この作品は、イタリアの Ricerca グラーヴェ セントロ Cardiologico Monzino IRCCS に保健省によって賄われていた。

このアプローチは、ヘルシンキ宣言に準拠しているし、右室サンプルのコレクションだった「セントロ Cardiologico Monzino IRCCS」倫理委員会承認 (2012/07/06).
1. ソリューション
<ol><li>C MSC 文化の媒体と Iscove の変更ダルベッコ媒体 (IMDM)、20% を添加した胎仔ウシ血清 (FBS)、10 ng/mL 塩基性繊維芽細胞成長因子、10,000 U/mL ペニシリン、10,000 μ g/mL ストレプトマイシン、0.02 M L-グルタミン。0.22 μ m の滅菌フィルター ユニットを使用してこのメディアをフィルター処理し、4 ° C で保存</li>
	<li>コラゲナーゼの解決を準備するには、3 mg/mL の濃度で最終的な解を得るための IMDM 媒質中のコラゲナーゼ NB4 ミックスを再懸濁します。優しく、粉溶解して 0.2 μ m のシリンジ フィルターを用いたコラゲナーゼの解決をフィルターする渦。分注 1 mL 量 2 mL 滅菌チューブに-20 ° c まで使用するために必要なストア。</li>
	<li>10 %fbs、0.5 mM 3-イソブチル-1-メチルキサンチン (事前 0.5 M の濃度でジメチルスルホキシド (DMSO) で希釈し、使用するまで-20 ° C で保管)、1 μ M ヒドロコルチゾン (前希釈で補われる t. 裏打ちメディアの準備、IMDM 中脂肪分化培地を作る100 mM とさらに 10 mm の滅菌希釈で DMSO で蒸留水し、使用するまで-20 ° C で保管) と 0.1 mM インドメタシン (済み DMSO 0.5 M の濃度で希釈品し、使用するまで-20 ° C で保存)。0.22 μ m の滅菌フィルター ユニットを使用して t. 裏打ち媒体をフィルター処理し、4 ° C で保存</li>
	<li>リン酸緩衝生理食塩水 0.0067 M PO4 (PBS)、エチレンジアミン四酢酸 (EDTA) から成る洗浄バッファーを準備 5 mM と 5% ウシ血清アルブミンおよび 4 ° C でのストア</li>
	<li>60% イソプロパノールで 1% のオロの粉末を溶解、2 h の混合、0.22 μ m のフィルター ユニットを使用して沈殿物を削除するフィルタ リング オイル赤い O (オロ) 実用的なソリューションを準備します。保管常温 (RT) 作業ソリューションです。</li>
</ol>2. 間葉系間質細胞の分離
<ol><li>
心筋生検の収集と処理 注:前に、コラゲナーゼの解決と準備ができてこの媒体を持っているを確認します。<ol>
<li>ACM 心内膜心筋生検を置く (通常約 5 mg の組織) 生殖不能の管に手ごろでいっぱいし、研究室にそれを輸送。 注:ACM の生検は、以前のレポート10によると電気生理学手術室で収集されます。簡単に言えば、電気解剖学的マッピングと右心室の心腔内エコーの統合を使用して心内膜心筋生検 (ビデオ 1参照) (ビデオ 2、参照透視) の国境地帯への対応で、病的心筋。健康な制御 (HC) サンプルは、死体ドナー死亡 (事故死、健常者) の 24 時間以内の右室自由壁から得られる組織バイオ-銀行、によって提供されます。輸送中および郭清の前に、4 ° C で手ごろで生検を格納します。生検コレクションとティッシュの処理 (最大 24 時間) の間の時間を制限します。</li>
		<li>酵素消化までの手順を実行する必要なソリューションとキャビネット生物学的安全性を設定します。</li>
		<li>フードの下で殺菌剤を入れて、楽器使用前に 15 分に回して温度上昇 200-250 ° c.</li>
		<li>消毒はさみとピンセット 10 s. 作る確か滅菌器具は使用前に冷たい。使い捨て滅菌メスを準備します。</li>
		<li>無菌フードに生検でチューブを配置します。管を開き、滅菌プレートに生検を転送します。</li>
		<li>3 mL の滅菌 PBS で 2 回右心室生検を洗います。顕微鏡で生検の写真を撮る場合。</li>
		<li>生検の結果, 右心室のコラゲナーゼ溶液 1 mL を含む滅菌 2 mL チューブに滅菌ピンセットを使用して転送します。</li>
		<li>滅菌ハサミで 0.5 - 1 mm の3個セットにサンプルをカットします。</li>
		<li>連続回転攪拌下の 37 ° C で 1.5 時間孵化させなさい。</li>
		<li>消化液室温 10 分 400 × g で遠心分離します。</li>
		<li>上澄みを除去し、ペレットを洗浄する滅菌 PBS の 1 mL を追加します。</li>
		<li>室温 10 分 400 × g で遠心します。</li>
		<li>上澄みを除去し、この中の 1 mL にペレットを再懸濁します。</li>
		<li>処理滅菌 60 mm 組織培養プレート上に得られた懸濁液をプレート、この媒体を 3 mL の最終的なボリュームに追加します。プレート 5% CO2と 37 ° C で細胞文化のインキュベーターで孵化させなさい。 注:媒体の高いボリュームは、生検消化断片の正しい接着を防ぐことができます。</li>
		<li>24 h 後非付着性のセルおよび残骸を削除する媒体を破棄します。 注:単一の解離の間葉系細胞ことができるプラスチック面にアタッチしてクローン; を生じまた、未消化の小さな生検フラグメントは、プラスチックの皿にアタッチし、セル萌芽を許可できます。</li>
		<li>滅菌 PBS の 5 mL で 2 回洗浄して新鮮なこの媒体の 3 mL を加えます。</li>
		<li>セルが 80% 合流まで週に何回この中 3 つを交換してください。 注:接続されているセルの数は品質、組織の量と消化の効率に依存します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 細胞伸長
注:開始する前に、この媒体の準備を持っていることを確認します。
<ol><li>セルが 80% 合流、転送新しい滅菌 60 mm 組織培養に消化された小さな生検サンプル プレートを扱われ、新鮮なこの媒体の 3 mL を加えます。 注:生検サンプルはさらに C MSC 分離再利用することができます。単離細胞のかなりの数になるまでこの手順を繰り返すことが可能です。</li>
	<li>3 mL の滅菌 PBS で 2 回添付セルを洗浄してください。トリプシン EDTA 溶液 (60 mm ディッシュ用 0.5 mL) を加え、細胞の剥離を許可する 3-5 分の 37 ° C で孵化させなさい。</li>
	<li>プレートの表面から細胞を取り外したら、トリプシンを不活化し、新しい 50 mL 滅菌チューブに細胞を収集する滅菌 FBS の 0.5 mL を追加します。</li>
	<li>同じチューブに残りのセルを追加する滅菌 PBS の 5 mL で 2 回洗浄します。</li>
	<li>室温 10 分 400 x g で細胞を遠心分離します。</li>
	<li>上澄みを除去し、この中の 1 mL にペレットを再懸濁します。</li>
	<li>商工会議所を数えるセルの細胞懸濁液の 10 μ L をロードします。 注:セルは、あまりにも集中している場合、初期懸濁液 1:10 PBS で希釈し、カウント部屋のセルに希薄化後の細胞の 10 μ L を読み込みます。</li>
	<li>顕微鏡で 3 大きな正方形とその両側の 2 つの行のセルをカウントし、平均細胞数を計算します。 注:セル/mL の数を得るためには、カウントが設定されたセルの平均値に 10 を掛ける4、カウント部屋セルの希釈係数。セルがさらに希釈されている場合は、希釈倍率の乗算します。シードする細胞数と細胞濃度 (セル/mL の数) 間の比率は、次のステップ (3.9 ポイント) にメッキする初期懸濁液量 (mL) でに対応します。</li>
	<li>5,000-10,000 のセル/cm2の最終的な集中で扱われる滅菌 100 mm 組織培養プレートに巻き上がりをプレート、この媒体を 8 mL の最終巻に追加します。細胞文化のインキュベーターでプレートを孵化させなさい。 注:セルが 70-80% の合流は、セル拡張手順を繰り返します。すべての通路 (P) では、セルとプレート残りの金額の一部を凍結保存することをお勧めします。P3 や P4 までセルを展開し、蛍光活性化細胞選別機 (FACS) 解析 (セクション 4)、脂肪細胞分化 (セクション 5) を使用します。</li>
	<li>剥離後凍結、室温 10 分 400 x g で細胞を遠心分離します。</li>
	<li>としてセルを数える (ステップ 3.7 3.8) と 900 μ L 滅菌 FBS の 1 x 106細胞を再懸濁します。無菌低温バイアルに転送し、100 μ L の滅菌の DMSO とミックスを追加します。</li>
	<li>すぐに、少なくとも 2 日間-80 ° c の凍結容器にクライオ バイアルを格納し、液体窒素にバイアルを転送します。</li>
</ol>4. フローサイトメトリーを用いた間葉系間質細胞のキャラクタリゼーション
注:始める前に、細胞解離試薬、洗浄バッファー、および準備特定の抗体を持っていることを確認します。
<ol><li>細胞の数に達すると、少なくとも 3 x 106 (3.7 3.8 で説明したセルとしてカウント) は 10 mL の滅菌 PBS で 2 回 100 mm プレートを洗います。</li>
	<li>細胞解離試薬の 5 mL を追加し、細胞の剥離を許可する RT で 7 ~ 10 分を待ちます。</li>
	<li>プレートの表面から細胞を取り外したら、15 mL の滅菌洗浄バッファーを追加し、新しい 50 mL 滅菌チューブに懸濁液を収集します。</li>
	<li>洗浄液 10 mL で 2 回洗浄し、残りのセルを同じ管に追加します。</li>
	<li>RT で 10 分の 400 x g で細胞を遠心し、洗浄液の 1 mL にペレットを再懸濁します。</li>
	<li>説明されている (手順 3.7 3.8)、としてセルをカウントし、新しい生殖不能の管に 3 x 10 の6セルを転送 1.5 mL の最終巻に洗浄バッファーを追加します。 注:総細胞数と洗浄バッファーの容量解析 (3 x 105セル各 FACS ポリスチレン管用 100 μ L) に使用される選択したマーカーの数に依存します。</li>
	<li>配布 12 異なる FACS ポリスチレン管、細胞懸濁液を 100 μ l 添加し製品データシートに示された濃度で特定の抗体を追加します。 注:C MSC 特性評価用抗体、CD34、CD105、CD45、(cd29)、CD90、CD44、CD31、CD14、および HLA-DR (表 1)。再懸濁細胞シグナルの特異性をチェックするアイソタイプ コントロールで染色の 100 μ L から成るコントロールのサンプルを準備することが重要です。</li>
	<li>暗闇の中で 15 分間サンプルをインキュベートします。</li>
	<li>反応を停止する各管に 1 mL の滅菌洗浄バッファーを追加します。</li>
	<li>室温 10 分 400 x g で細胞を遠心分離します。</li>
	<li>上澄みを除去し、洗浄バッファーの 250 μ L でペレットを再懸濁します。</li>
	<li>フローサイトメトリーによる C MSC 特性に進みます。</li>
</ol>5. 心臓間葉系間質細胞が分化
注:始める前に、t. 裏打ち媒体とオロ実用的なソリューションを用意してください。
<ol><li>
T. 同定培地で培養
	<ol>
<li>デタッチし、セクション 3 で説明したセルをカウントします。</li>
		<li>プレート 3 × 105セル 6 ウェル組織培養の各ウェルには、T. 裏打ち培地 2 mL にプレートを扱われます。</li>
		<li>C MSC t. 裏打ち中 72 時間または 1 週間変更中 2 〜 3 日ごとに区別ができます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
オイル赤 O 染色 注:使用オイル赤い O (オロ) C MSC の脂質蓄積をテストする染色します。<ol>
<li>6 ウェル培養 plateunder ヒューム フードを配置します。</li>
		<li>脂肪細胞の培地を取り除き、2 mL の PBS で 2 回細胞を洗浄します。</li>
		<li>4% のパラホルムアルデヒド (PFA) それぞれをカバーするための十分なボリュームを追加も。室温 5 分のセルを修復します。</li>
		<li>PFA を破棄し、2 mL の PBS で 2 回細胞を洗浄します。</li>
		<li>RT、それぞれをカバーする十分なボリュームを使用して、1 時間オロ実用的なソリューションと固定セルを孵化も。 注:オロ オロ作業溶液の蒸発を避けるために潜伏中にヒューム フードの下で 6 も組織培養プレートを保持しません。</li>
		<li>すべてオロ実用的なソリューションを取除き、洗浄 2 ml の PBS 3 - 5 回までプレートが完全にクリーンアップ。洗浄を破棄します。使用される PBS が明らかなときと非特異的細胞から染色顕微鏡の下で、表示されない場合は、洗浄を停止します。</li>
		<li>培養倒立位相差顕微鏡を使用して各ウェルの 20 倍の倍率で 20 枚の画像をキャプチャします。</li>
		<li>セル オロ蓄積を定量化するための画像処理プログラムで写真を開きます。</li>
		<li>255 赤チャネルの輝度のみを定量化するために「チャンネルを分割」機能で別の色チャンネルを分離します。</li>
		<li>核を数えることによって各画像のセルの数をカウントします。セル数にオロ信号強度を標準化します。</li>
		<li>同じサンプルの各画像の結果の平均を計算します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Brooke, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Therapeutic+applications+of+mesenchymal+stromal+cells.">Therapeutic applications of mesenchymal stromal cells.</a> Semin Cell Dev Biol. 18 (6), 846-858 (2007).</li><li>Rossini, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+cardiac+and+bone+marrow+stromal+cells+exhibit+distinctive+properties+related+to+their+origin.">Human cardiac and bone marrow stromal cells exhibit distinctive properties related to their origin.</a> Cardiovasc Res. 89 (3), 650-660 (2010).</li><li>Dominici, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Minimal+criteria+for+defining+multipotent+mesenchymal+stromal+cells.+The+International+Society+for+Cellular+Therapy+position+statement.">Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. 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著者が明らかに何もありません。

MSC と C MSC:MSC は、多能性細胞骨髄、脂肪、軟骨、脳、皮膚、胎児附属心12など、さまざまなアダルト組織の間質の一部に居住。分離し、基礎やトランスレーショナル研究12,13の潜在的なアプリケーションのためにそれらを特徴付けるさまざまな研究を行った。
MSC は健康な状態に静止、低金利14自己更新。以来、彼らは環境の病理学的変化にさらされている、彼らは育成組織は、直接分化転換、マトリックス析出パラクライン効果14のいずれかを介しての改造反応します。
心臓 MSC (C MSC) は、大規模な非心筋細胞集団の心4を表します。心外膜から発信し、上皮間葉移行15のプロセスを受けている心筋に移行します。彼らは、心臓の構造、生理学的と病理学的状態は、心筋細胞と細胞外マトリックスの恒常性7,16との相互作用での機械的および電気的整合性に貢献します。ただし、C-MSC の広い範囲機能はまだ完全には分かっていません。生理学的および病理学的条件の両方が生体外での研究によって促進することの役割のより深い知識は、彼らの分離の後実行されます。
C MSC は心耳2,17右心室18など、人間の心の別の地区から得られています。
最近では、C-MSC 人間右室心内膜心筋生検標本から得られている8、ソース組織 3-5 mg として、小さなことを示します。
可能なアプリケーション:本稿で説明する方法は、非常に小さなハートの標本から消化とプラスチックの遵守のための選択など、いくつかの簡単な文章とセルを取得ことができます。
増幅し、生体外で、メンテナンスが容易、間葉系の系統 (血管内皮細胞、骨細胞、脂肪細胞) の細胞に分化することができるので、C MSC 細胞モデルを検討できます。また、患者から直接細胞を得る可能性はパーソナライズ/精密医学のコンテキストで解明のための偉大な体外ツールを構成します。確かに、これらの細胞は遺伝的背景と、ドナーの最終的に特定の突然変異を運ぶし、臨床症状、年齢、性別、ライフ スタイル、薬などの特定の患者の特性によって影響を受けます。また、別のマーカーにそれらを並べ替えの可能性特定 C MSC サブセット19の研究ができます。
C MSC がほとんど心の不利な改造によって特徴付けられる別の心血管疾患で現役選手として知られています。したがって、心疾患8,20に対抗する新しい治療戦略のための候補者目標を表すものです。
C MSC 幹のような性質と重要な免疫原性の欠如は、心臓再生医療の細胞療法の潜在的な応用を示唆しています。確かに、MSC 骨髄や他の情報源のような C-MSC される可能性があります潜在的自己とドナーと受信者21とのマッチングを必要とせず、同種の設定で。
また、C-MSC、直接心臓組織から分離されている心臓微小環境とエピジェネティックなプロファイルで前処理されているという利点があります。心臓再生医療の中では、これは特に成功した結果を取得することが重要かもしれない。
日には、再生医療の臨床研究は、C MSC とその傍分泌活動18,22,23で有用な治療の可能性を識別されます。重要なは、セルのソースで心の臨床試験が進行中 cardiosfere 由来細胞もしくは C MSC13,24,25の集団。しかし、骨骨髄由来 MSC はさまざまなプロトコルは、臨床グレード C MSC26を取得する必要あります。
ACM で C MSC:提案するプロトコルは、心内膜生検は示されている病態の研究に適しています主です。ACM の患者は診断目的27生検手術します。その心筋は、徐々 に脂肪細胞と線維化から成る電気的不活性組織瘢痕組織に置き換えられます。診断の収量が最大、瘢痕領域に生検のサンプリングを導くために心筋マッピングは使用10,28,29です。このプロトコルで使用されるサンプルは、病的心筋の国境地帯で撮影されます。
ソンマリーヴァら最近 ACM8、それら心の脂肪前駆細胞は間葉系由来の C MSC が ACM 心臓脂肪細胞形成の現役選手である証明の病因に C MSC の極めて重要な役割を定義しました。また、C MSC は、コントロールよりも脂質蓄積と脂肪細胞形成により傾向を認め, ACM 患者の生検から議定書で分離されました。このため、これらの細胞が分子機構解明9細胞モデルの適合性を証明する、ACM のいくつかを確認するためにされる可能性があります。
制限と重要なステップ:(「用途」段落を参照) の患者から直接 C MSC を得る利点にもかかわらずこのプロトコルは、別制限を受けます。
まず、心筋生検の手順は侵襲的なしばしば厳密に必要ではない場合は回避します。確かに、心臓組織をサンプリング、倫理的、技術的に問題があります。心筋生検を行う理由鑑別診断、心臓移植の状態の監視や心臓腫瘍30の存在を確かめるに心筋症の確定診断の実績があります。したがって、C MSC 研究心内膜心筋生検がコンセンサス ステートメント31で示されます患者のみを登録できます。さらに、心筋生検の手順は心筋症心の中で上記のすべての合併症を持つことができます。したがって、electrophysiologist のサンプリングは常に慎重、生検サンプルは非常に小さく、細胞の分離を損なう可能性があります。今後の実験計画は、コラゲナーゼの濃度を調整する消化のタイミングによってこの問題を克服できます。
C-MSC、すべてひと初代細胞として、すべての表現型で異なる科目間で高い可変性を示します。確かに、別の科目からの細胞は、遺伝的に異なるのみならず、また受ける変数環境をご利用いただけます。具体的には、この実験では、内細胞の分離、成長、および脂肪細胞の分化の高い可変性が観察されます。
この議定書の重要なステップは了承する必要があります。生検標本には、毛細血管が含まれている場合、は、血管内皮細胞、C MSC 文化を汚染する可能性があります、FACS 解析 (CD31 陽性) によって証明することができますの並列の分離を避けるために削除する必要があります。効率的な分化を得るためには、細胞は活発な成長期である必要があります。合流の度も脂質蓄積に影響を与える可能性があります。
法の意義:間葉系間質細胞の分離の前の方法に関して、これは初めてひと心室の生検試料から直接 C MSC 取得の説明の詳細提案です。ACM 患者サンプルの処理にこのメソッドお勧め、心筋生検が示されているすべての患者に適用できる可能性です。
このプロトコルは、収集することは困難が多い大きな心臓サンプル32に必要な細胞の入手する以前の方法の有用な実装を表します。
また、サンプル ソースは、興味深い技術革新を構成します。生検を心室中隔33行われます、このプロトコル右室自由壁からアカウント試料にかかります。病気にかかった右心室地区から派生したセルより右心室を含む疾患の病理学的状態の代表があります。
さらに、議定書で使用される試薬のいくつかが他 C MSC 分離と分化の方法32に関して異なります。たとえば、本稿で提案するコラゲナーゼの種類のミックス クラス I およびクラス II コラーゲン蛋白分解活性のバランスのとれた比率を持つ。また、消化ソリューションは、将来の成長条件に適応する分離 C MSC をできるように C MSC 培地の調製に使用同じ基本培地 (IMDM) に溶解したコラゲナーゼ ミックスで構成されます。
さらに、C MSC 母集団全体を使用して細胞のバッチを標準化できるプロシージャを並べ替え、これらの細胞のプラスチック付着プロパティを介してのみ分離、肺浸潤を変更することがなく簡素化を構成します。C MSC の特性。本稿で提案する t. 裏打ちの組成は、脂肪細胞分化、インスリンなど他のコンポーネントによる代謝不全の回避につながることです。
また、割合のみに基づく方法と比較するとオロ比色強度の評価に基づく脂質蓄積定量化の手法は蓄積された脂質の量の詳細についてを提供しますオロの汚損に肯定的な細胞。ORO を抽出することにより多くの場合脂質蓄積を定量化によりイソプロパノールとその吸光度を測定します。ただし、このメソッドは、複数の通路が必要です、イソプロパノール蒸発による変動を受けます。

間葉系間質細胞 (MSC) は、多くの組織1で重要な支援機能を持つ大人のセルです。骨髄は、MSC の歴史的源を表しますが、彼らは胎盤、脂肪組織、臍帯血、肝臓、心臓1,2などさまざまな組織から分離することができます。
2006 年に国際学会細胞療法 (ISCT) の指定、初めて、人間 MSC3を定義する最低限の条件。特に、MSC プラスチックに付着する能力が必要です。彼らは特定の表面抗原を表現: 陽性 CD14、CD45、CD34 陰性 CD44、CD105、CD90 (cd29)、間葉系のマーカーは、CD31 造血と内皮マーカーが MSC を特徴付けます。HLA-DR の欠如表現、ためは、MSC が alloreactivity をトリガーすることができます。脂肪細胞、軟骨細胞、骨芽細胞の血統1,3の方向へ分化する可能性を持つ多能性細胞である。
心臓の細胞の構成に焦点を当て、心臓間葉系間質細胞 (C MSC) が正常な大人の心4,5で豊富です。彼らは正常な心臓機能と病態の両方重要な役割を果たします。しばらくの間、生理学的、C MSC は心筋の構造と機能の整合性をサポートする微小環境を提供、心疾患における心損傷創傷治癒と線維化改造6 に参加するのに応答をアクティブにします。 ,7。
最近、催不整脈性心筋症 (ACM) 脂肪置換の C MSC の関与は、示された8をされています。特に、ACM は主に右心室9を中心に、心筋の線維脂肪置換につながるデスモソーム遺伝子の突然変異によって引き起こされる遺伝的疾患です。この置換は、心外膜から心内膜に及ぶは、進行性の心不全を誘発し、重度の場合、突然の死につながることができる、心室性不整脈を悪化させる非導べ電性基板を作成します。ソンマリーヴァら前脂肪細胞の間葉系の起源を示す ACM 患者 explanted 中心セクションに存在します。また、C MSC ACM 心エクスプレス デスモソーム遺伝子の心内膜心筋生検から分離した、したがって彼らの突然変異によって影響を受けることができます。特に、脂肪分化条件下で ACM C MSC は制御心からのそれらよりより多くの脂質を蓄積します。この証拠は、病気の発症の積極的な役割があるし、ACM を研究に有効な細胞モデルを表すの両方、C MSC の結論に します。
このコンテキストまたは心筋生検は示されているその他の心疾患の研究を進めるため、詳細なプロトコルを心筋組織の拡大、その免疫-表現型の小さな断片から C MSC の分離の提示します。特性、および脂肪細胞分化。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:804px;" width="804">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">IMDM</td>
			<td style="width:195px;">Gibco by Life Technologies&#160;</td>
			<td style="width:141px;">12440053</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">F2442</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">PENICILLIN STREPTOMYCIN</td>
			<td style="width:195px;">Life Technologies Italia</td>
			<td style="width:141px;">15140122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Collagenase NB4</td>
			<td style="width:195px;">Serva</td>
			<td style="width:141px;">17454.02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Basic fibroblast growth factor</td>
			<td style="width:195px;">Peprotech</td>
			<td style="width:141px;">100-18B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">L-glutammine</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">G7513</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">PBS</td>
			<td style="width:195px;">Lonza</td>
			<td style="width:141px;">17-516F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Tryple select 1X (cell dissociation reagent)</td>
			<td style="width:195px;">Gibco</td>
			<td style="width:141px;">12563029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">EDTA</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">EDS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Trypsin-EDTA solution&#160;</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">T6689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Bovine Serum Albumin</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">A2058</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">3-Isobutyl-1-methylxanthine</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">I5879</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Hydrocortisone</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">H4001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Indomethacin</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">I7378</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Oil Red O</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">O0625</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Isopropanol</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">I9516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Paraformaldehyde (PFA) Solution 4% in PBS</td>
			<td style="width:195px;">D.b.a. Italia S.r.l.</td>
			<td style="width:141px;">sc-281692</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Dimethyl Sulfoxide (DMSO)</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">276855</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody CD14-FITC (M&#966;P9)</td>
			<td style="width:195px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:141px;">345784</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody Integrin &#946;1 (CD29)-PE (clone MAR4)</td>
			<td style="width:195px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:141px;">561795</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody PECAM-1 (CD31)- APC&#160; (clone 9G11)</td>
			<td style="width:195px;">R&#38;D Systems</td>
			<td style="width:141px;">FAB3567A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:404px;">Antibody Hematopoietic progenitor cell antigen (CD34)-APC (clone 581)</td>
			<td style="width:195px;">Thermo Fisher Scientific&#160;</td>
			<td style="width:141px;">CD34-581-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody H-CAM (CD44)-PE&#160; (clone G44-26)</td>
			<td style="width:195px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:141px;">561858</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody L-CA (CD45)-APC (clone HI30)</td>
			<td style="width:195px;">Thermo Fisher Scientific</td>
			<td style="width:141px;">MHCD4505-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody THY1 (CD90)-FITC (clone 5E10)</td>
			<td style="width:195px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:141px;">561969</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody Endoglin (CD105)-APC (clone 266)</td>
			<td style="width:195px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:141px;">562408</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:404px;">Antibody HLA-DR-FITC (clone L243)</td>
			<td style="width:195px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:141px;"> 
			347400</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Gima Quick Plus sterilizer</td>
			<td style="width:195px;">Gima&#160;</td>
			<td style="width:141px;">35642</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Bench centrifuge Sigma 3-16K</td>
			<td style="width:195px;">Sigma Centrifuges</td>
			<td style="width:141px;">10330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Mr. Frosty Freezing Container</td>
			<td style="width:195px;">Thermo Fisher Scientific&#160;</td>
			<td style="width:141px;">5100-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">AxioVert 200M microscope&#160;</td>
			<td style="width:195px;">Zeiss</td>
			<td style="width:141px;">B 40-080 e 03/01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">FACS Gallios</td>
			<td style="width:195px;">Beckman Coulter&#160;</td>
			<td style="width:141px;">773231AF</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">ImageJ (image processing program)</td>
			<td style="width:195px;">NIH</td>
			<td style="width:141px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Stericup filter units</td>
			<td style="width:195px;">Merck S.P.A.&#160;</td>
			<td style="width:141px;">SCGPU05RE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Conical Tubes, 50 mL</td>
			<td style="width:195px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:141px;">30122178</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Conical Tubes, 15 mL</td>
			<td style="width:195px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:141px;">30122151</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Safe-Lock Tubes, 2 mL</td>
			<td style="width:195px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:141px;">30120094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">100 mm TC-Treated Cell Culture Dish</td>
			<td style="width:195px;">Corning</td>
			<td style="width:141px;">430167</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">60 mm TC-Treated Cell Culture Dish</td>
			<td style="width:195px;">Corning</td>
			<td style="width:141px;">430166</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">6 well TC-Treated Multiple Well Plates</td>
			<td style="width:195px;">Corning</td>
			<td style="width:141px;">3516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">Polystyrene Round-Bottom Tubes, 5 mL</td>
			<td style="width:195px;">BD Falcon</td>
			<td style="width:141px;">352058</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:404px;">BRAND&#160;counting chamber BLAUBRAND B&#252;rker-T&#252;rk</td>
			<td style="width:195px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">BR719520</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation and characterization of cardiac mesenchymal stromal cells from endomyocardial bioptic samples of arrhythmogenic cardiomyopathy patients

正常な成人の心臓は、その中で心臓間葉系間質細胞は豊富な人口を表すいくつかの異なったセルタイプで構成されます。これらの細胞の分離勉強心疾患における関与の可能性を提供し、加えて、生物学的メカニズムを調査するための有用な一次電池モデルを提供します。
ここでは、C MSC の催不整脈性心筋症患者の生検試料からの分離の手法を説明しています。心内膜心筋生検、電気解剖学的マッピングで可視化した跡に隣接する右室エリアに導かれます。コラゲナーゼと C MSC 成長できるように培地のプラスチックの皿上のめっきで生検の消化が説明されています。隔離されたセルは、いくつかの通路の文化で拡張できます。その間葉系の表現型を確認、免疫表現型特性の説明が提供されます。C MSC は骨芽細胞、軟骨細胞、脂肪細胞のようないくつかの種類の細胞に分化することができる: ACM のコンテキスト、患者の心の中で脂肪の預金、C MSC の脂肪細胞分化のためのプロトコルによって特徴付けられると脂質液滴集積の特性を説明します。

心筋間質細胞の分離:心内膜心筋生検の手順から C MSC 分離は、図 1のとおりです。
心筋間質細胞間葉系評価:細胞療法 (ISCT) の国際協会によって設立され、その免疫表現型特性3間葉系間質細胞の多能性を定義するための最低限の条件が含まれます。特に、間葉系血統を確認するセルに適切な FITC/PE/APC 結合抗体培養し、フローサイトメトリーで分析しました。C MSC 特性評価に使用される抗体のすべては材料表に表示されます。
図 2に示すように、生検から得られた C MSC は CD105、CD44、(cd29) 特定間葉系表面抗原に陽性。CD90 陽性細胞の割合は、11を既に報告されている変数です。内皮細胞 (CD31、CD34)、単球/マクロファージ (CD14)、造血 (CD45) マーカーと主要組織適合複合体 (HLA) はありません (図 2) を表明しました。
心間葉系間質細胞が分化:T. 同定培地で培養すること持っている ACM と HC によって被害を受けた患者から得られた C MSC の脂肪細胞の分化を確認する (ソリューションのセクションを参照)。セルは交換媒体週 2 回 72 時間または 1 週間の文化で維持されます。
細胞内の脂肪滴の蓄積はオロ (図 3) を染色によって立証されます。ACM と HC から得られる細胞の分化の程度だけでなく、能力の違いが観察できます。代表的なイメージのように、ACM C MSC は脂肪分化培地 (図 3) で文化の 72 時間後より脂質小滴よりも HC C-MSC を蓄積します。これらの違いは、細胞は、長期間 (1 週間) (図 3) 脂肪細胞分化の条件にさらされているときも維持されます。
<img alt="Video 1" src="/files/ftp_upload/57263/57263video1.jpg"> ビデオ 1:Electroanatomical 地図と心腔内エコーの統合。心内膜心筋生検 (下のパネル) を受ける患者に右心室 (左前方斜めと右前方斜めのビュー) のマップは心内膜のユニポーラ electroanatomical。低電圧 (赤/緑) の一部エリアが頂点で表示されます。心内膜心筋生検サンプル (サークルとしてタグ付き) は、病的心筋および心室中隔に対応で収集されます。リアルタイムの心腔内エコーは、対象地域 (上部パネル) で bioptome の正しい位置を確認できます。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57263/Video_1.avi" target="_blank">してくださいここをクリックしてこのビデオを表示します。(右クリックしてダウンロード)</a>
<img alt="Video 2" src="/files/ftp_upload/57263/57263video2.jpg"> ビデオ 2: 右前斜位像で透視動画。Bioptome は長い偏向シースから挿入し、心室に進出。心筋と bioptome の接触の注意チェック後顎が開かれ、サンプルを収集するためにしっかりと閉じます。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57263/Video_2.avi" target="_blank">してくださいここをクリックしてこのビデオを表示します。(右クリックしてダウンロード)</a>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57263/57263fig1.jpg"> 図 1:手順ドラフトします。心内膜心筋生検標本は bioptome カテーテル、小さなピンセット形切断器を使用して収集されます。得られた生検の重量は、約 5 mg (A) です。心内膜心筋生検標本は滅菌ハサミ (B)、0.5 - 1 mm3断片にみじん切り、コラゲナーゼの解決が追加されます。サンプルは 1.5 時間消化 (C) の回転プラットフォーム ミキサーの 37 ° C の定温器に配置されます。消化ソリューションは遠心分離し、プラスチックの皿 (D) で手ごろにメッキします。C MSC は単一細胞やクローン、または小さな未消化生検断片 (E) から発芽のプラスチック付着特性のおかげで得られます。C MSC は、フローサイトメトリー (F) によって特徴付けられます。C MSC の脂肪分化培地でメッキパーツ、脂質液滴集積がオイル赤 O 染色 (G) によるテストです。スケール バーを示す 50 μ m<a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57263/57263fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57263/57263fig2.jpg"> 図 2: C MSC の代表的な細胞蛍光プロファイル。各ヒストグラム示されたチャネルでの蛍光強度と細胞数を示しています (PE: フィコエ リスリン;APC: アロフィコシアニン;FITC: フルオレセイン-isothyocyanate)。特定のセルと共役アイソタイプ コントロール (白) とサンプル各グラフの表面マーカー抗体 (赤) が表示されます。CD31、CD34、CD14、CD45、HLA 博士表現しないに対し、C MSC は、間葉系細胞表面抗原 (cd29)、CD44、CD105 と、部分的に、CD90、肯定的な<a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57263/57263fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57263/57263fig3.jpg"> 図 3: C MSC の脂肪細胞分化。ACM と HC C-MSC 72 時間、1 週間の脂肪分化培地中で培養の代表的なイメージに染まったオロ (左画像; n = 3)。右グラフで染色 255 赤チャネルの輝度の定量化は報告する: 強度、任意の単位 (A.U.) で表されます。ACM C MSC は、コントロールよりも多くの脂肪滴を蓄積されます。スチューデントの T 検定を用いて、*: p < 0.05。スケール バーを示す 50 μ m<a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57263/57263fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

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Isolation and Characterization of Cardiac Mesenchymal Stromal Cells from Endomyocardial Bioptic Samples of Arrhythmogenic Cardiomyopathy Patients

催不整脈性心筋症患者の心内膜心筋生検サンプルから心臓の間葉系間質細胞の分離と性状

この記事では、催不整脈性心筋症患者の心内膜心筋生検サンプルから心臓の間葉系間質細胞を分離するメソッドが提供されます。その特性とその脂肪細胞分化を促進するためのプロトコルを説明します。

A normal adult heart is composed of several different cell types, among which cardiac mesenchymal stromal cells represent an abundant population. The ...

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

7.6K ビュー.  Centro Cardiologico Monzino-IRCCS. この記事では、催不整脈性心筋症患者の心内膜心筋生検サンプルから心臓の間葉系間質細胞を分離するメソッドが提供されます。その特性とその脂肪細胞分化を促進するためのプロトコルを説明します。

ビデオ: Isolation and Characterization of Cardiac Mesenchymal Stromal Cells from Endomyocardial Bioptic Samples of Arrhythmogenic Cardiomyopathy Patients

Derivation of Cardiac Progenitor Cells from Embryonic Stem Cells

Cardiac progenitor cells (CPCs) have the capacity to differentiate into cardiomyocytes, smooth muscle cells (SMC), and endothelial cells and hold great promise in cell therapy against heart disease. Among various methods to isolate CPCs, differentiation of embryonic stem cell (ESC) into CPCs attracts great attention in the field since ESCs can provide unlimited cell source. As a result, numerous strategies have been developed to derive CPCs from ESCs. In this protocol, differentiation and purification of embryonic CPCs from both mouse and human ESCs is described. Due to the difficulty of using cell surface markers to isolate embryonic CPCs, ESCs are engineered with fluorescent reporters activated by CPC-specific cre recombinase expression. Thus, CPCs can be enriched by fluorescence-activated cell sorting (FACS). This protocol illustrates procedures to form embryoid bodies (EBs) from ESCs for CPC specification and enrichment. The isolated CPCs can be subsequently cultured for cardiac lineage differentiation and other biological assays. This protocol is optimized for robust and efficient derivation of CPCs from both mouse and human ESCs.

In this protocol, derivation of cardiac progenitor cells from both mouse and human embryonic stem cells will be illustrated. A major strategy in this protocol is to enrich cardiac progenitor cells with flow cytometry using fluorescent reporters engineered into the embryonic stem cell lines.

胚性幹細胞から心臓前駆細胞の誘導

Cardiac progenitor cells (CPCs) have the capacity to differentiate into cardiomyocytes, smooth muscle cells (SMC), and endothelial cells and hold great ...

発生生物学

Isolation and Quantitative Immunocytochemical Characterization of Primary Myogenic Cells and Fibroblasts from Human Skeletal Muscle

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated from human muscle biopsy samples using enzymatic digestion and their myogenic properties studied in culture. Quantitatively, the two main adherent cell types obtained from enzymatic digestion are: (i) the satellite cells (termed myogenic cells or muscle precursor cells), identified initially as CD56+ and later as CD56+/desmin+ cells and (ii) muscle-derived fibroblasts, identified as CD56&#8211; and TE-7+. Fibroblasts proliferate very efficiently in culture and in mixed cell populations these cells may overrun myogenic cells to dominate the culture. The isolation and purification of different cell types from human muscle is thus an important methodological consideration when trying to investigate the innate behavior of either cell type in culture. Here we describe a system of sorting based on the gentle enzymatic digestion of cells using collagenase and dispase followed by magnetic activated cell sorting (MACS) which gives both a high purity (&#62;95% myogenic cells) and good yield (~2.8 x 106 &#177; 8.87 x 105 cells/g tissue after 7 days in vitro) for experiments in culture. This approach is based on incubating the mixed muscle-derived cell population with magnetic microbeads beads conjugated to an antibody against CD56 and then passing cells though a magnetic field. CD56+ cells bound to microbeads are retained by the field whereas CD56&#8211; cells pass unimpeded through the column. Cell suspensions from any stage of the sorting process can be plated and cultured. Following a given intervention, cell morphology, and the expression and localization of proteins including nuclear transcription factors can be quantified using immunofluorescent labeling with specific antibodies and an image processing and analysis package.

The main adherent cell types derived from human muscle are myogenic cells and fibroblasts. Here, cell populations are enriched using magnetic-activated cell sorting based on the CD56 antigen. Subsequent immunolabelling with specific antibodies and use of image analysis techniques allows quantification of cytoplasmic and nuclear characteristics in individual cells.

ヒト骨格筋からの一次筋原細胞および線維芽細胞の単離および定量的免疫組織化学的特性評価

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated ...

Isolation and Enrichment of Human Adipose-derived Stromal Cells for Enhanced Osteogenesis

Bone marrow-derived mesenchymal stromal cells (BM-MSCs) are considered the gold standard for stem cell-based tissue engineering applications. However, the process by which they must be harvested can be associated with significant donor site morbidity. In contrast, adipose-derived stromal cells (ASCs) are more readily abundant and more easily harvested, making them an appealing alternative to BM-MSCs. Like BM-MSCs, ASCs can differentiate into osteogenic lineage cells and can be used in tissue engineering applications, such as seeding onto scaffolds for use in craniofacial skeletal defects. ASCs are obtained from the stromal vascular fraction (SVF) of digested adipose tissue, which is a heterogeneous mixture of ASCs, vascular endothelial and mural cells, smooth muscle cells, pericytes, fibroblasts, and circulating cells. Flow cytometric analysis has shown that the surface marker profile for ASCs is similar to that for BM-MSCs. Despite several published reports establishing markers for the ASC phenotype, there is still a lack of consensus over profiles identifying osteoprogenitor cells in this heterogeneous population. This protocol describes how to isolate and use a subpopulation of ASCs with enhanced osteogenic capacity to repair critical-sized calvarial defects.

The transcriptional heterogeneity within human adipose-derived stromal cells can be defined on the single cell level using cell surface markers and osteogenic genes. We describe a protocol utilizing flow cytometry for the isolation of cell subpopulations with increased osteogenic potential, which may be used to enhance craniofacial skeletal reconstruction.

強化された骨形成のためのヒト脂肪由来間質細胞の単離および濃縮

Bone marrow-derived mesenchymal stromal cells (BM-MSCs) are considered the gold standard for stem cell-based tissue engineering applications. However, the ...

An Enzymatic Method to Rescue Mesenchymal Stem Cells from Clotted Bone Marrow Samples

Mesenchymal stem cells (MSCs) - usually obtained from bone marrow - often require expansion culture. Our protocol uses clinical grade urokinase to degrade clots in the bone marrow and release MSCs for further use. This protocol provides a rapid and inexpensive alternative to bone marrow resampling. Bone marrow is a major source of MSCs, which are interesting for tissue engineering and autologous stem cell therapies. Upon withdrawal bone marrow may clot, as it comprises all of the hematopoietic system. The resulting clots contain also MSCs that are lost for expansion culture or direct stem cell therapy. We experienced that 74% of canine bone marrow samples contained clots and yielded less than half of the stem cell number expected from unclotted samples. Thus, we developed a protocol for enzymatic digestion of those clots to avoid labor-intense and costly bone marrow resampling. Urokinase - a clinically approved and readily available thrombolytic drug &#8211; clears away the bone marrow clots almost completely. As a consequence, treated bone marrow aspirates yield similar numbers of MSCs as unclotted samples. Also, after urokinase treatment the cells kept their metabolic activity and the ability to differentiate into chondrogenic, osteogenic and adipogenic lineages. Our protocol salvages clotted blood and bone marrow samples without affecting the quality of the cells. This obsoletes resampling, considerably reduces sampling costs and enables the use of clotted samples for research or therapy.

Mesenchymal stem cells are usually obtained from bone marrow and require expansion culture. When samples clot before processing, a protocol using the (enzymatic) thrombolytic drug urokinase can be applied to degrade the clot. Thus, cells are released and available for expansion culture. This protocol provides a rapid and inexpensive alternative to resampling.

酵素法は、凝固した骨髄試料からの間葉系幹細胞を救出する

Mesenchymal stem cells (MSCs) - usually obtained from bone marrow - often require expansion culture. Our protocol uses clinical grade urokinase to degrade ...

Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles

Fibrosis and defective muscle regeneration can hamper the functional recovery of the soft palate muscles after cleft palate repair. This causes persistent problems in speech, swallowing, and sucking. In vitro culture systems that allow the study of satellite cells (myogenic stem cells) from head muscles are crucial to develop new therapies based on tissue engineering to promote muscle regeneration after surgery. These systems will offer new perspectives for the treatment of cleft palate patients. A protocol for the isolation, culture and differentiation of satellite cells from head muscles is presented. The isolation is based on enzymatic digestion and trituration to release the satellite cells. In addition, this protocol comprises an innovative method using extracellular matrix gel coatings of millimeter size, which requires only low numbers of satellite cells for differentiation assays.

This protocol describes the isolation of satellite cells from branchiomeric head muscles of a 9 week-old rat. The muscles originate from different branchial arches. Subsequently, the satellite cells are cultured on a spot coating of millimeter size to study their differentiation. This approach avoids the expansion and passaging of satellite cells.

ラットヘッドBranchiomeric筋肉から衛星細胞の単離とキャラクタリゼーション

Fibrosis and defective muscle regeneration can hamper the functional recovery of the soft palate muscles after cleft palate repair. This causes persistent ...

Isolation and Characterization of Single Cells from Zebrafish Embryos

The zebrafish (Danio rerio) is a powerful model organism to study vertebrate development. Though many aspects of zebrafish embryonic development have been described at the morphological level, little is known about the molecular basis of cellular changes that occur as the organism develops. With recent advancements in microfluidics and multiplexing technologies, it is now possible to characterize gene expression in single cells. This allows for investigation of heterogeneity between individual cells of specific cell populations to identify and classify cell subtypes, characterize intermediate states that occur during cell differentiation, and explore differential cellular responses to stimuli. This study describes a protocol to isolate viable, single cells from zebrafish embryos for high throughput multiplexing assays. This method may be rapidly applied to any zebrafish embryonic cell type with fluorescent markers. An extension of this method may also be used in combination with high throughput sequencing technologies to fully characterize the transcriptome of single cells. As proof of principle, the relative abundance of cardiac differentiation markers was assessed in isolated, single cells derived from nkx2.5 positive cardiac progenitors. By evaluation of gene expression at the single cell level and at a single time point, the data support a model in which cardiac progenitors coexist with differentiating progeny. The method and work flow described here is broadly applicable to the zebrafish research community, requiring only a labeled transgenic fish line and access to microfluidics technologies.

This protocol describes a method for isolating single cells from zebrafish embryos, enriching for cells of interest, capturing zebrafish cells in microfluidic based single cell multiplex systems, and assessing gene expression from single cells.

ゼブラフィッシュ胚からの単一細胞の単離とキャラクタリゼーション

The zebrafish (Danio rerio) is a powerful model organism to study vertebrate development. Though many aspects of zebrafish embryonic development have been ...

Isolation and Expansion of Mesenchymal Stem/Stromal Cells Derived from Human Placenta Tissue

Mesenchymal stem/stromal cells (MSC) are promising candidates for use in cell-based therapies. In most cases, therapeutic response appears to be cell-dose dependent. Human term placenta is rich in MSC and is a physically large tissue that is generally discarded following birth. Placenta is an ideal starting material for the large-scale manufacture of multiple cell doses of allogeneic MSC. The placenta is a fetomaternal organ from which either fetal or maternal tissue can be isolated. This article describes the placental anatomy and procedure to dissect apart the decidua (maternal), chorionic villi (fetal), and chorionic plate (fetal) tissue. The protocol then outlines how to isolate MSC from each dissected tissue region, and provides representative analysis of expanded MSC derived from the respective tissue types. These methods are intended for pre-clinical MSC isolation, but have also been adapted for clinical manufacture of placental MSC for human therapeutic use.

Herein we describe methods for the dissection of fetal and maternal tissues from human term placenta, followed by isolation and expansion of mesenchymal stem/stromal cells (MSC) from these tissues.

単離およびヒト胎盤組織由来の間葉系幹/間質細胞の増殖

Mesenchymal stem/stromal cells (MSC) are promising candidates for use in cell-based therapies. In most cases, therapeutic response appears to be cell-dose ...

Isolation of Perivascular Multipotent Precursor Cell Populations from Human Cardiac Tissue

Multipotent mesenchymal stem/stromal cells (MSC) were conventionally isolated, through their plastic adherence, from primary tissue digests whilst their anatomical tissue location remained unclear. The recent discovery of defined perivascular and MSC cell marker expression by perivascular cells in multiple tissues by our group and other researchers has provided an opportunity to prospectively isolate and purify specific homogenous subpopulations of multipotent perivascular precursor cells. We have previously demonstrated the use of fluorescent activated cell sorting (FACS) to purify microvascular CD146+CD34- pericytes and vascular CD34+CD146- adventitial cells from human skeletal muscle. Herein we describe a method to simultaneously isolate these two perivascular cell subsets from human myocardium by FACS, based on the expression of a defined set of cell surface markers for positive and negative selections. This method thus makes available two specific subpopulations of multipotent cardiac MSC-like precursor cells for use in basic research and/or therapeutic investigations.

Human cardiac tissue harbours multipotent perivascular precursor cell populations that may be suitable for myocardial regeneration. The technique described here allows for the simultaneous isolation and purification of two multipotent stromal cell populations associated with native blood vessels, i.e. CD146+CD34- pericytes and CD34+CD146- adventitial cells, from the human myocardium.

ヒト心臓組織からの血管周囲多能前駆細胞集団の単離

Multipotent mesenchymal stem/stromal cells (MSC) were conventionally isolated, through their plastic adherence, from primary tissue digests whilst their ...

Isolation of Mouse Endometrial Epithelial and Stromal Cells for In Vitro Decidualization

Decidualization is a progesterone-dependent differentiation process of endometrial stromal cells and is a prerequisite for successful embryo implantation. Although many efforts have been made to reveal the underlying mechanisms of decidualization, the exact signaling between the epithelial cells that are in contact with the embryo and the underlying stromal cells remains poorly understood. Therefore, studying decidualization in a way that takes both the epithelial and stromal cells into account could improve our knowledge about the molecular details of decidualization. For this purpose, in vivo models of artificial decidualization are physiologically the most relevant; however, manipulation of intercellular communication is limited. Currently, in vitro cultures of endometrial stromal cells are being used to investigate the modulation of decidualization by several signaling molecules. Conventionally, human or mouse endometrial stromal cells are used. However, the availability of human samples is very often limited. Furthermore, the use of murine tissues is accompanied with variety in the method of culturing. This study presents a validated and standardized method to obtain pure Endometrial Epithelial Cell (EEC) and Stromal Cell (ESC) cultures using adult intact mice treated with estrogen for three consecutive days. The protocol is optimized to improve the yield, viability, and purity of the cells and was further extended in order to study decidualization in a coculture of EEC and ESC. This model may be suitable to exploit the importance of both cell types in decidualization and to evaluate the contribution of significant signaling molecules secreted by EEC or ESC during the intercellular communication.

Isolation of Mouse Endometrial Epithelial and Stromal Cells for In Vitro Decidualization

This study presents a standardized and validated method for the isolation and culture of primary mouse endometrial stromal and epithelial cells, which can be used in a coculture system to study in vitro decidualization.

マウス子宮内膜上皮と間質細胞の単離のために<em&gt;インビトロ</em&gt;脱落膜化

Decidualization is a progesterone-dependent differentiation process of endometrial stromal cells and is a prerequisite for successful embryo implantation. ...

Isolation and Characterization of Mesenchymal Stromal Cells from Human Umbilical Cord and Fetal Placenta

The human umbilical cord (UC) and placenta are non-invasive, primitive and abundant sources of mesenchymal stromal cells (MSCs) that have increasingly gained attention because they do not pose any ethical or moral concerns. Current methods to isolate MSCs from UC yield low amounts of cells with variable proliferation potentials. Since UC is an anatomically-complex organ, differences in MSC properties may be due to the differences in the anatomical regions of their isolation. In this study, we first dissected the cord/placenta samples into three discrete anatomical regions: UC, cord-placenta junction (CPJ), and fetal placenta (FP). Second, two distinct zones, cord lining (CL) and Wharton&#39;s jelly (WJ), were separated. The explant culture technique was then used to isolate cells from the four sources. The time required for the primary culture of cells from the explants varied depending on the source of the tissue. Outgrowth of the cells occurred within 3 - 4 days of the CPJ explants, whereas growth was observed after 7 - 10 days and 11 - 14 days from CL/WJ and FP explants, respectively. The isolated cells were adherent to plastic and displayed fibroblastoid morphology and surface markers, such as CD29, CD44, CD73, CD90, and CD105, similarly to bone marrow (BM)-derived MSCs. However, the colony-forming efficiency of the cells varied, with CPJ-MSCs and WJ-MSCs showing higher efficiency than BM-MSCs. MSCs from all four sources differentiated into adipogenic, chondrogenic, and osteogenic lineages, indicating that they were multipotent. CPJ-MSCs differentiated more efficiently in comparison to other MSC sources. These results suggest that the CPJ is the most potent anatomical region and yields a higher number of cells, with greater proliferation and self-renewal capacities in vitro. In conclusion, the comparative analysis of the MSCs from the four sources indicated that CPJ is a more promising source of MSCs for cell therapy, regenerative medicine, and tissue engineering.

Here, we present a protocol for the dissection of human umbilical cord (UC) and fetal placenta sample into cord lining (CL), Wharton&#39;s jelly (WJ), cord-placenta junction (CPJ), and fetal placenta (FP) for the isolation and characterization of mesenchymal stromal cells (MSCs) using the explant culture technique.

ヒト臍帯及び胎児胎盤由来間葉系間質細胞の単離および特徴付け

The human umbilical cord (UC) and placenta are non-invasive, primitive and abundant sources of mesenchymal stromal cells (MSCs) that have increasingly ...