画像処理プロトコル、拡散の解析と蛍光顕微鏡による膜受容体のクラスター サイズ

要約

ここでは、単一粒子の拡散係数、蛍光顕微鏡で検出する単一粒子の運動とクラスター サイズの種類の定量評価ができる画像解析を追跡するためのプロトコルを提案する.

要約

粒子追跡ビデオ シーケンスとそれらの軌道の事後解析では、今日多くの生物学研究の一般的な操作です。細胞膜受容体の解析を使用してクラスター モデルが、フィジー (ImageJ) および Matlab ルーチンを使用してこの画像解析タスクの詳細なプロトコルを提案する: 1) 関心領域を定義し、これらの地域に適応したマスクをデザイン2) 蛍光顕微鏡動画内の粒子を追跡します。3) 選択したトラックの拡散と強度特性を解析する.拡散係数の定量的解析、モーション、およびクラスター サイズの型を用いて蛍光顕微鏡と画像処理が粒子のダイナミクスと変更の結果を客観的に判断するための貴重なツールを提供します環境条件。この記事ではこれらの機能の解析のための詳しいプロトコルを提案する.説明する方法ここでだけでなく単一分子追跡検出が細胞膜で横方向の拡散パラメーターの推定の自動化にも、軌道の種類を分類でき、したがって克服する完全な分析、細胞膜でその全体の軌道上のスポット サイズを定量化の難しさ。

概要

脂質二重膜に埋め込まれる膜タンパク質は、熱拡散のための連続的な動きにあります。そのダイナミクスは、分子間相互作用は、オリゴマー、モノマーからサイズが異なります、シグナリング複合体の安定性に影響を与える複合体の形成を許可する細胞応答を調整することが不可欠。細胞生物学、シグナル伝達経路を理解し、予期しない細胞機能を識別するために必要な新たな挑戦は、蛋白質ダイナミクスの制御機構の解明。

いくつかの光学的手法が開発されている細胞¹生活のこれらの相互作用を研究します。これらのうち、全内部反射蛍光 (TIRF) 顕微鏡、1980 年代初頭に開発によりでまたは非常に近い細胞膜²分子間相互作用の研究ができます。細胞内の全反射データから得られる膜タンパク質軌道の動的パラメーターを研究、単一粒子追跡法 (SPT) が必要です。いくつかのアルゴリズムがこれを利用可能な我々 は現在結果のトラックを接続するための連続するフレーム間の粒子をリンクすることにより密な粒子フィールドの粒子運動の不均質性をアドレス Jaqaman ら³の発行するものを使用します。完全な軌道 (一時粒子消失) にセグメント。ソフトウェア キャプチャ粒子凝集・解離のイベント³からその結果を分割します。このソフトウェアの出力データの 1 つは、各フレーム内の X と Y の位置を定義することによって全体の軌道に沿って粒子の検出です。

粒子が検出されると、我々 は短い兼ねた拡散係数 (D_1-4)^4,5を決定するさまざまなアルゴリズムを適用します。よると粒子も瞬間スケーリング スペクトル (MSS)^6,7,8解析を適用することによって、または調整曲線⁹平均二乗変位 (MSD) の 'アルファ' 値を当てはめによる分類します。軌道の種類。

蛍光画像でスポットの強度の分析は、フィールド^10,11の科学者の共通の目的です。使用される最も一般的なアルゴリズムは、いわゆる数と明るさです。このメソッドそれにもかかわらずモバイル画分中の粒子の正しいフレームで強度の検出をできませんは。我々 はしたがって、これら粒子の強度によってフレームを評価して、凝集状態を決定する新しいアルゴリズムを生成しています。U Track2 ソフトウェア³を使用して、各粒子の座標を検出、一度定義その強度各フレームで完全な軌跡を各フレームでセルの背景を考慮します。このソフトウェアは、スポットの強度とセルの背景色を決定するさまざまな可能性を提供していて、粒子の検出 (クラスター サイズ) で蛋白質のおおよその数を計算します、参照として知られている単量体および二量体のタンパク質を使用します。

この資料で述べるこれらの 3 つの手順を実行する注意ガイド: 1) の検出と U-トラックを使用して蛍光顕微鏡のビデオに沿って 1 つの粒子を追跡2) 分析瞬時拡散係数 (D_1-4) それらの粒子と MSS; による長い軌道で粒子の運動 (閉じ込められ、無料、フリー、または監督) の種類3) 各スポットに推定される背景の蛍光性によって修正ビデオに沿ってスポットの強度を測定しました。これは、クラスター サイズの推定とフォトブリーチを行なった手順を識別できます。

このプロトコルの使用特別なスキルを必要としない研究室では細胞培養を行うことが、フローサイトメトリー、顕微鏡設備の流れ。プロトコルは、ImageJ やフィジー (ImageJ¹²分布)、U トラック³、いくつかの広告を作ったホック ルーチン (http://i2pc.es/coss/Programs/protocolScripts.zip) を使用します。U トラックおよびアドホック ルーチンは、任意の互換性のあるコンピューターにインストールすることができます Matlab 上実行します。

プロトコル

1. 生物学的試料の調製

1. 成長 10% FCS RPMI 1640 培 Jurkat 細胞 NaPyr、L-グルタミン (完全な RPMI)。Electroporate Jurkat 細胞 (20 x 10⁶セル/400 μ 10 %fcs と RPMI 1640) 単量体 GFP 標識ケモカイン受容体ベクトル (CXCR4-AcGFP、20 μ g) 蛍光顕微鏡を用いた検出を許可するとします。
   注:MCherry、mScarlet など他の単量体の蛍光タンパク質を使用することが可能です。
2. トランスフェクション後 24 時間は、細胞生存率と CXCR4 AcGFP 式の両方を決定する流れの cytometer 細胞を分析します。
3. Transfected 受容体の発現は低下は個々 のトレースの単一粒子追跡を保障するために観察実験に必要な細胞が GFP^低陽性細胞 (図 1) の選別による低 CXCR4 AcGFP レベルを表現するセルを選択します軌道⁹。
4. 細胞表面の受容体の数を定量化します。
   注:例として¹³〜 8,500 22,000 AcGFP ラベル受容体/セル、〜 2 4.5 μ m²に対応します。
5. 完全に RPMI で並べ替えられた細胞を再懸濁し、37 ° C、5% CO₂で少なくとも 2 時間インキュベートします。(300 × g, 5 min)、細胞を遠心し、全反射のバッファー (HBSS、25 mM HEPES、2% の FCS、pH 7.3) でそれらを再停止されます。
   1. 適切な配位子 (すなわち、cxcl 12、100 nM、1 h、37 ° C) の有無でフィブロネクチン (20 μ g/mL, 1 h, 37 ° C) でコーティング プレート 35 mm ガラス底マイクロウェル皿 (10⁵セル/料理 x 2-3)。画像の取得前に細胞 (37 ° C、5% CO₂で 20 分) を孵化させなさい。
6. 油浸対物レンズ × 100、EM CCD カメラを搭載した全反射顕微鏡を用いた実験を行う (HCX PL APO 100 x 1.46/NA) 488 nm のダイオード レーザー。顕微鏡では、温度制御と CO₂の孵化をことができます。検索し、フォトブリーチング効果を最小限に抑えるために明るいフィールドを使用して粗・微動フォーカス ノブを持つセルをフォーカスします。全反射モードで細かいフォーカス調整のため単一粒子検出または退色効果 (5% レーザパワー, 28 μ W) を誘導するためには不十分な低レーザー強度を使用します。
7. 約 50 の映画 (映像) を取得 s フレーム間の時間間隔を最小限に抑えます。エバネッ セント場侵入は 70-90 nm の深さにする必要があります。「.Lif」(video.lif) として、実験条件ごとに取得した映画を保存します。
   注:記述例では映画はレーザー パワーで 49% で買収された (2 mW) 90 ms の露光時間と 49 の 98 ms の間隔 s (500 フレーム)。選択したエバネッ セント波の侵入は 90 nm。

2. 画像とマスクの作成の選択

1. (Video.lif) 実験条件ごとに、すべてのシリーズの別のフォルダーを含める必要があります新しいフォルダー (VideoName) を作成します。各フォルダーは、ビデオ画像の"videoSeq"フォルダーと分析の結果の「結果」フォルダーに格納されます。現時点でファイル構造は次のとおりであることを確認します。
   VideoName/video.lif
   VideoName/シリーズ1/videoSeq
   VideoName/Series1/結果
   注:顕微鏡から別の .lif ファイルはすべての治療条件 (FN、FN + 自衛隊) のいくつかのビデオが取得されます。"video.lif"は、すべて全反射映画買収 (シリーズ) と input.lif ビデオ ファイル、顕微鏡で実行に対応します。"videoSeq"フォルダーは、我々 が分析しているムービーの 500 フレームが格納されます。「結果」フォルダー実行分析で得られたすべてのファイルが含まれます。正確な名称と異なるフォルダーのローカライズは、アルゴリズムの正しい機能に不可欠です。太字の名前上記のリストでは固定されます (すなわち、彼らは名は、スクリプトによって求められているのでこの方法で呼び出される必要がある)。太字ではない名前は、実験の実行を反映するように変更できます。
2. ドラッグ アンド フィジー メニュー バーと[ok]を BioFormats (補足図 1) を使用して lif ファイルをインポートするをクリックしてのファイルをドロップして、フィジーや ImageJ で観察ビデオ (.lif ファイル) を開きます。
3. 処理OK (補足図 2 a) をクリックして系列を選択します。このビデオの分析用マスクを設計、インポートも異なる発色団とマルチ チャンネル画像 (例では、シリーズ 1 はマルチ チャンネル画像と対応するビデオ シリーズ 2)。ビデオ (およびマルチ チャンネル画像) は、ImageJ スタックとして開く必要があります。(補足図 2 b) の例では左側に画像とビデオは右側。
   注:ビデオのマスクの作成が必要でない場合は、ステップ 2.5 に移動します。
4. マスクを作成します。マスクの設計に有効なチャンネルと単一のイメージを作成します。この場合、興味深いチャネル、赤、緑、灰色のものです。
   1. マルチ チャンネル画像 (補足図 3 a) からチャンネルを分割: バーでイメージを選択] メニューのとクリック色 |チャンネルを分割。別のチャネルは、(補足図 3B) の別々 の画像として表示されます。
   2. 単一のイメージ (補足図 4 a) で再び 3 チャンネルの統合: バーでイメージを選択メニューと選択色 |チャンネルの統合。適切なチャネルを選択して[ok] (補足図 4 b) を押します。新しい非積み上げイメージになります (補足図 4) を生成します。
   3. Windows の同期ツール (補足図 5 a) を使用して 2 つのウィンドウを同期: バーの分析を選択メニュー |ツール |同期の窓。(補足図 5B) 同期画像の可能性を持つ新しいウィンドウが現れます。
   4. Windows では、2 つ同期 (だけビデオがないマルチ チャンネル画像が関連付けられている場合)、両方のウィンドウで同じ領域をトリミングできます。ImageJ フローティング メニューの長方形選択ツールで関心領域を描画します。バーでイメージ選択メニューと選択作物(補足図 6A)。2 つのトリミングされた画像が個別に表示されます (補足図 6 b)。
   5. Windows 同期マネージャーですべての Unsynchronizeボタンを押して、両方の windows (補足図 6B) を unsynchronize します。
5. ステップ 2.4 のようにマスクを作成していない場合は、ImageJ フローティング メニューの長方形選択ツールに関心の領域を描画します。
6. (補足図 7A) 対応するビデオ ディレクトリの下のディレクトリvideoSeqにイメージ シーケンスとしてビデオを保存: バーでファイルを選択メニューとクリックしてを付けて保存 |イメージ シーケンスしています... video0000.tif、video0001.tif、...、video0499.tif (補足図 7 b) として映像のラベルの名前を変更: [名] ボックスで、ビデオとして名前を変更し、 [ok]をクリックします。シーケンスは、U トラックによって正常に使用されるディレクトリにだけである必要があります。
   注:されていない場合はステップ 2.8 に行くビデオのためのマスクを設計します。
7. マスクをデザインします。マルチ チャンネル画像を選択し、セグメンテーション エディターのプラグイン (補足図 8 a) を開きます: バーのプラグインを選択] メニューと [分割 |セグメンテーション エディター。追加し、セグメンテーション エディター (補足図 8 b、C) のラベルを右クリックして必要に応じて、セグメンテーションのラベルの名前を変更します。
   1. ImageJ フローティング メニューで適切な選択ツールを選択 (ここでは、手書きに使用)、ラベル (緑) を選択し、(補足図 9A) の最も外側のマスクを最初にデザインします。設計されていて、合成ウィンドウの選択、選択したマスクのボタンを押して+はビューアー (補足図 9 a) に表示されます。この手順は、次のラベル (インテリア、赤で) と (補足図 9 b)。
      注:グリーンとインテリアのラベルのマスクをデザインした後、外装のマスクは画像の残りの部分を占有します。
   2. マスクは、領域 0、1、2 とイメージでコーディングが.RGB でラベルの順序に従ってウィンドウをラベルします。すべてのマスクの別のラベルに設計され、保存とマスク名mask.tif (補足図 9) で、動画と同じファイル名を持つ: バーでファイルを選択メニューと選択を付けて保存 |Tiff.。
      注:選択したマスクは、(手順 4.2 参照) 軌道の分類と拡散係数の計算に採用されるでしょう。
8. 現時点でファイル構造は次のとおりであることを確認します。
   VideoName/video.lif
   VideoName/シリーズ1/mask.tif
   VideoName/シリーズ 1/ videoSeq/video0000.tif
   VideoName/シリーズ 1/ videoSeq/video0001.tif
   ...
   VideoName/シリーズ 1/ videoSeq/video0499.tif
   VideoName/Series1/結果
   注:手順 2.4、2.7 で、mask.tif はマスクと画像です。ステップ 2.6 で保存すると、video*.tiff は、ビデオです。名前の太字の上記のように、上記のリストに固定されて、すなわち、彼らは名は、スクリプトによって求められているのでこの方法で呼び出されます。太字ではない名前は、実験の実行を反映するように変更できます。

3. 粒子の追跡

1. U トラックを使用して選択した動画で見られるすべての粒子を追跡します。
2. Matlab を開き、のパスの設定を使用して、U トラック ディレクトリをパスに追加 |追加メニューのサブフォルダー オプションを使用します。将来的に処刑の Matlab U ・ トラックがパスになるようにパスを保存します。このパス設定は一度だけ行う必要があります。
3. 作業ディレクトリを分析するシリーズを含むディレクトリに変更します。U トラックを呼び出すコンソール (補足図 10) movieSelectorGUIに入力して、enter キーを押します。映画の選択ウィンドウになります (補足図 11 a) を開いた。
4. 新規ムービーのボタンを押すし、映画版ウィンドウ (補足図 11 b) が表示されます。
5. 追加チャネルのビデオ (VideoName/Series1/ビデオ) でディレクトリを選択して、映画情報のパラメーターを入力するを押します。結果(videoName/Series1/結果) を U トラックの結果の出力ディレクトリを設定します。
   注:映画情報のパラメーターは、顕微鏡と獲得条件から入手できます。
6. 高度なチャネルの設定を押し、買収に関連するパラメーターを入力します。(補足図 11) の例で、パラメーターの値を見てください。
7. 高度なチャンネル設定ウィンドウで保存し、劇場版ウィンドウに保存を押します。プログラムは、結果ディレクトリにmovieData.matと呼ばれるファイルへの書き込みの確認が要求されます。確認します。
8. 作成したムービーは、映画の選択ウィンドウで続行を押します。U トラックは分析対象とするオブジェクトの種類について尋ねます。単一粒子 (補足図 12) を選択します。[コントロール パネル] ウィンドウ (補足図 13A) が表示されます。
   1. 最初のステップを選択手順 1: 検出設定のキーを押します。設定ガウス混合物モデルのフィッティングウィンドウ (補足図 13B) が表示されます。例では、「ローカルのバック グラウンドとの比較のためアルファ値」は 3 (補足図 13B) 0.001 と「ローリング ウィンドウ時間平均化」に設定されます。
   2. 適用設定ガウス混合物モデルのフィッティングの] ウィンドウで、コントロール パネルの実行を押します。補足図13] 構成の検出手順のみを実行します。この手順では、(2-5) を数分をかかります。ステップ 1 (検出、補足図 14) の結果ボタンを押して結果を確認します。
      注:上図のように、映画は、検出した異物に赤丸を示しています。赤い丸が表示されてない場合、この手順は働いていない正しく。
9. トラック、つまり、複数のフレームにまたがるトラックに前の手順で検出された粒子の結合の識別を実行します。これは、ステップ 2: 追跡U トラック設定の補足図 15A Cに示すように定義しなければなりません。例ではフレームにリンクとのギャップを閉じる、マージおよび分割のステップ 2 費用関数の設定はそれぞれ補足図 15 bとCのとおりです。
10. ステップ 2 のパラメーターを設定した後コントロール パネルの実行を押して、手順 2 だけを実行 (補足図 16)。
11. トラック分析、手順 3 を実行します。補足図 17 (右側のパネル) で示すように、設定を定義します。適用を押して設定運動の解析、および実行コントロール パネル-U-トラックでのパネルに。この手順は、数秒をかかります。
12. ステップ 3 の結果ボタンで、プロセスがすべてのトラックを正しく認識しているを確認します。方法については、ビデオ オプションウィンドウのトラック数を表示をクリックし、(補足図 18) を正しく識別されるフレーム単位で各トラックをされていることを確認してください。手動で真の粒子ではないそれらの粒子に注釈を付けます。
    注:この手動で選択が行われていない場合、(手順 4 を参照)、拡散係数を計算するときに弱い自動選択を後で実行できます。

4. 軌道区分と拡散係数の計算

1. (例では、VideoName/Serie1) で解析されてビデオのディレクトリからすべてのスクリプトが呼び出されたことを確認します。
2. Matlab の発行による拡散係数のコンソール コマンドを計算するすべての軌道を読む: trajectories=readTrajectories(0.1)0.1 が 2 つの連続したフレーム (時間間隔、映画のパネルで表示間隔 (秒) 時であります。については、補足図 11 b)。
3. 誤って識別されたスポット/軌道に対応する軌道を除外します。除外するスポットのリストを与えます。例えば、4、5、28 スポットを除外するを入力: 軌道 = readTrajectories (0.1、[4, 5, 28])。
4. このセルのトラックのそれぞれの瞬時拡散係数を計算します。この場合は、タイムラグの拡散係数を計算 = 4、D_1-4と呼ばれます。Matlab コンソールでコマンドを実行、そう: D = calculateDiffusion (113.88e の軌跡-3、0.0015、'アルファ')軌道がステップ 3、113.88e で取得した軌跡を-3 はミクロン単位で取得した画像のピクセル サイズ、0.0015 は、下記のとおり、単位 μ m²/s と 'アルファ' で不動の粒子の拡散係数の上限は装備のモデルです。
   注:高速カメラと必要性を使用して拡散パラメーターを計算するより多くのフレーム、例えばに増加 20 でD = calculateDiffusion (113.88e の軌跡-3、0.0015、'アルファ'、'、20)。上記の例では、20 の前に文字列パラメーター '、出力ファイルに追加されるサフィックスです。このサフィックスは、異なる分析を区別するために使用可能性があります。
5. 再び別の継ぎ手のモード ('限定'、'自由'、または '監督') で calculateDiffusion 関数を呼び出して別の関数で MSD に合います。この例では、'限定': D = calculateDiffusion (113.88e の軌跡-3、0.0015、'限定')。
6. 補足図 20に示すように、監督のモデルの近似の結果を取得します。
7. 短期および長期の軌道に軌道を分解します。コマンドを使用します: [shortTrajectories、longTrajectories]=separateTrajectoriesByLength(trajectories,50) 50 が長い (例) で考慮する軌道のフレームの最小の長さ。
8. ステップ 4.3 に記載されている同じフィッティング処理を用いた短い軌跡の研究: D = calculateDiffusion (shortTrajectories、113.88e-3、0.0015、'監督'、'短い')。コマンドで短いと異常な軌道の分析: D = calculateDiffusion (shortTrajectories、113.88e-3、0.0015、'アルファ'、'短い')。
9. その瞬間スケーリング スペクトル (MSS)⁷を通して動きのタイプを分類する長い軌跡を分析します。コマンド: trajectoriesClassification = classifyLongTrajectories (longTrajectories、113.88e-3,0.0015、'Long') 画面の分析を示し、 trajectoryClassification < サフィックス > .txtという名前のファイルを生成する、ディレクトリresults\TrackingPackage\tracks。

5. 粒子密度を介してクラスター s サイズの計算

注:(例では、VideoName/Serie1) 分析されるビデオのディレクトリからすべてのスクリプトが呼び出されたことを確認します。

1. 彼らの軌道に沿って各粒子の強度を分析します。そうすることで、Matlab コンソールで入力してスクリプトを呼び出す: analyzeSpotIntensities として受け取る入力最初のセクションの U トラックで計算した軌道。その最も基本的なフォームでは、単に (例では、VideoName/シリーズ 1) 分析されるビデオのディレクトリから引数なしスクリプトを呼び出す analyzeSpotIntensities()。同様にスクリプトへの引数を提供することによってさまざまな方法でこの基本的な動作を構成する: analyzeSpotIntensities ('Arg1´、Value1、' Arg2´、Value2,...)。有効な引数の対応する変数の値 ('ArgN´、ValueN) が一覧表示されます。
   1. ('spotRadius´、1)
      サイズ 3 × 3 スポット ((2*spotRadius+1)x(2*spotRadius+1)) で中心のパッチに対応する (既定) 1 ピクセルの spotRadius を使用して蛍光強度を分析します。
      注:スポットを中心とした 5 x 5 のパッチの選択、spotRadius 2、等します。
   2. ('onlyInitialTrajectories´、1)
      この引数 (true の場合、1 の値) を指定、場合は、ビデオの最初のフレームで開始する軌道のみを分析します。これは (既定では 0、false) コントロールの画像を分析すると便利です。
   3. (' 0 trackTrajectory´)
      この引数は、0 (false) に設定されている場合 (これは不動点のため便利です) すべてのフレームの最初のフレームにスポットの座標を維持します。(既定では 1, 真) を 1 に引数を設定される場合スポットが U トラック ビデオ次の座標計算に沿って追跡されます。
   4. (' [4,5,28] excludeTrajectories´)
      (例では、4、5、28) ステップ 4.3 除外それらの軌道の軌道数が含まれます。
   5. (' 1 extendTrajectory ´)
      この引数は、1 (true) に設定されている場合 (軌道は以前停止した) 場合でも、ビデオの最後にパッチの強度を分析します。スポットの座標は (trackTrajectory が true) の場合、軌道上の最後の座標または軌道に最初の座標 (偽 trackTrajectory の場合)。この引数は、既定では false (0)。
   6. ('subtractBackground´、1)
      このパラメーターが設定されている場合、正しい生蛍光測定の各スポットで場所 (下記参照) を背景の蛍光性の推定。この引数は、デフォルトでは true (1)。
   7. ('meanLength´、フレーム番号)
      このパラメーターを設定すると、平均強度スポットを表示された長さで測定します。最初 20 フレームで平均スポット強度を測定するため 20 ' meanLength' を設定します。引数が設定されていない場合スポット強度が (既定では、完全な長さ) 全体の軌道で計算されます。
   8. ('showIntensityProfiles´、1)
      1 としてその背景と同様に、別のフレームに沿って強度分布をプロットする (既定では 0、false)、このパラメーターを設定します。
      注:これらのプロットは、補足図 21に示すように退色を識別するために非常に便利です。すべてのパスのルーチンは退色があった可能性がある場合自動的に分析します。これは、パスに沿った最初と最後の N フレームでスチューデントの t の強度の値を比較することによって行われます。既定では、N が 10 が、この値は引数を通じて変更することができます ' Nbleach´。
   9. ('backgroundMethod´、値)
      各スポットの背景を決めるこのパラメーターを設定します。これは、いくつかの方法で行うことができます、使用する選択した変化する「値」をすることができます。
      1. (' 0 backgroundMethod´)
         全体のビデオの背景を手動で識別するためにこの値を使用します。ビデオの最初のフレームで 8 ポイントを選択することができます。全体のビデオに沿ってこれらの点の周りのパッチを解析し、すべてのスポットの背景強度として選択するとこれらのすべての強度の 95% 位。
      2. ('backgroundMethod´、1)
         手動で各フレームの背景を識別するためにこの値を使用します。すべてのスポットとフレームごとの 8 ポイントを選択します。これは時間のかかる作業ですが、それはユーザーに多くの制御を与えます。これらのパッチの強度の 95% 位はこのフレームでこのスポットの背景強度として選択されます。
      3. ('backgroundMethod´、2)
         使用引数によって制御される半径の円スポットの周りにある 8 ポイントから推定した各スポットの背景を計算する値。 この ' backgroundRadius´ (デフォルトでは、4 * spotRadius)。
      4. ('backgroundMethod´、3)
         この値を使用して、最初のビデオでセルを検索し、それぞれの枠 (補足図 22) のセルの強度を分析して、各フレームの背景を計算します。
         注:この分布の与えられた位でグレー値として背景を選択 (既定値は 0.5 (= 50%)、このパラメーターは引数を介して制御することができますが ' backgroundPercentile´、この値を大きく設定する、例えば、0.9 (= 90%)場合は、背景として考慮されるべき細胞のほとんどをしたいです。セルの識別のために、引数を使用してフレームに沿って期待されて最大のバック グラウンド値であることを示す「(例えば、のすべての分析ビデオ、バック グラウンド値 6000 を超えて通常決して) maxBackground´¹³。既定では、このオプションは、既定でこのヘルプが使用されないことを意味 0 に設定されます。細胞の検出と背景推定の引数を設定することにより選択領域であるを参照してください ' 1 (停止 ctrl + C を押すことによっていつでも実行) に showImages´。
2. GatherDiffusion.AndIntensity () を使用して、それぞれの手順 4 で 5.1 計算すべての軌道の拡散と明度の情報を収集します。短い軌道の拡散と強度の情報のみを収集します。そうステップ 4.7 とタイプで使用されているサフィックスを使用: gatherDiffusionAndIntensity ('Short´) 、' Short´ は 4.7 ステップで使用されるサフィックス。
3. 瞬間スペクトルのスケーリングと強度情報入力を収集: gatherTrajectoryClassificationAndIntensity('Long') 'Long' サフィックスで使用場所ステップ 4.7。このプロトコルを使用して生成されたすべてのファイルの概要は、図 2の通りです。

結果

このプロトコルは、使用蛍光顕微鏡映画とその動的特性の解析で検出された粒子の自動追跡です。当初、セルは追跡する蛍光結合タンパク質をトランスフェクトしました。SPT は、ソーティング (図 1) によって得られることができる細胞表面受容体の適切なレベルを示します。選択したセルは、このプロトコル (補足のビデオ 1) で説?...

ディスカッション

この方法は、Matlab の使用経験がなくても実行する簡単です。しかし、Matlab ルーチンは非常に、さまざまなコマンドの名称とプログラムで採用されている別のフォルダーのローカライズ精度必要があります。追跡解析ルーチン (ステップ 3)、複数のパラメーターを変更することができます。「設定ガウス混合物モデルふさわしい」ウィンドウ (手順 3.8) U トラックがビデオの単一粒子を検出す?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Human Jurkat cells	ATCC	CRL-10915	Human T cell line. Any other cell type can be analyzed with this software
pAcGFPm-N1 (PT3719-5)DNA3GFP	Clontech	632469	Different fluorescent proteins can be followed and analyzed with this routine
Gene Pulse X Cell electroporator	BioRad		We use 280 V, 975 mF, for Jurkat cells.  Use the transfection method best working in your hands.
Cytomics FC 500 flow cytometer	Beckman Coulter
MoFlo Astrios Cell Sorter	Beckman Coulter		Depending on the level of transfection, cell sorting may not be required.  You can also employ cells with stable expression of adequate levels of the receptor of interest.
Dako Qifikit	DakoCytomation	K0078	Used for quantification the number of receptors in the cell surface.
Glass bottom microwell dishes	MatTek corporation	P35G-1.5-10-C
Human Fibronectin from plasma	Sigma-Aldrich	F0895
Recombinant human CXCL12	PeproTech	300928A
Inverted Leica AM TIRF	Leica
EM-CCD camera	Andor	DU 885-CSO-#10-VP
MATLAB	The MathWorks, Natick, MA
U-Track2 software	Danuser Laboratory
ImageJ	NIH		https://imagej.nih.gov/ij/
FiJi	FiJI		https://imagej.net/Fiji)
u-Track2 software			Matlab tool.  For installing, download .zip file from the web page (http://lccb.hms.harvard.edu/software.html) and uncompress the file in a directory of your choice
GraphPad Prism	GraphPad software