Method Article
我々は、死後、人間の脳の上側頭回の層IIIの均質な細胞集団、錐体細胞からRNAを分離して抽出するためにレーザーキャプチャーマイクロダイセクションを使用してプロセスを説明します。私たちは、その後直線的に(T7ベース)mRNAを増幅し、Affymetrix社人間X3Pマイクロアレイにサンプルをハイブリダイズする。
我々は、レイヤーIIIの錐体細胞の遺伝子発現プロファイルを問い合わせることにより、統合失調症の患者に見られる上側頭回の灰白質の減少を調査することを提案した。それは、大脳皮質は多様な領域、層および別個の細胞および分子組成物およびそのための差動遺伝子発現プロファイルによって特徴づけられるそれぞれの細胞タイプを、構成する非常に不均質構造であることはよく知られています。組織の不均一性の交絡の影響を回避するために、我々は特定の細胞型、すなわち錐体細胞を単離するために、レーザーキャプチャーマイクロダイセクション(LCM)を使用。
Histogene染色液で染色された約500個の錐体細胞は、アルクトゥルスXT LCMシステムを使用して捕獲された。 RNAを捕捉細胞から単離され、アルクトゥルス/分子デバイスのキットを用いてT7ベースの線形増幅を2回施行した。 Experion LabChip(Bio - Rad社)ゲルや電気泳動図では、マイクロアレイに必要な過去の600ntを拡張する転写産物の長さで、良質の(m)のRNAを示した。得られたmRNAの量は2.5、A260/280比で示されるように許容可能な平均値サンプルの純度で、51μgの平均値。遺伝子発現は、アフィメトリクスからヒューマンX3PのGeneChipプローブアレイを用いてプロファイリングした。
1)組織切片:
我々は、年齢、性別及び死後間隔(PMI)(表1)については一致した、ハーバード脳組織リソースセンターから必要な組織を(コントロールのn = 9、統合失調症のn = 9)を得る。液体窒素蒸気ブロックは、約3mm厚は、ブロードマンの領域42(上側頭回)から採取したれました。
錐体細胞の染色を開始する前に、条件は最適な組織"リフト"と高いRNAの品質を得るために最適化する必要があります。組織"リフト"はキャプチャ用にマークされたニューロンは、キャップに付着レーザーキャプチャーマイクロダイセクション、中にプロセスを説明し、残りの組織が残されている間に分離されています。
最適化:
我々は以前に錐体神経細胞については、ケースごとに500個の細胞は、マイクロアレイのハイブリダイゼーションのために十分なRNAを得るために適切であると判断した。約4つのセクションは主に切片と染色のアーティファクトに、ケースごとに必要とされる。
錐体ニューロンの2)染色:
それは、私たちはそれによってRNAを保持し、水溶液に長時間さらされることなく、これらのニューロンを可視化することができるように錐体細胞の同定は、Histogeneクイック染色液およびキットによって実現されます。
その直後にレーザー捕捉場合染色の手順は、実行する必要があります。すべてのソリューションは、汚染を防止するために、適切な脱水を確実にするためにあらゆる4月6日のスライドを変更する必要があります。
3)単一細胞レーザーキャプチャーマイクロダイセクション:
染色後、レイヤーIIIの錐体細胞は、アルクトゥルスXTシステムとソフトウェアで、レーザーキャプチャーマイクロダイセクションを使用して削除されます。簡単に言えば、システムは目的の細胞に直接フィルムの延長/膨満、その結果、キャップの底部にある熱可塑性フィルムを介して調節可能な強度のIRレーザーをパルス化することによって機能します。キャップを組織から解除されると、細胞がキャップに捕捉/キャプティブ残ります。絵画概要を図1に示されている。
この手順を開始する前に、それはこのシステムで利用可能なキャップの2つの種類を区別することが重要です。マクロポイカプセルのキャップは一般的に大規模な組織構造を捕捉するために使用されている間に、ポイカプセルHSキャップは個々の細胞の小さな数字をキャプチャするために設計されており、従ってこれらのキャップは、キャプチャ用に指定されたより小さな表面積を有している。マクロのキャップはそうではないHSキャップはまた、組織切片に直接接触されてからキャップを防ぐレールを持っている。これらのレールは、マクロのキャップが折り畳まれた、不均一な組織に直接座っているように、スポットサイズのばらつきを(レーザーパルスの)影響を与えるまたは誘発する可能性がある組織の折り畳みの効果を減少させる。私たちの手順については、我々は組織の折り畳みの効果を減少させる能力を活用するためにHSキャップを使用していましたが、我々は多数のセルをキャプチャしているように写る範囲を最大にするためにソフトウェアでマクロキャップの設定を維持。
我々は現在、錐体ニューロンをキャプチャするために、レーザーパルスのパワーと持続時間を調整する。それは、キャプチャされたセルの数に加えて、キャプチャされた細胞の特異性を決定するので、これは、特に重要です。パルスが弱すぎる場合、パルスが強すぎる場合には、単独でニューロン以外の周囲の組織/細胞を取り込むことができる一方ではない全ての特定のニューロンは、キャプチャされます。一般的に、ここに採用組織および細胞の仕様で、約錐体ニューロンの大きさに沿ってレーザーの強さ(70mWで)と25μmのスポットサイズの持続時間(16msec)の結果、(図1B)。しかし、これらの設定は、ケースごとにほぼ同じスポットサイズを得るために各セクションに微調整されています。 "リフト"が侵害された場合、1つは常に同等のそれぞれのケースから得られたRNAの量を維持するために、キャプチャされたセルの数を増やすことができます。しかし、、1.5時間で染色を含めてキャプチャ時間を保つためにこれより長いとRNAの品質を妥協できることを確認してください。
4)特定の神経集団からのRNAの取得:
一つは、孤立してキャプチャから直接移動、または-80 ° Cの冷凍庫に保存されているサンプルを解凍することができます。私たちの実験では、我々は最初の単離をRNAに進む前に、-80℃で、必要に応じ、それらを保存されているすべてのサンプル° Cを集めた。
RNAの分離は、LCMサンプルからの細胞の小さな数字を分離すると発現量の低いmRNAを保持するように設計されてPicoPureアイソレーションキットを、使用して実行されます。一般的に、我々は、キットに含まれているプロトコルに従ってください。以下、我々は、プロセスの基本的な説明を与える。
RNAを単離する場合の品質管理には量が少ない場合は特に、非常に重要であり、このようなマイクロアレイ実験(15μg)のため、必要に応じて金額が、、大きいです。抽出されたRNAは、したがって、プロセス全体を通して様々な時点での品質管理を受ける必要があります。最初の抽出後に発生します。我々は、エレクトロとExperion HighSens LabChipによって生成される仮想ゲルの18S/28Sピークの肉眼的検査により全RNAの完全性を確立する。この方法は迅速であり、RNAの品質のエレクトロと仮想ゲル(図2)を確認するための測定の2つの手段が用意されています。トータルRNAの品質は(図比較的良好である場合。 2A、BとC、D)、我々は、その後直線的にトータルRNAの約2%を占めてmRNAを、増幅に進みます。
5)リニア増幅:
レーザー捕捉組織から抽出したRNAの増幅は、その後のマイクロアレイのハイブリダイゼーションや定量RT - PCR実験のためのRNAの十分な量を生産するために必要です。 T7ベースの線形増幅と述べた潜在的な混乱させる可能性を最小限にするために、我々は、出発レーザー捕捉組織材料の量を最大化によって必要な増幅のラウンド数を最小限に抑える。
我々の予備的データは、(図示せず)約500個の細胞を含む組織から抽出したトータルRNAのリニア増幅(RiboAmp HS PLUSキット)の2ラウンドは、aRNAのの約50μg生成するようなことを示唆している-マイクロアレイと定量RT - PCRの両方のパフォーマンスのための十分な実験。可能であれば、サーマルサイクラーとキットに付属の0.5ミリリットルチューブに0.5ミリリットルのブロックを使用して0.2ミリリットルと0.5ミリリットルチューブの間にサンプルの不要な移籍を避ける。
再び、その後にプロトコルがキットに付属するものです。簡略化したものがここで説明されています。
より多くの品質管理の手順が採用された後、 - RNAは(キットプロトコールを参照して、別のプライマーを用いて)線形増幅の別のラウンドを受ける。サンプルの一つULは約StdSens LabChip(Experion)を持つmRNA転写物の長さと濃度を決定するために250ng/ulに希釈される。伝統的なアフィメトリクスマイクロアレイ技術は、mRNAを検出するために長さが少なくとも600ヌクレオチドであることが必要です。 LabChipから得られたゲルと電気泳動図は、したがって、この最小のmRNA転写物の長さ(図3)を描くはず。
追加の品質管理は、2つの光学密度、すなわち、A260とA280で構成される比率は、RNAの純度を決定する光度計分光光度計の分析を介して決定されます。最高2.7まで比は同等のハイブリダイゼーションの品質を有することが示されているものの、2.1前後の光学濃度の検体は、遺伝子発現解析のために標識する必要があります。これより低いが(さらに-80℃以下の温度で)保管中に劣化してRNAにつながっているとも貧しいマイクロアレイの結果につながっているとして、濃度はまた、800ng/μl-1μg/μlの間でなければなりません。
6)アフィメトリクスマイクロアレイ解析用ビオチン標識mRNAのサンプル:
モレキュラーデバイスからTURBOビオチン標識キット(末端標識)を増幅したサンプルから得られたaRNAのラベルを付けるために使用されます。プロトコルの短縮版がここに与えられます。
aRNAをしアフィメトリクスからヒューマンX3PのGeneChipプローブアレイを用いて、ハイブリダイズさせ、遺伝子発現プロファイリングした。このチップは、我々は予防措置としてそれを使用する、より劣化したaRNAのために設計されたとして、私達が制御できないような多くの要因は、死後の組織の品質に影響を与える可能性があります。私たちの研究室は、ハイブリダイゼーションのための適切な施設を持っていなかったとして、プロセスは、パートナーのゲノムの中核施設で行われました。
代表的な結果:
1 +2 +3)組織は、錐体細胞とレーザーキャプチャーマイクロダイセクションの染色、セクショニング:
上記のプロトコルは、スライドごとに4つのセクションを持つ2つのスライドになるはずです。各セクションには、最小限の、引裂き割れと折りたたみでスムーズなはずです。ピラミッド型の形状と目に見える尖頭の樹状突起とサイズで25μmの - 正しい染色で、汚れは約20黒く染まった錐体ニューロンが識別されます。セクション/トータルRNAの少なくとも500pg、結果としてケース当たり700細胞 - ポイカプセルHSのマクロ設定のキャップ、および各セクションのためのレーザパワーと強さの正しい調整を使用すれば、約500入手する必要があります。約85 - ニューロンの100%が上限(図1)に準拠します。
4)特定の神経集団からのRNAの取得:
説明されているように、トータルRNAの分離の後、我々は、Bio - Rad社Experion経由のエレクトロと仮想ゲルを用いてRNAの品質を確認してください。電気泳動では、18Sおよび28SリボソームRNAのユニットに対応する2つの明確なピークが表示されるはずです。組織の要因により前の切片に低下する可能性があるとして、死後の組織で、しかし、これは、必ずしもそうではありません。通常は18S付近に大きなピーク、およびより小さい28Sのピーク(図2A、B)で、劣化を示す大きなバンプが表示されます。限り、電気泳動のプロファイルがサンプル間で比較可能であるため、我々は、RT - PCRとマイクロアレイの研究(Imbeaudら、2005)の両方を実行するための十分な良いmRNAの品質をもたらすためにこのガイドラインを発見した。
あまりにも多くの劣化がある場合 - などの電気泳動図の曲線の下の大きな面積で示さ、またはピークが表示されていない場合(図2C、D) - 細胞は組織から再キャプチャする必要があります。我々はまた、RNAが組織ブロック自体が劣化しているかどうかを判断するために細胞を取り戻す前に、セクションの全体の断片(だけではなく細胞)から抽出される組織こすりテストを、行うことをお勧めします。
5)リニア増幅:
線形増幅2ラウンドの後のmRNAの品質をテストするために、我々は、Bio - Rad社Experion StdSens LabChipと光度計分光光度計の両方を利用していました。伝統的なアフィメトリクスマイクロアレイ技術は、このプロトコルで取得された、mRNAが検出されるためには長さが少なくとも600ヌクレオチドであることが必要です。実際には、mRNAの長さは1000塩基の範囲に検出された。電気泳動図はまた、大きなピークが徐々に時間の関数(図3A、B)のように降順でこれを反映している。
光度計の測定値は、実行可能なmRNAを(表2)を示す、サンプル間で2.5のA260/A280比の平均値を示した。
我々の結果は、このプロトコルを使用して、得られたRNAの質と量の両方がアフィメトリクス人間X3PのGeneChipを介して遺伝子発現の違いを調べるために十分であることを示している。
6)アフィメトリクスマイクロアレイ解析用ビオチン標識mRNAのサンプル:
アフィメトリクス人間X3PのGeneChipにハイブリダイズした後、我々は適切なハイブリダイゼーションおよびプローブの強度を示し、26.6%(表2)の平均のパーセントの呼び出しを実現。
表1:コホートの概要
サンプル | グループ | セックス | 年齢 | PMI |
C1 | CONTROL | F | 79 | 15.00 |
C2 | CONTROL | M | 22 | 21.47 |
C4 | CONTROL | M | 75 | 20.25 |
C5 | CONTROL | M | 80 | 15.50 |
C6 | CONTROL | F | 58 | 21.08 |
C8 | CONTROL | M | 61 | 17.00 |
C10 | CONTROL | F | 71 | 20.50 |
C11 | CONTROL | F | 90 | 12.66 |
C12 | CONTROL | F | 86 | 6.92 |
ミーン | 4M/5F | 69.11 | 16.71 | |
S1 | SCHIZOPH。 | F | 93 | 6.92 |
S2 | SCHIZOPH。 | M | 55 | 21.40 |
S3 | SCHIZOPH。 | F | 67 | 21.80 |
S4 | SCHIZOPH。 | F | 55 | 22.00 |
S5 | SCHIZOPH。 | M | 36 | 17.97 |
S6 | SCHIZOPH。 | M | 62 | 10.75 |
S8 | SCHIZOPH。 | F | 92 | 17.80 |
S11 | SCHIZOPH。 | M | 56 | 21.83 |
S12 | SCHIZOPH。 | F | 88 | 13.33 |
ミーン | 4M/5F | 68.11 | 16.90 |
略語:F -女性、M -男性、PMI -死後間隔、schizoph。 -統合失調症。
表2:RNAの濃度、品質とハイブリダイゼーション効率を描いた結果のまとめ
サンプル | [発現] NG / UL | A260/A280 | プローブ強度 | パーセントコール |
C1 | 1318.01 | 2.67 | 63 | 19.5 |
C2 | 2312.93 | 2.37 | 147 | 30.6 |
C4 | 1811.92 | 2.44 | 69 | 26.6 |
C5 | 1316.26 | 2.51 | 78 | 34.7 |
C6 | 1663.24 | 2.39 | 66 | 33.8 |
C8 | 633.05 | 2.54 | 101 | 15.2 |
C10 | 1326.4 | 2.47 | 92 | 32.5 |
C11 | 994.24 | 2.75 | 76 | 22.4 |
C12 | 817.23 | 2.7 | 56 | 15.2 |
S1 | 2560.88 | 2.47 | 78 | 25.0 |
S2 | 2169.61 | 2.43 | 76 | 26.5 |
S3 | 2067.32 | 2.52 | 87 | 22.1 |
S4 | 1563.89 | 2.75 | 82 | 28.1 |
S5 | 2071.44 | 2.44 | 88 | 28.2 |
S6 | 2532.59 | 2.34 | 72 | 30.7 |
S8 | 2189.22 | 2.5 | 62 | 31.8 |
S11 | 1669.89 | 2.47 | 41 | 27.3 |
S12 | 1739.35 | 2.47 | 42 | 28.0 |
ミーン | 1708.75 | 2.51 | 76.44 | 26.57 |
図1:レーザーキャプチャーマイクロダイセクションのプロセスの概要 )錐体細胞は、形態学的に識別されます。レーザーは、熱可塑性フィルムを用いたパルスした後B)、細胞がキャップに付着し、背後にある周囲の組織を残して、スライド上従って、もはやありません。 C)均一な細胞集団の顕微鏡写真は、レーザーをキャプチャした後にポイカプセルキャップに付着。
図2:トータルRNAの品質管理 + B)はC + Dしながら、分離後の良い品質のトータルRNAを表します)全RNAの単離後のように見てはいけないかを示しています。 (B)における仮想ゲルに対応する明確な18/28Sピークを持つA)電気泳動図。 C)の曲線の下の大きな領域とRNAの分解を示す無18S/28Sピークを示す電気泳動図は。これはまた、仮想ゲル(D)に示されています。
図3:mRNAの品質管理 + B)エレクトロ()とmRNA転写嶺を示す仮想ゲル(B)。すなわち過去の600ヌクレオチド(nt)を拡張するマイクロアレイ研究に必要な目(スプレッド)、。 C + D)エレクトロ(C)とmRNA転写の長さが過去の200ntを拡張しないように不十分なmRNAのスプレッドは、どのように見えるかを示す仮想ゲル(D)。
ここで、我々は、アルクトゥルスXTシステムと関連するRNA抽出キットを使用して異種の死後の脳組織から均質な細胞集団を抽出するためのプロトコルをカスタマイズしよう。上述のように、我々は、RNAの完全性を最大化するために、同社が提供するオリジナルプロトコルにいくつかの変更を行っている。単一細胞の正常なキャプチャリングは、単に良いRNAとの最大のセルを実現するために、キャプチャする前に手順を最適化に依存する。これらの手順は、組織の切片や染色に関連するさまざまなパラメータが含まれています。一言で言えば、組織の準備に関して、これらが含まれます:1)、2の切削時に温度勾配を減少)のみ4、氷の上のすべての脱水の手順を実行して、スライドごとに2セクション、3)を配置すること)の増加)染色、5のRNase阻害剤を追加する3分に最後の100%エタノールで脱水期間。
キャプチャに関しては、我々はポイカプセルHSキャップの組み合わせと感じ、マクロの設定上のソフトウェアで、最適な結果を確認する必要があります。高湿度が大幅に組織"リフト"を減少させるように湿度制御環境は、単一細胞を捕捉するために重要です。高温はまた、RNAの品質に悪影響を与えることができる。
PicoPureキットでRNA分離プロトコール中に、2つの洗浄ステップがあります。すべての洗浄バッファーが最終的なサンプル中のバッファのいずれかが存在するが、増幅のための小さい開始RNAにつながるとして、RNA溶出のための別のマイクロ遠心チューブに移す前に削除されていることを確認することが重要です。これを確実にするために、我々は、提供するプロトコルで提案されている2.5分の代わりに2分間の最後の洗浄ステップを遠心してください。
ほとんどの部分については、リニア増幅プロトコールは、製造元の指示に従ってでした。このプロトコルを使用するただし、次の2つの重要な点を考慮する必要があります:1)サーマルサイクラーで0.5ミリリットルのブロックと組み合わせて提供される唯一の0.5ミリリットルチューブを使用することにより、チューブ間のサンプルの過剰移籍を経由してRNAの損失を制限しようとする、および2)cDNAの精製のための精製カラムにサンプルを転送するとき、最初の転送の後にサンプルチューブをスピンダウンしてください。これは、精製カラムに追加するため、cDNAの回収を増加させることができるサンプルの追加1 - 2ulになります。
あなたの限られたaRNAのサンプルのビオチン標識用ターボ末端標識キットを利用する場合、我々は余分な数μlを添加すると収率は、列から抽出された標識RNAを高めるために、遠心分離のステップの前に水から出ているとのこと。遠心分離の余分な分はあなたがそのようなFFPE組織などの劣化した組織、と作業している場合は特に、この点で役立ちます。
我々は、このプロトコルは、異種の死後の脳組織内で、ユーザーがそのような単一の細胞集団としての小さな均質構造を、単離するために有効になると確信しています。これは、調査中の特定の細胞タイプをターゲットに結果につながる、脳内の様々な層に位置し、周囲の構造および他の細胞タイプの希釈効果を、減らすことができます。得られたRNAの質は、マイクロアレイ研究には十分なので、我々は、病気の状態に影響を受ける特定の細胞集団の特定の分子の署名を特定するために始めることができます。
このビデオ記事の生産は、Life Technologies社が後援した。
我々は感謝して分子デバイスの研究に使用される試薬の彼らの寛大な寄付のための分析技術/アルクトゥルスを認めます。我々はまた、死後、人間の脳組織を提供するためにハーバード大学の組織のリソースセンターに感謝資金 :。RO1MH76060とP50MH080272。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
4.5” Forceps | VWR international | 82027-392 | |
Arcturus XT™ Laser-Capture Microdissection (LCM) System | MDS Analytical Technologies | 13821-00 | |
CapSure™ HS LCM Caps | MDS Analytical Technologies | LCM 0214 | |
CapSure® Macro LCM Caps | MDS Analytical Technologies | LCM 0211 | |
Experion™ Automated Electrophoresis Station | Bio-Rad | 700-7001 | |
Experion™ RNA HighSens Chips | Bio-Rad | 700-7155 | 10 chips |
Experion™ RNA HighSens Reagents | Bio-Rad | 700-7156 | 10 chips |
Experion™ RNA StdSens Chips | Bio-Rad | 700-7153 | 10 chips |
Experion™ RNA StdSens Reagents | Bio-Rad | 700-7154 | 10 chips |
Falcon® polypropylene Conical tube | BD Biosciences | 352070 | |
GeneAmp® thin-walled reaction tube with domed cap | Applied Biosystems | N8010611 | |
GeneChip® Human X3P array | Affymetrix | 900516 | 6 chips |
Histogene® LCM Frozen Section Staining kit | MDS Analytical Technologies | KIT0401 | For staining solution, jars, ethanols and Xylene |
Histogene™ LCM slides | MDS Analytical Technologies | 12231-00 | |
Micro Slide Box | VWR international | 48444-004 | |
Microm HM 505E cryostat | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 22-050-350 | Catalogue number for similar product as current product no longer available |
Microprocessor Controlled 280 series Water bath | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 51221048 | Model 282 |
Molecular Sieve | EMD Millipore | MX1583L-1 | |
NanoDrop 1000 Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific, Inc. | n/a | The NanoDrop 1000 is not available anymore, but the NanoDrop 2000 is comparable. |
Nuclease-free water | Ambion | AM9932 | |
PEN Membrane glass slides | MDS Analytical Technologies | LCM 0522 | |
PicoPure® RNA Isolation kit | MDS Analytical Technologies | KIT0204 | |
RiboAmp®HSPLUS with Biotin labeling | MDS Analytical Technologies | KIT0511B | 12 reactions Includes TURBO biotin labeling™ kit |
RNase Zap® | Ambion | AM9780/2 | |
RNase-Free DNase Set | Qiagen | 79254 | |
RNasin® Plus | Promega Corp. | N261B | |
SuperScript™ III Reverse Transcriptase | Invitrogen | 18080-044 |
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