我々 はリアータ医薬品が CDDO DFPA を提供することをありがちましょう。また、ジェーンと小児がんの革新 (ジョン Letterio) 李 Seidman 椅子のサポートを認めます。この作品は、米国防総省 [W81XWH-12-1-0452]; によって支えられました。ケース包括的がんセンターでアンジーの野鳥捕獲者の青年や若い成人期のがん研究イニシアチブHsi じゅ魏/キャラハン財団からキャラハン研究科学者賞を受賞。

ケース ウェスタン リザーブ大学医学部の制度的動物ケアおよび使用委員会によって承認された手続きに準拠してすべての研究を行った。
1. 骨髄由来樹状細胞 (黒谷)
<ol><li>オートクレーブを介してすべての手術器具を滅菌し、クラス II 生物学的安全キャビネット充当安全手順で実験を実行します。</li>
	<li>8-10 週齢の c57bl/6 マウスを安楽死させる CO2箱を用いた。解離性の基板上にマウスを置くし、70% エタノールでリンスします。外科はさみを用いて脛骨腓骨、大腿骨の骨を切除し、10 cm 培養皿の中の 70% のエタノールで配置します。</li>
	<li>ティッシュを解剖する外科ブレードと鉗子を使用して 10 cm の蓋の上可能な限り、料理の文化し、脛骨と大腿骨 6 cm 培養皿の中の 70% のエタノールのそれらを置くに分離します。</li>
	<li>脛骨と大腿骨の両方の端をトリミングするのにには、外科ブレードを使用します。12 ml の PBS を含む円錐管に骨の一方の端から骨髄の内容をフラッシュするのに 23 G 針付き 3 ml シリンジ 3 mL PBS を使用します。骨の両端の 3 倍この手順を繰り返します。</li>
	<li>5 分間 300 x g で細胞懸濁液を遠心します。</li>
	<li>上澄みを除去し、赤の血液細胞を削除する 5 分の 1 ml ACK 溶解バッファーで細胞ペレットを再懸濁します。</li>
	<li>9 ml PBS ACK 溶解バッファーと 300 x g で 5 分間遠心を希釈するを追加します。</li>
	<li>上澄みを除去し、10 ml の培地 (RPMI 1640 プラス L-グルタミン、10 %fbs、1% 非必須アミノ酸 (100 x)、10 mM HEPES、50 nM β-メルカプトエタノール、および 5% ペニシリン/ストレプトマイシン) で再懸濁します。 注: エンドトキシン濃度は、FBS で 0.1 未満 EU/ml をなければなりません。</li>
	<li>細胞懸濁液を 40 μ m の細胞ストレーナを通過しの細胞懸濁液 20 μ l を取るし、トリパン ブルーの cytometer による生きているセルの数をカウントするの 80 μ l で混ぜます。</li>
	<li>1 x 10 の6セル/15 ng/ml GM-CSF と 10 ng/ml IL 4 ml に細胞数を調整します。</li>
	<li>1 x 106セル/6 ウェル プレートの各ウェルに ml の 3 ml をプレートし、37 ° C、5% CO2、および CO2インキュベーターの湿度 95% でセルを孵化させなさい。 注: 1 つのマウスの骨髄細胞は周辺 3 6 ウェル プレート 2 から配置することができることを示す 10 の7セル × 3-5。</li>
	<li>3 日目、各ウェルに 2 ml の新鮮な PBS を追加各ウェルからすべて 3 ml の培養液を削除し、すべての非付着性のセルを削除することを確認するプレートを軽く渦巻き模様します。</li>
	<li>15 ng/ml GM-CSF と 10 ng/ml 各ウェルに IL 4 3 ml の新鮮な培養液を交換してください。37 ° C、5% CO2、および CO2インキュベーターの湿度 95% でセルを孵化させなさい。</li>
	<li>5 日各ウェルで 15 ng/ml GM-CSF と 10 ng/ml IL 4 別 3 ml の新鮮な培養液を直接追加します。37 ° C、5% CO2、および CO2インキュベーターの湿度 95% でセルを孵化させなさい。 注: 各ウェルの容量は 6 ml では今です。</li>
	<li>7 日には、10 分間氷の上プレート全体を置きます。優しく各 Idc として懸濁液に、緩く付着黒谷を取り除くために培養液をピペットします。 注: 付着性マクロファージはまだプレートに接続されています。低温と優しく手順は、さらに実験に影響を与える DC の活性化を避けるためにキーです。</li>
	<li>5 分の 300 x g で細胞懸濁液を遠心し、さらに実験のための新鮮な培養液で再懸濁します。 注: 黒谷は、フローサイトメトリーによる CD11c 抗体の蛍光標識で識別できる、図 1でのさらなる実験の黒谷のゲーティング方針を示した。</li>
</ol>2. TolDC 遺伝子とタンパク質のプロファイルを特徴します。
<ol><li>37 ° C、5% CO2および CO2インキュベーターの湿度 95% で 1 時間インキュベート培と 100-400 nM の CDDO DFPA の有無で 1 × 106黒谷/ml 6 ウェル プレートのウェルあたり 2 ml をプレートします。 注: CDDO-DFPA、合成部核因子 (赤血球由来 2) - のようだ - 2 の要因 (Nrf2) 誘導と核因子 κ B (NF-κ B) の阻害剤Idc、IL-10、ビタミン D3、デキサメタゾン湾 11-7085 などから TolDCs の誘導のために他のエージェントを適用し、この手順を各エージェントのための最適な条件を変更します。</li>
	<li>Mdc (インキュベーション時間は mRNA やタンパク質の測定により異なります) を誘発する 4 24 時間インキュベート LPS の 10 または 100 ng/ml を追加します。</li>
	<li>軽く各ウェルに培養液をピペット、1 ml ピペットを用いて細胞懸濁液を収穫します。それぞれ細胞や培養上清を収集するために 5 分の 300 × g で遠心分離機します。</li>
	<li>刺激リガンドなどのフローサイトメトリーによる細胞ペレットから表面配位子を分析: CD40、CD80、CD86、MHC-II、OX40L、ICOSL、または抑制配位子: PD L1、L2 PD、ILT3、ILT4。</li>
	<li>細胞ペレットからの RNA を隔離し、RNA および量的なリアルタイム PCR (qRT PCR)、ELISA、サイトカイン プロフィール、遺伝子やタンパク質の培養上清中のサンプルをそれぞれ分析します。 注: たとえば、炎症性サイトカイン: TNF-α、肝腎、edn 誌 1、IL-6、イリノイ-12 と IL-23、または抗炎症サイトカイン: IL 4, IL-10 IL 15、TGF-β 1 と HO-1。</li>
</ol>3 TolDCs の機能を評価するIn VitroとIn Vivo
<ol><li>
T 細胞の同系の拡散の試金
	<ol>
<li>オートクレーブを介してすべての手術器具を滅菌し、クラス II 生物学的安全キャビネット充当安全手順で実験を実行します。</li>
		<li>0.5% ウシ血清アルブミン (BSA) と 500 ml の PBS に 2 ミリメートルの EDTA を使用して MAC バッファーを準備します。0.2 μ m フィルターを介してフィルタ リング バッファーを滅菌します。 注: は、次の実験中に氷の上バッファーを保持します。</li>
		<li>CD4 を取得する+ T 細胞、安楽死 OT II T 細胞受容体 (TCR) 遺伝子組換えマウス 8-10 週齢 CO2箱を用いた。解離性の基板上にマウスを置くし、70% エタノールでリンスします。外科はさみとピンセットを使用して腹部の左側から脾臓を分離します。</li>
		<li>6 cm 培養皿に 2 ml の PBS で脾臓を入れ、40 μ m の細胞ストレーナーを渡すことによって脾臓をミンチに 3 ml シリンジの押し棒の後ろに使用します。</li>
		<li>細胞懸濁液と 300 x g で 5 分間遠心を収集します。</li>
		<li>MAC バッファーの 400 μ l 細胞ペレットを再懸濁します。</li>
		<li>CD4 の 100 μ l を追加+ T 細胞ビオチン抗体カクテル 4 ° C、5 分で。 注: 抗体カクテル バインド CD4 を除く他のセルタイプに+ T 細胞、CD8a、CD11b、CD11c、CD19、CD25、CD45R など (B220)、CD49b (DX5) CD105、反 MHC クラス II、テル-119、および TCRγ/δ。</li>
		<li>10 分のための 4 ° C での MAC バッファー 300 μ l、200 μ l 抗ビオチン ビーズ (材料表) を追加します。</li>
		<li>強磁性球 (材料表) の列で構成される場所と磁気で一緒に事前色分解フィルター フィールド、MAC バッファーの 3 ml でそれをすすいでください。</li>
		<li>9 ml の MAC バッファーを加えて、細胞と 300 × g で 5 分間遠心します。</li>
		<li>3 ml の MAC バッファーで細胞ペレットを再懸濁します、列に適用されます。収集の流れを含む CD4+ T 細胞。</li>
		<li>MAC バッファーの 3 ml の別列を洗っても流れを収集します。</li>
		<li>脾のパンの Dc を得るためには、CO2箱を用いた 8-10 週齢 c57bl/6 マウスを安楽死します。解離性の基板上にマウスを置くし、70% エタノールでリンスします。外科はさみとピンセットを使用して腹部の左側から脾臓を分離します。D コラゲナーゼ溶液 2 ml を含む 6 cm 培養皿で脾臓を置く (2 mg/ml コラゲナーゼ D はカルシウム、マグネシウムを含む HBSS で解散)。</li>
		<li>1 ml シリンジ、25 G 針 2 回脾臓にコラゲナーゼ D 溶液 1 ml を注入します。小さなハサミで小さな断片に脾臓をカットします。</li>
		<li>振るし、25 分間室温でインキュベートします。</li>
		<li>5 分間室温で 0.5 M の EDTA の 500 μ l を追加します。 注: 3.1.13-3.1.14 からのステップは、DCs の収率を増加させるための重要なです。</li>
		<li>今 40 μ m の細胞ストレーナーを渡すことによって脾臓スラリーをミンチし、5 分の 300 × g で遠心分離して細胞懸濁液を収集する 3 ml シリンジの押し棒の裏を使用します。</li>
		<li>350 μ l MAC バッファー、FcR ブロッキング試薬 50 μ l、100 μ l パン樹状細胞ビオチン抗体カクテルの 10 分のための 4 ° C でので細胞ペレットを再懸濁します。 注: カクテルの Dc によって表されない抗原に対する抗体。</li>
		<li>5 分間 300 x g で MAC バッファーおよび遠心分離機の 9 ml を追加してセルを洗浄します。</li>
		<li>MAC バッファーの 800 μ l 細胞ペレットを再懸濁します、10 分のための 4 ° C で反ビオチン ビードの 200 μ l を追加します。</li>
		<li>Dc を収集する 3.1.9-3.1.11 からの手順を繰り返します。</li>
		<li>別 3 ml の MAC バッファーの列 2 回洗っても流れを収集します。</li>
		<li>15 分の 37 ° C で 1 μ M CFSE と 100-400 nM CDDO DFPA 37 ° C で 1 時間別々、ラベル CD4+ T 細胞 (1 x 107/ml) の有無で 2 x 105 Dc/ml を扱う、PBS で洗浄、2 x 106 T 細胞/ml で最終濃度を取得するボリュームを再調整するとします。</li>
		<li>次に、96 ウェル プレートで共培養 CD4 の CFSE ラベルの同じボリュームの処理樹状細胞の 100 μ l+ T 細胞、1:10 を取得する上記の手順から収集した両方の比率。今孵化の 2 〜 3 日後 100 ng/mL 卵白アルブミン (OVA) ペプチド 323-329 あたりとフローサイトメトリーによる T 細胞の CFSE 強度測定を追加します。 注: セル番号と比による Dc の T 細胞に私たちの以前の仕事37から最適化されています。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
パッシブを誘発する黒谷を注入することにより EAE パルス ミエリン オリゴデンドロ サイト糖タンパク質 (モグ) (35-55)
	<ol>
<li>板 1 × 106黒谷/ml 6 ウェル プレートのウェルあたり 2 ml 培養液 100-400 nM の CDDO DFPA の有無で 1 時間インキュベート。</li>
		<li>追加 10 ng/ml LPS のインキュベーターの 24 時間。</li>
		<li>100 μ g/ml 追加 MOG (35-55) のインキュベーターの 4 時間。</li>
		<li>細胞懸濁液を収穫、300 x g で 5 分間遠心します。</li>
		<li>PBS の細胞ペレットを再懸濁し、セルをカウントします。</li>
		<li>8-10 週古い女性 c57bl/6 マウス (各後ろ足に 100 μ l) に 2 x 10 の6セルの 200 μ l を皮下注入します。</li>
		<li>腎不全注入と 48 日に時間。200 を注入後、百日咳毒素 (PTX) それぞれのマウスの ng。</li>
		<li>4 週連続で毎週 1 回の手順 3.2.6-3.2.7 を繰り返します。</li>
		<li>標準的な基準37 (0.5 ぐったり最後尾、1 ぐったり尾、2 適当な後肢虚弱、3 重度後肢虚弱、4-完全な後肢麻痺、5 四肢または瀕死状態、6 死) を使用して毎日 EAE の臨床症状を評価します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Idc を生成し、その後 TolDCs にそれらを区別するために再現性をもって使用できる効率的なプロトコルについて述べるし、この可能性があります、TolDC を誘導する新規分子標的薬の能力の評価に適用することを提案します。表現型。このレポートに記載されている、我々 は、我々 まず表面配位子の TolDC 式フローサイトメトリーで分析した、qRT PCR および elisa 法で測定された DC サイトカイン ?...

樹状細胞 (Dc) 生来の免疫システムの不可欠な部分し最初発見され1主プロフェッショナルな抗原提示細胞として、1973 年にラルフ ・ スタインマンと Zanvil コーンによって特徴付けられます。Dc リンク自然免疫と適応免疫システム2に二次リンパ器官の T 細胞と B 細胞で主要組織適合遺伝子複合体 (MHC) に処理された抗原提示することで免疫活性化に重要な役割を果たすことが示されています。哺乳類の免疫系に骨髄の Dc、Dc (Pdc)3形質としてされている Dc の少なくとも 2 つのカテゴリがあります。従来の Dc (cDCs) CD11c 表現によって特徴付けられる未熟な Dc (Idc)体外骨髄前駆細胞や末梢血単球を用いたからと区別することができますと呼ばれ、また、骨髄性の Dc顆粒球マクロファージ ・ コロニー刺激因子 (GM-CSF) と IL-4 マウスや人間種、それぞれ4で。
『 危険 』 を活性化信号を病原体関連分子パターン (種緑化) または損傷関連分子パターン (湿気がある)、様々 なパターン認識受容体結合を介して成熟した Dc (Mdc) として免疫原性 Dc に向けて Idc 成熟をドライブするなど、DC の表面5。さらに免疫原性 Dc プライム ナイーブ T 細胞の増殖・分化アップレギュレーションを介して MHCII2、共刺激リガンド (CD80、CD86、CD40)6サイトカイン、その他水溶性メディエーター7。免疫原性 DCs からプロ炎症性仲介人の生産のカスケードは、サイトカインを介した T 細胞の分化に不可欠です。たとえば、IFN-γ および il-12 が th1 細胞分化8と IL-1, 必要な IL-6 と IL-23 は重要ナイーブ T 細胞 Th17 細胞9に向かって偏光です。成熟した Dc は、外国の抗原に反応する、自己抗原による自由な DC の活性化が耐アブレーションを原因し、その活性化組織破壊10 につながる自己反応性 T 細胞を生成することによって自己免疫疾患の開発の促進.
最近の報告では、DC の可塑性、その組織微小環境の内で異なるキューとやり取りして異なるエフェクター/サプレッサー DC サブセットに区別するために彼らの能力によって例示の明確な証拠を提供しています。IL-1011TGF-β12HO 113などの抗炎症メディエーターは、Dc (TolDCs) 免疫寛容を誘導することによって免疫抑制に重要な役割を再生する示されています。これらの TolDCs は、規制機能を取得し、14T 細胞増殖を抑制します。また、Dc による共刺激の欠如と TolDCs から抗炎症メディエーターの生産両方は制御性 T 細胞 (Treg) の誘導に貢献、Th1 と th17 細胞分化と拡大15も効果的に抑制します。過去の二十年でに、TolDCs の治療の可能性はいくつかの調査で、報告されています。これらの研究でex vivoの管理自己免疫疾患16の異なる前臨床モデルで TolDCs の改善だけでなく病的症状を生成がまた17 の患者で免疫の許容の開発につながった ,18。興味深いことに、今日 TolDCs 療法として考えられている代替または補助アプローチを含む、いくつかの臨床試験で自己免疫疾患のタイプ 1 糖尿病19、関節リウマチ20, 21、多発性硬化症 (MS)22,23,24Crohn 病25。
各種 TolDCs の開発に採用されているプロトコルがあり、いくつかの研究所は、生成と TolDCs の表現型特性の方法を報告しています。造血前駆細胞からの in vitro TolDCs 再現性をもって生成し、安定して免疫寛容状態体内26,27,28,29でそれらを維持するために、これらのメソッドを使用することができます。Idc は、様々 な免疫調節薬剤や抗炎症性サイトカインへの露出によって TolDCs に変換できます。たとえば、ビタミン D3 は IL-10 生産を増大させる、DCs から IL 12 分泌を抑制し、それにより免疫抑制機能30を後押しする知られているよく知られている薬剤です。また、Dc がリポ多糖 (LPS) などの強力な炎症性刺激にさらされるデキサメタゾン31、ラパマイシン32、コルチコステロイド33などいくつかの薬剤が示されているを誘発する、CD40、CD80、CD86、MHCII34DC 表面発現を減らすことによって TolDC の表現型。IL-10 および TGF-β が DC 耐性35とこれらのサイトカインの両方に複合暴露を誘導するためにほとんど研究抗炎症性サイトカインが Dc36抗原の表現型を誘導するために示されています。
免疫寛容の表現型マーカーではなく、DC は機能特性によって定義される偉大な TolDCs の細胞および機能特性評価のための一貫した方法を開発する必要があります。厳格かつ一貫性のあるプロトコルが一貫性のある評価と免疫寛容 DC 表現型の特性の確立必要があります我々 効果的かつ再現性をもって TolDC の表現型を誘導する新しいエージェントの能力を比較している場合さらに、実験室。ここで提供詳細なプロトコル マウスの造血前駆細胞から Idc を分離してその後 TolDCs、Idc に変換する能力の評価の下で新しいエージェントの有効性を分析するステップ バイ ステップのメソッドを提供する堅牢ですTolDCs の機能および表現型特性の in vitroとin vivoの両方。この説明には、その表面配位子、サイトカインのプロファイル、および体外免疫機能によって TolDCs を特徴づける精巧なメソッドが含まれています。我々 も MS、実験的自己免疫性脳脊髄炎 (EAE) の前臨床モデルでこれらの TolDCs の潜在的な治療上のアプリケーションを探索する方法の例を提供します。この確立されたプロトコルは TolDCs の誘導を促進するために新しいエージェントのキャパシティを評価する調査官を助け、TolDC 治療開発の範囲を拡大するための努力を容易に。

<table><tbody><tr><td>CDDO-DFPA (RTA-408)</td><td>Reata Pharmaceuticals</td><td>in house synthesis</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Mouse GM-CSF</td><td>Peprotech Inc.</td><td>315-03</td><td>BMDC differentiation</td></tr><tr><td>Mouse IL-4</td><td>Peprotech Inc.</td><td>214-14</td><td>BMDC differentiation</td></tr><tr><td>Lipopolysaccharides (LPS)</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>L2880</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>&amp;beta;-mercaptoethanol</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>516732</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Pertussis toxin (PTX)</td><td>R&amp;amp;D systems</td><td>3097</td><td>EAE induction</td></tr><tr><td>MOG (35&amp;ndash;55) peptide</td><td>21stCentury Biochemicals</td><td>in house synthesis</td><td>EAE induction</td></tr><tr><td>Trypan blue</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>15250-061</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>RPMI-1640 plus L-glutamine</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11875-093</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Non-essential amino acid (100X)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11140050</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15630080</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>penicillin/streptomycin</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15140122</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>40 &amp;#956;m cell strainer</td><td>Corning</td><td>352340</td><td>Cell isolation</td></tr><tr><td>PE-conjugated CD80</td><td>BD Biosciences</td><td>557227</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated CD86</td><td>BD Biosciences</td><td>555665</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated PD-L1</td><td>BioLegend</td><td>124307</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>APC-conjugated MHCII</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-112-388</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>APC-conjugated CD11c</td><td>BD Biosciences</td><td>340544</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>Isotype matched PE</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-091-835</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>Isotype matched APC</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-091-836</td><td>Flow cytometry</td></tr><tr><td>CFSE</td><td>BioLegend</td><td>423801</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>Pan dendritic cell isolation kit</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>FcR Blocking Reagent</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>Pan Dendritic Cell Biotin-Antibody Cocktail</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>Anti-Biotin MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>CD4+ T cell isolation kit</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-104-454</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>CD4+ T cell Biotin-Antibody Cocktail</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-104-454</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>Anti-Biotin MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-104-454</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>ACK lysing buffer</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A1049201</td><td>BMDC differentiation</td></tr><tr><td>1 ml syringe</td><td>BD Biosciences</td><td>309626</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>3 ml syringe</td><td>BD Biosciences</td><td>309588</td><td>BMDC differentiation</td></tr><tr><td>25G needle</td><td>BD Biosciences</td><td>309626</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>23G needle</td><td>BD Biosciences</td><td>309588</td><td>BMDC differentiation</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>A2058</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15575020</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>LS Column</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-042-401</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>Pre-Separation Filter</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-095-823</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>collagenase D</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>11088858001</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>HBSS</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>14025076</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>ovalbumin (OVA) peptide 323&amp;ndash;329</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>O1641</td><td>T cell proliferation assay</td></tr><tr><td>Mouse IFN-&amp;gamma; TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01168134_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Mouse IL-12a TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm00434165</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Mouse IL-12 p70 DuoSet ELISA</td><td>R&amp;amp;D systems</td><td>DY419-05</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>Mouse EDN-1 ELISA</td><td>RayBiotech</td><td>ELM-EDN1-1</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>TNF-&amp;alpha; TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm00443258</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Mouse TNF-&amp;alpha; Quantikine ELISA Kit</td><td>R&amp;amp;D systems</td><td>MTA00B</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>IL-6 TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm00446190</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Mouse IL-6 Quantikine ELISA Kit</td><td>R&amp;amp;D systems</td><td>M6000B</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>IL-23a TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01160011</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Mouse IL-23 DuoSet ELISA</td><td>R&amp;amp;D systems</td><td>DY1887-05</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>IL-4 TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm99999154_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>IL-10 TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01288386_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>TGF-&amp;beta; TaqMan probe</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01178820_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Anti-Heme Oxygenase 1 antibody</td><td>Abcam</td><td>ab13248</td><td>Western blotting</td></tr><tr><td>Anti-&amp;beta;-actin antibody</td><td>Abcam</td><td>ab8226</td><td>Western blotting</td></tr><tr><td>CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System</td><td>Bio-Rad Inc.</td><td></td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>BD FACSCalibur Cell Analyzer</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>Flow cytometry</td></tr></tbody></table>

development and functional characterization of murine tolerogenic dendritic cells

外国の抗原に対する調整の応答のタイトなバランスを維持することによって免疫システムが作動して共生生物に由来する抗原と同様に自己抗原に対する応答のない状態を維持します。この免疫恒常性の中断は、慢性炎症、自己免疫疾患の開発につながることができます。樹状細胞 (Dc) は、外国の抗原に対する免疫応答を開始するナイーブ T 細胞を活性化に関与する生得の免疫組織のプロフェッショナルな抗原提示細胞です。しかし、Dc は行動を維持し T 細胞寛容を促進し、どちらか自己免疫または慢性炎症状態の発展に貢献するエフェクター細胞を抑制する TolDCs にも区別できます。TolDCs の私達の理解の最近の進歩は、その分化条件を調節することによって DC 耐性が得られることを示唆しています。この現象は、多数の免疫疾患で免疫寛容を破る原因の TolDC 療法の開発の途方もない成長につながっています。臨床免疫マウスモデルで成功した研究はさらに自己免疫疾患の治療に TolDCs の免疫療法の有用性を検証しました。今日、TolDCs 防御免疫をそのまま残しながら病原性自己免疫反応をターゲットに様々 な免疫疾患における免疫寛容を回復のための診療所で有望な免疫療法のツールとなっています。TolDCs を誘導するために複数のラボで戦略の配列が提案されているが、これらの細胞の機能的な細胞の表現型を特徴付けることは一貫性はありません。このプロトコルは、大量合成部の 2-cyano-3,12-dioxooleana-1,9-dien-28-oic と TolDCs にそれらを区別するために使用される一意のメソッド内の骨髄由来の Dc の開発のステップ バイ ステップ ガイドを提供します酸-フッ素-プロピル-アミド (CDDO DFPA)、および TolDCs の必須の分子シグネチャの分析を含む、彼らの表現型を確認するための技術。最後に、我々 は多発性硬化症の前臨床モデルでの免疫応答の in vitroとin vivoのテストで TolDC 関数を評価する手法を示す.

分化と黒谷の選択:
骨髄前駆細胞は、GM-CSF と il-4 による (図 1 a) の 7 日間の Idc に分化するの存在下で完全 RPMI 培地で培養しました。1 日目、セル サイズが小さかったと球状の形態を示した。3 日目の新鮮な媒体の交換クラスターを形成する細胞を助け、また CD11c の人口を増加する前に PB...

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Development and Functional Characterization of Murine Tolerogenic Dendritic Cells

ここでは、開発し免疫寛容樹状細胞 (TolDCs) の特徴し、その免疫療法の有用性を評価するためのプロトコルを提案する.

開発とマウス免疫寛容樹状細胞の機能解析

The immune system operates by maintaining a tight balance between coordinating responses against foreign antigens and maintaining an unresponsive state ...

development-functional-characterization-murine-tolerogenic-dendritic

Research

JoVE Journal

Medicine

10.6K ビュー.  Case Western Reserve University. ここでは、開発し免疫寛容樹状細胞 (TolDCs) の特徴し、その免疫療法の有用性を評価するためのプロトコルを提案する.

ビデオ: Development and Functional Characterization of Murine Tolerogenic Dendritic Cells

Culture of myeloid dendritic cells from bone marrow precursors

Myeloid dendritic cells (DCs) are frequently used to study the interactions between innate and adaptive immune mechanisms and the early response to infection. Because these are the most potent antigen presenting cells, DCs are being increasingly used as a vaccine vector to study the induction of antigen-specific immune responses. In this video, we demonstrate the procedure for harvesting tibias and femurs from a donor mouse, processing the bone marrow and differentiating DCs in vitro. The properties of DCs change following stimulation: immature dendritic cells are potent phagocytes, whereas mature DCs are capable of antigen presentation and interaction with CD4+ and CD8+ T cells. This change in functional activity corresponds with the upregulation of cell surface markers and cytokine production. Many agents can be used to mature DCs, including cytokines and toll-like receptor ligands. In this video, we demonstrate flow cytometric comparisons of expression of two co-stimulatory molecules, CD86 and CD40, and the cytokine, IL-12, following overnight stimulation with CpG or mock treatment. After differentiation, DCs can be further manipulated for use as a vaccine vector or to generate antigen-specific immune responses by in vitro pulsing using peptides or proteins, or transduced using recombinant viral vectors. 

This video demonstrates the procedure for differentiating myeloid dendritic cells from mouse bone marrow. Isolation of mouse tibia and femur, and processing of bone marrow are demonstrated. Pictures demonstrating cell morphology before and after differentiation, and figures depicting cell phenotype and IL-12 production following maturation using CpG are shown.

骨髄前駆細胞から骨髄樹状細胞の培養

Myeloid dendritic cells (DCs) are frequently used to study the interactions between innate and adaptive immune mechanisms and the early response to ...

生物学

Generation of Bone Marrow Derived Murine Dendritic Cells for Use in 2-photon Imaging

Several methods for the preparation of murine dendritic cells can be found in the literature. Here, we present a method that produces greater than 85% CD11c high dendritic cells in culture that home to the draining lymph node after subcutaneous injection and present antigen to antigen specific T cells (see video). Additionally, we use Essen Instruments Incucyte to track dendritic cell maturation, where, at day 10, the morphology of the cultured cells is typical of a mature dendritic cell and &lt;85% of cells are CD11chigh. The study of antigen presentation in peripheral lymph nodes by 2-photon imaging revealed that there are three distinct phases of dendritic cell and T cell interaction1, 2. Phase I consists of brief serial contacts between highly motile antigen specific T cells and antigen carrying dendritic cells1, 2. Phase two is marked by prolonged contacts between antigen-specific T cell and antigen bearing dendritic cells1, 2. Finally, phase III is characterized by T cells detaching from dendritic cells, regaining motility and beginning to divide1, 2. This is one example of the type of antigen-specific interactions that can be analyzed by two-photon imaging of antigen-loaded cell tracker dye-labeled dendritic cells.

Antigen presentation in secondary lymphoid organs by dendritic cells is crucial for the initiation of the T cell mediated adaptive immune response. Here we demonstrate the culture of bone marrow derived murine dendritic cells, activation, and labeling for 2-photon imaging.

2光子イメージングで使用するための骨髄由来マウス樹状細胞の世代

Several methods for the preparation of murine dendritic cells can be found in the literature. Here, we present a method that produces greater than 85% ...

Assessing the Development of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells in Peyer's Patches Using Adoptive Transfer of Hematopoietic Progenitors

This protocol details a method to analyze the ability of purified hematopoietic progenitors to generate plasmacytoid dendritic cells (pDC) in intestinal Peyer&#39;s patch (PP). Common dendritic cell progenitors (CDPs, lin- c-kitlo CD115+ Flt3+) were purified from the bone marrow of C57BL6 mice by FACS and transferred to recipient mice that lack a significant pDC population in PP; in this case, Ifnar-/- mice were used as the transfer recipients. In some mice, overexpression of the dendritic cell growth factor Flt3 ligand (Flt3L) was enforced prior to adoptive transfer of CDPs, using hydrodynamic gene transfer (HGT) of Flt3L-encoding plasmid. Flt3L overexpression expands DC populations originating from transferred (or endogenous) hematopoietic progenitors. At 7-10 days after progenitor transfer, pDCs that arise from the adoptively transferred progenitors were distinguished from recipient cells on the basis of CD45 marker expression, with pDCs from transferred CDPs being CD45.1+ and recipients being CD45.2+. The ability of transferred CDPs to contribute to the pDC population in PP and to respond to Flt3L was evaluated by flow cytometry of PP single cell suspensions from recipient mice. This method may be used to test whether other progenitor populations are capable of generating PP pDCs. In addition, this approach could be used to examine the role of factors that are predicted to affect pDC development in PP, by transferring progenitor subsets with an appropriate knockdown, knockout or overexpression of the putative developmental factor and/or by manipulating circulating cytokines via HGT. This method may also allow analysis of how PP pDCs affect the frequency or function of other immune subsets in PPs. A unique feature of this method is the use of Ifnar-/- mice, which show severely depleted PP pDCs relative to wild type animals, thus allowing reconstitution of PP pDCs in the absence of confounding effects from lethal irradiation.

This protocol describes experimental procedures to assess the differentiation of plasmacytoid dendritic cells in Peyer&#8217;s patch from common dendritic cell progenitors, using techniques involving FACS-mediated cell isolation, hydrodynamic gene transfer, and flow analysis of immune subsets in Peyer&#8217;s patch.

造血前駆細胞の養子移入を使用して、パイエル板におけるマウス形質細胞様樹状細胞の開発を評価

This protocol details a method to analyze the ability of purified hematopoietic progenitors to generate plasmacytoid dendritic cells (pDC) in intestinal ...

免疫・感染学

In Vitro Generation of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells from Common Lymphoid Progenitors using the AC-6 Feeder System

Plasmacytoid dendritic cells (pDCs) are powerful type I interferon (IFN-I) producing cells that are activated in response to infection or during inflammatory responses. Unfortunately, study of pDC function is hindered by their low frequency in lymphoid organs, and existing methods for in vitro DC generation predominantly favor the production of cDCs over pDCs. Here we present a unique approach to efficiently generate pDCs from common lymphoid progenitors (CLPs) in vitro. Specifically, the protocol described details how to purify CLPs from bone marrow and generate pDCs by coculturing with &#947;-irradiated AC-6 feeder cells in the presence of Flt3 ligand. A unique characteristic of this culture system is that the CLPs migrate underneath the AC-6 cells and become cobblestone area-forming cells, a critical step for expanding pDCs. Morphologically distinct DCs, namely pDCs and cDCs, were generated after approximately 2 weeks with a composition of 70-90% pDCs under optimal conditions. Typically, the number of pDCs generated by this method is roughly 100-fold of the number of CLPs seeded. Therefore, this is a novel system with which to robustly generate the large numbers of pDCs required to facilitate further studies into the development and function of these cells.

In Vitro Generation of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells from Common Lymphoid Progenitors using the AC-6 Feeder System

In this study we present an in vitro culture system that can efficiently generate pDCs by co-culturing common lymphoid progenitors with AC-6 feeder cells in the presence of Flt3 ligand.

AC-6フィーダシステムを使用してリンパ球系共通前駆細胞からマウス形質細胞様樹状細胞のインビトロ生成に

Plasmacytoid dendritic cells (pDCs) are powerful type I interferon (IFN-I) producing cells that are activated in response to infection or during ...

An Efficient and High Yield Method for Isolation of Mouse Dendritic Cell Subsets

Dendritic cells (DCs) are professional antigen-presenting cells primarily responsible for acquiring, processing and presenting antigens on antigen presenting molecules to initiate T-cell-mediated immunity. Dendritic cells can be separated into several phenotypically and functionally heterogeneous subsets. Three important subsets of splenic dendritic cells are plasmacytoid, CD8&#945;Pos and CD8&#945;Neg cells. The plasmacytoid DCs are natural producers of type I interferon and are important for anti-viral T cell immunity. The CD8&#945;Neg DC subset is specialized for MHC class II antigen presentation and is centrally involved in priming CD4 T cells. The CD8&#945;Pos DCs are primarily responsible for cross-presentation of exogenous antigens and CD8 T cell priming. The CD8&#945;Pos DCs have been demonstrated to be most efficient at the presentation of glycolipid antigens by CD1d molecules to a specialized T cell population known as invariant natural killer T (iNKT) cells. Administration of Flt-3 ligand increases the frequency of migration of dendritic cell progenitors from bone marrow, ultimately resulting in expansion of dendritic cells in peripheral lymphoid organs in murine models. We have adapted this model to purify large numbers of functional dendritic cells for use in cell transfer experiments to compare in vivo proficiency of different DC subsets.

Distinct dendritic cell subsets exist as rare populations in lymphoid organs, and therefore are challenging to isolate in sufficient numbers and purity for immunological experiments. Here we describe a high efficiency, high yield method for isolation of all of the currently known major subsets of mouse splenic dendritic cells.

マウスの樹状細胞サブセットの単離のための効率的かつ高収率方法

Dendritic cells (DCs) are professional antigen-presenting cells primarily responsible for acquiring, processing and presenting antigens on antigen ...

Generation of Immature, Mature and Tolerogenic Dendritic Cells with Differing Metabolic Phenotypes

Immune response results from a complex interplay between the antigen non-specific innate immune system and the antigen specific adaptive immune system. The immune system is a constant balance in maintaining tolerance to self-molecules and reacting rapidly to pathogens. Dendritic cells (DCs) are powerful professional antigen presenting cells that link the innate immune system to the adaptive immune system and balance the adaptive response between self and non-self. Depending on the maturation signals, immature dendritic cells can be selectively stimulated to differentiate into immunogenic or tolerogenic DCs. Immunogenic dendritic cells provide proliferation signals to antigen-specific T cells for clonal expansion; while tolerogenic dendritic cells regulate tolerance by antigen-specific T-cell deletion or clonal expansion of regulatory T-cells. Due to this unique property, dendritic cells are highly sought after as therapeutic agents for cancer and autoimmune diseases. Dendritic cells can be loaded with specific antigens in vitro and injected into the human body to mount a specific immune response both immunogenic and tolerogenic. This work presents a means to generate in vitro from monocytes, immature monocyte derived dendritic cells (moDCs), tolerogenic and mature moDCs that differ in surface marker expression, function and metabolic phenotypes.

Immature dendritic cells can be selectively differentiated into tolerogenic or mature dendritic cells to regulate the balance between immunity and tolerance. This work presents a means to generate from immature monocyte derived dendritic cells (moDCs), in vitro tolerogenic and mature moDCs that differ in metabolic phenotypes.

代謝表現型が異なる未熟、熟女と寛容原性樹状細胞の生成

Immune response results from a complex interplay between the antigen non-specific innate immune system and the antigen specific adaptive immune system. ...

Study of Dendritic Cell Development by Short Hairpin RNA-Mediated Gene Knockdown in a Hematopoietic Stem and Progenitor Cell Line In vitro

Dendritic cells (DCs) are important antigen-presenting cells that connect innate and adaptive immune responses. DCs are heterogeneous and can be divided into conventional DCs (cDCs) and plasmacytoid DCs (pDCs). cDCs specializes in presenting antigens to and activate na&#239;ve T cells. On the other hand, pDCs can produce large quantities of type I interferons (IFN-I) during viral infection. The specification of DCs occurs at an early stage of DC progenitors in the bone marrow (BM) and is defined by a network of transcription factors (TFs). For example, cDCs highly express ID2, while pDCs highly express E2-2. Since more and more subsets of DCs are being identified, there is a growing interest in understanding specific TFs controlling DC development. Here, we establish a method to screen TFs critical for DCs differentiation in vitro by delivering lentivirus carrying short hairpin RNA (shRNA) into an immortalized hematopoietic stem and progenitor cell (iHSPCs) line. After the selection and in vitro differentiation, cDC and pDC potential of the stable knockdown cell lines are analyzed by flow cytometry. This approach provides a platform to identify genes potentially governing DC fates from progenitors in vitro.

Study of Dendritic Cell Development by Short Hairpin RNA-Mediated Gene Knockdown in a Hematopoietic Stem and Progenitor Cell Line In vitro

Here we provide a protocol for screening potential transcription factors involved in the development of dendritic cell (DC) using lentiviral transduction of shRNA to obtain stable knockdown cell lines for in vitro DC differentiation.

足骨造茎および前駆細胞株における短いヘアピンRNA媒介遺伝子ノックダウンによる樹状細胞の発達に関する研究

Dendritic cells (DCs) are important antigen-presenting cells that connect innate and adaptive immune responses. DCs are heterogeneous and can be divided ...

Economical and Efficient Protocol for Isolating and Culturing Bone Marrow-derived Dendritic Cells from Mice

The demand for dendritic cells (DCs) is gradually increasing as immunology research advances. However, DCs are rare in all tissues. The traditional method for isolating DCs primarily involves inducing bone marrow (BM) differentiation into DCs by injecting large doses (&#62;10 ng/mL) of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor/interleukin-4 (GM-CSF/IL-4), making the procedure complex and expensive. In this protocol, using all BM cells cultured in 10 ng/mL GM-CSF/IL-4 medium, after 3-4 half-culture exchanges, up to 2.7 x 107 CD11c+ cells&#160;(DCs) per mouse (two femurs) were harvested with a purity of 80%-95%. After 10 days in culture, the expression of CD11c, CD80, and MHC II increased, whereas the number of cells decreased. The number of cells peaked after 7 days of culture. Moreover, this method only took 10 min to harvest all bone marrow cells, and a high number of DCs were obtained after 1 week of culture.

Here, we present an economical and efficient method to isolate and generate high-purity bone marrow-derived dendritic cells from mice after 7 days of culture with 10 ng/mL GM-CSF/IL-4.

マウスから骨髄由来樹状細胞を単離および培養するための経済的かつ効率的なプロトコル

The demand for dendritic cells (DCs) is gradually increasing as immunology research advances. However, DCs are rare in all tissues. The traditional method ...

A Simple and Efficient Method for Testing Immunomodulatory Agents for Generation of Tolerogenic Dendritic Cells from Human CD14+ Monocytes

Tolerogenic dendritic cells (tolDCs) are a subset of dendritic cells (DCs) that are known to influence na&#239;ve T cells toward a regulatory T cell (Treg) phenotype. TolDCs are currently under investigation as therapies for autoimmunity and transplantation, both as a cell therapy and method to induce tolDCs from endogenous DCs. To date, however, the number of known agents to induce tolDCs from na&#239;ve DCs is relatively small and their potency to generate Tregs in vivo has been inconsistent, particularly therapies that induce tolDCs from endogenous DCs. This provides an opportunity to explore novel compounds to generate tolerance.
Here we describe a method to test novel immunomodulatory compounds on monocyte-derived DCs (moDCs) in vitro and validate their functionality to generate autologous Tregs. First, we obtain PBMCs and isolate CD14+ monocytes and CD3+ T cells using commercially available magnetic separation kits. Next, we differentiate monocytes into moDCs, treat them with an established immunomodulator, such as rapamycin, dexamethasone, IL-10, or vitamin D3, for 24 h and test their change in tolerogenic markers as a validation of the protocol. Finally, we co-culture the induced tolDCs with autologous T cells in the presence of anti-CD3/CD28 stimulation and observe changes in Treg populations and T cell proliferation. We envision this protocol being used to evaluate the efficacy of novel immunomodulatory agents to reprogram already differentiated DCs towards tolDC.

We describe a procedure to assess the capacity for pharmacologic agents to generate tolerogenic dendritic cells from na&#239;ve monocyte-derived dendritic cells in vitro and validate their potency by autologous regulatory T cell generation.

ヒトCD14+ 単球から寛容性樹状細胞を作製するための免疫調節剤を試験するための簡便で効率的な方法

Tolerogenic dendritic cells (tolDCs) are a subset of dendritic cells (DCs) that are known to influence na&#239;ve T cells toward a regulatory T cell ...

Generation of Immature, Mature, and Tolerogenic Dendritic Cells from Monocytes

Source: Sim, W. J. et al., <a href="https://app.jove.com/v/54128">Generation of Immature, Mature and Tolerogenic Dendritic Cells with Differing Metabolic Phenotypes.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2016).
This video demonstrates the generation of immature, mature, and tolerogenic dendritic cells, or DCs, from human monocytes. The incubation of monocytes with growth factors and cytokines leads to the production of immature DCs. In response to immune regulatory molecules, immature DCs differentiate into tolerogenic and mature DCs.