Questa ricerca è stata supportata in parte dal programma di ricerca intramurale del NIH, NIDCD a M.H. (DC000088)

Tutti gli esperimenti e le procedure sugli animali sono stati eseguiti secondo i protocolli approvati dal Comitato per la cura e l'uso degli animali dell'Istituto nazionale di malattie neurologiche e ictus e dall'Istituto nazionale sulla sordità e altri disturbi della comunicazione, National Institutes of Health. Tutti i protocolli sperimentali sono stati approvati dall'Animal Care and Use Committee del National Institute of Neurological Diseases and Stroke e dal National Institute on Deafness and Other Communication Disorders, National Institutes of Health. Tutti i metodi sono stati eseguiti in conformità con le linee guida e i regolamenti pertinenti del Comitato per la cura e l'uso degli animali dell'Istituto nazionale di malattie neurologiche e ictus e dell'Istituto nazionale sulla sordità e altri disturbi della comunicazione, National Institutes of Health.
1. Eutanasia animale
<ol><li>Utilizzare topi transgenici C57BL/6J o Kcnj10-ZsGreen, giorno postnatale 30+ (P30+), che pesano tra 15-20 g.</li>
	<li>Eutanasia di un topo adulto (età P30 o superiore) utilizzando un protocollo approvato (qui asfissiaCO 2 ). Esegui la decapitazione come passaggio secondario. NOTA: In caso di immunocolorazione, alcuni anticorpi possono avere un segnale di fondo a causa del legame non specifico al sangue nei capillari della SV. La perfusione cardiaca con fissativo può risolvere questo problema rimuovendo il sangue dai capillari della SV. Tuttavia, la maggior parte degli anticorpi può ottenere buoni risultati senza questo metodo e non sarà coperto da questo protocollo.</li>
</ol>2. Esporre il labirinto osseo
<ol><li>Pulire il mouse spruzzando con etanolo al 70% e strofinando con un tovagliolo di carta. Prestare particolare attenzione alla regione della testa per ridurre il rischio di contaminazione. Rimuovere la pelle dal cranio tirando la pelle verso il naso.</li>
	<li>Usando forbici affilate, dividere il cranio lungo il piano mediosagittale per separare le porzioni sinistra e destra.</li>
	<li>Rimuovere il cervello dal cranio per esporre il labirinto osseo.</li>
</ol>3. Estrazione dell'orecchio interno
<ol><li>Identificare l'orecchio interno all'interno dell'osso temporale (Figura 2A) e raschiare via i nervi cranici usando una pinza #55. NOTA: L'utente deve stabilizzare il campione con la mano non dominante utilizzando una seconda serie di pinze #55. Diverse aree del campione possono essere afferrate con la pinza stabilizzatrice durante la dissezione se si evitano aree critiche del campione (ad esempio, non schiacciare la coclea).</li>
	<li>Usando una pinza #55, sezionare la bulla e la capsula, staccandole dall'osso circostante. Rimuovere qualsiasi tessuto molle residuo dalla superficie dell'orecchio interno.</li>
	<li>Trasferire il campione in un piatto di coltura tissutale trasparente contenente 1x PBS freddo (soluzione salina tamponata fosfato), pH 7,4, e posto sotto un ambito di dissezione (Figura 2B).</li>
</ol>4. Dissezione SV
NOTA: Con la pratica, è possibile sezionare l'SV come un lungo pezzo simile a un nastro. L'SV è fragile, quindi se si rompe in pezzi, questi possono essere conservati insieme. In alternativa, questi possono essere conservati in pozzetti etichettati separatamente in base al loro turno (ad esempio, basale, medio, apicale).
<ol><li>Se le sorgenti luminose dell'oscilloscopio di dissezione possono essere spostate, posizionare una luce sopra il piatto e la seconda sorgente luminosa lateralmente, parallela alla superficie di dissezione. Ciò consente un migliore contrasto del tessuto sotto l'osso cocleare.</li>
	<li>Usando una pinza #55, tenere il campione per la porzione vestibolare con la coclea rivolta verso l'alto.</li>
	<li>Usando una pinza #55, perforare l'osso cocleare all'apice. NOTA: le pinze #5 sono più spesse delle #55 e possono essere utilizzate per rompere l'osso, ma l'aumento di dimensioni/forza sacrifica la finezza della pinza e la capacità di manipolare piccoli tessuti. Prendi in considerazione l'utilizzo di pinze realizzate con un materiale come inox o dumostar per evitare danni che possono verificarsi a pinze più delicate. Evitare di spingere la pinza troppo in profondità sotto l'osso per evitare di danneggiare la SV.</li>
	<li>Usando una pinza #55, raschiare lungo la curva apicale (Figura 2C), applicando una forza delicata per staccare piccoli pezzi dello strato osseo esterno. Sollevare delicatamente l'osso e staccarlo dalla parete laterale. NOTA: Può essere utile pensare a questa dissezione come "rimuovere tutto dalla SV", piuttosto che "sezionare la SV dalla coclea".</li>
	<li>Continuare a usare la pinza #55 per rimuovere pezzi di osso cocleare dai giri apicali e medi (Figura 2D,E). Spingendo delicatamente verso il basso la parete laterale, fare leva e rimuovere i pezzi di parete ossea verso la curva centrale per esporre la parete laterale delle curve apicali e centrali.</li>
	<li>Continuando a usare la pinza #55, spingere delicatamente la parete laterale apicale, per esporre il ganglio a spirale. Staccare la parete laterale delle curve apicali e centrali dal ganglio a spirale lungo lo strato esterno delle cellule ciliate. Rimuovere pezzi di ganglio a spirale dall'interno della coclea. NOTA: Le pinze #55 sono più piccole e offrono un vantaggio quando si manipolano tessuti piccoli e delicati. È necessario prestare particolare attenzione per evitare di piegarli o danneggiarli.</li>
	<li>Per avere un migliore accesso alla parete laterale del giro basale, staccare la coclea dalla porzione vestibolare dell'osso temporale usando una pinza #55. Metti la pinza # 55 nella finestra rotonda e ovale e spingi verso il basso verso il vestibolo. La coclea si staccherà. Rimuovere la porzione vestibolare dell'orecchio interno.</li>
	<li>Continuando a usare la pinza #55, ora rimuovi pezzi di osso cocleare basale, a partire dall'area del giro centrale. Spingere delicatamente lo strato di parete laterale sotto l'osso per staccarlo.</li>
	<li>Rimuovere la parte basale più lontana della parete laterale facendo leva e tirando delicatamente il tessuto. L'osso in questa regione può essere troppo spesso per essere rimosso senza danneggiare il tessuto molle sottostante.</li>
	<li>Ora, con la parte basale della parete laterale staccata, separare il più possibile la parete laterale dalla coclea. Questo può essere fatto tracciando la pinza # 55 lungo la parete laterale. Spazzolare delicatamente la pinza tra l'osso e la parete laterale rimanente. Questo può essere fatto fino all'apice in un unico pezzo se l'utente è esperto. Spostare la parete laterale su PBS fresco. NOTA: Sebbene i pezzi più grandi di SV possano essere più facili da immaginare, data la natura delicata dei tessuti, possono essere presi pezzi più piccoli (Figura 2F, G) e, a seconda delle dimensioni, possono anche funzionare per l'imaging.</li>
	<li>Utilizzare una pinza #55 per appoggiare la parete laterale piatta. La SV dovrebbe essere visibile come uno strato più scuro di tessuto sul lato interno della parete laterale. NOTA: Gli utenti possono scoprire, in particolare più vicino all'estremità apicale, che parte del tessuto SV si stacca accidentalmente dalla parete laterale durante la dissezione.</li>
	<li>Sollevare delicatamente lo strato SV per staccarlo dalla parete laterale alla sua estremità basale (Figura 2H). Spingere delicatamente da parte l'SV staccato e spostare ulteriormente la pinza verso l'estremità apicale della parete laterale, staccando la SV come un lungo nastro, se possibile (Figura 2I). Non spremere l'SV con una pinza per tirarlo. Se il tessuto è troppo fragile per essere afferrato, può in alternativa essere raccolto utilizzando uno scoop di tessuto, come una curette di calazio. NOTA: lo spostamento dell'SV deve sempre essere effettuato al microscopio ottico per assicurarsi che non venga perso. Fai sempre attenzione quando afferri usando una pinza a causa del rischio di danni. Gli utenti possono scoprire che l'utilizzo di calazio curette mitiga il rischio di danni al tessuto SV. Per il sequenziamento di un singolo nucleo, procedere alla sezione 5. Per l'immunocolorazione SV, procedere al paragrafo 7.</li>
</ol>5. Sospensione SV mononucleo
NOTA: Questo protocollo è adattato per il tessuto SV specificamente dal protocollo di sospensione a nucleo singolo di un produttore pubblicato. Possono essere utilizzate piattaforme di produttori diversi31. Data la variazione specifica della piattaforma, si consiglia di rivedere il protocollo specifico del produttore fornito con l'apparecchiatura. Per ottenere risultati ottimali per sNuc-Seq e ridurre al minimo la degradazione dell'RNA, più veloce è la dissezione dei tessuti, meglio è (raccomandata entro 15-20 minuti dall'eutanasia). Può essere utile eutanasia un animale alla volta e solo quando è pronto per sezionare. Avere più persone che lavorano contemporaneamente sulle dissezioni può anche eliminare il tempo di degradazione (ad esempio, un personale di laboratorio lavora sull'orecchio sinistro mentre un altro lavora sull'orecchio destro).
<ol><li>Se il tessuto SV sarà utilizzato per sNuc-Seq, porre il tessuto in tampone di lisi refrigerato (10 mM Tris-HCl, 10 mM NaCl, 3 mM MgCl2, 0,005% nonidet P40 in acqua priva di nucleasi). NOTA: se il sequenziamento deve essere eseguito immediatamente dopo la dissezione, continuare il protocollo. Se si desidera mettere in pausa il protocollo, la conservazione della SV è possibile inserendo la SV in RNAlater. Conservare per una notte a 4 °C, quindi congelare in azoto liquido e conservare a -80 °C fino al momento dell'uso. Quando è pronto per l'uso, scongelare e lavare due volte in PBS per 5 minuti ciascuno, quindi procedere con l'omogeneizzazione (passaggio 5.2).</li>
	<li>Omogeneizzare il tessuto in un omogeneizzatore dounce da 2 ml con 10-20 colpi di ghiaccio. NOTA: Il cilindro di vetro entrerà manualmente in contatto con il fondo del tubo di vetro, frammentando l'SV. L'SV è delicato, quindi 20 colpi di solito raggiungono un'omogeneizzazione di successo.</li>
	<li>Lisare il tessuto sul ghiaccio per 25 min. NOTA: Il tempo di lisi varia a seconda del tipo di tessuto. Una lisi di 25 minuti nel tessuto SV può raggiungere una bassa vitalità cellulare (meno del 4%), ma il tempo può essere adattato se la vitalità cellulare è troppo alta (fase 5.8).</li>
	<li>Filtrare attraverso un filtro da 30 μm e ruotare il filtrato a 500 x g per 5 minuti a 4 °C.</li>
	<li>Rimuovere il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 1 mL di tampone di lavaggio e risospensione dei nuclei (1x PBS, albumina sierica bovina all'1% [BSA], inibitore della RNasi 0,2U/μL).</li>
	<li>Filtrare le celle attraverso un filtro da 10 μm e centrifugare a 500 x g per 5 minuti a 4 °C.</li>
	<li>Rimuovere il surnatante e risospendere in 50 μL di tampone di lavaggio e risospensione dei nuclei.</li>
	<li>Contare i nuclei usando un contatore cellulare e la colorazione blu tripano. Diluire 5 μL della sospensione cellulare in 50 μL di 1x PBS per il conteggio delle cellule; La redditività dovrebbe essere minima (3% -4%) a questo punto. Se la vitalità risulta essere superiore, adattare il protocollo per la fase 5.3 (lisi) e standardizzare il tempo di lisi per garantire un'adeguata lisi delle cellule. NOTA: Un'elevata vitalità cellulare in una singola preparazione del nucleo significa che ci sono più cellule intatte di quanto desiderato e che potrebbe essere necessaria un'ulteriore digestione.</li>
	<li>Caricare il campione con la densità nucleare desiderata sull'apparecchio/chip del fabbricante (vedere la guida per il produttore). Le catture di singoli nuclei sono ora pronte. NOTA: Da un topo adulto SV, di solito si ottengono 50 μL della sospensione ad una concentrazione di 150.000 nuclei/ml.</li>
</ol>6. Sequenziamento SV a singolo nucleo
<ol><li>Inviare i campioni alla struttura principale per il sequenziamento. NOTA: Questa parte del protocollo segue le fasi generali di (1) generazione di emulsione di gel beads (GEM) e codice a barre, (2) pulizia post-GEM-RT e amplificazione del cDNA e (3) costruzione della libreria di espressione genica 3'. Il resto del protocollo sNuc-Seq è relativamente lungo e si raccomanda ai lettori di utilizzare il protocollo specifico del produttore. La guida del produttore probabilmente descriverà i passaggi con dettagli specifici e immagini di accompagnamento. Potrebbero esserci anche video "how-to" sul sito Web del produttore. I set di dati generati possono essere rappresentati in modo dimensionale ridotto, come un'approssimazione e proiezione uniforme di varietà (UMAP; Figura 3). Molti laboratori utilizzano un nucleo di sequenziamento che può eseguire questo protocollo per gli utenti.</li>
</ol>7. Immunocolorazione SV e montaggio dei tessuti
<ol><li>Se il tessuto verrà utilizzato per l'immunocolorazione, trasferirlo in una piastra da 24 pozzetti, immerso in 200 μL di paraformaldeide al 4% (PFA) in 1x PBS e incubare per 20 minuti a temperatura ambiente. NOTA: è utile eseguire tutta la rimozione di liquidi, il lavaggio e l'immunocolorazione sotto un microscopio. La visualizzazione durante il pipettaggio del tessuto garantirà che non venga accidentalmente perso durante la rimozione del liquido. I volumi degli anticorpi e dei lavaggi possono essere regolati purché il volume sia abbastanza grande da immergere il tessuto SV all'interno della soluzione.</li>
	<li>Dopo la fase di fissaggio, rimuovere il PFA eseguendo due brevi lavaggi in 1x PBS (circa 500 μL) a 4 °C per 5 minuti ciascuno su uno shaker orbitale a basso (30-50) RPM. Durante la conservazione, il tessuto può essere conservato in 1x PBS a 4 °C.</li>
	<li>Rimuovere il PBS e permeabilizzare e bloccare per un minimo di 1 ora a temperatura ambiente in circa 300 μL di soluzione PBS-T (0,05 Tween20 in 1x PBS con siero bovino fetale al 10%). NOTA: Gli anticorpi primari e secondari devono essere diluiti in questa soluzione bloccante.</li>
	<li>Colorare il tessuto con anticorpo primario secondo le specifiche del particolare anticorpo utilizzato, di solito durante la notte a 4 °C . Rimuovere il PBS rimanente e aggiungere l'anticorpo primario diluito. NOTA: La diluizione deve essere scelta in base ai suggerimenti del produttore, ai dati pubblicati, all'esperienza precedente, ecc. Di solito, la prima concentrazione da testare è una diluizione 1:100-200. Per l'esempio presentato in questo articolo, gli anticorpi GS-IB4 e DAPI sono stati diluiti ciascuno a 1:200. Se si colora per più di una proteina, più anticorpi primari possono essere combinati nella stessa soluzione, purché ogni anticorpo primario abbia un ospite diverso per evitare la reattività crociata degli anticorpi secondari.</li>
	<li>Lavare l'anticorpo primario dal tessuto usando circa 500 μL di 1x PBS due volte per 10 minuti ciascuno su uno shaker orbitale a basso RPM. NOTA: Continuare ad assicurarsi che il tessuto SV sia immerso nella soluzione e non bloccato sul lato del pozzetto.</li>
	<li>Colorare con un anticorpo secondario secondo le specifiche del particolare anticorpo utilizzato, di solito per 2 ore a temperatura ambiente su uno shaker orbitale a basso RPM. Coprire la piastra a 24 pozzetti in modo che l'anticorpo secondario contrassegnato con fluorescenza sia protetto dalla luce. NOTA: Se è necessario più di un anticorpo secondario, combinare gli anticorpi secondari nella stessa soluzione. Assicurati di evitare l'etichettatura incrociata.</li>
	<li>Lavare l'anticorpo secondario dal tessuto usando circa 500 μL di 1x PBS quattro volte per 5 minuti ciascuna su uno shaker orbitale a basso RPM. Tenere coperta la piastra a 24 pozzetti per proteggerla dalla luce.</li>
	<li>Preparare il microvetrino più grande (75 mm x 25 mm) posizionando due piccole strisce di colla lungo l'asse di 25 mm, appena più piccole della vetrina più piccola di 18 x 18 mm. Introdurre una goccia di reagente di montaggio (circa 50 μL) tra le strisce di colla. NOTA: La colla crea una piccola quantità di spazio verticale in modo che quando il secondo vetrino viene posizionato sopra, il campione di tessuto SV può esistere in sicurezza, ma continuare a rimanere in posizione. Mentre lo spessore della stria è di 30-40 micron, la compressione del tessuto tra le superfici di vetro dovrebbe essere evitata per preservare la morfologia. In alternativa, è possibile utilizzare anche nastro trasparente.</li>
	<li>Utilizzando una pinza #55, afferrare il minor tessuto possibile su un'estremità della SV e trasferire dal PBS alla goccia del reagente di montaggio sul microvetrino più grande (75 mm x 25 mm). Posizionare un'estremità di un vetrino più piccolo (18 mm x 18 mm) sul vetrino in cui è stata posizionata una striscia di colla e rilasciare delicatamente per evitare di creare bolle d'aria. Il coprislip cadrà sull'altra striscia di colla e coprirà il tessuto SV.</li>
	<li>Sigillare il supporto tamponando una goccia di smalto trasparente su ogni angolo del supporto. Etichettare il campione di conseguenza sul coperchio di vetroscivolo lontano dal campo di visualizzazione. Ora è pronto per la microscopia confocale (Figura 4).</li>
	<li>Visualizza il tessuto SV usando un microscopio a dissezione per assicurarti che sia piatto e non vicino a bolle d'aria. Se il tessuto SV non è orientato correttamente, l'utente può tentare di spingere fuori le bolle d'aria o rimuovere con attenzione il vetrino più piccolo e riposizionare l'SV. Questo deve essere fatto delicatamente per evitare di rompere i vetrini di copertura.</li>
</ol>

Microdissezione della stria vascolare per il sequenziamento di un singolo nucleo o l'immunocolorazione

<ol>
	<li>Bosher, S. K., Warren, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observations+on+the+electrochemistry+of+the+cochlear+endolymph+of+the+rat:+a+quantitative+study+of+its+electrical+potential+and+ionic+composition+as+determined+by+means+of+flame+spectrophotometry.">Observations on the electrochemistry of the cochlear endolymph of the rat: a quantitative study of its electrical potential and ionic composition as determined by means of flame spectrophotometry.</a> Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences. 171 (1023), 227-247 (1968).</li><li>Patuzzi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ion+flow+in+stria+vascularis+and+the+production+and+regulation+of+cochlear+endolymph+and+the+endolymphatic+potential.">Ion flow in stria vascularis and the production and regulation of cochlear endolymph and the endolymphatic potential.</a> Hearing Research. 277 (1-2), 4-19 (2011).</li><li>Wangemann, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=K++cycling+and+the+endocochlear+potential.">K+ cycling and the endocochlear potential.</a> Hearing Research. 165 (1-2), 1-9 (2002).</li><li>Adachi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mechanism+underlying+maintenance+of+the+endocochlear+potential+by+the+K++transport+system+in+fibrocytes+of+the+inner+ear.">The mechanism underlying maintenance of the endocochlear potential by the K+ transport system in fibrocytes of the inner ear.</a> The Journal of Physiology. 591 (18), 4459-4472 (2013).</li><li>Hibino, H., Nin, F., Tsuzuki, C., Kurachi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+is+the+highly+positive+endocochlear+potential+formed?+The+specific+architecture+of+the+stria+vascularis+and+the+roles+of+the+ion-transport+apparatus.">How is the highly positive endocochlear potential formed? The specific architecture of the stria vascularis and the roles of the ion-transport apparatus.</a> Pflugers Archiv. 459 (4), 521-533 (2010).</li><li>Lang, F., Vallon, V., Knipper, M., Wangemann, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+significance+of+channels+and+transporters+expressed+in+the+inner+ear+and+kidney.">Functional significance of channels and transporters expressed in the inner ear and kidney.</a> American Journal of Physiology. Cell Physiology. 293 (4), C1187-C1208 (2007).</li><li>Liu, W., Schrott-Fischer, A., Glueckert, R., Benav, H., Rask-Andersen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+human+&amp;#34;cochlear+battery&amp;#34;-claudin-11+barrier+and+ion+transport+proteins+in+the+lateral+wall+of+the+cochlea.">The human &amp;#34;cochlear battery&amp;#34;-claudin-11 barrier and ion transport proteins in the lateral wall of the cochlea.</a> Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 239 (2017).</li><li>Marcus, D. C., Wu, T., Wangemann, P., Kofuji, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=KCNJ10+(Kir4.1)+potassium+channel+knockout+abolishes+endocochlear+potential.">KCNJ10 (Kir4.1) potassium channel knockout abolishes endocochlear potential.</a> American Journal of Physiology. Cell Physiology. 282 (2), C403-C407 (2002).</li><li>Spicer, S. S., Schulte, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+of+inner+ear+fibrocytes+according+to+their+ion+transport+related+activity.">Differentiation of inner ear fibrocytes according to their ion transport related activity.</a> Hearing Research. 56 (1-2), 53-64 (1991).</li><li>Wangemann, P., Liu, J., Marcus, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ion+transport+mechanisms+responsible+for+K++secretion+and+the+transepithelial+voltage+across+marginal+cells+of+stria+vascularis+in+vitro.">Ion transport mechanisms responsible for K+ secretion and the transepithelial voltage across marginal cells of stria vascularis in vitro.</a> Hearing Research. 84 (1-2), 19-29 (1995).</li><li>Yoshida, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+unique+ion+permeability+profile+of+cochlear+fibrocytes+and+its+contribution+to+establishing+their+positive+resting+membrane+potential.">The unique ion permeability profile of cochlear fibrocytes and its contribution to establishing their positive resting membrane potential.</a> Pflugers Archiv. 468 (9), 1609-1619 (2016).</li><li>Johns, J. D., Adadey, S. M., Hoa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+the+stria+vascularis+in+neglected+otologic+disease.">The role of the stria vascularis in neglected otologic disease.</a> Hearing Research. 428, 108682 (2023).</li><li>Kim, J., Ricci, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+real-time+imaging+reveals+megalin+as+the+aminoglycoside+gentamicin+transporter+into+cochlea+whose+inhibition+is+otoprotective.">In vivo real-time imaging reveals megalin as the aminoglycoside gentamicin transporter into cochlea whose inhibition is otoprotective.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (9), e2117846119 (2022).</li><li>Zdebik, A. A., Wangemann, P., Jentsch, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potassium+ion+movement+in+the+inner+ear:+insights+from+genetic+disease+and+mouse+models.">Potassium ion movement in the inner ear: insights from genetic disease and mouse models.</a> Physiology. 24, 307-316 (2009).</li><li>Chen, J., Zhao, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+an+inwardly+rectifying+K++channel+(Kir4.1)+in+the+inner+ear+and+hearing+loss.">The role of an inwardly rectifying K+ channel (Kir4.1) in the inner ear and hearing loss.</a> Neuroscience. 265, 137-146 (2014).</li><li>Steel, K. P., Barkway, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Another+role+for+melanocytes:+their+importance+for+normal+stria+vascularis+development+in+the+mammalian+inner+ear.">Another role for melanocytes: their importance for normal stria vascularis development in the mammalian inner ear.</a> Development. 107 (3), 453-463 (1989).</li><li>Ito, T., Nishio, A., Wangemann, P., Griffith, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progressive+irreversible+hearing+loss+is+caused+by+stria+vascularis+degeneration+in+an+Slc26a4-insufficient+mouse+model+of+large+vestibular+aqueduct+syndrome.">Progressive irreversible hearing loss is caused by stria vascularis degeneration in an Slc26a4-insufficient mouse model of large vestibular aqueduct syndrome.</a> Neuroscience. 310, 188-197 (2015).</li><li>Gu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+rare+spindle+and+root+cell+transcriptional+profiles+in+the+stria+vascularis+of+the+adult+mouse+cochlea.">Characterization of rare spindle and root cell transcriptional profiles in the stria vascularis of the adult mouse cochlea.</a> Scientific Reports. 10 (1), 18100 (2020).</li><li>Gow, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deafness+in+claudin+11-null+mice+reveals+the+critical+contribution+of+basal+cell+tight+junctions+to+stria+vascularis+function.">Deafness in claudin 11-null mice reveals the critical contribution of basal cell tight junctions to stria vascularis function.</a> The Journal of Neuroscience. 24 (32), 7051-7062 (2004).</li><li>Chang, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Virally+mediated+Kcnq1+gene+replacement+therapy+in+the+immature+scala+media+restores+hearing+in+a+mouse+model+of+human+Jervell+and+Lange-Nielsen+deafness+syndrome.">Virally mediated Kcnq1 gene replacement therapy in the immature scala media restores hearing in a mouse model of human Jervell and Lange-Nielsen deafness syndrome.</a> EMBO Molecular Medicine. 7 (8), 1077-1086 (2015).</li><li>Faridi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutational+and+phenotypic+spectra+of+KCNE1+deficiency+in+Jervell+and+Lange-Nielsen+Syndrome+and+Romano-Ward+Syndrome.">Mutational and phenotypic spectra of KCNE1 deficiency in Jervell and Lange-Nielsen Syndrome and Romano-Ward Syndrome.</a> Human Mutation. 40 (2), 162-176 (2019).</li><li>Wangemann, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+KCNJ10+protein+expression+abolishes+endocochlear+potential+and+causes+deafness+in+Pendred+syndrome+mouse+model.">Loss of KCNJ10 protein expression abolishes endocochlear potential and causes deafness in Pendred syndrome mouse model.</a> BMC Medicine. 2, 30 (2004).</li><li>Kitajiri, S. -. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+patterns+of+claudins,+tight+junction+adhesion+molecules,+in+the+inner+ear.">Expression patterns of claudins, tight junction adhesion molecules, in the inner ear.</a> Hearing Research. 187 (1-2), 25-34 (2004).</li><li>Jagger, D. J., Nevill, G., Forge, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+membrane+properties+of+cochlear+root+cells+are+consistent+with+roles+in+potassium+recirculation+and+spatial+buffering.">The membrane properties of cochlear root cells are consistent with roles in potassium recirculation and spatial buffering.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 11 (3), 435-448 (2010).</li><li>Ito, T., Kurata, N., Fukunaga, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-resident+macrophages+in+the+stria+vascularis.">Tissue-resident macrophages in the stria vascularis.</a> Frontiers in Neurology. 13, 818395 (2022).</li><li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=VEGFA165+gene+therapy+ameliorates+blood-labyrinth+barrier+breakdown+and+hearing+loss.">VEGFA165 gene therapy ameliorates blood-labyrinth barrier breakdown and hearing loss.</a> JCI Insight. 6 (8), e143285 (2021).</li><li>Shi, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathophysiology+of+the+cochlear+intrastrial+fluid-blood+barrier+(review).">Pathophysiology of the cochlear intrastrial fluid-blood barrier (review).</a> Hearing Research. 338, 52-63 (2016).</li><li>Gu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+potential+Meniere's+disease+targets+in+the+adult+stria+vascularis.">Identification of potential Meniere's disease targets in the adult stria vascularis.</a> Frontiers in Neurology. 12, 630561 (2021).</li><li>Fischer, J., Ayers, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single+nucleus+RNA-sequencing:+how+it's+done,+applications+and+limitations.">Single nucleus RNA-sequencing: how it's done, applications and limitations.</a> Emerging Topics in Life Sciences. 5 (5), 687-690 (2021).</li><li>Korrapati, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single+cell+and+single+nucleus+RNA-Seq+reveal+cellular+heterogeneity+and+homeostatic+regulatory+networks+in+adult+mouse+stria+vascularis.">Single cell and single nucleus RNA-Seq reveal cellular heterogeneity and homeostatic regulatory networks in adult mouse stria vascularis.</a> Frontiers in Molecular Neuroscience. 12, 316 (2019).</li><li>Pyle, M. P., Hoa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applications+of+single-cell+sequencing+for+the+field+of+otolaryngology:+A+contemporary+review.">Applications of single-cell sequencing for the field of otolaryngology: A contemporary review.</a> Laryngoscope Investigative Otolaryngology. 5 (3), 404-431 (2020).</li><li>Hwang, B., Lee, J. H., Bang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-cell+RNA+sequencing+technologies+and+bioinformatics+pipelines.">Single-cell RNA sequencing technologies and bioinformatics pipelines.</a> Experimental &amp; Molecular Medicine. 50 (8), 1-14 (2018).</li><li>Shafer, M. E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cross-species+analysis+of+single-cell+transcriptomic+data.">Cross-species analysis of single-cell transcriptomic data.</a> Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 175 (2019).</li><li>Chen, G., Ning, B., Shi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-cell+RNA-Seq+technologies+and+related+computational+data+analysis.">Single-cell RNA-Seq technologies and related computational data analysis.</a> Frontiers in Genetics. 10, 317 (2019).</li><li>Longo, S. K., Guo, M. G., Ji, A. L., Khavari, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrating+single-cell+and+spatial+transcriptomics+to+elucidate+intercellular+tissue+dynamics.">Integrating single-cell and spatial transcriptomics to elucidate intercellular tissue dynamics.</a> Nature Reviews Genetics. 22 (10), 627-644 (2021).</li><li>Kim, N., Kang, H., Jo, A., Yoo, S. A., Lee, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perspectives+on+single-nucleus+RNA+sequencing+in+different+cell+types+and+tissues.">Perspectives on single-nucleus RNA sequencing in different cell types and tissues.</a> Journal of Pathology and Translational Medicine. 57 (1), 52-59 (2023).</li><li>Grindberg, R. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA-sequencing+from+single+nuclei.">RNA-sequencing from single nuclei.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (49), 19802-19807 (2013).</li><li>Montgomery, S. C., Cox, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole+mount+dissection+and+immunofluorescence+of+the+adult+mouse+cochlea.">Whole mount dissection and immunofluorescence of the adult mouse cochlea.</a> Journal of Visuazlied Experiments. (107), e53561 (2016).</li></ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Prima dell'avvento del sequenziamento a singola cellula, molti ricercatori utilizzavano l'analisi dei tessuti di massa, che consentiva solo di analizzare i trascrittomi mediati tra le cellule. In particolare, single-cell e sNuc-Seq hanno permesso di isolare il trascrittoma di una singola cellula o di un singolo nucleo, rispettivamente32. In questo caso, i trascrittomi a singolo nucleo possono essere identificati per le cellule marginali, intermedie e basali, così come le cellule del fuso<sup clas...

La coclea è costituita da tre camere piene di liquido, la scala vestibuli, la scala media e la scala tympani. I vestiboli della scala e i timpani della scala contengono ciascuno perilinfa, che ha un'alta concentrazione di sodio (138 mM) e una bassa concentrazione di potassio (6,8 mM)1. La scala media contiene endolinfa, che ha un'alta concentrazione di potassio (154 mM) e una bassa concentrazione di sodio (0,91 mM)1,2,3. Questa differenza nella concentrazione di ioni può essere indicata come potenziale endococleare (EP) ed è generata principalmente dal movimento di ioni potassio attraverso vari canali ionici e giunzioni gap nella stria vascolare (SV) lungo la parete laterale della coclea 4,5,6,7,8,9,10,11 . La SV è un tessuto eterogeneo e altamente vascolarizzato che riveste l'aspetto mediale della parete laterale della coclea e contiene tre tipi cellulari principali: cellule marginali, intermedie e basali12 (Figura 1).
Le cellule marginali sono collegate da giunzioni strette per formare la superficie più mediale della SV. La membrana apicale è rivolta verso l'endolinfa della scala media e contribuisce al trasporto di ioni potassio nell'endolinfa utilizzando vari canali, tra cui KCNE1/KCNQ1, SLC12A2 e Na+-K+-ATPasi (NKA)5,10,13,14. Le cellule intermedie sono cellule pigmentate che risiedono tra le cellule marginali e basali e facilitano il trasporto del potassio attraverso la SV usando KCNJ10 (Kir 4.1)15,16. Le cellule basali si trovano in prossimità della parete laterale della coclea e sono strettamente associate ai fibrociti del legamento a spirale per promuovere il riciclaggio del potassio dalla perilinfa12. La patologia della SV è stata implicata in numerosi disturbi otologici17,18. Le mutazioni nei geni espressi nei principali tipi di cellule SV, come Kcnq1, Kcne1, Kcnj10 e Cldn11, possono causare sordità e disfunzione SV, inclusa la perdita di EP 19,20,21,22,23. Oltre ai tre principali tipi di cellule, ci sono altri tipi di cellule meno studiati nella SV, come le cellule fusate 22, le cellule radicali12,24, i macrofagi 25, i periciti 26 e le cellule endoteliali 27, che hanno ruoli incompletamente definiti che coinvolgono l'omeostasi ionica e la generazione di EP 28.
Rispetto al sequenziamento dell'RNA di massa, il sequenziamento dell'RNA a nucleo singolo (sNuc-Seq) fornisce informazioni sull'eterogeneità cellulare, piuttosto che una media di mRNA in un gruppo di cellule29, e può essere particolarmente utile quando si studia l'eterogeneo SV30. Ad esempio, sNuc-Seq ha prodotto un'analisi trascrizionale che suggerisce che potrebbe esserci un ruolo per le cellule del fuso e della radice nella generazione di EP, nella perdita dell'udito e nella malattia di Meniere18. Un'ulteriore caratterizzazione trascrizionale dei vari tipi di cellule SV può fornirci informazioni preziose sulla fisiopatologia alla base dei diversi meccanismi e sottotipi di fluttuazione dell'udito correlata alla SV e della perdita dell'udito. La raccolta di queste delicate strutture dell'orecchio interno è di fondamentale importanza per un'analisi ottimale dei tessuti.
In questo studio, viene descritto l'approccio di microdissezione per accedere e isolare la stria vascolare dalla coclea del topo adulto per sNuc-Seq o immunocolorazione. La dissezione della SV del topo adulto è necessaria per comprendere vari tipi di cellule SV e caratterizzare ulteriormente il loro ruolo nell'udito.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr >
			<td >10-&#181;m filter (Polyethylenterephthalat)</td>
			<td >PluriSelect</td>
			<td >#43-50010-01</td>
			<td >Filter tissue during sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >18 x 18 mm cover glass</td>
			<td >Fisher Scientific</td>
			<td >12-541A</td>
			<td >Cover slip to mount SV</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >30-&#181;m filter (Polyethylenterephthalat)</td>
			<td >PluriSelect</td>
			<td >#43-50030-03</td>
			<td >Filter tissue during sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >75 x 25 mm Superfrost Plus/Colorforst Plus Microslide</td>
			<td >Daigger</td>
			<td >EF15978Z</td>
			<td >Microslide to mount SV on</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >C57BL/6J Mice</td>
			<td >The Jackson Laboratory</td>
			<td >RRID: IMSR_JAX:000664</td>
			<td >General purpose mouse strain that has pigment more easily seen in the intermediate cells of the SV.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cell Counter</td>
			<td >Logos Biosystems</td>
			<td >L20001</td>
			<td >Used for cell counting</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Chalizon curette 5&#39;&#39;, size 3 2.5 mm</td>
			<td >Biomedical Research Instruments</td>
			<td >15-1020</td>
			<td >Used to transfer SV</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Chromium Next GEM single Cell 3&#39; GEM Kit v3.1</td>
			<td >Chromium</td>
			<td >PN-1000141</td>
			<td >Generates single cell 3&#39; gene expression libraries</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Clear nail polish</td>
			<td >Fisher Scientific</td>
			<td >NC1849418</td>
			<td >Used for sealing SV mount</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Corning Falcon Standard Tissue Culture Dishes, 24 well</td>
			<td >Corning</td>
			<td >08-772B</td>
			<td >Culture dish used to hold specimen during dissection</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DAPI</td>
			<td >Invitrogen</td>
			<td >D1306, RRID: AB_2629482</td>
			<td >Stain used for nucleus labeling</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Dounce homogenizer</td>
			<td >Sigma-Aldrich</td>
			<td >D8938</td>
			<td >Used to homogenize tissue for sNuc-seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Dumont #5 Forceps</td>
			<td >Fine Science Tools</td>
			<td >11252-30</td>
			<td >General forceps for dissection</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Dumont #55 Forceps</td>
			<td >Fine Science Tools</td>
			<td >11255-20</td>
			<td >Forceps with fine tip that makes SV manipulation easier</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Fetal Bovine Serum</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >16000044</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Glue stick</td>
			<td >Fisher Scientific</td>
			<td >NC0691392</td>
			<td >Used for mounting SV</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >GS-IB4 Antibody</td>
			<td >Molecular Probes</td>
			<td >I21411, RRID: AB-2314662</td>
			<td >Antibody used for capillary labeling</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >KCNJ10-ZsGreen Mice</td>
			<td >n/a</td>
			<td >n/a</td>
			<td >Transgenic mouse that expresses KCNJ10-ZsGreen, partiularly in the intermediate cells of the SV.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >MgCl2</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >AM9530G</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Mounting reagent</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >#S36940</td>
			<td >Mounting reagent for SV</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Multiwell 24 well plate</td>
			<td >Corning</td>
			<td >#353047</td>
			<td >Plate used for immunostaining</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >NaCl</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >AAJ216183</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Nonidet P40</td>
			<td >Sigma-Aldrich</td>
			<td >9-16-45-9</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Nuclease free water</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >4387936</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Orbital shaker</td>
			<td >Silent Shake</td>
			<td >SYC-2102A</td>
			<td >Used for steps of immunostaining</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >PBS</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >J61196.AP</td>
			<td >Used for steps of immunostaining and dissection</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >RNA Later</td>
			<td >Invitrogen</td>
			<td >AM7021</td>
			<td >Used for preservation of SV for sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Scizzors</td>
			<td >Fine Science Tools</td>
			<td >14058-09</td>
			<td >Used for splitting mouse skull</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Tris-HCl</td>
			<td >Sigma-Aldrich</td>
			<td >15506017</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Trypan blue stain</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >15250061</td>
			<td >Used for cell counting</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Tween20</td>
			<td >ThermoFisher</td>
			<td >AAJ20605AP&#160;</td>
			<td >Used for steps of sNuc-Seq</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Zeiss STEMI SV 11 Apo stereomicroscope</td>
			<td >Zeiss</td>
			<td >n/a</td>
			<td >Microscope used for dissections</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dissection of adult mouse stria vascularis for single-nucleus sequencing or immunostaining

Il potenziale endococleare, generato dalla stria vascolare, è essenziale per mantenere un ambiente favorevole alla meccanotrasduzione delle cellule ciliate appropriate e, infine, all'udito. Le patologie della stria vascolare possono causare una diminuzione dell'udito. La dissezione della stria vascolare adulta consente la cattura focalizzata del singolo nucleo e il successivo sequenziamento e immunocolorazione del singolo nucleo. Queste tecniche sono utilizzate per studiare la fisiopatologia della stria vascolare a livello unicellulare. 
Il sequenziamento a singolo nucleo può essere utilizzato nell'ambito dell'analisi trascrizionale della stria vascolare. Nel frattempo, l'immunocolorazione continua ad essere utile nell'identificazione di specifiche popolazioni di cellule. Entrambi i metodi richiedono una corretta dissezione della stria vascolare come prerequisito, che può rivelarsi tecnicamente impegnativa.

The cochlea consists of three fluid filled chambers, the scala vestibuli, scala media, and scala tympani. The scala vestibuli and scala tympani each contain perilymph, which has a high concentration of sodium (138 mM) and a low concentration of potassium (6.8 mM)1. The scala media contains endolymph, which has a high concentration of potassium (154 mM) and a low concentration of sodium (0.91 mM)1,2,3. This difference in ion concentration can be referred to as the endocochlear potential (EP), and is primarily generated by the movement of potassium ions through various ion channels and gap junctions in the stria vascularis (SV) along the lateral wall of the cochlea4,5,6,7,8,9,10,11. The SV is a heterogenous, highly vascularized tissue that lines the medial aspect of the lateral wall of the cochlea and contains three main cell types: marginal, intermediate, and basal cells12 (Figure 1).
Marginal cells are connected by tight junctions to form the most medial surface of the SV. The apical membrane faces the endolymph of the scala media and contributes to potassium ion transport into the endolymph using various channels, including KCNE1/KCNQ1, SLC12A2, and Na+-K+-ATPase (NKA)5,10,13,14. Intermediate cells are pigmented cells that reside between marginal and basal cells and facilitate potassium transport through the SV using KCNJ10 (Kir 4.1)15,16. Basal cells lie in close proximity to the lateral wall of the cochlea and are closely associated with fibrocytes of the spiral ligament to promote potassium recycling from the perilymph12. Pathology of the SV has been implicated in numerous otologic disorders17,18. Mutations in genes expressed in the major SV cell types, such as Kcnq1, Kcne1, Kcnj10, and Cldn11, can cause deafness and SV dysfunction, including the loss of EP19,20,21,22,23. In addition to the three major cell types, there are other less-studied cell types in the SV, such as spindle cells22, root cells12,24, macrophages25, pericytes26, and endothelial cells27, that have incompletely defined roles involving ionic homeostasis and the generation of EP28.
In comparison to bulk RNA-sequencing, single-nuclei RNA-sequencing (sNuc-Seq) provides information about cell heterogeneity, rather than an average of mRNA across a group of cells29, and can be particularly useful when studying the heterogenous SV30. For example, sNuc-Seq has produced transcriptional analysis that suggests there may be a role for spindle and root cells in EP generation, hearing loss, and Meniere&#39;s disease18. Further transcriptional characterization of the various SV cell types can provide us with invaluable information on the pathophysiology underlying different mechanisms and subtypes of SV-related hearing fluctuation and hearing loss. The harvest of these delicate inner ear structures is of paramount importance to optimal tissue analysis.
In this study, the microdissection approach to access and isolate the stria vascularis from the adult mouse cochlea for sNuc-Seq or immunostaining is described. Dissection of the adult mouse SV is required to understand various SV cell types and further characterize their role in hearing.

Autore in primo piano: Dissezione di stria vascolare di topo adulto per il sequenziamento di un singolo nucleo o l'immunocolorazione  

Dissezione della stria vascolare del topo adulto per sequenziamento di singoli nuclei o immunocolorazione

The stria vascularis functions to generate the endocochlear potential and regulate ion homeostasis in the cochlea. The auditory development and restoration program seeks to understand the underlying mechanisms connecting dysfunctional ion homeostasis with hearing and stability disorders, which are diseases where either fluctuation in or sudden hearing loss occurs. Work in my lab has established the transcriptional landscape of the stria vascularis and has contributed to our understanding of its importance in hearing.We have used these data to draw parallels to poorly-understood hearing and stability disorders, including Meniere's disease. This protocol enables the dissection and isolation of whole-mount stria vascularis for further molecular studies including immunohistochemistry. Given that stria vascularis cell types are intricately intertwined with one another, the use of nuclear isolation and single-nucleus RNA sequencing has facilitated our understanding of the distinct transcriptional machinery involved.

Presentiamo un metodo per isolare la SV da utilizzare per sNuc-Seq o immunocolorazione. L'anatomia rilevante (Figura 1) della coclea rispetto alla SV può aiutare gli utenti a comprendere meglio l'organizzazione della SV e le fasi del protocollo di dissezione.
Ogni fase di questa microdissezione di SV da un mouse P30 è dettagliata nel video associato e le istantanee dei passaggi chiave di questa dissezione e isolamento di SV sono presentate nella <strong class="x...

Watch this Scientific Journal Video about Dissection of Adult Mouse Stria Vascularis for Single-Nucleus Sequencing or Immunostaining at JoVE.com

La stria vasculare è vitale per la generazione del potenziale endococleare. Qui, presentiamo la dissezione della stria vasculare del topo adulto per il sequenziamento a singolo nucleo o l'immunocolorazione.

Endocochlear potential, which is generated by the stria vascularis, is essential to maintain an environment conducive to appropriate hair cell ...

La stria vasculare funziona per generare il potenziale endococleare e regolare l'omeostasi ionica nella coclea. Il programma di sviluppo e ripristino uditivo cerca di comprendere i meccanismi sottostanti che collegano l'omeostasi ionica disfunzionale con i disturbi dell'udito e della stabilità, che sono malattie in cui si verifica una fluttuazione o un'improvvisa perdita dell'udito. Il lavoro nel mio laboratorio ha stabilito il paesaggio trascrizionale della stria vascolare e ha contribuito alla nostra comprensione della sua importanza nell'udito.Abbiamo usato questi dati per tracciare parallelismi con disturbi dell'udito e della stabilità poco compresi, tra cui la malattia di Meniere. Questo protocollo consente la dissezione e l'isolamento della stria vascolare a montaggio intero per ulteriori studi molecolari tra cui l'immunoistochimica. Dato che i tipi di cellule della stria vascolare sono strettamente intrecciati tra loro, l'uso dell'isolamento nucleare e del sequenziamento dell'RNA a singolo nucleo ha facilitato la nostra comprensione del distinto meccanismo trascrizionale coinvolto.

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Research

JoVE Journal

Biology

Dissection of Adult Mouse Stria Vascularis for Single-Nucleus Sequencing or Immunostaining

1.3K Views.  National Institutes of Health. La stria vasculare funziona per generare il potenziale endococleare e regolare l'omeostasi ionica nella coclea. Il programma di sviluppo e ripristino uditivo cerca di comprendere i meccanismi sottostanti che collegano l'omeostasi ionica disfunzionale con i disturbi dell'udito e della stabilità, che sono malattie in cui si verifica una fluttuazione o un'improvvisa perdita dell'udito. Il lavoro nel mio laboratorio ha stabilito il paesaggio trascrizionale della stria vascolare e ha contribuito ...

Video: Autore in primo piano: Dissezione di stria vascolare di topo adulto per il sequenziamento di un singolo nucleo o l'immunocolorazione  

Endocochlear potential, which is generated by the stria vascularis, is essential to maintain an environment conducive to appropriate hair cell mechanotransduction and ultimately hearing. Pathologies of the stria vascularis can result in a decreased hearing. Dissection of the adult stria vascularis allows for focused single-nucleus capture and subsequent single-nucleus sequencing and immunostaining. These techniques are used to study stria vascularis pathophysiology at the single-cell level. 
Single-nucleus sequencing can be used in the setting of transcriptional analysis of the stria vascularis. Meanwhile, immunostaining continues to be useful in identifying specific populations of cells. Both methods require proper stria vascularis dissection as a prerequisite, which can prove to be technically challenging.

The stria vascularis is vital to the generation of endocochlear potential. Here, we present the dissection of the adult mouse stria vascularis for single-nucleus sequencing or immunostaining.

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Biologia

Mouse Inner Ear Extraction and Stria Vascularis Dissection

To begin, identify the inner ear within the temporal bone of a euthanized mouse. Scrape away the cranial nerves using number 55 forceps. Then use number 55 forceps to dissect out the bulla and capsule, detaching them from surrounding bone.Remove any remaining soft tissue from the inner ear surface. For SV dissection, use number 55 forceps to hold the specimen by the vestibular portion with the cochlear facing up. Pierce through the cochlear bone at the apex using the same forceps.Scrape along the apical turn, applying gentle force to break away small pieces of the outer bone layer. Gently lift the bone and detach it from the lateral wall. Using number 55 forceps remove cochlear bone pieces from the apical and middle turns.Gently pushing down the lateral wall, pry and remove the bone wall pieces towards the middle turn to expose the lateral wall of the apical and middle turns. Push the apical turn lateral wall aside to expose the spiral ganglion. Detach the lateral wall of the apical and middle turns from the spiral ganglion along the outer hair cell layer.Then remove pieces of spiral ganglion from inside the cochlear. Detach the cochlear from the vestibular portion of the temporal bone by inserting the forceps into the round and oval window and pushing down towards the vestibule to have better access to the lateral wall of the basal turn. After the cochlear is detached remove the vestibular portion of the inner ear.Prioritize preserving as much of the strayer as possible. Continue removing til the bone of the middle turn is detached from the SV.Next, remove pieces of the remaining cochlear bone covering the basal turn. This can be accomplished by pushing the lateral wall layer under the bone to detach it.Pry and gently pull the tissue to remove the farthest basal part of the lateral wall being careful not to damage the soft tissue below. With the basal part of the lateral wall detached, separate the lateral wall from the remaining cochlear by tracing the forceps along the lateral wall. Gently brush the forceps between the bone and the remaining lateral wall until it reaches the apex.Then move the lateral wall to a fresh PBS. Lay the lateral wall flat revealing the SV as a darker layer of tissue on the internal side of the lateral wall. Gently pry the SV layer away from the lateral wall.Push aside the detached SV and advance the forceps along the lateral wall attempting to detach the SV as one long ribbon, trying not to squeeze the SV.Use a tissue scoop to collect the fragile tissue. Cochlear were dissected from adult mouse aged greater than or equal to postnatal day 30. Inner ear was extracted from the surrounding temporal bone.SV was exposed after the removal of bone covering the middle turn. The SV was fully separated from the lateral wall after dissection.

Estrazione dell'orecchio interno del topo e dissezione della stria vascolare

Preparation of Stria Vascularis Single-Nucleus Suspension

Homogenize the dissected stria vascularis tissue from mouse ear in a two-milliliter Dounce homogenizer, with 10 to 20 strokes on ice. Lyse the tissue on ice for 25 minutes. Then, filter the tissue through a 30-micron filter and spin the filtrate at 500G for five minutes at four degrees Celsius.Remove the supernatant and resuspend the cell pellet in one milliliter of nuclei wash and resuspension buffer. Next, filter the cells through a 10-micron filter and centrifuge at 500G for five minutes at four degrees Celsius. Remove the supernatant and resuspend in 50 microliters of nuclei wash and resuspension buffer.After Trypan Blue staining, dilute five microliters of the cell suspension into 50 microliters of 1X PBS and count the cells. To prepare single nuclei captures, load the sample with the desired nuclear density onto the chip.

Preparazione della sospensione mononucleare della Stria vascularis

Immunostaining of Mouse Stria Vascularis and Tissue Mounting

Prepare for immunostaining by dissecting the stria vascularis from the mouse and add the tissue to a 24-well plate containing 200 microliters of 4%paraformaldehyde in 1X PBS. Incubate the tissue for 20 minutes at room temperature. perform two short washes of 1X PBS on an orbital shaker at low RPM.Remove the PBS, then perform permeabilization and blocking for a minimum of one hour at room temperature in 300 microliters of PBST solution. Next, stain the tissue with the primary antibody overnight at four degrees Celsius. Then add a secondary antibody and incubate for two hours at room temperature on an orbital shaker at low RPM.Cover the plate to protect the fluorescently tagged secondary antibody from light. Next, prepare a larger microslide by placing two small streaks of glue along the 25 mm axis, just smaller than the 18 by 18 millimeter glass cover slip. Place one drop of mounting reagent between the glue streaks.Using number 55 forceps, gab as little tissue as possible on one end of the SV, and transfer it from PBS to the mounting reagent. Place one end of the cover slip on the slide where one streak of glue was placed. Then gently release the cover slip to avoid creating air bubbles.Seal the mount by dabbing a drop of transparent nail polish on each corner of the mount. Label the specimen on the glass cover slip, away from the visualization field. Visualize the SV tissue under a dissection microscope to ensure it is lying flat and not near any air bubbles.If the SV tissue is not oriented correctly, try to push out air bubbles or carefully remove the smaller glass cover slip and reposition the SV.A whole mount of SV from P30 mouse was prepared and confocal imaging was performed. ZsGreen expression was observed in the intermediate cells, GSIB4 labeled endothelial cells, and DAPI labeled the nuclei.