私たちは、写真やビデオ撮影とその技術的専門知識と支援のためにジョン·クローウェル氏とテリーアプシャルに感謝します。この作品は、ヘルスリサーチおよびニューファンドランドの研究開発株式会社および脳卒中の回復の触媒付与のためのカナダのカナダのパートナーシップのハート＆ストローク財団のカナダの研究所からJLVに動作する補助金によってサポートされていました。 RBRはキース·グリフィスメモリアルハート＆ストローク財団大学院奨学金の受取人でした。

倫理文：全ての実験は、動物ケアのカナダの協議会のガイドラインに従ってニューファンドランドの動物ケア倫理委員会の記念大学によって承認されました。 1.マウス<ol><li>成体マウスを使用。本研究では、2~4ヶ月の間に成人男性FVBNのマウス（n = 10）を使用しました。 12時12分時間の家のマウスは、明暗サイクルを逆転させ、標準的なげっ歯類固形飼料および水を自由に提供します。 </li></ol>シリンダーテストに必要2.材料<ol><li>円筒試験をフィルムに透明なトップのテーブルを取得します。表の寸法は、上部がプレキシガラス又はガラスでなければならず、表の下のミラーを配置するのに十分なスペースがなければならない、無関係です。マウスを下からビデオテープに録画するためにこれが可能になります。シリンダーを介して画像を反映するように、テーブルの下に鏡を使用してください。利用可能な場合は別の方法として、逆さまカメラを使用しています。このプロトコルで使用される表の寸法は54のx 56のx 651のx 51センチメートルトップ（WXL）で6.5センチメートル（wxlxh）。 </li><li>ミラーを取得します。このプロトコルで使用されるミラーの寸法は34のx 58センチメートル（WXL）です。 </li><li>マウスがで実行するための透明/プレキシガラスのシリンダーを入手します。このプロトコルで使用されるシリンダーの寸法は高17.5センチメートル、8.8センチメートルID、0.35センチメートルの壁の厚さと9.5センチメートルODです。背の高い円筒は、より活性のマウス系統のために必要とされてもよいです。 </li><li>卓上にシリンダーを置き、以下のミラーで反射を撮影。 </li><li>ビデオカメラと三脚が必要です。約気筒ビデオの5分ごとに190Mbさ約650Kb / sでの録音のビデオ、。カメラはシリンダが視野全体を包含することを確実にするためにズーム機能があることを確認してください。 注：このプロトコルで使用されるビデオカメラソニーDCR-SR42、40倍光学ズーム、標準的な定義を使用しています2,000xデジタルズーム、680kpix、NTSCインターレースビデオです）。 </li><li>分析のためのソフトウェアを入手 - メディアのPLビデオのサポートと再生速度調節とアヤ。このプロトコルで使用されるメディアプレーヤーはVLCメディアプレーヤーv2.1.2です。 </li><li>メディアプレーヤーとモニタを実行できるオペレーティングシステムとコンピュータを入手します。 </li><li>動画の電子記憶装置が必要とされます。外付けハードドライブに動画をダウンロードするか、長期保存のためのDVDにコピーします。 注：ビデオあたり190Mbで、84のセッションが16ギガバイトのSDカードに収まると168のセッションが32ギガバイトのSDカードにフィットします。によるSDメディアの比較的安価、およびいくつかのマウスは20後部を完了するために必要などのくらいの時間の不確実性には、32 GBのカードをお勧めします。現在の研究では、ビデオは2TB外付けハードドライブにカメラからコピーされたし、バックアップとしてDVDに再コピー。 </li></ol>シリンダー試験の3実験のセットアップ<ol><li>卓上に45度の角度でテーブルの下に鏡を固定します。 supporにテーブル脚に取り付けられ、この使用して二つの支持ブラケットを行いますミラーの上下T、それぞれ。ブラケットの位置は、テーブルの側面図（ 図1A）と顔の表のビュー（ 図1B）に記載されています。 </li><li>テーブルの中央にシリンダーを置きます。シリンダは黒のマーカー（シャーピー）シリンダが持ち上げられ、同じ位置に戻すことができるように（ 図2）を使用してテーブルに座っている4等距離線を描画します。透明天板の下側にそれらを描画すると、卓上には、マーカーのインクを溶解することなく、動物試験の間に洗浄することができます。 </li><li>カメラと三脚を取り付けます。画像は、シリンダのバレルを介して直接見ているように、ミラーにカメラを目指しています。シリンダーの完全な内壁がベース（ 図3）により可視および障害物がないことを確認してください。 （ 図4A）の上からやから、カメラとミラーのセットアップの相対角度を含む、サイドオン設定のビューを参照してくださいマウスの飼育（ 図4B）を含むテーブルのレベル。 </li><li>撮影の前に、各マウスを識別するために、キュー·カードを準備します。カードは、典型的には、各マウスの識別番号、テストの時点（ 例えば 、3日後）と、撮影セッションの日付が含まれていることを確認してください。実験者が盲目にされていることを確認するためにキューカード上の治療群を含めないでください。 </li><li>この光のレベルのような標準的な屋内照明条件のフィルムは、明らかに、シリンダ周りのマウスの動きを見るために必要とされます。 注：十分である赤色光カメラで暗所での撮影可能な場合は、しかし、一つは最初の足のタッチとの薬物が明確に定量化することも可能であるかどうかをテストする必要があります。 </li></ol> 4.実行<ol><li>撮影を開始します。カメラレンズの前に適切なマウスキューカードを表示します。 </li><li>すぐにキューカードを撮影した後に開いた上部からシリンダ内にマウスを下げます。 </li><li>マウスを撮影し始めます。びっくりした場合、マウスは探検に興味を失う可能性がありますように、この期間中のノイズを最小限に抑えます。 </li><li>シリンダーを探索するマウスの背面を確認します。マウスが20後部の最小値を実行するまでの映像をキャプチャします。 注：両方の前足が床との接触を失い、マウスが後ろ足で立っているときにリアが発生します。 </li><li>サニタイズとマウスの香りを除去するために、各マウスの間の適切な洗浄液で卓上とシリンダーを拭きます。 </li><li>マウスは探検停止し、静かに、約5分間、四つんばいになって座ったまま際に凍結があります。 20後部が発生する前にマウスがフリーズした場合は、試験を再開する前に10〜20分間シリンダーからそれらを削除する必要があるかもしれません。マウスは20後部を実行しない場合、それらは試験から除外されています。 注：我々の経験では、マウスが原因で、シリンダを探索する失敗に除外されるために必要なことがありません。 </li></ol>ポウ·ドラッグを使用してシリンダー試験の5評価解析<ol><li>マウスは、シリンダを探るどのように迅速に応じて0.25X間0.67x標準速度の速度でビデオを再生します。遅い再生速度を提供していますメディアプレーヤーを使用してください。 </li><li>足タッチの総数を定量。ときにマウスの後部（ 図5A）足のタッチが発生し、その後、同時に足（ 図5C）およびランド（ 図5D）の両方でディスマウントし、シリンダ（ 図5B）の側面に触れます。足は、フル手のひらでシリンダー壁に接触してもしなくてもよいが、シリンダ壁といくつかの接触が発生しなければなりません。背面の間にその後肢の上に立っている間にマウスのいずれかまたは両方の前足とシリンダ壁との接触（どのように簡単に関係なく）を行う回数をカウントすることにより、足のタッチを評価します。 （注）マウスが後方位置にある場合、シリンダ壁との接触が唯一の &quot;足タッチ」または「足ドラッグ」としてカウントされる - 立っ卓上のオフ両方の前足との後肢に。卓上に後肢と1前足の両方を、無料の足で壁に触れないように進む - - マウスは3点姿勢のままである場合、これは足のタッチとしてカウントされません。マウスは、リアすることができ、単一の前足とシリンダー壁に触れ、これは足のタッチとしてカウントされます。注：マウスはまた、以上の2つの接点を作り、後部の間にシリンダの周りにその体を移動させることができます。各左前肢タッチ用と各右前足touch用の1 - これらの接点は、集計されています。 </li><li>足-の薬物の数を定量化します。ポウ·ドラッグ動作は、通常の足のタッチと区別されます。 <ol><li>足の接点全開手のひら（ 図6B）とシリンダー壁なら、それはゆっくりと、多くの場合、わずかな震えで、壁から離れて落下します。動きがのcompletを離れて落ちる前にシリンダー壁のいずれかに対して内側または下方向にドラッグする数字、（ 図6C）で始まりますエリー（ 図6D）。次にマウスを四つんばい（ 図6F）に着陸する前に、その影響を受けていない足（ 図6E）でマウントを解除します。これは、足ドラッグとみなされ、集計にカウントする必要があります。 </li><li>足が完全に開いた手のひらとシリンダ壁に接触しない場合には、シリンダ壁から離れて落下する前に、その桁のシリンダー壁を放牧します。同様に、マウスは、シリンダ壁にその足をドラッグするが、取り外し前にそれを完全に解放しないことがあります。これらは両方の足、ドラッグ、ならびにタッチとみなされ、集計の両方としてカウントする必要があります。 </li><li>マウスは、シリンダを探るながら足もシリンダ壁に沿ってドラッグしてもよいです。それは（ 図7E）を取り外す前に、元の位置（ 図7A-D）の左または右を探るように、この場合には、足は、マウスの胴体のねじれに従います。それがランダムに選択マウスに依存するように、これは、足ドラッグを考慮されていません探索すると皮質半球が損傷されたに依存しない方向。 </li></ol></li><li>足-の薬物は、セッション中に足のタッチの総数あたりの足-ドラッグのパーセンテージとして表されています。個別に各前肢の総足のコンタクトの割合として足-の薬物の数を表現します。 </li><li>足ドラッグをもたらすタッチが足ドラッグすると同時に、タッチとしてカウントされます。マウスが足の足に接触シリンダ壁毎回ドラッグ場合したがって、足、ドラッグ率を100％として表されます。 </li></ol> 6.追加の実験計画の提案<ol><li>余分な変数を最小化するには： <ol><li>各試験日の同じ時刻にマウスをテストします。その覚醒サイクルの間にマウスをテストします。 12時間リバースライトサイクルでマウスを維持することは、パフォーマンスを容易にします。 </li><li>マウスは、いずれかのノイズや新しい環境によってストレスを受けた場合、シリンダを探索するには消極的であってもよいです。その動物保持室またはそれらがBを持っている部屋でテストしたマウスに慣れEENは、ストレスを軽減します。マウスは前シリンダに入るか、慣れのためにもまれている場合は部屋が、ノイズが多い場合に発生します。 注：試験は、ベースラインの読みとして機能するように、実験操作の前に一度だけ実行する必要があります。それは時間の短い期間にわたってシリンダにエクスポージャーの過剰な数を避けるためにお勧めしても操作の後、試験日は、実験者の裁量です。 </li><li>マウスは、シリンダに6-7暴露した後に後方に消極的になることがあります。現在の研究では、マウスは、虚血前および1日目、3、7、14、21、28、術後に、7回の合計シリンダーで試験しました。 注：本研究では、FVBNマウス系統を使用しました。我々は以前にET-1の虚血性損傷後のシリンダと観測された足、ドラッグ動作にC57BL / 6マウスをテストした（データは示さず）。 C57BL / 6マウスを飼育する際FVBNマウスよりも活性であり、頻繁にシリンダーの縁に飛び乗っアウト登る前に。マウスは、ジャンプして脱出しようとすると、背の高いシリンダーを使用する必要があります。 </li></ol></li></ol> 7.エンドセリン-1手術および梗塞体積測定<ol><li>以前に公開されたプロトコル4によるエンドセリン-1手術および梗塞体積測定を行います。 （1.2背腹（DV） - （I）0.7 anteriorposterior（AP）/1.5内側 - 外側（ミリリットル）/：前部前肢運動野を対象とするために、各マウスは、以下の座標で3 ET-1注射を受けるべきですⅱ）0.4 AP / 1.25ミリリットル/ - 1.2 DVおよび（iii）+0.1 AP / 1.75ミリリットル/ -1.2 DV 4。 </li></ol> 8.統計分析<ol><li>分散の双方向反復測定分析（ANOVA）は、足-ドラッグ異なるタイムポイントで影響を受け、影響を受けていない足のための割合を分析することをお勧めします。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、全く競合する金融利害関係はありません。

円筒試験で足-ドラッグ挙動を定量化する際確立するための重要なポイントは次のとおりです。i）の数のベースラインを確立するために、脳損傷の前に各足の総足のタッチ対の足は、ドラッグ定量化。 ii）の虚血性損傷後の各足の総足のタッチ対足-の薬物の数を定量化します。およびiii）足ドラッグとマウスの胴体の左右回転時シリンダ壁に沿って足の横方向の動きとを区別。 <p class="jove...

神経再生戦略の目標は、組織修復及び機能回復の両方を実証することです。機能回復は、典型的には、特定の脳領域への損傷と関連している運動能力を含む、この場合、機能障害を測定する行動試験を用いて評価されます。外傷性脳損傷または皮質の感覚前肢領域の虚血性損傷は、行動試験の数で示すことができます。そのような試験は、シリンダテストは、前肢活性1における機能障害を評価するために、ラットに広く使用されています。テストでは、透明のトップを持つ唯一のシリンダー、カメラとテーブルを必要とする低セットアップ費用を持っています。それは、げっ歯類の自然探索行動に基づいているので、事前にトレーニングや食品剥奪や報酬が必要とされないように管理することは容易です。これらの多くの利点にもかかわらず、シリンダテストは、前肢のに焦点傷害後のマウスに前肢の赤字を評価するために、下に、利用されています我々は円筒試験におけるマウスの行動の分析に属性皮質を、ensorimotor。前肢非対称性は、シリンダテストの分析の古典的な尺度です。シリンダー内に置かれたとき、げっ歯類が自然に後肢に飼育し、姿勢のバランスのための彼らの前肢の足とシリンダー壁に触れることにより、シリンダの壁を探ります。各前肢と壁と足のタッチの数を容易にシリンダのこの探査中にげっ歯類を撮影することによって定量化されます。影響を受けた前肢の足は影響を受けない前肢の足よりも壁に少ないタッチを行い、反対側の感覚運動皮質への損傷の指標であるとき前肢非対称性が発生します。血管収縮剤のラット、内皮質注射では、エンドセリン（ET-1）は、前肢感覚運動皮質に反対前肢で行動障害をもたらす焦点虚血性病変を引き起こします。対側前肢使用の欠損を容易にFの変化として検出されますラット1-3の円筒試験に非対称性をorelimb。しかし、ラットは対照的に、前肢の非対称性の変化は、変数と同等のET-1注射4-6後のマウスではあまり一致しています。ここでは、シリンダテストで前肢の行動の新規解析を実証 - 足 - ドラッグ挙動の分析を。我々は以前その足-ドラッグ解析は、古典的な前肢非対称性分析より、マウスにおける前肢感覚運動皮質への損傷のより敏感な尺度であるため、焦点の皮質損傷モデルの様々に適用可能であることを示しています。 足-ドラッグ4 -前肢感覚運動皮質への虚血性損傷後どのように前足コンタクトシリンダー壁の検査は、マウスにおける新規の挙動を明らかにしました。マウスがシリンダ壁を探索し、その後方の足で立っているときに足ドラッグが発生し、その中線に向かって、または壁しばらくダウンシリンダ壁に沿って、その影響を受けた（コントラ病変）足をドラッグその影響を受けない前足は壁に対して姿勢をサポートしています。めったにので足ドラッグの外観は前肢感覚運動皮質4の損傷の正の指標である無傷のマウスでは発生しない足-ドラッグ。我々は以前前肢感覚運動皮質へのET-1の虚血性損傷後のマウスにおける足-ドラッグ挙動を定量化しており、脳卒中後4 2週間までマウスで持続足-ドラッグの挙動を示しました。ここでは、足、ドラッグ動作が脳卒中後4週間まで維持されることを示しています。足-ドラッグ挙動の分析は、マウスの前肢感覚運動皮質に焦点虚血性損傷を評価するための新規かつ敏感なツールを提供しています。その安価なセットアップ、管理のしやすさと、この急速にマウスで前肢行動欠陥を評価するための、シンプルでありながら便利なツールとなって得点。

<table><tbody><tr><td>Plexi-glass cylinder</td><td></td><td></td><td>17.5 cm high, 9.5 cm outer diameter, 8.8 cm inner diameter, wall thickness 0.35 cm (or 3.5 mm)</td></tr><tr><td>viewing table</td><td></td><td></td><td>54x56x66.5 cm (width x length x height), top of table is a 51x51 cm sheet of plexiglass.</td></tr><tr><td>mirror</td><td></td><td></td><td>34x58 cm mirror</td></tr><tr><td>video camera</td><td>Sony</td><td>DCR-SR42</td><td>Video camera with onboard storage, SD functionality, 40x optical zoom</td></tr><tr><td>computer</td><td>Dell</td><td>Optiplex 760</td><td>Processor: Intel, 3.0 GHz, Memory 4.00GB (RAM)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>computer monitor</td><td>Samsung</td><td>S22C350H</td><td></td></tr><tr><td>Excel (Microsoft Office Professional Plus)</td><td>Microsoft</td><td>v14.0.7106.5003</td><td></td></tr><tr><td>VLC Media Player</td><td>Video LAN</td><td>v2.1.2</td><td>Media player with playback speed modulation and video support</td></tr><tr><td>External Hard Drive</td><td>Western Digital</td><td>WDBAAU0020HBK-01</td><td>2 TB</td></tr></tbody></table>

paw-dragging: a novel, sensitive analysis of the mouse cylinder test

シリンダテストを日常げっ歯類における前肢運動皮質に限局性虚血損傷を予測するために使用されます。シリンダー内に置かれたとき、げっ歯類は飼育や姿勢をサポートするためのそれらの前肢の足とシリンダーの壁に触れて探ります。前肢感覚運動皮質への虚血性損傷後、ラットは、前肢の非対称性と呼ばれ、その影響を受けた足と少ないタッチで得られた姿勢をサポートするために、その影響を受けない前肢の足に、より大きく依存しています。これとは対照的に、マウスの脳内の焦点虚血性損傷は前肢の非対称性において同等一貫した赤字をもたらすことができません。前肢非対称性の欠損が頻繁に観察されるが、マウスは「足 - ドラッグ」と呼ばれる新たな行動脳卒中後を実証ありません。足-ドラッグは4本足のスタンスに後方から取り外す際に直接壁からプッシュオフではなく、シリンダ壁に沿って、その影響を受けた足をドラッグするマウスのための傾向です。我々は以前に実証されていること足-ドラッグ動作が前肢の運動野に小さな皮質虚血性傷害に非常に敏感です。ここでは、足-ドラッグ分析のための詳細なプロトコルを提供します。私たちは、足ドラッグが何であるかを定義し、足-ドラッグ行動を定量化する方法を示します。シリンダテストは、管理するための簡単​​で安価なテストであり、事前にトレーニングや食品の剥奪戦略を必要としません。小さい焦点傷害を人気で増え続けると生成された2つのモデル - シリンダテストで足-ドラッグ分析を使用して、このような光血栓やエンドセリン-1（ET-1）誘発性虚血のような皮質の虚血性傷害を予測するためのニッチを埋めます中大脳動脈閉塞より。最後に、円筒試験で足-ドラッグの挙動を測定することは、以前の前肢非対称性分析は一貫性欠損を検出するために失敗したトランスジェニックマウス系統の広いコホートを用いて皮質損傷後の機能回復の研究を可能にします。

我々は以前、足、ドラッグ動作が前肢感覚運動皮質に焦点虚血性損傷後、損傷4の正の指標で表示されていることを実証しました。前肢の感覚運動皮質にET-1のイントラ皮質注射は、虚血性病変（ 図8A、B）を誘導するために使用されました。本研究では、足-ドラッグ動作がより長く14日間機能回復を評価するため、その潜在的な使用のために、損傷後を拡張するかどうかを...

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Paw-Dragging: a Novel, Sensitive Analysis of the Mouse Cylinder Test

円筒試験の古典前肢非対称性解析を日常脳損傷や脳卒中後のラットにおける行動障害を評価するために使用されます。しかし、マウスでは、一貫した障害を検出することができません。この研究は、足·ドラッグ動作を定量化することは、マウスにおける脳損傷の、より敏感な分析であることを示しています。

ポウ·ドラッグ：小説、マウスシリンダー試験の感度分析

The cylinder test is routinely used to predict focal ischemic damage to the forelimb motor cortex in rodents. When placed in the cylinder, rodents explore ...

paw-dragging-a-novel-sensitive-analysis-of-the-mouse-cylinder-test

Research

JoVE Journal

Behavior

23.5K ビュー.  Memorial University of Newfoundland. 円筒試験の古典前肢非対称性解析を日常脳損傷や脳卒中後のラットにおける行動障害を評価するために使用されます。しかし、マウスでは、一貫した障害を検出することができません。この研究は、足·ドラッグ動作を定量化することは、マウスにおける脳損傷の、より敏感な分析であることを示しています。 

ビデオ: Paw-Dragging: a Novel, Sensitive Analysis of the Mouse Cylinder Test

Assessment of Sensorimotor Function in Mouse Models of Parkinson's Disease

Sensitive and reliable behavioral outcome measures are essential to the evaluation of potential therapeutic treatments in preclinical trials for many neurodegenerative diseases. In Parkinson's disease, sensorimotor tests sensitive to varying degrees of nigrostriatal dysfunction are fundamental for testing the efficacy of potential therapeutics. Reliable and quite elegant sensorimotor measures exist for rats, however many of these tests measure sensorimotor asymmetry within the rat and are not entirely suitable for the newer genetic mouse models of PD. We have put together a battery of sensorimotor tests inspired by the sensitive tests in rats and adapted for mice. The test battery highlighted in this study is chosen for a) its sensitivity in a wide variety of mouse models of PD, b) its ease in implementing into a study, and c) its low expense. These tests have proven useful in characterizing novel genetic mouse models of PD as well as in testing potential disease-modifying therapies.

In Parkinson's disease and movement disorders in general, sensitive and reliable behavioral assays are essential for testing novel potential therapeutics. Here, we describe a manageable battery of sensorimotor tests for mice that are sensitive to varying degrees of injury to the nigrostriatal system and useful for preclinical studies.

パーキンソン病のマウスモデルにおける感覚運動機能の評価

Sensitive and  reliable behavioral outcome measures are essential to the evaluation of  potential therapeutic treatments in preclinical trials for many  ...

行動学

The Vermicelli and Capellini Handling Tests: Simple quantitative measures of dexterous forepaw function in rats and mice

Previous characterizations of rodent eating behavior have revealed that they use coordinated forepaw movements to manipulate food pieces. We have extended upon this work to develop a simple quantitative measure of forepaw dexterity that is sensitive to lateralized impairments and age-dependent changes. Rodents learn skillful forepaw and digit movements to manage thin pasta pieces, which they eagerly consume. We have previously described methods for quantifying vermicelli handling in rats and showed that the measures are very sensitive to forelimb impairments resulting from unilateral ischemic lesions, middle cerebral artery occlusions and unilateral striatal dopamine depletion [Allred, R.P., Adkins, D.L., Woodlee, M.T., Husbands, L.C., Maldonado M.A., Kane, J.R., Schallert, T. &amp; Jones, T.A. The Vermicelli Handling Test: a simple quantitative measure of dexterous forepaw function in rats. J. Neurosci. Methods 170, 229-244 (2008)]. Here we present a more detailed protocol for this test in rats and compare it with a newly developed version for mice, the Capellini Handling Test. Rats and mice are videotaped while handling short lengths of uncooked vermicelli or capellini pasta, respectively, with a camera positioned to optimize the view of paw movements. Slow motion video playback allows for the identification of forepaw adjustments, defined as any distinct removal and replacement of the paw, or of any number of digits, on the pasta piece after eating commences. Forepaw adjustments per piece are averaged over trials per each testing session. Repeated testing permits sensitive quantitative analysis of changes in forepaw dexterity over time. Protocols for pre-testing habituation and handling practice, as well as procedures for characterizing atypical handling patterns, are described. Because rats and mice perform the pasta handling tests slightly differently, species-specific differences in administration and scoring of these tests are highlighted. All animal use was in accordance with protocols approved by the University of Texas at Austin Animal Care and Use Committee.

The Vermicelli and Capellini Handling Tests of forepaw dexterity take advantage of the natural inclination of rodents to manipulate food items using skillful forepaw and digit movements. Animals are videotaped while handling short strands of uncooked dry pasta. Slow motion video playback allows for the quantification of forepaw adjustments.

春雨とカッペリーニの処理試験：ラットとマウスの器用な前足の機能の簡単な定量的指標

Previous characterizations of rodent eating behavior have revealed that they use coordinated forepaw movements to manipulate food pieces. We have extended ...

神経科学

The Sciatic Nerve Cuffing Model of Neuropathic Pain in Mice

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in injured sensory neurons and along the entire nociceptive pathway within the central nervous system. It is usually chronic and challenging to treat. In order to study neuropathic pain and its treatments, different models have been developed in rodents. These models derive from known etiologies, thus reproducing peripheral nerve injuries, central injuries, and metabolic-, infectious- or chemotherapy-related neuropathies. Murine models of peripheral nerve injury often target the sciatic nerve which is easy to access and allows nociceptive tests on the hind paw. These models rely on a compression and/or a section. Here, the detailed surgery procedure for the &#34;cuff model&#34; of neuropathic pain in mice is described. In this model, a cuff of PE-20 polyethylene tubing of standardized length (2 mm) is unilaterally implanted around the main branch of the sciatic nerve. It induces a long-lasting mechanical allodynia, i.e., a nociceptive response to a normally non-nociceptive stimulus that can be evaluated by using von Frey filaments. Besides the detailed surgery and testing procedures, the interest of this model for the study of neuropathic pain mechanism, for the study of neuropathic pain sensory and anxiodepressive aspects, and for the study of neuropathic pain treatments are also discussed.

Neuropathic pain is a consequence of a lesion or disease affecting the somatosensory system. The &#8220;cuff model&#8221; of neuropathic pain in mice consists of the implantation of a polyethylene cuff around the main branch of the sciatic nerve. Mechanical allodynia is tested using von Frey filaments.

マウスにおける神経因性疼痛の坐骨神経細胞浸潤モデル

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in ...

医学

Measuring Changes in Tactile Sensitivity in the Hind Paw of Mice Using an Electronic von Frey Apparatus

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain perception in rodents. Withdrawal thresholds can be measured first at baseline and then following drug, venom, injury, allergen,&#160;or otherwise evoked inflammation by applying an accurate force on very specific areas of the skin. An electronic von Frey apparatus allows precise assessment of mouse hind paw withdrawal thresholds that are not limited by the available filament sizes in contrast to classical von Frey measurements. The ease and rapidity of measurements allow for incorporation of assessment of tactile sensitivity outcomes in diverse models of rapid-onset inflammatory and neuropathic pain as multiple measurements can be taken within a short time period. Experimental measurements for individual rodent subjects can be internally controlled against individual baseline responses and exclusion criteria easily established to standardize baseline responses within and across experimental groups. Thus, measurements using an electronic von Frey apparatus represent a useful modification of the well-established classical von Frey filament-based assays for rodent mechanical allodynia that may also be applied to other nonhuman mammalian models.

Electronic von Frey measurements are an effective and improved alternative to classical von Frey filaments, as they allow rapid and precise measurement of changes in rodent mechanical withdrawal thresholds to continuously applied pressure stimuli before and after an inflammatory event.

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain ...

Urokinase-type Plasminogen Activator-induced Mouse Back Pain Model

A model of persisting lower back pain can be induced in mice with the simple methodology described herein. Step-by-step methods for simple, rapid induction of a persisting back pain model in mice are provided here using an injection of urokinase-type plasminogen activator (urokinase), a serine protease present in humans and other animals. The methodology for induction of persisting lower back pain in mice involves a simple injection of urokinase along the ligamentous insertion region of the lumbar spine. The urokinase inflammatory agent activates plasminogen to plasmin. Typically, the model can be induced within 10 min and hypersensitivity persists for at least 8 weeks.
Hypersensitivity, gait disturbance, and other standard anxiety- and depression-like measures can be tested in the persisting model.&#160;Back pain is the most prevalent type of pain. To improve awareness of back pain, the International Association for the Study of Pain (IASP) named 2021 the &#34;Global Year about Back Pain&#34; and 2022 the &#34;Global Year for Translating Pain Knowledge to Practice.&#34; One limitation of the therapeutic advancement of pain therapeutics is the lack of suitable models for testing persistent and chronic pain. The&#160;features of this model&#160;are suitable for testing potential therapeutics aimed at the reduction of back pain and its ancillary characteristics, contributing to IASP&#39;s naming 2022 as the Global Year for Translating Pain Knowledge to Practice.

Methods for simple, rapid induction of a back pain model in mice are provided here using an intraligament injection of urinary plasminogen activator.

ウロキナーゼ型プラスミノーゲン活性化因子誘発マウス腰痛モデル

A model of persisting lower back pain can be induced in mice with the simple methodology described herein. Step-by-step methods for simple, rapid ...

The Monoiodoacetate Model of Osteoarthritis Pain in the Mouse

A major symptom of patients with osteoarthritis (OA) is pain that&#160;is triggered by peripheral as well as central changes within the pain pathways. The current treatments for OA pain such as NSAIDS or opiates are neither sufficiently effective nor devoid of detrimental side effects. Animal models of OA are being developed to improve our understanding of OA-related pain mechanisms and define novel pharmacological targets for therapy. Currently available models of OA in rodents include surgical and chemical interventions into one knee joint. The monoiodoacetate (MIA) model has become a standard for modelling joint disruption in OA in both rats and mice. The model, which is easier to perform in the rat, involves injection of MIA into a knee joint that induces rapid pain-like responses in the ipsilateral limb, the level of which can be controlled by injection of different doses. Intra-articular injection of MIA disrupts chondrocyte glycolysis by inhibiting glyceraldehyde-3-phosphatase dehydrogenase and results in chondrocyte death, neovascularization, subchondral bone necrosis and collapse, as well as inflammation. The morphological changes of the articular cartilage and bone disruption are reflective of some aspects of patient pathology. Along with joint damage, MIA injection induces referred mechanical sensitivity in the ipsilateral hind paw and weight bearing deficits that are measurable and quantifiable. These behavioral changes resemble some of the symptoms reported by the patient population, thereby validating the MIA injection in the knee as a useful and relevant pre-clinical model of OA pain.
The aim of this article is to describe the methodology of intra-articular injections of MIA and the behavioral recordings of the associated development of hypersensitivity with a mind to highlight the necessary steps to give consistent and reliable recordings.

Osteoarthritis (OA), or degenerative joint disease, is a debilitating condition associated with pain that remains only partially controlled by available analgesics. Animal models are being developed to improve our understanding of OA-related pain mechanisms. Here we describe the methodology for the monoiodoacetate model of OA pain in the mouse.

マウスにおける変形性関節症の痛みのMonoiodoacetateモデル

A major symptom of patients with osteoarthritis (OA) is pain that&#160;is triggered by peripheral as well as central changes within the pain pathways. The ...

Automated Gait Analysis in Mice with Chronic Constriction Injury

The von Frey test is a classical method that has been widely used to examine the sensory function of neuropathic pain animals. However, it has some disadvantages such as subjective data and the requirement of a skilled, experienced experimenter. To date, a variety of modifications have improved the von Frey method, but it still has a few limitations. Recent reports have suggested that gait analysis produces more accurate and objective data from the neuropathic animals. This protocol demonstrates how to perform the automated gait analysis to determine the degree of neuropathic pain in mice. After several days of acclimation, the mice were allowed to walk freely on the glass floor to illuminate footprints. Then, quantification of the footprints and gait were performed through video clips with automatic analysis of various walking parameters, such as area of paw print, swing time, angle of paw, etc.
The main purpose of this study is to describe the methodology of automated gait analysis and briefly compare it with data from the classical sensory test using von Frey filament.

The precise assessment of pain response in a neuropathic animal model is critical to investigate the pathophysiology of pain diseases and develop new analgesics. We present a sensitive and objective method to determine the sensory function of the rodent hind paw by an automated gait analysis system.

絞扼性損傷マウス自動歩行分析

The von Frey test is a classical method that has been widely used to examine the sensory function of neuropathic pain animals. However, it has some ...

Establishing a Mouse Model of a Pure Small Fiber Neuropathy with the Ultrapotent Agonist of Transient Receptor Potential Vanilloid Type 1

Patients with diabetes mellitus (DM) or those experiencing the neurotoxic effects of chemotherapeutic agents may develop sensation disorders due to degeneration and injury of small-diameter sensory neurons, referred to as small fiber neuropathy. Present animal models of small fiber neuropathy affect both large- and small-diameter sensory fibers and thus create a neuropathology too complex to properly assess the effects of injured small-diameter sensory fibers. Therefore, it is necessary to develop an experimental model of pure small fiber neuropathy to adequately examine these issues. This protocol describes an experimental model of small fiber neuropathy specifically affecting small-diameter sensory nerves with resiniferatoxin (RTX), an ultrapotent agonist of transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1), through a single dose of intraperitoneal injection, referred to as RTX neuropathy. This RTX neuropathy showed pathological manifestations and behavioral abnormalities that mimic the clinical characteristics of patients with small fiber neuropathy, including intraepidermal nerve fiber (IENF) degeneration, specifically injury in small-diameter neurons, and induction of thermal hypoalgesia and mechanical allodynia. This protocol tested three doses of RTX (200, 50, and 10 &#181;g/kg, respectively) and concluded that a critical dose of RTX (50 &#181;g/kg) is required for the development of typical small fiber neuropathy manifestations, and prepared a modified immunostaining procedure to investigate IENF degeneration and neuronal soma injury. The modified procedure is fast, systematic, and economic. Behavioral evaluation of neuropathic pain is critical to reveal the function of small-diameter sensory nerves. The evaluation of mechanical thresholds in experimental rodents is particularly challenging and this protocol describes a customized metal mesh that is suitable for this type of assessment in rodents. In summary, RTX neuropathy is a new and easily established experimental model to evaluate the molecular significance and intervention underlying neuropathic pain for the development of therapeutic agents.

This study establishes an experimental model of pure small fiber neuropathy with resiniferatoxin (RTX). A unique dose of RTX (50 &#181;g/kg) is optimal for developing a small fiber neuropathy model that mimics patient characteristics and could help investigate the nociceptive molecular significance underlying neuropathic pain.

一過性受容体電位バニロイド型 1 Ultrapotent アゴニストと純粋な小さな繊維の神経疾患のマウスモデルを確立します。

Patients with diabetes mellitus (DM) or those experiencing the neurotoxic effects of chemotherapeutic agents may develop sensation disorders due to ...

Development of Recombinant Proteins to Treat Chronic Pain

Chronic pain is difficult to treat and new approaches to resolve persistent pain are urgently needed. Anti-inflammatory cytokines are promising candidates for treating debilitating pain conditions due to their capacity to regulate aberrant neuro-immune interactions. However, physiologically they work in a network of various cytokines, and therefore their therapeutic effect may not be optimal when used as stand-alone drugs. To overcome this limitation, we developed a fusion protein of the anti-inflammatory cytokines IL4 and IL10. Here, we describe the methods for production and quality control of IL4-10 recombinant fusion protein and we test the effectiveness of the IL4-10 fusion protein to resolve pain in a mouse model of persistent inflammatory pain.

In this paper we provide details for the methods of production and quality control of an IL4-10 recombinant fusion protein. We also show how to test the effectiveness of this protein to resolve pain in a mouse model of inflammatory pain.

慢性的な痛みの治療に遺伝子組換えタンパク質の開発

Chronic pain is difficult to treat and new approaches to resolve persistent pain are urgently needed. Anti-inflammatory cytokines are promising candidates ...

Mechanical Conflict-Avoidance Assay to Measure Pain Behavior in Mice

Pain comprises of both sensory (nociceptive) and affective (unpleasant) dimensions. In preclinical models, pain has traditionally been assessed using reflexive tests that allow inferences regarding pain's nociceptive component but provide little information about the affective or motivational component of pain. Developing tests that capture these components of pain are therefore translationally important. Hence, researchers need to use non-reflexive behavioral assays to study pain perception at that level. Mechanical conflict-avoidance (MCA) is an established voluntary non-reflexive behavior assay, for studying motivational responses to a noxious mechanical stimulus in a 3 chamber paradigm. A change in a mouse's location preference, when faced with competing noxious stimuli, is used to infer the perceived unpleasantness of bright light versus tactile stimulation of the paws. This protocol outlines a modified version of the MCA assay which pain researchers can use to understand affective-motivational responses in a variety of mouse pain models. Though not specifically described here, our example MCA data use the intraplantar complete Freund's adjuvant (CFA), spared nerve injury (SNI), and a fracture/casting model as pain models to illustrate the MCA procedure.

The mechanical conflict-avoidance assay is used as a non-reflexive readout of pain sensitivity in mice which can be used to better understand affective-motivational responses in a variety of mouse pain models.

マウスの疼痛行動を測定するための機械的衝突回避アッセイ

Pain comprises of both sensory (nociceptive) and affective (unpleasant) dimensions. In preclinical models, pain has traditionally been assessed using ...