本研究では、動物実験はUCSFの動物実験委員会によって承認され、実験動物のケアと使用に関するNIHガイドに従って実施されました。ここでは、成体8-12週齢のC57BL/6雄マウスおよび雌マウス(自家繁殖)を用いた。
1. DRGサンプル調製
<ol><li>マウスに2.5%アベルチンを麻酔します(材料表を参照)。痛みを伴う刺激に反応しないことで、適切な麻酔を確保してください。前述のように、1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)とそれに続く4%ホルムアルデヒドで動物を経心的に灌流します14,15,16。</li>
	<li>前述のように、脊髄からDRG組織を解剖します14、15、16。</li>
	<li>解剖したDRGを4%ホルムアルデヒドに室温で3時間後固定します。</li>
	<li>DRGをPBS中の30%スクロースに4°Cで一晩入れます。</li>
	<li>基準最適切削温度(OCT)の準備<ol><li>OCTコンパウンド( 材料表を参照)を添加してアルミニウムブロックの上面を覆い、-20°Cで5〜10分間凍結します(図1A)。</li>
		<li>クライオスタット( 材料表参照)を使用して、表面がベースOCTとして平らになるまで、OCTの上部を30μmの厚さで切断します(図1B)。</li>
		<li>クライオスタットからアルミニウムブロックを取り外す前に、ベースOCTの下部(6時の位置)に印を付けて向きをマークします(図1C)。</li>
		<li>次の手順では、マークを6時の位置に保ち、同じ方向を維持すると、DRGサンプルのより多くのセクションを取得できます。 注:方向が失われ、DRGサンプルが別の角度で切断された場合、DRGサンプルを上から下に完全に切断することができず、DRGサンプルを切断しようとしたときにベースOCTに遭遇するため、一部のサンプルがベースOCTに取り残されて無駄になります(図1C)。</li>
	</ol></li>
	<li>DRGのOCT埋込みの実行<ol><li>OCTに装着する前にDRGティッシュを乾かしてください。<ol><li>DRGをブロックに添加する前に、サンプルの周りの30%スクロース/PBS溶液を必ず除去してください。</li>
			<li>DRGサンプルを乾燥ペトリ皿に置き(図2A)、乾いたピンセットで2〜3回移動させて乾燥させます(図2B)。</li>
			<li>糸くずの出ないティッシュでピンセットを乾かしてから、別のDRGサンプルを移動させます(図2C)。</li>
		</ol></li>
		<li>乾燥したDRGをベースOCTに置きます。<ol><li>乾いたピンセットを使用して、乾いたDRGをベースOCTの12時の位置に置きます(図1D)。</li>
			<li>DRGの上端とベースOCTの上端の間に少なくとも5mm離してください。</li>
			<li>DRGの背側を12時の位置に、腹側を6時の位置に置きます(図1D)。</li>
		</ol></li>
		<li>DRG組織をOCTで埋め込みます。<ol><li>さらにOCTを追加して、DRGサンプル全体を円形または楕円形に覆い、DRGを中央にします(図1E)。</li>
			<li>OCTの上端がベースOCTの上端でDRGを覆っていることを確認してください(図1F)、これにより切片をスライドガラスに移しやすくなります(図3A)。 メモ:カバーOCTがベースOCTの中央にある場合、ベースOCTの上端がスライドガラスをブロックして断面を収集します(図3B)。</li>
			<li>カバーOCTおよびDRGサンプルを-20°Cでさらに5分間凍結します(図1G)。DRGサンプルの周囲にOCTをトリミングしないでください。</li>
			<li>DRGが見えるまで、カバーOCTの上部を30μmの厚さで切り取ります。</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>2. DRGの凍結切片
<ol><li>クライオスタット切片の厚さを12 μmに変更し、DRG切片をスライド上に切断します(図1H)。</li>
	<li>-20°Cに冷却した小さな絵筆でOCTセクションの下部を持ちます。 注意: セクション全体を完全に切断するのではなく、1〜3 mmを切断しないでおくことが重要です(図1I)。</li>
	<li>室温のピンセットの端を使用して、セクションの下部(6時の位置)にそっと触れ、プラットフォームの表面にくっつくようにします(図1J)。これにより、断面がロール状に湾曲するのを防ぎ、スライド上の断面を回収しにくくします。 注意: セクションの下部がプラットフォームの表面にくっついていて、セクションの上部がカバーOCTに接続されている場合、セクションは平らな形状になり(図1K)、スライド上のセクションをはるかに簡単に収集できます。</li>
	<li>帯電したスライドガラス( 材料表を参照)を取り、スライドをセクションの上にゆっくりと置きます。切片がスライドにくっつき始めたらすぐに、スライドをゆっくりと後方に引きます(図1L)。</li>
	<li>同じプロセスに従って、セクションを重ねることなく、より多くのDRGセクションをスライドに配置します(図1M)。新しいDRG切片は、スライド上にうまく留まることができず、免疫染色プロセス中に洗い流される可能性があるため、別のDRG切片(図4)のOCTの上に配置しないでください。</li>
</ol>3. スライドガラス上のDRG切片のニッスル染色
<ol><li>切片をPBSと0.1% Triton X-10で10分間洗浄します。次に、切片をPBSで2回洗浄します。</li>
	<li>1:300 ニッスル染色剤( 材料表を参照)をスライドに塗布し、室温で 20 分間インキュベートします。</li>
	<li>PBSと0.1%Triton X-100で切片を洗浄します。次に、切片をPBSで5分間2回洗浄し、次いで室温で2時間洗浄します。</li>
	<li>4′,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール(DAPI)フルオロマウント-G( 材料表を参照)を塗布し、切片をカバーガラスで覆います。</li>
</ol>

マウス背根神経節凍結切片

<ol>
	<li>Guan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Injured+sensory+neuron-derived+CSF1+induces+microglial+proliferation+and+DAP12-dependent+pain.">Injured sensory neuron-derived CSF1 induces microglial proliferation and DAP12-dependent pain.</a> Nature Neuroscience. 19 (1), 94-101 (2016).</li><li>Yu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dorsal+root+ganglion+macrophages+contribute+to+both+the+initiation+and+persistence+of+neuropathic+pain.">Dorsal root ganglion macrophages contribute to both the initiation and persistence of neuropathic pain.</a> Nature Communications. 11 (1), 264 (2020).</li><li>Costa, F. A. L., Moreira Neto, F. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Satellite+glial+cells+in+sensory+ganglia:+its+role+in+pain.">Satellite glial cells in sensory ganglia: its role in pain.</a> Brazilian Journal of Anesthesiology. 65 (1), 73-81 (2015).</li><li>Noguri, T., Hatakeyama, D., Kitahashi, T., Oka, K., Ito, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Profile+of+dorsal+root+ganglion+neurons:+study+of+oxytocin+expression.">Profile of dorsal root ganglion neurons: study of oxytocin expression.</a> Molecular Brain. 15 (1), 44 (2022).</li><li>Su, P. P., Zhang, L., He, L., Zhao, N., Guan, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+neuro-immune+interactions+in+chronic+pain:+implications+for+clinical+practice.">The role of neuro-immune interactions in chronic pain: implications for clinical practice.</a> Journal of Pain Research. 15, 2223-2248 (2022).</li><li>Esposito, M. F., Malayil, R., Hanes, M., Deer, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unique+characteristics+of+the+dorsal+root+ganglion+as+a+target+for+neuromodulation.">Unique characteristics of the dorsal root ganglion as a target for neuromodulation.</a> Pain Medicine. 20, S23-S30 (2019).</li><li>Chen, X. J., Sun, Y. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+circuit+mechanisms+of+itch.">Central circuit mechanisms of itch.</a> Nature Communications. 11 (1), 3052 (2020).</li><li>Guan, Z., Hellman, J., Schumacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contemporary+views+on+inflammatory+pain+mechanisms:+TRPing+over+innate+and+microglial+pathways.">Contemporary views on inflammatory pain mechanisms: TRPing over innate and microglial pathways.</a> F1000Research. , (2016).</li><li>Boadas-Vaello, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroplasticity+of+ascending+and+descending+pathways+after+somatosensory+system+injury:+reviewing+knowledge+to+identify+neuropathic+pain+therapeutic+targets.">Neuroplasticity of ascending and descending pathways after somatosensory system injury: reviewing knowledge to identify neuropathic pain therapeutic targets.</a> Spinal Cord. 54 (5), 330-340 (2016).</li><li>Guha, D., Shamji, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dorsal+root+ganglion+in+the+pathogenesis+of+chronic+neuropathic+pain.">The dorsal root ganglion in the pathogenesis of chronic neuropathic pain.</a> Neurosurgery. 63, 118-126 (2016).</li><li>Shorrock, H. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=UBA1/GARS-dependent+pathways+drive+sensory-motor+connectivity+defects+in+spinal+muscular+atrophy.">UBA1/GARS-dependent pathways drive sensory-motor connectivity defects in spinal muscular atrophy.</a> Brain. 141 (10), 2878-2894 (2018).</li><li>Sleigh, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Trk+receptor+signaling+and+sensory+neuron+fate+are+perturbed+in+human+neuropathy+caused+by+Gars+mutations.">Trk receptor signaling and sensory neuron fate are perturbed in human neuropathy caused by Gars mutations.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (16), E3324-E3333 (2017).</li><li>Rubio, M. A., Herrando-Grabulosa, M., Gaja-Capdevila, N., Vilches, J. J., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+somatosensory+neuron+involvement+in+the+SOD1(G93A)+mouse+model.">Characterization of somatosensory neuron involvement in the SOD1(G93A) mouse model.</a> Scientific Reports. 12 (1), 7600 (2022).</li><li>Sleigh, J. N., West, S. J., Schiavo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+video+protocol+for+rapid+dissection+of+mouse+dorsal+root+ganglia+from+defined+spinal+levels.">A video protocol for rapid dissection of mouse dorsal root ganglia from defined spinal levels.</a> BMC Research Notes. 13 (1), 302 (2020).</li><li>Sleigh, J. N., Weir, G. A., Schiavo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple,+step-by-step+dissection+protocol+for+the+rapid+isolation+of+mouse+dorsal+root+ganglia.">A simple, step-by-step dissection protocol for the rapid isolation of mouse dorsal root ganglia.</a> BMC Research Notes. 9, 82 (2016).</li><li>Perner, C., Sokol, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protocol+for+dissection+and+culture+of+murine+dorsal+root+ganglia+neurons+to+study+neuropeptide+release.">Protocol for dissection and culture of murine dorsal root ganglia neurons to study neuropeptide release.</a> STAR Protocols. 2 (1), 100333 (2021).</li><li>Haberberger, R. V., Barry, C., Matusica, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immortalized+dorsal+root+ganglion+neuron+cell+lines.">Immortalized dorsal root ganglion neuron cell lines.</a> Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, 184 (2020).</li><li>Pokhilko, A., Nash, A., Cader, M. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Common+transcriptional+signatures+of+neuropathic+pain.">Common transcriptional signatures of neuropathic pain.</a> Pain. 161 (7), 1542-1554 (2020).</li><li>Martin, S. L., Reid, A. J., Verkhratsky, A., Magnaghi, V., Faroni, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+expression+changes+in+dorsal+root+ganglia+following+peripheral+nerve+injury:+roles+in+inflammation,+cell+death+and+nociception.">Gene expression changes in dorsal root ganglia following peripheral nerve injury: roles in inflammation, cell death and nociception.</a> Neural Regeneration Research. 14 (6), 939-947 (2019).</li><li>Miller, R. J., Jung, H., Bhangoo, S. K., White, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytokine+and+chemokine+regulation+of+sensory+neuron+function.">Cytokine and chemokine regulation of sensory neuron function.</a> Handbook of Experimental Pharmacology. (194), 417-449 (2009).</li><li>Neto, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axonal+outgrowth,+neuropeptides+expression+and+receptors+tyrosine+kinase+phosphorylation+in+3D+organotypic+cultures+of+adult+dorsal+root+ganglia.">Axonal outgrowth, neuropeptides expression and receptors tyrosine kinase phosphorylation in 3D organotypic cultures of adult dorsal root ganglia.</a> PLoS One. 12 (7), e0181612 (2017).</li><li>Nascimento, A. I., Mar, F. M., Sousa, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+intriguing+nature+of+dorsal+root+ganglion+neurons:+Linking+structure+with+polarity+and+function.">The intriguing nature of dorsal root ganglion neurons: Linking structure with polarity and function.</a> Progress in Neurobiolology. 168, 86-103 (2018).</li><li>Middleton, S. J., Perez-Sanchez, J., Dawes, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+structure+of+sensory+afferent+compartments+in+health+and+disease.">The structure of sensory afferent compartments in health and disease.</a> Journal of Anatomy. 241 (5), 1186-1210 (2022).</li><li>Nguyen, M. Q., von Buchholtz, L. J., Reker, A. N., Ryba, N. J., Davidson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-nucleus+transcriptomic+analysis+of+human+dorsal+root+ganglion+neurons.">Single-nucleus transcriptomic analysis of human dorsal root ganglion neurons.</a> eLife. 10, e71752 (2021).</li><li>Usoskin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unbiased+classification+of+sensory+neuron+types+by+large-scale+single-cell+RNA+sequencing.">Unbiased classification of sensory neuron types by large-scale single-cell RNA sequencing.</a> Nature Neuroscience. 18 (1), 145-153 (2015).</li><li>Hunt, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DRGquant:+A+new+modular+AI-based+pipeline+for+3D+analysis+of+the+DRG.">DRGquant: A new modular AI-based pipeline for 3D analysis of the DRG.</a> Journal of Neuroscience Methods. 371, 109497 (2022).</li></ol>

著者は何も開示していません。

このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片作成のための簡単なステップバイステップの手順を提供し、スライド上の高品質のDRG切片を確実に取得します。このプロトコルには 4 つの重要なステップがあります。まず、DRGサンプルとピンセットを乾燥させてから、DRGサンプルをベースOCTに置く必要があります。DRGサンプルを取り巻く液体は、その周囲に氷殻を形成し、その結果、DRG?...

後根神経節(DRG)には、一次感覚ニューロン、組織マクロファージ、および一次感覚ニューロンを取り囲む衛星細胞が含まれています1,2,3,4。これは、無害で有害な信号を処理する際の重要な解剖学的構造であり、痛み、かゆみ、およびさまざまな末梢神経障害に重要な役割を果たします5,6,7,8,9,10,11,12,13。マウス脊髄からDRG組織を解剖する方法はいくつか開発されているが14,15,16、DRG組織は非常に小さく、DRG試料のクライオスタット切片はロール状に湾曲する傾向があり、クライオスタット切片をスライドガラス上に適切に移すことが困難であるため、DRG組織の凍結切片は依然として困難である。しかし、DRG組織の適切な凍結切片は、免疫組織化学研究とDRG感覚ニューロンの構造にとって非常に重要です17,18,19,20,21,22,23。さらに、単一細胞RNAシーケンシングの結果、ヒト24とマウス25の両方でDRG感覚ニューロンの顕著な不均一性が明らかになったため、DRG組織の適切な凍結切片は、さまざまな生理学的および病理学的状態におけるさまざまなDRG細胞の機能的役割を調査するために重要です。
組織透明化技術は、DRG凍結切片の代替技術としてDRG26 の3D再構成を調査するために適用されていますが、組織透明化技術は時間と労力がかかります。それに比べて、DRGの凍結切片は迅速かつ比較的簡単に実行できるため、DRGおよび中枢神経系の他の領域の免疫組織化学および構造研究にとって重要な技術であることに変わりはありません。しかし、DRGや特定の脳領域などの組織のサンプルサイズが小さいため、スライドガラス上に高品質で無傷の平らなクライオスタット切片を得ることは、神経科学研究における課題であり、マウスDRGなどの小さなサイズの組織サンプルを凍結切片化するための最適なプロトコルを現時点では説明していません。
このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片作成のための簡単なステップバイステップの手法を提供し、その後のDRG研究のためにスライド上の高品質のDRG切片をできるだけ多く確実に取得します。この手法は、DRGサンプルの凍結切片作成に特化して設計されていますが、小さなサンプルサイズで他のさまざまな組織の凍結切片化にも使用できる可能性があります。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Avertin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T48402-25G</td>
			<td>Anesthetize animal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Epredia&#160;Cryotome Cryostat Cryocassettes, 25 mm dia. Crosshatched</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>1910</td>
			<td>Hold the OCT section at the bottom&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergo Tweezers</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>S95310</td>
			<td>Using the end of a tweezer to gently touch the bottom (6 o&#8217;clock) of the section so that it sticks to the platform surface to prevent the section from curving back in a roll&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand&#160;Superfrost Plus Microscope Slides</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>1255015</td>
			<td>To collect the DRG section&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marking pens</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>133794</td>
			<td>&#160;Mark the orientation of base OCT</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scigen&#160;Tissue-Plus O.C.T. Compound</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>&#160;23730571</td>
			<td>Embedding medium for frozen tissue specimens to ensure optimal cutting temperature (O.C.T.).</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a procedure for mouse dorsal root ganglion cryosectioning

高品質のマウス後根神経節(DRG)クライオスタット切片は、炎症性および神経因性疼痛、かゆみ、その他の末梢神経疾患の研究における適切な免疫化学染色およびRNAscope研究に不可欠です。しかし、DRG組織のサンプルサイズが小さいため、高品質で無傷かつ平坦なクライオスタット切片をスライドガラス上に一貫して取得することは依然として課題です。これまでのところ、DRG凍結切片の最適なプロトコルを説明した記事はありません。このプロトコルは、DRG凍結切片に関連する頻繁に遭遇する問題を解決するための段階的な方法を提示します。本稿では、DRG組織サンプルから周囲の液体を除去し、DRG切片をスライド上に同じ向きで配置し、スライドガラス上の切片を湾曲せずに平らにする方法を説明します。このプロトコルはDRGサンプルの凍結切片用に開発されましたが、サンプルサイズが小さい他の多くの組織の凍結切片にも適用できます。

The dorsal root ganglion (DRG) contains the primary sensory neurons, the tissue macrophages, and the satellite cells that surround the primary sensory neurons1,2,3,4. It is a key anatomic structure in processing innocuous and noxious signals, and plays critical roles in pain, itch, and various peripheral nerve disorders5,6,7,8,9,10,11,12,13. Although several methods have been developed to dissect DRG tissue from the mouse spinal cord14,15,16, cryosectioning of the DRG tissue remains challenging as the DRG tissue is quite small, and cryostat sections of DRG samples tend to curve into rolls, making it difficult to properly transfer the cryostat sections onto glass slides. However, proper cryosectioning of the DRG tissue is crucial for immunohistochemistry studies and the structure of DRG sensory neurons17,18,19,20,21,22,23. Moreover, as single-cell RNA sequencing results have revealed the remarkable heterogeneity of DRG sensory neurons in both humans24 and mice25, proper cryosectioning of DRG tissue is critical for investigating the functional role of different DRG cells in various physiological and pathological conditions.
Although the tissue-clearing technique has been applied to investigate the 3D reconstruction of the DRG26 as an alternative technique of cryosectioning the DRG, the tissue-clearing technique is time- and labor-consuming. In comparison, cryosectioning of the DRG is quick and relatively easy to perform, and thus it remains to be a key technique for immunohistochemistry and structure studies of the DRG and other regions of the central nervous system. However, obtaining high-quality, intact, and flat cryostat sections onto glass slides remains to be a challenge in neuroscience research because of the tiny sample size of tissues, like the DRG and certain brain regions, and there is no article describing the optimal protocol at this point for cryosectioning small-sized tissue samples, such as mouse DRGs.
This protocol provides an easy, step-by-step technique for cryostat sectioning of the mouse DRG to reliably obtain as many high-quality DRG sections on the slides for subsequent DRG studies. While specifically designed for cryosectioning DRG samples, this technique can potentially be used for cryosectioning various other tissues with a small sample size.

著者スポットライト:マウス背根神経節凍結切片の手順  

マウス背根神経節凍結切片の手順

現在の研究では、1 つのマウス L4 DRG から約 16 の連続した高品質の DRG 切片を収集しました。得られた切片は歪みがなかった。 図1 は、凍結切片の段階的な手順を示しています。組織切片からの余分な液体の除去を 図2に示します。組織のOCT包埋のプロセスを 図3に示します。 図4 は、スライドガラス上?...

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ここでは、高品質な後根神経節クライオスタット切片を安定的に取得するための開発を紹介します。

High-quality mouse dorsal root ganglion (DRG) cryostat sections are crucial for proper immunochemistry staining and RNAscope studies in the research of ...

高品質で無傷かつ平坦なマウス後根神経節クライオスタット切片を一貫して取得することは依然として課題です。本研究は、理想的なマウス後根神経節クライオスタット切片の獲得方法に答えることを目的としています。このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片から、高品質、インタクト、フラットマウスDRGクライオスタット切片までの簡単なステップバイステップの技術を提供します。本稿では、マウスDRGサンプル組織から周囲の液体を除去し、DRG切片を同じ向きのスライドに配置し、DRG切片を湾曲させずに平らにする方法を説明します。大きな課題の1つは、マウスDRGのOCT部分がロール状に湾曲する傾向があり、スライドガラス上に配置するのが難しいことです。また、マウスDRGのサイズが小さいため、1つのサンプルから十分な切片を取得することも困難です。

a-procedure-for-mouse-dorsal-root-ganglion-cryosectioning

Research

JoVE Journal

Neuroscience

A Procedure for Mouse Dorsal Root Ganglion Cryosectioning

4.4K ビュー.  Capital Medical University. 高品質で無傷かつ平坦なマウス後根神経節クライオスタット切片を一貫して取得することは依然として課題です。本研究は、理想的なマウス後根神経節クライオスタット切片の獲得方法に答えることを目的としています。このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片から、高品質、インタクト、フラットマウスDRGクライオスタット切片までの簡単なステップバ?...

ビデオ: 著者スポットライト:マウス背根神経節凍結切片の手順  

High-quality mouse dorsal root ganglion (DRG) cryostat sections are crucial for proper immunochemistry staining and RNAscope studies in the research of inflammatory and neuropathic pain, itch, as well as other peripheral neurological conditions. However, it remains a challenge to consistently obtain high-quality, intact, and flat cryostat sections onto glass slides because of the tiny sample size of the DRG tissue. So far, there is no article describing an optimal protocol for DRG cryosectioning. This protocol presents a step-by-step method to resolve the frequently encountered difficulties associated with DRG cryosectioning. The presented article explains how to remove the surrounding liquid from the DRG tissue samples, place the DRG sections on the slide facing the same orientation, and flatten the sections on the glass slide without curving up. Although this protocol has been developed for cryosectioning the DRG samples, it can be applied for the cryosectioning of many other tissues with a small sample size.

Presented here is the development for consistently acquiring high-quality dorsal root ganglion cryostat sections.