三次元インクジェット印刷技術を用いて、ヒト軟骨組織の作製

要約

このホワイトペーパーで説明する方法は、同時UV重合とbioprinterに市販のインクジェットプリンターを変換する方法を示しています。プリンタは、細胞と生体材料との三次元組織構造を構築することが可能である。ここに実証研究では、3Dの新軟骨を構築した。

要約

サーマルインクジェット印刷に基づいていますBioprintingは、組織工学や再生医療の分野で最も魅力的な実現技術の一つです。急速にデジタルコントロール細胞、足場、および成長因子が正確に所望の2次元（2D）に付着させることができるとともに、三次元（3D）の位置。そのため、この技術は、ネイティブの解剖学的構造を模倣組織を作製するための理想的なアプローチです。天然の帯状組織、細胞外マトリックス組成物（ECM）、および機械的特性を有する軟骨を操作するために、我々は3次元軟骨組織工学のための可能な同時重合を有する市販のインクジェットプリンタを用いbioprintingプラットフォームを開発した。ポリ（エチレングリコール）ジアクリレート（PEGDA）に懸濁したヒト軟骨細胞を、レイヤーバイレイヤーアセンブリを介して3D新軟骨構築のために印刷した。印刷された細胞は、surroでサポートされて、元の堆積の位置に固定し、同時光重合に足場をunding。印刷された組織の機械的特性は、天然の軟骨と同様であった。長いUV露光を必要とする従来の組織の製造と比較して、光重合と同時印刷細胞の生存率は有意に高かった。印刷された新軟骨は、遺伝子発現と一致した優れたグリコサミノグリカン（GAG）およびコラーゲン型II産生を実証した。そのため、このプラットフォームは、解剖学的、組織工学のための正確な細胞の分布や配置に最適です。

概要

サーマルインクジェット印刷に基づくBioprintingは、組織工学や再生医療の分野で最も有望な実現技術の一つです。デジタル制御および高スループットのプリントヘッドを有する細胞、足場、および成長因子は、正確に迅速に所望の2次元（2D）および3次元（3D）の位置に堆積させることができる。多くの成功したアプリケーションは、組織工学および再生医療^1-9に、この技術を用いて達成されてきた。本論文では、bioprintingプラットフォームが変更されたヒューレット·パッカード社（HP）DeskJet 500サーマルインクジェットプリンタと同時光重合系に設立されました。ポリ（エチレングリコール）（PEG）から配合する合成ヒドロゲルは、軟骨細胞の生存能力を維持し、軟骨ECM産生^を促進^10,11の容量を示している。また、光架橋PEGは同時polymeに最適です低粘度、水への溶解性が高いです。3次元bioprinting中にrization。本論文では、ポリ（エチレン）グリコールジアクリレート（PEGDA、MW 3400）に懸濁させ、人間の軟骨細胞を精密に3次元解像度1,400 dpiので新軟骨の層ごとに構築するために印刷した。 3D足場における細胞の堆積の均一な分布は、優れた機械的性質および拡張ECM産生に軟骨組織を生成した、観察された。対照的に、マニュアル製造において細胞は、培養後の^2,3不均一な軟骨形成をもたらし代わりに遅い足場重合によるそれらの最初に堆積位置のゲルの底部に溜まった。

プロトコル

1。Bioprintingプラットフォームの確立

プリンタ修飾は、HPデスクジェット500サーマルインクジェットプリンタおよびHP 51626Aブラックインクカートリッジに基づいていた。

1. プリンタの上部のプラスチックカバーを取り外し、慎重にカバーからコントロールパネルを取り外す。
2. プリンタ頂部と基部との間に3ケーブルの接続を外します。ベースからプリンタのトップ部分を取り外します。
3. プリンタのトップ部には、インクカートリッジの下に右側に小さなプラスチックとゴム付属品（プリントヘッドクリーニングシステム）を外します。
4. スプリングを用紙トレイのベースを取り外します。
5. プラスチック、紙送りバーをカバーする金属製のプレートを取り外します。
6. ハンドのこぎり又は他の切断ツールを使用して中央給電車輪位置におけるプラスチック、紙送りバーを切り落とした。
7. 前のステップの後に公開される2給紙ホイールを取り外します。ホイールプラスチックは非常に難しいと電子であるSAWは参考になります。
8. 缶詰の空気とエタノールワイプを使用してほこりやごみを清掃してください。
9. ベースにプリンタ頂部を取り付けます。
10. UVは、使用する前に、層流フード内で少なくとも2時間変性プリンタを滅菌する。
11. ハンドソーや他の切削工具を使用して、HPの51626Aのインクカートリッジのキャップを切り取ります。
12. インクを空にし、軟骨の下の井戸貯水池をカバーしてフィルタを削除します。
13. 水道水を使用して徹底的にカートリッジを洗浄します。
14. Ultrasonicate残留インクを除去するために10分間、脱イオン（DI）水中のカートリッジ。
15. すべてのインクが削除されていることを確認するカートリッジを調べます。滅菌脱イオン水に続いて殺菌のため70％エタノールで徹底的にカートリッジを、すすぎ又はスプレー。
16. 同時光重合能力を提供するために、印刷プラットフォームの上に長波長紫外線ランプを設定する。
17. UV光を用いて印刷プラットフォームでのUV強度を測定メートル。印刷対象の強度が4-8の間MW / cm ^2と （プリンタプラットフォームへのランプから約25 cm）で ​​すので、UVランプとプリンタプラットフォーム間の距離を調整します。

2。Bioink準備

1. 単層の軟骨細胞の拡大
   1. ダルベッコでの細胞増殖のための各T175組織培養フラスコにプレート500万ヒト軟骨細胞は10％ウシ血清および1×ペニシリン - ストレプトマイシン - グルタミン（PSG）を補足したイーグル培地（DMEM）を修正しました。 5％CO _2を含む加湿空気で37℃で培養細胞。フラスコに85％コンフルエントになるまで、3日ごとに培養液を変更します。同じ継代から細胞を使用してください。
2. 10％w / vの最終濃度にPBSでPEGDAを溶解0.05％w / vの最終濃度になるように光開始剤I-2959を追加解決策を滅菌ろ過する。
3. 5×10 ⁶細胞で調製PEGDA液中で培養したヒト軟骨細胞を一時停止/ミリリットル。

3。軟骨組織印刷

1. プリンタとノートパソコンの電源をオンにします。
2. Microsoft WordやAdobe Photoshopのを使用して、直径4ミリメートルと黒丸の印刷パターンを作成します。
   1. パターンの位置を調整して、プラスチック金型に正確に印刷されることを確認してください。
   2. 足場の所望の厚さに達するのに必要な印刷部数を計算する。高さ4ミリメートルの場合は、220プリントが必要な足場を作成する必要があります。
3. インクカートリッジにbioinkをロードします。印刷中に直接UV暴露から保護するためにアルミホイルでカートリッジを覆う。
4. プリンタに印刷コマンドを送信します。プリンタが印刷を開始したときに、用紙センサーを引き出します。全体の印刷プロセスは、直径4ミリメートル、高さ4ミリメートルと足場未満4分を取る必要があります。
5. 転写は、24ウェルプレートに新軟骨を印刷し、各ウェルに1.5ミリリットルの培養培地を加える。

4。 3D足場中の細胞生存率を評価

1. 暗所で15分間室温での生/死生存率/細胞毒性作用溶液で印刷新軟骨を培養する。
2. 半分に細胞を含んだハイドロゲルをカットし、切削領域の蛍光画像を撮影。
3. 5ランダムに撮影した画像で盲目観察者（緑）、死者（赤）細胞生存数える。生細胞および死細胞の総数によって生細胞数で割ることによって細胞生存率を計算する。

結果

修飾されたサーマルインクジェットプリンタは、高スループット、優れた細胞生存率及び足場における細胞の堆積のために可能であった。同時光重合感光生体材料との組み合わせは、この技術は、最初に堆積場所に細胞および他の印刷された物質を固定することができます。修飾されたサーマルインクジェットプリンタの特性に応じて、2D印刷解像度が130 plの単一のインク滴の体積の300解像?...

ディスカッション

同時光重合能力を持つこの3D bioprintingシステムは、細胞のアルギン酸ハイドロゲル^16を押し出し、注射器を用いて骨軟骨欠損のその場での印刷において最高の以前に報告された方法よりもかなり大きい印刷解像度を提供します。高い印刷解像度は、解剖学的軟骨帯状組織を復元するために軟骨組織工学のために特に重要です。層ごとの組み立て中の同時光重合は、3D建設?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
HP Deskjet 500 thermal inkjet printer	Hewlett-Packard	C2106a	Discontinued. Purchased refurbished from internet vendor.
HP black ink cartridge	Hewlett-Packard	51626a
Ultraviolet lamp	UVP	B-100AP
UV light meter	General Tools	UV513AB
Zeiss LSM 510 laser scanning microscope	Carl Zeiss	LSM 510
Dulbeccos Modified Eagles Medium (DMEM)	Mediatech	10-013
Penicillin-streptomycin-glutamine (PSG)	Invitrogen	10378-016
Accutase cell dissociation reagent	Invitrogen	A11105-01
Phosphate buffered saline (PBS)	Invitrogen	10010-023
Live/Dead viability/cytotoxicity Kit	Invitrogen	L-3224
Poly(ethylene glycol) diacrylate (PEGDA)	Glycosan Biosystems	GS700
Irgacure 2959	Ciba Specialty Chemicals	I-2959
Human articular chondrocytes	Lonza	CC-2550