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요약

amperometric 기술은 자연 도파민의 산화에 의해 생성 된 산화 전류를 검출하여 하나의 세포에서 도파민 릴리스를 측정합니다. 동시 전압 클램프 및 amperometry 방법론은 도파민 수송과 도파민의 역방향 전송에서이 활동의​​ 규제 역할의 전체 '활동'사이의 기계론의 관계를 알 수있다.

초록

시냅스 갈라진 틈, 도파민에 출시 된 이후의 사전 및 사후 신경 목표 1을 통해 자사의 생물학적 특성을 발휘. 도파민 신호는 확산 2-3, 세포 효소 4, 막 수송 (5)에 의해 종료됩니다. 도파민 뉴런의 사망시 신경 분열에 위치한 도파민 수송은 안쪽 도파민 유량 (통풍 관)를 통해 출시 아민을 지 웁니다. 도파민 수송은 바깥쪽으로 교통이나 도파민 5 유출이라는 프로세스에서 내부에서 외부로 아민을 공개 역방향으로 작업 할 수 있습니다. . 앞으로 (통풍 관) 및 역방향 (유출) 5 : 20 년 이상 전 Sulzer 외는 도파민 수송이 두 활동의 모드에서 작동 할 수 있습니다 발표했다. 전송을 통해 유출을 통해 발표 신경 전달 물질은 세포 공간으로 도파민 많은 양의 이동 할 수 있으며, 세포 도파민 H의 주요 규제 역할을 보여왔다omeostasis 6. 여기 동시 패치 클램프 및 amperometry 녹음이 막 잠재력이 통제 밀리 초 시간 해상도 유출 메커니즘을 통해 출시 도파민을 측정하는 데 사용할 수있는 방법에 대해 설명합니다. 이 경우 전체 세포 현재와 산화 (amperometric) 신호는 Axopatch 200B 앰프 (분자 장치, 전체 셀 현재 기록은 1,000 Hz에서 로우 패스 베셀 필터가 설정된)를 사용하여 동시에 측정합니다. 탄소 섬유 전극을 기록 amperometry는 두 번째 앰프 (Axopatch 200B)에 연결되어 있고 플라즈마 막에 인접 배치하고 700 뮤직 비디오에서 개최 때문입니다. 전체 셀과 산화 (amperometric) 전류가 기록 할 수 있으며, 전류 전압 관계는 전압 단계 프로토콜을 사용하여 생성 할 수 있습니다. 농도로 변환을 필요로하는 일반적인 amperometric 보정 달리, 현재는 효과적인 볼륨 7 고려하지 않고 직접보고됩니다. 따라서, 결과 데이터일부 송신기는 대량 솔루션으로 손실되기 때문에 도파민 유출에 하한을 나타냅니다.

프로토콜

1. 장비 및 용품

  1. 배경 잡음을 줄일 수있는 안티 진동 테이블 (TMI)의 상단에 패러데이 케이지를 탑재합니다.
  2. 동시 패치 클램프 amperometry 기록 시스템은 우수한 DIC 광학 및 긴 작동 거리 렌즈와 역 현미경이 필요합니다. 자동차 배터리에 등대 현미경을 연결합니다. 시스템이 DC 광원은 또한 전기 노이즈를 감소합니다.
  3. 유압 마이크로 (Siskiyou) 추가 감소 소음. 우리의 구성에서, 우리는 전체 셀 녹음 오른쪽 손잡이 속이는, 그리고 amperometry에 넘겨 왼쪽을 사용합니다.

2. 녹음을위한 전극을 준비

  1. P-2000 풀러 (셔터)에 석영 피펫을 사용하여 패치 전극을 당겨. 우리 풀다운 두 열 사이클과 함께 약 5 초 정도 소요됩니다. 이 열 시간은 우리의 전체 세포 패치 피펫에 일관성 저항 (MΩ 3-4) 결과입니다.
  2. 로 전극을 기입2 밀리미터 도파민과 오른쪽 속이는에 마운트를 포함하는 피펫 솔루션입니다. 알루미늄 호일로 DA를 포함하는 피펫 솔루션을 가지고있는 용기를 넣어. 얼음 계속. 도파민은 oxidizable입니다. 빛으로부터 보호 얼음에 솔루션을 유지하는 것은 도파민의 산화 속도를 감소합니다.
  3. 부드럽게, 저장 상자에서 ProCFE (Dagan) 저소음 탄소 섬유 amperometric 전극을 제거 amperometric 어댑터 (그림 1에 묘사)에 수은, 마운트로 입력하고 다음 오른쪽 maniupulator에 탑재합니다. 탄소 섬유의 맨 끝을 잡고 손상에서 탄소 섬유의 끝을 보호합니다. 끝이 깨끗하고 손상되지 않도록하기 위해 실험실 현미경으로 전극을 검사합니다.
  4. 외부 솔루션을 포함하는 유리 바닥 배양 접시에 전극을 넣어 amperometric 전극의 무결성을 검사합니다. 도파민의 부재에서 기준 전류를 기록합니다. 요리에 1mM DA 솔루션 10 μl를 추가합니다. 좋은 amperometric 전극 재코드 산화 현재의 증가. 특정 amperometric 전극이 제대로 작동하기 위해 각 실험의 시작과 끝에서이 단계를 반복합니다.

3. 유리 바닥 배양 접시에 도파민 전송을 표현하는 엔지니어링 도파민 뉴런 또는 셀의 기본 Neuronal 문화 준비

  1. 부드럽게 따뜻한 외부 솔루션을 셀이나 도파민 뉴런을 세 번 씻는다.
  2. 현미경 단계에 유리 바닥 페트리 접시를 탑재합니다.

4. 셀을 시각화 및 실험을 수행

  1. 명확하게 세포를 시각화 할 수있는 올바른 초점을 찾아보세요. 패치 전극에 긍정적 인 압력을 넣습니다. 그런 다음, 부드럽게 솔루션으로 두 전극을 가지고 있으며, 셀을 닫습니다.
  2. 셀 (왼쪽), 그리고 오른쪽에있는 패치 전극 옆에있는 amperometric 전극을 배치합니다.
  3. 패치 전극과 같은 감방에 gigaohm 인감을 충족해야합니다. 에 흡입과 파열 인감전체 셀 구성을 얻을 수 있습니다.
  4. 셀에 도파민을 포함하는 내부 솔루션의 투석을위한 5-8 분 소요됩니다.
  5. 원하는 전압 단계 또는 램프 프로토콜을 사용합니다. 막 가능성이 패치 피펫을 통해 제어되는 동안 동시에 패치 피펫 및 전체 셀 전류를 측정하고 도파민 수송을 통해 도파민의 전송을 바꿀 수있는 amperometric 전극 모두에서 데이터를 수집.

결과

amperometry와 함께 패치 클램프 전압에 따라 달라 DAT로 인한 DA 유출. 그림 2A는 세포 내 환경과 막 잠재력이 전체 셀 패치 피펫으로 고정 아르 DAT로 인한 DA 유출의 대표 실험 구성 및 기록을 보여줍니다 측정 할 수 있습니다. 이 기법 사용, YFP - DAT 단백질을 표현 세포는 전압 고정 amperometric 전극이 플라즈마 막 (그림 2A)에 위치하는 동안 전체 세포 패치 피펫으로. 전체 전지 전...

토론

동시 전압 클램프와 amperometry은 다음과 같은 이점이 있습니다. 모든 세포 유형은 액세스 할 수 있습니다 및 녹음에 사용할 수 있습니다. 녹음이 완료되어있는 셀이나 신경 세포의 식별은 간단하고 간단합니다. 셀이 휘황 관심 단백질에 형광 태그를 추가하여 표시하는 경우 특히, 실험 쉽게 대상 셀이나 신경을 선택할 수 있습니다. 실험 구성은 패치 피펫을 통해, 또는 목욕 솔루션 10이 요?...

공개

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

감사의 말

우리는이 원고의 중요한 검토 박사 Sanika Chirwa 감사드립니다. 이 작품은 건강의 국립 연구소 (DA026947, DA021471 및 NS071122)에 의해 지원되었다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
장비
방진 테이블 w / 패러데이 케이지 기술 제조 기업 63-500 시리즈 우리는 모델 63-543를 사용
역 현미경 니콘 TE-2000 니콘 중단 지금 이클립스 티
두 로우 노이즈 앰프 axopatch 200b 분자 장치 800-635-5577
1 CV 203 BU의 headstage 분자 장치 800-635-5578
1-HL-U 피펫 홀더 분자 장치 800-635-5579
Digidata 1440A A / D 변환기 분자 장치 800-635-5580
두 manipulators Siskyou, 왼쪽으로오른쪽 넘겨 Siskiyou MX6600R MX6600L 877-313-6418
레이저 피펫 풀러 셔터 악기 P-2000 888-883-0128
낮은 소음 탄소 섬유 amperometric 전극 ProCFE www.dagan.com
낮은 소음 석영 피펫 셔터 악기 QF100-70-7.5 888-883-0128
12 볼트 자동차 배터리 널리 사용되는
자동차 배터리 충전기 널리 사용되는
시약
나트륨 염화물 (NaCl) 시그마 S7653
HEPES 시그마 H3375
우선 당 시그마 G7528
황산 마그네슘 (MgSO 4) 시그마 M2643
인산 칼륨 일 염기의 (KH 2 PO 4) 시그마 P5655
염화칼륨 (KCl) 시그마 P9333
칼슘 염화물 이수화 (CaCl 2 • 2H 2 0) 시그마 223506
마그네슘 염화물 hexahydrate (MgCl 2 • 6H 2 0) 시그마 M2670
EGTA 시그마 E0396

참고문헌

  1. Michael, A. C., Ikeda, M., Justice, J. B. Mechanisms contributing to the recovery of striatal releasable dopamine following MFB stimulation. Brain Res. 421, 325-335 (1987).
  2. Gonon, F. Prolonged and extrasynaptic excitatory action of dopamine mediated by D1 receptors in the rat striatum in vivo. J. Neurosci. 17, 5972-5978 (1997).
  3. Sulzer, D., Pothos, E. N. Regulation of quantal size by presynaptic mechanisms. Rev. Neurosci. 11, 159-212 (2000).
  4. Napolitano, A., Cesura, A. M., Da Prada, M. The role of monoamine oxidase and catechol O-methyltransferase in dopaminergic neurotransmission. J. Neural. Transm. Suppl. 45, 35-45 (1995).
  5. Sulzer, D., Maidment, N. T., Rayport, S. Amphetamine and other weak bases act to promote reverse transport of dopamine in ventral midbrain neurons. J. Neurochem. 60, 527-535 (1993).
  6. Salahpour, A., et al. Increased amphetamine-induced hyperactivity and reward in mice overexpressing the dopamine transporter. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 4405-4410 (2008).
  7. Khoshbouei, H., Wang, H., Lechleiter, J. D., Javitch, J. A., Galli, A. Amphetamine-induced dopamine efflux. A voltage-sensitive and intracellular Na+-dependent mechanism. J. Biol. Chem. 278, 12070-12077 (2003).
  8. Goodwin, J. S., et al. Amphetamine and methamphetamine differentially affect dopamine transporters in vitro and in. , 284-2978 (2009).
  9. Kahlig, K. M., et al. Amphetamine induces dopamine efflux through a dopamine transporter channel. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 3495-3500 (2005).
  10. Swant, J., Chirwa, S., Stanwood, G., Khoshbouei, H. Methamphetamine reduces LTP and increases baseline synaptic transmission in the CA1 region of mouse hippocampus. PLoS One. 5, e11382 (2010).
  11. Gnegy, M. E., et al. Intracellular Ca2+ regulates amphetamine-induced dopamine efflux and currents mediated by the human dopamine transporter. Mol. Pharmacol. 66, 137-143 (2004).

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