidic printing technology prints arrays of cells onto submerged surfaces. We describe how arrays of cells are delivered microfluidically in 3D flow cells onto submerged surfaces. By printing onto submerged surfaces, cell microarrays were produced that allow for drug screening and cytotoxicity assessment in a multitude of areas.