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要約

提示し、培養するため変更されたロール チューブ法をここでは、フォトエッチング coverslips に再配置する正確に何週間もかけてスライスの齧歯動物の脳の断続的な高分解能イメージング。神経細胞の生存とスライス形態も維持されます。細胞型特異的発現ウイルスを用いたこの完全に囲まれたシステムのアプリケーションを提供しています。

要約

培養齧歯類脳スライスは、ニューロンとグリア通常体内の相互作用の多くを保持する環境での細胞および分子の挙動を調べる場合に役立ちます。蛍光顕微鏡による高分解能イメージングのためさまざまなトランスジェニック マウス線または蛍光付けられた蛋白質または野生型脳スライスのレポーターの発現ウイルスベクターの使用から得られたスライスを許可します。イメージング脳スライス、スライス培養を組み合わせて実行する機能のいくつかの方法が開発されているが、長時間にわたりライブ スライスの特定のセルの繰り返しの高分解能イメージングは、問題を提起しています。最高ユーザーを保護し、交差汚染を防ぐためにクローズド システムで行われるため外因性タンパク質の発現ウイルスベクターを使用、これは特に当てはまります。密閉システムで何週間もかけてスライスの繰り返しの高分解能イメージングを可能にするローラー管脳スライス培養法は、単純な変更が報告されます。フォトエッチング coverslips にスライスを養殖を迅速かつ正確には、さまざまな治療法の前後に時間をかけて同じフィールドをイメージするステージを再配置する基準マークの使用できます。特定の神経細胞の染色し海馬スライスのアーキテクチャの変化を観察するための式、蛍光蛋白質のウイルスによる神経発現とコフィリン病理学の発展と組み合わせてこのメソッドの使用方法の例が表示されます。アルツハイマー病 (AD) の海馬におけるアミロイド β (a β) ペプチドのオリゴマーをスライス処理に応答, 以前。

概要

齧歯動物の頭脳の地域から解離細胞の初代培養はレスポンスを病理組織学的に観察する研究者によって使用される重要なツールに刺激が関与しています。ただし、このような研究は、ニューロンだけ 2 D で、グリア サポート システムを見ての欠点を持っています。さらに、それの非常に高密度化 (640 ニューロン/mm2または表面積の約 16%) の条件下で栽培しない限りなります短い距離以上の海馬はその細胞体から樹状突起や軸索のランダムな副産物を従うことができません。神経細胞生存率 4 週間以上1、加齢に伴う病態の拡張研究解離文化の使用を制限する著しく低下しました。齧歯動物の脳から調製したスライスの養殖は、数週間または数か月の組織細胞と生存率を維持することでこれらの制限を克服する魅力的なオプションです。スライス培養における齧歯動物の脳の多くの異なる領域を維持するための条件は、説明2をされています。

2 つの主要な方法は広く使用される長期培養脳スライス:3の気液界面膜を培養または密封された管内 coverslips に培養通気4を提供するためにローラーのインキュベーターで回転できます。膜上で培養したスライスの正立顕微鏡と水浸漬目標5を使用して高解像度蛍光顕微鏡による直接イメージを作成できます。また、膜上で培養したスライスは、倒立顕微鏡6を使用して樹状突起スパインの良好な分解能を達成するためにガラス底培養皿に転送されています。ただし、膜上に成長したスライスを画像の両方の方法は媒体の変更を必要とし、多くの場合抗真菌剤や抗生物質を使用して回避または低減汚染5,6オープン ・ システムです。優れた形態や生存率、空気中の界面膜上のスライスを維持が高倍率で反復的なイメージ投射の間の正確な位置に戻るは非常に難しい実験は細胞の唯一の小さなグループに続く蛍光マーカーを表現します。膜上に成長したスライスは、ウイルスによる発現遺伝子5,6で使用されている、バイオ セーフティ プロトコル必要がありますに使用される特定のウイルスのベクトルに囲まれた文化システムが採用されます。蛍光を表現するタグ付きのタンパク質や細胞生理学記者。さらに、浸漬の目的は文化5に続いて、サンプル間の除染を必要とします。膜インターフェイス文化の 1 つの主要なアプリケーションは、単一の時間ポイント7で電気生理学と高分解能イメージングを組み合わせることです。

プラスチック製のチューブ内 coverslips にロール チューブ法、coverslip を削除せず電気生理学または高分解能イメージングを許可しません。したがって、このメソッドは、最も頻繁に8のポスト固定観測が実施された長期的な研究に適用されています。ここで説明した、ローラー チューブ培養技術を利用して、文化として長い間繰り返しイメージを作成することができます coverslips にスライスと掘削を管に維持される方法です。囲まれたシステムは、イメージングの中型の変更を必要としないと、フォトエッチング coverslips イメージング高倍率、数日または数週間後で以前のイメージを作成する正確なフィールド許可基準マークを提供するために利用します。

齧歯動物の海馬は、記憶と学習に関与する主要な脳の領域に変更を検討する本手法に適用します。齧歯動物の海馬は、認知障害9広告で発生したなどの開発中に病理組織学的、または加齢に伴う変化のためのモデルとしてよく勉強しました。本手法は特に広告8の特徴である a β ペプチドの増加などの環境の変化に対応で時間をかけて 1 つのスライス内で開発の病理学的変化の研究に適しています.コフィリン アクチン凝集体の存在である人間と齧歯動物の AD 脳に関連付けられている 1 つの病理学、ロッド、コフィリンとアクチン フィラメントの後者含まれているバンドルは、1:1 モル比10、11,12. ロッド固定スライス a β 投与ラット海馬だけでなく、コフィリン gfp 低酸素8を受けるライブ齧歯動物脳スライス内で観察されているし、広告に見られるシナプスの機能不全に貢献するかもしれないストローク。ここで我々 は時間コースと別のウイルスによって導入された表現された外因性キメラ蛍光蛋白質のスライス内の分布を観察するのにこの新しい培養方法を使用します。コフィリン ロッドと海馬スライスにおける可溶性 a β オリゴマー (a βo) による治療への応答の集計の病理学の発展に従ってくださいコフィリン記者構造、神経特異的発現し利用します。

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プロトコル

動物の使用に続く承認された繁殖と動物使用プロトコル準拠する動物愛護とコロラド州立大学の使用のガイドラインの。

注: 以下のプロトコルは準備と文化法長期潜伏と海馬スライスの断続的なイメージングをについて説明します。単一の海馬スライスは凝固血漿を使用して特別に作られたフォトエッチング coverslip に接続されているし、coverslips はローラーのインキュベーターで維持するドリル アウト ローラー管の平らな側面にシールが。プラズマの塊は、蛍光タンパク質の発現と高分解能イメージングのためのウイルス感染前にプラスミンにディゾルブされます。蛍光神経の重要な染料を使用して、スライス内のニューロンをイメージします。

1. ローラー管ラックの作製

  1. 図 1に示すようにテンプレートを使用は、スケール バーを表示サイズに印刷。、釘を使って穴の中心にテンプレート (細かい点のマーカーのできる大きさ) 小さな穴をパンチします。
  2. 15 cm 培養皿 (14 cm の呼び径) の下部にテンプレートを設定し、穴の位置をマークします。2 番目の料理にこの手順を繰り返します。
  3. プラスチック用ドリルのビットで穴の中心、皿の端から 2.5 cm の六角形配列 (4.8 cm-の中心) の各皿の上 6 の 1.5 cm 直径の穴をドリルします。図 1Aのようにより大きい穴の 2 つの間に等間隔に配置されている端から 12 mm 3 穴 (直径 3 mm) をあけます。
  4. 各皿の底に、2 番目の平ワッシャーを一枚続く小さな穴のいずれかを介して平ワッシャーと 2.5 インチ長いビス (直径 3/16 インチ) を配置、お互いに直面してポリエチレンのチューブ (スペーサー、4.7 cm)、別の平ワッシャー、2 番目の細胞培養用ディッシュ、別の平ワッシャー、ロック洗濯機およびナット。
  5. 2 つのマシンの他のネジとすべてのビスは、場所までだけ緩く締め 1.4 手順を繰り返します。しっかりとナットを締めます。
  6. 取得最終ローラー管ラック底皿の穴にグロメット (5/16 インチ厚、5/8 インチ穴径) を動作 (図 1Bの場所に 2 つの管と示されて)。一意の番号の各ラックにステッカーを配置します。

2. ローラ チューブと Coverslips の準備

  1. ローラ チューブの孔あけ治具を作る
    1. 8 cm 1.5 cm 穴をあけるような角度で 5.5 インチ木製ブロック x 4 x 2 のセンター側にブロックを挿入するとほぼ平行する意志をローラの平らな面に管 (図 2A)。
    2. 穴を広げるし、テーパ管挿入できるように穴の両方に丸い木製のファイルを使用してを拡大 (ローラ チューブ、キャップ エンド付近の径大きめ) (図 2B)。
    3. ブロックの側から 5.5 cm 1.5 cm 直径垂直穴をドリルし、側の穴 (図 2C) を中心としました。
    4. 側孔は十分なテーパーは、中央のスライスの穴と 1.5 cm の垂直穴でマークしたスポットを中心としたのでチューブを配置する目的のスポットでマークされているローラ チューブを挿入します。
    5. チューブを削除し、スポットからチューブの端までの距離を測定します。治具で穴の中心からこの距離をマークし、(図 2Cの矢印) を掘削管を適切に配置する停止を提供するために爪を挿入します。
    6. けがを防ぐために木製のブロックの表面を持つフラッシュを爪を切断するのに弓のこを使用します。
    7. ドリル出版物であることができるスロットを固定 (図 2D黒矢印) がある場合は、治具の下にスプリング クリップを追加します。それ以外の場合、ドリル出版物にしっかりとジグを保持する C-クランプを使用します。
  2. 治具を使用して保持し (図 2A) を平らな面にフラット両面 11 cm プラスチック培養管の位置、センター下から 1.0 cm と 6 mm 径の穴をドリルに上記し、チューブの側面間の中央に。
    注: プラスチック用ドリルビットを使用する必要があります。
  3. 回転式バリ取りツールで穴 (図 2E) の端を滑らかにし、内側に 4 本の溝を作る穴の縁 (図 2E、インセット) 回転中に穴の排水を容易にします。
  4. 12 mm の穴パンチ、非毒性ダブル両面接着シリコン ラバー シートから 12 mm 径ディスクをカットします。標準的な 1 つの穴紙パンチ (6 mm 径) を使用して、各ディスクの中心の穴を作る。
  5. 70% エタノールで掘削管を洗浄、空気は生物学的安全キャビネットでそれらを乾燥し、滅菌チューブと生物学的安全キャビネットに UV ランプ (30 70 cm 平均距離で W) で 40 分パンチ接着ディスク。
  6. チューブとディスクをすべて露出した表面が滅菌されているので 20 分後再配置します。無菌条件下で白の接着剤のディスクからバッキングをはがし、穴 (図 2F) を合わせ、チューブの外側にシリコン ラバーを貼る。
    注意: 紫外線暴露を避けるためには、眼の保護具を着用して、UV ランプの電源を入れる前にキャビネットを閉じます。
  7. 12 mm 径フォトエッチング (100 番号センター 1 mm 正方形) ドイツのガラス coverslips をクリーンアップします。鉗子で優しく、coverslips を保持、エタノール、水、エタノールが続いて再び、続いてディップし、最後にエタノールを燃焼させる炎の coverslips をディップします。クールに coverslips を許可します。
  8. Coverslips 鉗子で純水を coverslips 10 s. リンス 2 %3-アミノプロピルトリエトキシシラン アセトンに浸しし、乾いた空気で乾燥させて。
  9. キャビネットの中に生物学的安全滅菌フィルター紙の上、coverslips を設定、UV 光を入れます。20 分間 coverslips のそれぞれの側を公開します。
    注意: 紫外線暴露を避けるためには、眼の保護具を着用して、UV ランプの電源を入れる前にキャビネットを閉じます。

3. 海馬スライス標本

  1. 解剖を開始する前に組織のチョッパーの両刃かみそりの刃の部分を準備します。ブレードを慎重に指で縦に折り、半分にはめ込みます。
  2. 無水エタノールで処理した後、それらをきれいにし、乾燥空気に綿棒を使用してアセトンでブレードの半分をすすいでください。
組織チョッパー半分ブレードに固定する前に 70% のエタノールで洗浄して滅菌します。
  • 機関動物ケアおよび使用委員会; 承認プロトコルに従ってください。イソフルラン麻酔後斬首で 4-7 日古いマウスまたはラットの子犬を安楽死させるし、ハサミやギロチンで頭を削除します。
    注: 脳スライス培養のプロトコル、マウスまたはラット系統または遺伝子型依存しません。異なる遺伝的背景を持つ多くのトランスジェニック マウスの線を使用しています。
  • 70% エタノール, 頭をすすぎ、60 mm シャーレ内に置きます。ローラ チューブに脳スライスの最終的な取り付け、まで次の手順のすべては無菌性を維持する層流フードで実行されます。
  • #21 外科ブレードを使用して、皮膚と頭蓋骨の矢状切断面を作る。#5 ・ デュモン鉗子で皮膚と脳を公開する頭蓋骨をはがします。
  • 閉じた鉗子で優しくを引き出す全脳脳幹、小脳の後ろに鉗子でつまんでそれを解放します。4 ° C Gey バランスの取れた塩 Solution/0.5% グルコース (ブドウ糖/GBSS) 滅菌 60 mm ディッシュに脳を配置します。
  • 解剖顕微鏡を使用すると、(図 3A) 脳を可視化する、脳背側を上に置き、外科ブレード (図 3B) と脳や小脳のフロント 3 番目カットします。
    1. 鉗子、安定用シャーレの側面に対して後方側を上にトリミングされた脳と腹側を保持します。優しく矢状面の正中線を離れて髄膜をいじめるし、微細先端・ デュモン #5 鉗子 (図 3C、破線の円内) による中脳組織を削除します。
    2. それは開いている (図 3C破線) を広めるため脳の側に沿って 2 つのカットを作る。脳には、背側を下、しゅろ、配置されます、一度海馬の割れ目が見えるはず (図 3D矢印)。
    3. Polychlorotrifluoroethylene プラスチック フィルムの部分に広がり開いて脳を転送し、スライス組織チョッパーのステージ上の位置します。GBSS/グルコースとブレードをウェットし、海馬を ~ 300 μ m の厚さのスライスに切る。
    4. 転送ピペットと GBSS/グルコース (図 3E) を含む新鮮な 60 mm ディッシュにプラスチック フィルムをスライスした脳をフラッシュします。優しくピンチオフし、罰金の先端の鉗子、残り髄膜スライス (図 3G, H) から他の非海馬組織 (図 3F) といじめます。

    • 4. めっきスライス

    1. スライスを取得すると、準備された coverslip のフォトエッチング側のセンターに鶏プラズマの 2 μ L を配置します。わずか 3 〜 4 mm 径スポットを達成するためにプラズマを広めます。
      注: フォトエッチング側はその数字が正しい向きで解剖顕微鏡を通して見るとカバーガラスの上にあります。
    2. 1 脳スライスを滅菌狭い先端ヘラ (図 4A) でプラズマ スポット (図 4B) に転送します。GBSS/グルコースからスライスを持ち上げながらヘラの先端で、スライスを維持して閉じ鉗子を使用します。
    3. プラズマ閉じ鉗子と、coverslip のスポットにヘラをタッチ、coverslip の上にスライスをプッシュします。
    4. 別のチューブでトロンビンの 2.5 μ L でプラズマのミックス 2.5 μ。(図 4B) それをミックスする、優しくこの混合物とスライスと上下のピペットの 2.5 μ L をすばやく配置します。
      プラズマがので、これはすぐに行う必要があります 10-15 秒内で凝固する注:。スライスの接着が問題 5 μ L で 5 μ L の血漿をミックス スライス、スライス、coverslip の上に平らになるように混合した後いくつかの取り外しで 4-5 μ L を使用してください。
    5. クリアパーツ以前ローラ チューブに貼付シリコーン系粘着剤の露出側からカバーを取り外し、穴 (図 4C) 内のスライスを合わせ接着剤に脳スライス coverslip。
    6. 密着性を確保するため、ソフト、coverslip を均等に押しそれ約 1 分の生物学的安全キャビネットに転送しながら親指で coverslip にも圧力を適用されます。
    7. 生物学的安全キャビネットで各管 (図 4D) に完全な Neurobasal の培養液 (材料表) の 0.8 mL を追加します。
    8. クランプが保有する安全に滅菌綿接続パスツール ピペットで 5% CO295% 空気混合を流れ。ガスの混合物をローラ チューブをフラッシュし、それがピペットの周りから引き出されると急速にチューブをキャップします。
    9. チューブをスライス番号とラベルし、数をラックします。幾何学的均衡を保っていることを確認、ローラー ラックにチューブを挿入します。チューブの数が奇数がある場合は、バランス チューブを追加します。
    10. ローラーについてでローラー ラックを回す 35 ° C のローラー インキュベーターでラックを配置 10 13 RPH (図 4E)。チューブの底に培地を維持、インキュベーターの傾きは、ボード上のフロントを上げることによって約 5 ° をバックアップします。
    11. スライス トリートメントや観測の日付のすべての情報を記録に使用されるスプレッドシートにスライスと管の番号を入力します。
    12. 上約文化では、6 日目は、各管にアクティブ プラスミンの 1 μ L (0.002 U) を追加。
    13. 血栓が完全に溶解した後 (通常数時間以内)、メディアを取り出して、プラスミンせず新鮮な媒体を置き換えます。必要であればスライスをプラスミンで夜通し孵化することができ、媒体変更次の日。
    14. スライスは、通常の実験で使用する前に、少なくとも 7-10 日間孵化します。培地を吸引し、7 日目とその後 7 日ごとに再び 3 または 4 日に換えます。

    5. 遺伝子発現ウイルスベクターの準備

    注: スライス培養神経細胞における遺伝子の発現により遺伝子組み換え齧歯類から脳を使用してか、遺伝子を導入することにより組換え複製欠損ウイルスによる感染。(AV) アデノ ウイルス、アデノ随伴ウイルス (AAV) および組換えレンチ ウイルスのベクトルがすべてで使用されて私たちの海馬スライス培養脳スライスのキメラを異なる蛍光タンパク質の発現。

    1. 13,14法によると利息の RNA を表現するため欠乏 AV は別記レプリケーションの準備します。価としてウイルス発現蛋白に対する抗体を用いたシリアル希釈法による感染 U/mL にウイルス説明14。コフィリン集計およびコフィリン アクチン ロッド形成を観察するには、コフィリン R21Q mRFP cDNA (プラスミド #51279)16を利用します。
      注: サイトメガロ ウイルス プロモーターは多くの細胞タイプ13で高発現レベルを駆動するために役に立つに対し、synapsin 1 プロモーターは神経細胞特異的発現15に最適です。
    2. 興味の遺伝子を含むプラスミドと担当者/キャップ プラスミド、ヘルパー プラスミドの有無は転送の共トランスフェクションによる AAV を上記17,18としてウイルス E1 遺伝子を供給する HEK293 包装セルに準備します。
      注: 組換え AAV は、ターゲット ホスト細胞ゲノム19挿入用も作ることが。転送プラスミド C 末端 mRFP1 蛍光タンパク質タグ (プラスミド #50856) synapsin プロモーターを含む AAV プラスミド下流からカルシウム センサー GCaMP5G20にクローン人間コフィリン 1 を使用します。P2A 割自己ペプチッド シーケンスを符号化する DNA の断片が GCaMP5G とコフィリン RFP の PCR による単一 AAV トラン スクリプト21から両方の蛋白質の表現を提供するために転送プラスミッドの準備の間に挿入されます。
    3. 遺伝子または分割ウイルス ギャグやポル、rev、vsv g 遺伝子上に混合物を包装第 3 世代レンチ ウイルスと共に、関心と統合信号の cDNA を含む伝達プラスミドの共トランスフェクションによる組換えレンチ ウイルスのベクトルを準備します。3 つの独立したプラスミド22,23。
    4. 転送プラスミド シングル ステップ システム24のクローン作成を使用して synapsin プロモーターとコフィリン R21Q mRFP cDNA (プラスミド #51279) から pLKO.1 GFP (プラスミド #30323) を synapsin のプロモーターとコフィリン-R21Q-mRFP、hPGK の交換にまとめるプロモーターと GFP cDNA、それぞれ。
    5. 使って、最終的なプラスミド HEK293T 細胞にカルシウム リン酸によって前述23として。
    6. 10 cm の 4 つの料理から媒体を収集、150 K カットオフ遠心コンセントレーターを使用して 500 μ L に集中およびクイック液体窒素で凍結後、小さい因数で-80 ° C で最終的なレンチ ウイルスを保存します。細胞に感染した 1 回だけ因数を解凍します。
    7. 各型のウイルス量は感染後ウイルスの様々 なボリュームと、遺伝子の表現に従う文化別のスライス数を設定して必要な式の程度を達成するために準備を経験的決定します。
      注: 通常、ウイルスの 1-10 μ L は、1 スライス当たり使用されます。

    6. スライス トリートメント

    1. ウイルスに感染しているスライス
      1. ベクトルの適切な生物学的安全性レベルのウイルス仕事のため承認された生物学的安全キャビネットでの作業、ウイルス (通常 1-10 μ L) の因数を 0.8 mL の完全培に混ぜてください。
      2. 漂白剤を含むコレクション トラップに滅菌パスツール ピペットを使用してスライスから培地を吸引します。最初のトラップと真空源間二次トラップを使用常にします。
      3. この媒体に置き換えて実施上ウイルス含む因数、ラックに培養管を戻り、インキュベーターに配置。
      4. ウイルスの生物学的安全キャビネットとスライスの培養の 2-5 日後転送滅菌ピペットでウイルスを含んでいる媒体を削除し、ウイルスを殺すために承認された抗ウイルス剤が含まれているボトルに入れます。
    2. 重要な染料とニューロンの染色
      1. 準備しクイック因数 100 μ M の濃度で液体窒素中で凍結 4 μ L で神経の重要な色素25の因数を格納し、-20 ° C でこれらを格納ないフリーズ/フリーズ解除染料 2 回以上。
      2. ラベルの蛍光顕微鏡による可視化のためのニューロン、神経の重要な染料の 1 つの因数を解凍し、完全 Neurobasal 培地で 4 mL に希釈する (最終的な色素の濃度は 100 nM)。
      3. 誤嚥によって (または転送ピペットの中にウイルスが含まれている場合)、スライスからメディアを取り出して、0.8 ml 100 nM の神経の重要な染料を含む培地の交換します。スライスをインキュベーターのローラー装置に戻ります。
      4. 2 h のスライスをインキュベート後色素含有培地を吸引し、0.8 mL の生物学的安全キャビネットで新鮮な完全培と置き換えます。
        注: 分類の重要な染料を使用してスライスにおける神経細胞の培養のいくつかの時間が必要です。最初の画像は通常、色素治療後 24 時間を取られます。ニューロンにラベルを付ける特に神経イメージングよりを与えるため 2-3 日間の下落背景の蛍光性があります。72 時間後重要な染料の強度が低下します。
      5. スライス形態変化を時間の経過に従って、スライスごとに 7 日間のラベルを書き換えます。

    7. スライス画像

    1. 倒立顕微鏡上のスライスを表示します。明るい蛍光イメージング、イメージング、前に 24 h のフェノールレッド pH インジケーターせず完全 Neurobasal A 培地と培養液を交換します。
      注: にとってはここで報告した実験、スライスは線形エンコードを搭載した倒立回転のディスク共焦点レーザー蛍光顕微鏡で見ている x, y ステージ ピエゾ z コントロールと敏感な高解像度デジタル カメラ。
    2. ローラ管装置から、coverslip を垂直に保つためにステージ アダプター (図 5B) に配置されている特注チューブ ホルダー (図 5A) にイメージを作成するスライス培養管を転送します。目的および長い間隔で反復的なイメージング セッション中に同じ方向にスライスを維持します。
    3. ステージ アダプター (図 5B) の位置に管を保持するためにチューブに対してタイトなスライダーにプッシュします。
    暖房ストリップとカスタムメイド ステージ アダプター (図 5C) に組み込まれている体温調節コント ローラーの使用によって、イメージング中に 35 ° C でスライス温度を維持します。
    注: チューブ ホルダーの詳細ステージ アダプターとヒーターにアクセスできる: https://vpr.colostate.edu/min/custom-machining/roller-tube-holder/。
  • 低消費電力を使用して (例えば.、4 X) 客観的かつ明るいフィールド透視、スライスの下フォトエッチング グリッド パターン (図 6A) に焦点を当てます。初期イメージング セッションの迅速に高倍率の画像が必要な様々 な地域の番号を記録してスライスの周りをスキャン (例えば、コルニュ ammonis (CA) 1、CA3,歯状回 (DG) 等)。
  • 関心の領域を含む最初のグリッドの正方形にステージを移動します。空気目的 X 20 に切り替え、フィデューシャル マークを探します (e.g。、エッチングの数のヒント) (図 6B)。
  • 高い発電の目的 (40 X 60 X) に切り替えると、ローカライズ フィデューシャル マークと、レコード x ステージの y 位置。名所近くとレコード フィデューシャル マーク (図 6B矢印) からの x および y オフセット フィールドを見つけるためのステージを移動します。必要な場合、他のグリッド領域で繰り返します。
    注: これらのオフ設定位置基準マークから許可スライスのイメージを作成するとき、同じ coverslip 場所の一貫性のある特定元 x, y 基準マークの設定変更されてもいつチューブまたはステージ アダプター取り外して交換します。
  • 利用可能な場合は、顕微鏡客観的コントロールまたはピエゾ ステージ コントロールのいずれかを使用して選択した各フィールド内のイメージ Z スタックをキャプチャします。
    注: 画像は一般サイズと画像特徴の目的の解像度に応じて、2 μ m の 0.5 μ m の間隔で取得されます。品質の 3 D 画像を構築する必要がありますイメージ機能拡張買収、複数の平面上の小さな機能を視覚化するより小さい間隔、平面間で必要な。
  • イメージングの各スライスを可能な限り短い時間合計を維持します。
    注: ほとんどのイメージング セッション報告ここで 18 分/スライスの下にあった。ただし、回数とも、以上のいくつかのスライスをイメージしてスライスの長期的な生存率の明らかな害がなく、単一のセッションで 40 分と長い。

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    結果

    フィディシャル マークを正確にどのように判断に活用できる時間をかけて同じフィールド内で同じセルを減らせる、フォトエッチング coverslips (図 6A) 上に成長したスライスを調べた。ニューロンは重要な染料との汚損によって視覚化された (100 nM の 2 h のため非神経細胞に染色されません)、25の細胞を傷つけるこ?...

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    ディスカッション

    ここで説明したロール チューブ法は、長期培養とスライスした脳組織の高解像度のライブ イメージングします。ここで適用されるのスライス技術で一つの大きな問題は、取り付けとスライスのメンテナンスです。スライス接着をサポート Coverslip コーティング促進神経突起の伸長と細胞のスライスからの移動を高めることによってスライスが薄くなります。したがって、我々 はこれらの基?...

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    資料

    NameCompanyCatalog NumberComments
    Bottoms from 15 cm culture dishesVWR Scientific25384-326
    Phillips Head Machine Screws (#10-32)Ace Hardware2.5" long and 3/16" in diameter
    Flat Washers #10ACE Hardware
    Machine Screw Nuts (#10-32)ACE Hardware
    Rubber Grommets ACE Hardware5/16", thick; 5/8", hole diameter; 1.125", OD
    Polyethylene tubing (5/16"; OD, 3/16"; ID)ACE HardwareCut to 1.8" length
    Lock Washer #10ACE Hardware
    Drill Press, 5 speed Ace HardwareProTech Model 1201
    Nunclon Delta Flat-Sided TubesVWR62407-076
    Drill bits, 3 mm, 6 mm and 15 mm Ace HardwareDiablo freud brandDrill bits for cutting plastic.
    Drill bits for wood, 1.5 cm and 1 mmAce Hardware
    Wood file, 1/4" roundAce Harware
    Spring clips, 16 mm snap holderAce Hardware
    Swivel Head Deburring Tool, 5"Ace Hardware26307
    Adhesive Silicone Sheet (Secure Seal)Grace Bio-Labs6665810.5 mm Thickness
    6 mm hole punchOffice Max
    12 mm hole punchthepunchbunch.com
    70% Ethanol
    Phototeched Coverslips, 12 mm diameterBellco Glass, Inc.1916-91012
    Bunsen Burner
    Absolute Ethanol
    Nanopure Water
    3-aminopropyltriethoxylaneSigma-AldrichA3648
    AcetoneSigma-Aldrich179124
    #5 Dumont ForcepsFine Science Tools11251-30
    McIlwain Tissue ChopperTed Pella, Inc.10180
    Double Edge Razor BladesTed Pella, Inc.121-6
    Whatman Filter PaperVWR28450-182Cut into 5.8 cm diameter circles
    Poly-chloro-trifluoro-ethylene (Aclar)Ted Pella, Inc.10501-10Cut into 5.8 cm diameter circles
    #21 Surgical BladeVWR Scientific25860-144
    #5 Dumont ForcepsFine Science Tools11251-30
    Spatula, stainless with tapered endVWR82027-518
    Gey's Balanced Salt SolutionSigma-AldrichG9779 
     GlucoseThermoFisher Scientific15023-02125% (w/v) Solution, 0.2 mm filter sterilized
    Chicken PlasmaCocalico Biologicals30-0300-5LRehydrate in sterile water, centrifuge at 2500 x g 30 min at 4 °C, quick freeze aliquots in liquid nitrogen and store at  -80 °C.
    Thrombin, Topical (Bovine)PfizerThrombin-JMIQuick freeze aliquots in liquid nitrogen at 1,000 international units/mL in diluent provided and store at -80°C. Use at 250 units/mL.
    Cell Roller SystemBellco BiotechSciERA
    Roller IncubatorFormaModel 3956
    N21-MAXThermoFisher ScientificAR008
    Pen/Strep (100X)ThermoFisher Scientific15140122
    200 mM GlutamineThermoFisher Scientific25030081
    GlucoseThermoFisher Scientific15023-02125% (w/v) Solution, 0.2 mm filter sterilized
    Neurobasal AThermoFisher Scientific10888-022 Complete Medium: 48 mL Neurobasal A, 1 mL N21-MAX, 0.625 mL 200 mM Glutamine, 0.180 mL 25% Glucose, 0.250 mL 100x pen/strep.
    Third generation lentivirus packagingLife TechnologiesK4975-00
    159 K cutoff centrifugal filters (Centricon)EMD Millipore
    Lentiviral cloning system (InFusion)Clonetech
    Plasmids 30323, 50856, 51279Addgene
    Neuronal cell viability dye (NeuO)Stemcell technologies1801Thaw once and quick freeze in 4 µL aliquots. Store at -20 °C
    Inverted microscopeOlympusIX83
    Microscope objectivesOlympusair: 4X, 20; oil: 40X, 60X,
    Spinning disc confocal systemYokagawaCSU22
    Microscope EMCCD cameraPhotometricsCascade II
    Linear encoded (x,y), piezo z flat top stageASI
    Microscope lasers and integrationIntelligent Imaging Innovations
    HEK293T cellsAmerican Type Culture CollectionCRL-3216
    Human PlasminSigma AldrichP18670.002 U/mL in 0.1% bovine serum albumin (0.2 mm filter sterilized), quick freeze in liquid nitrogen and store at -80 °C.

    参考文献

    1. Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evage, E. K., Price, P. J. Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination. J Neurosci Res. 35 (5), 567-576 (1993).
    2. Humpel, C. Organotypic brain slice cultures: a review. Neuroscience. 305, 86-98 (2015).
    3. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37 (2), 173-182 (1991).
    4. Gähwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 4 (4), 329-342 (1981).
    5. Gogolla, N., Galimberti, I., DePaola, V., Caroni, P. Long-term imaging of neuronal circuits in organotypic hippocampal slice cultures. Nat Protoc. 1 (3), 1223-1226 (2006).
    6. Roo, M. D., Ribic, A. Analyzing structural plasticity of dendritic spines in organotypic slice culture. Methods Mol Biol. 1538, 277-289 (2017).
    7. Lee, K. F. H., Soares, C., Thivierge, J. -P., Béīque, J. -C. Correlated synaptic inputs drive dendritic calcium amplification and cooperative plasticity during clustered synapse development. Neuron. 89 (4), 784-799 (2016).
    8. Davis, R. C., Maloney, M. T., Minamide, L. S., Flynn, K. C., Stonebraker, M. A., Bamburg, J. R. Mapping cofilin-actin rods in stressed hippocampal slices and the role of cdc42 in amyloid-beta-induced rods. J Alzheimers Dis. 18 (1), 35-50 (2009).
    9. Clark, R. E., Squire, L. R. Similarity in form and function of the hippocampus in rodents, monkeys, and humans. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, Suppl 2 10365-10370 (2013).
    10. Minamide, L. S., Striegl, A. M., Boyle, J. A., Meberg, P. J., Bamburg, J. R. Neurodegenerative stimuli induce persistent ADF/cofilin-actin rods that disrupt distal neurite function. Nature Cell Biol. 2 (9), 628-636 (2000).
    11. Rahman, T., et al. Cofilin rods and aggregates concur with tau pathology and the development of Alzheimer's disease. J Alzheimers Dis. 42 (4), 1443-1460 (2014).
    12. Bamburg, J. R., Bernstein, B. W. Actin dynamics and cofilin-actin rods in Alzheimer disease. Cytoskeleton(Hoboken). 73 (9), 477-497 (2016).
    13. He, T. C., Zhou, S., da Costa, L. T., Yu, J., Kinzler, K. W., Vogelstein, B. A simplified system for generating recombinant adenoviruses. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (5), 2509-2514 (1998).
    14. Minamide, L. S., et al. Production and use of replication-deficient adenovirus for transgene expression in neurons. Methods Cell Biol. 71, 387-416 (2003).
    15. Kügler, S., Kilic, E., Bähr, M. Human synapsin 1 gene promoter confers highly neuron-specific long-term transgene expression from an adenoviral vector in the adult rat brain depending on the transduced area. Gene Ther. 10 (4), 337-347 (2003).
    16. Mi, J., et al. A genetically encoded reporter for real-time imaging of cofilin-actin rods in living neurons. PLOS ONE. 8 (12), 83609(2013).
    17. Wang, L., Blouin, V., Brument, N., Bello-Roufal, M., Francois, A. Production and purification of recombinant adeno-associated vectors. Methods Mol Biol. 807, 361-404 (2011).
    18. Matsushita, T., et al. Adeno-associated virus vectors can be efficiently produced without helper virus. Gene Therapy. 5 (7), 938-945 (1998).
    19. Ward, P., Walsh, C. E. Targeted integration of rAAV vector into the AAVS1 region. Virology. 433 (2), 356-366 (2012).
    20. Akerboom, J., et al. Optimization of a GCaMP calcium indicator for neural activity imaging. J Neurosci. 32 (40), 13819-13840 (2012).
    21. Kim, J. H., et al. High cleavage efficiency of a 2A peptide derived from porcine teschovirus-1 in human cell lines, zebrafish and mice. PLOS ONE. 6 (4), 18556(2011).
    22. Benskey, M. J., Manfredsson, F. P. Lentivirus production and purification. Methods Mol Biol. 1382, 107-114 (2016).
    23. Huang, L., Chen, C. Autoprocessing of human immunodeficiency virus type 1 protease miniprecursor fusions in mammalian cells. AIDS Res Ther. 7, 27(2010).
    24. Bordat, A., Houvenaghel, M. C., German-Retana, S. Gibson assembly: an easy way to clone polyviral full-length infectious cDNA clones expressing an ectopic VPg. Virol J. 12, 89(2015).
    25. Er, J. C., et al. NeuO: a fluorescent chemical probe for live neuron labeling. Angew Chem Int Ed Engl. 54 (8), 2242-2246 (2015).
    26. Bernstein, B. W., Chen, H., Boyle, J. A., Bamburg, J. R. Formation of actin-ADF/cofilin rods transiently retards decline of mitochondrial potential and ATP in stressed neurons. Am J Physiol Cell Physiol. 291 (5), 828-839 (2006).
    27. Cichon, J., et al. Cofilin aggregation blocks intracellular trafficking and induces synaptic loss in hippocampal neurons. J Biol Chem. 287 (6), 3929-3939 (2012).
    28. Stine, W. B. Jr, Dahlgren, K. N., Krafft, G. A., LaDu, M. J. In vitro characterization of conditions for amyloid-beta peptide oligomerization and fibrillogenesis. J Biol Chem. 278 (13), 11612-11622 (2003).
    29. Maloney, M. T., Minamide, L. S., Kinley, A. W., Boyle, J. A., Bamburg, J. R. Beta-secretase-cleaved amyloid precursor protein accumulates at actin inclusions induced in neurons by stress or amyloid beta: a feedforward mechanisms for Alzheimer's disease. J Neurosci. 25 (49), 11313-11321 (2005).
    30. Davis, R. C., et al. Amyloid beta dimers/trimers potently induce cofilin-actin rods that are inhibited by maintaining cofilin phosphorylation. Mol Neurodegener. 6, 10(2011).
    31. Walsh, K. P., et al. Amyloid-β and proinflammatory cytokines utilize a prion protein-dependent pathway to activate NADPH oxidase and induce cofilin-actin rods in hippocampal neurons. PLOS ONE. 9 (4), 95995(2014).
    32. Woo, J. A., et al. RanBP9 at the intersection between cofilin and Aβ pathologies: rescue of neurodegenerative changes by RanBP9 reduction. Cell Death Disease. , 6(2015).
    33. Shaw, A. E., Bamburg, J. R. Peptide regulation of cofilin activity in the CNS: a novel therapeutic approach for treatment of multiple neurological disorders. Pharmacol Ther. 175, 17-27 (2017).

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