血清およびリアルタイム PCR を用いたプラズマ コピー数検出

要約

本稿では、血清または血漿 dna のリアルタイム PCR のアプローチを使用して実行されるコピー数変動解析について説明します。去勢抵抗性前立腺癌患者への薬剤耐性予測に適していますが、それはまた他の病気のために有益かもしれない。

要約

血清と血漿細胞 DNA (cfDNA) は、がんの診断、予後、監視、および治療抵抗性の予測のためのバイオ マーカーの報知的な非侵襲的なソースとして示されています。頻度の高いイベントは、アンドロゲン受容体 (AR) 遺伝子コピー数 (CN) を得る仮説から始まって転移性去勢抵抗性前立腺癌 (mCRPC)、提案する潜在的な予測バイオ マーカーとしての cfDNA でこのイベントを分析します。

AR CN 2 別のリアルタイム PCR の試金および 2 遺伝子 (RNasePと前1) を使用して cfDNA の評価を行った。60 の DNA 量 ng は、アッセイの組み合わせごとに使用されました。ARCN の利得より正確な方法としてデジタル PCR を使用して確認されました。CN 変動解析はすでに mCRPC の設定で治療抵抗性の予測のために有益であること実証されているが、ことができる役に立つことも異なる患者の設定で他の目的のため。CfDNA CN 分析いくつかの利点があります: それは非侵襲的な迅速かつ簡単に実行、および血清または血漿材料の少量から開始します。

概要

循環血液の細胞 DNA (cfDNA) は、がんの診断、予後、監視、および治療抵抗^1,2の予測のためのバイオ マーカーの最適なソースであること実証されています。多くの研究は、DNA 変異 (突然変異、コピー数変異組織におけるエピジェネティック修飾) と対応するプラズマ サンプル¹、腫瘍 DNA (葉緑体) の循環があることを確認で見つけられるそれらと良い一致を示しています。原発巣と転移腫瘍組織変化³のための情報。葉緑体を勉強の可能性こうしてゲノムの語順換えおよび特定遺伝子⁴、潜在的転移のクローンと subclonal のセルを識別するコピー数変化 (CNVs) の再構築が可能します。葉緑体は、がん治療のモニタリングとして特定の突然変異および関連の特定の目標とされた療法^5,6CNVs を抱いてそれに特に有用であること示されています。また、組織生検の必要性を克服し、非侵襲的な方法で特定のがんの治療の間に異なった時に取得される結果をことができます。

前立腺癌細胞のアンドロゲンを循環の相関について受容体 (AR) CNVs と治療、アビラテロンおよび enzalutamide への応答が示されていることを示すAR遺伝子のコピー数 (CN) cfDNA 可能性があります、有望なバイオ マーカー治療抵抗^7,8,9,10,11を予測できます。別の感度、コスト、速さとさまざまなアプローチを使用して緯度における特定遺伝子の CNVs を評価できる (e.g。 リアルタイムでデジタル PCR および次世代シーケンス)。

ここで二重の試金, 血清と血漿サンプル^7,8から cfDNA のAR CN を評価するため、リアルタイム PCR の技術に基づいて、シンプルで高速なアプローチについて述べる。前立腺癌 (RNaseP、通常コピー番号ステータスを持っている知られていた内部標準遺伝子としてAR (Xq12) の 5 イントロンと他の 2 つの遺伝子内にある 2 つの異なるゲノム領域に設計された PCR の試金が 2 つと考えてください。14q11; に位置します。前1、1 にある p 34)。精度と結果の感度を高めるためのものではなく、2 つの参照の遺伝子を選びました。60 の DNA 量 ng は、アッセイの組み合わせ (結合アッセイAR assay_1 + RNasePとAR assay_2 + AGO1) ごとに増幅されました。健康な男性から 3 つの血清または血漿 DNA サンプルはプールされ、校正器として使用します。カットオフと考えた > AR利得の 1.5 と < 削除の 0.5。この方法の主な利点の 1 つは、それが柔軟なことと他の遺伝子も評価できるということ、腫瘍の種類と特性に基づいて、内部標準遺伝子の変更です。

プロトコル

コピー数解析のリアルタイム PCR を実行する血清または血漿サンプルからの DNA の隔離のプロトコルの構成します。特定のターゲットのためのリアルタイム PCR、DNA 量制御 (分光光度計) DNA の抽出を行った。図 1手順とタイム ラインの概要について報告する.

プロトコルは、IRST 人間研究倫理委員会のガイドラインに従います。

1. 血清の収集と処理

1. 血清管血清を取得する抗凝固剤なしで約 5 mL 全血を収集します。処理まで血液チューブ 4 ° c を維持します。
2. 4 ° C で 15 分間 1,000 × g で遠心管
3. 慎重に 2 mL チューブに血清を転送します。
4. 収集の管を破棄し、すぐに使用するまで-80 ° C で上清を凍結します。

2. プラズマの収集と処理

1. EDTA 血漿を入手するとプラズマ チューブで約 10 mL の全血を収集します。チューブを完全に記入し、それに 8 回を反転します。処理まで血液チューブ 4 ° c を維持します。
2. 1,800 x g 室温で 15 分間遠心でブレーキ設定なしでチューブを遠心します。
3. 慎重に 2 mL チューブにプラズマの上部を転送します。白血球層の上清 1 mL 以上を残して転送を繰り返します。
   注: 上清の上の部分を転送する細胞または細胞の残骸による汚染のリスクが軽減されます。
4. 収集の管を破棄し、すぐに使用するまで-80 ° C で上清を凍結します。

3 血清または血漿から DNA の隔離

注: 血清または血漿からの DNA の分離は、次の手順で変更された商業のプロトコルを使用して実行する必要があります。

1. 血清または血漿室温での (0.5 から 2 ml を含む) 1 つの因数分解しなさい。
2. 渦とサンプルをミックスし、クリア 1.5 mL チューブに 0.5 mL の血清または血漿を転送します。-80 ° C の材料の残りの部分を凍結します。
3. サンプルに直接プロティナーゼ k (20 mg/mL) の 50 μ L を追加します。
4. サンプルに 0.5 mL の溶解バッファーを追加し、ピペッティングでよく混ぜます。
5. チューブを閉じて熱ブロックで 15 分間 56 ° C でサンプルをインキュベートします。
6. 製造元の指示に従って、洗浄バッファー 1 と 2 で 100% エタノールの指示された量を追加します。
7. サンプルを室温に戻すとエタノール 0.5 mL を追加し、ピペッティングでよく混ぜます。
8. 分離カラムと 6,000 × g で 1 分間遠心するステップ 3.7 で得られた混合物の 650 μ L を追加します。
9. 管内流れを破棄し、新しいクリーンなコレクションの管に列を配置します。3.8、3.9 の手順をもう一度繰り返します。
10. 列と 6,000 × g で 1 分間遠心の縁を濡らすことがなく洗浄バッファー 1, 500 μ L を追加します。
11. 管内流れを破棄し、新しいクリーンなコレクション チューブを置き換えます。
12. 列とフルスピード (20,000 x g) で 3 分間遠心の縁を濡らすことがなく洗浄バッファー 2 の 500 μ L を追加します。
13. 管内流れを破棄し、新しいクリーンなコレクション チューブを置き換えます。
14. フルスピード (20,000 x g) 残留洗浄バッファーを削除する 3 分間遠心します。
15. きれいな 1.5 mL チューブに列を配置します。溶出バッファーの 150 μ L を追加し、そのバッファーが列を濡らすように 7 分を待ちます。
16. 1 分の 8,000 × g で遠心分離機します。
17. DNA の最大回復を確実に 1 分間、同じ列とフルスピード (20,000 x g) 遠心分離機に再度ステップ 3.16 から、想定し, 浸出液をピペットします。

4. DNA の定量化と希釈

1. 分光光度計を用いた DNA の定量化を実行します。製造元の指示に従ってベンチトップ分光光度計に 2 μ L のサンプルを使用します。
   注: DNA 量がリアルタイム PCR を続行するのに十分ではないかどうか (少なくとも 120 ng)、新しい DNA の分離プロセスを実行します。
2. 2.5 ng/μ L (約 50 μ L) 全てのリアルタイム PCR のため十分な最終巻にする血清または血漿から DNA を希釈します。

5. リアルタイム PCR

1. コピー数の試金、参照遺伝子アッセイ、希釈した DNA サンプル、および氷のプールのキャリブレータを解凍します。4 ° C で保存されているマスター ミックスを室温で平衡します。
2. 各サンプルのプールのキャリブレータ 3 複製のターゲット分析、1 μ L 参照遺伝子アッセイのマスター ミックスの 10 μ L の 1 μ L のミックスを準備します。ネガティブ コントロール (水) および 2 の余分なサンプルを含むミックスを準備します。
3. 96 ウェル プレートで、各ウェルにミックスの 12 μ L 分注。ないピペットやスピン チューブを行います。
4. 各 DNA のサンプルおよびプールを各ウェルにキャリブレータの 8 μ L (2.5 ng/μ L の濃度) を追加します。ないピペットやスピン チューブを行います。各ウェルのヒントを変更します。
   注: 30 の DNA サンプルは、96 ウェル プレート各リアルタイム実験処理できる: 30 x 3 サンプル + 1 × 3 のキャリブレータ プール + マイナス コントロール = 94。
5. 1,000 x g でプレートを簡単にスピンします。
6. 次のプロトコルを使用してプレートを実行: 15 95 ° C で 40 サイクル 95 ° C 10 分でステージを保持する s、および 60 ° C で 1 分。

6. データの分析と解釈

1. 増幅プロット結果の下の「オプション」セクションでには、最初ターゲット遺伝子を分析の 0.2 で Ct のしきい値を設定します。各ターゲットまたは参照の遺伝子のセットを繰り返します。拡張子 .txt でリアルタイム PCR ファイルをエクスポートするには、ツールバーに「エクスポート」を押します。「結果」だけを選択でフラグ → をエクスポートするデータを選択ファイルの種類として、拡張子 .txt プレス」輸出開始」→ すぐエクスポート ツール。
2. 解析ソフトウェアを開くし、ファイル .txt (ツールバー → インポート) をインポートします。
3. 分析ツールバー (再生記号) によって解析設定を選択してファイル名を選択します。
4. 校正サンプルと知られているターゲット (例えば、 1 AR遺伝子のコピー) のコピー数を指定します。「適用」を押す
5. 各サンプルは、他の井戸と比較して異なるデルタ Ct (ΔCt) と 1 つの井戸を省略します。
6. 実験 (プレス再生シンボル) を再分析します。
7. バーのプロットまたはテーブルのコピー数で結果を評価します。
   注: 検索結果の表には、自信、Z スコア、および分析結果の解釈に役立つことができる複製のような多数のパラメーターが含まれています。

結果

合計 cfDNA 濃度は 6.12 ng/μ L の中央値を示すすべてのサンプル分析、吸光光度法による定量 (範囲: 2.00 23.71 ng/μ L) 血清サンプルの 3.21 ng/μ L の中央値 (範囲: 2.31 8.49 ng/μ L) 血漿検体の。リアルタイム PCR 実験による検体の合計を行った。

テスト感度は、コピー数解析の校正サンプルとしても使用されている健康なドナーから

ディスカッション

ARCN における血清と血漿中のサンプルは、去勢抵抗性前立腺癌 (CRPC) 患者の層別化のための新しい非侵襲的アプローチを表します。それは最近AR CN は CRPC 患者アビラテロンおよび enzalutamide、化学療法^7,8,9,10前後の結果を予測することが実証されています。

我々 の...

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TaqMan Copy Number assay (modified)	Thermo Fisher Scientific	4467084	Pre-designed assay modified with VIC-dye: AGO1: Hs02320401_cn
TaqMan Copy Number Reference Assay, human, RNase P	Thermo Fisher Scientific	4403326
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