라이브 세포 형광 현미경을 사용하여 박테리아 독소 유도 응답의 시각화

요약

재조합에서 콜레스테롤 바인딩 독소 streptolysin O를 정화하기위한 방법 E. 대장균 및 시각화가 설명되어 있습니다. 독소의 현지화 배달 독소 생물학의 소설 측면을 드러내는 대상 셀에 신속하고 복잡한 변화를 유도한다.

초록

세균 독소는 세포 내용과 외부 환경으로부터 물질의 유입을 누설 할 수 있도록 모공을 형성 세포막에 콜레스테롤에 바인딩. 셀은 운영 중 막 복구 프로세스가 필요합니다이 모욕, 복구, 또는 다른 독소 노출과 셀 타입 ^1의 양에 따라 죽을 수 있습니다. 또한 이러한 독소는 프로 염증성 크린 시토 킨 ² 배열을 생산 식세포 등의 면역 세포의 활성화를 통해 감염된 호스트에 강한 염증 반응을 유도. 대부분의 그람 양성 세균은 대부분 uncharacterized 메커니즘을 통해 독성에 기여하는 표시되었습니다 콜레스테롤 구속력이 독소를 생성합니다.

이러한 독소에 노출 세포의 플라즈마 막에 Morphologic 변화는 본질적인 세포 방어를 제안, 세포 공간으로 발산 할 수 있습니다 콜레스테롤 강화 표면 돌기들에 대한 자신의 격리를 포함메커니즘 ^3,4. 이 과정은 신진 대사 활동의 부재에있는 모든 세포에서 발생, 화학 고정 ⁽⁴⁾ 후 EM을 사용하여 시각화 할 수 있습니다. 이러한 독소 노출에 대한 응답으로 염증을 중재 대 식세포와 같은 면역 세포에서 유도 막 소포는 IL-1 가족의 크린 시토 킨를 포함하도록 제안하고 독소를 흘리는 이러한 프로 염증성 크린 시토 킨 ^5,6,7을 전파 모두에 책임이있을 수 있습니다. 모두 ⁸ caspase-1에 의존 프로세스입니다으로 IL-1β 자료 및 세포 죽음의 특정 유형 사이의 링크를 칭했다 pyroptosis이 제안되었습니다. 막 소포의 독소 바인딩, 개구, 시토 킨 릴리스, 그리고 잠재적으로 세포 사망을 포함이 대 식세포 반응의 복잡성을 해결하기 위해, 우리는 다음과 같은 독소 세포의 상호 작용 실시간으로 시각화 할 수 있도록 라벨 기술과 형광 현미경 방법을 개발 장애와 죽음의 측정 (그림 1). 사용라이브 셀 이미징의 다른 기술의 한계로 인해이 필요합니다. 유동 세포 계측법은 개별 세포의 고해상도, 실시간 시각화를 제공하지 않습니다 동안 생화학 접근 방법은 개별 셀에서 발생하는 효과를 확인할 수 없습니다. 여기에 설명 된 방법은 세포에서 복잡한 phenotypic 변화를 포함하는 다른 자극에 의​​해 유도 반응의 운동 분석에 적용 할 수 있습니다.

프로토콜

1. Streptolysin O의 정화 (SLO)

1. 0.5 L의 LB의 국물에 플라스미드 pBADgIII-SLOhis ⁹ 포함 BL21 GOLD 세포의 20 ML 밤 문화의 예방 500 μl 50 MG / ML 암피실린을 추가합니다. 37 ° C에서 225 rpm으로 문화를 흔들어 OD _600까지 = 0.6은, 보통 1.5 시간을 ~. 10,000 5 분 XG에서 1 ML 박테리아를 (T _0으로 간주) 원심 분리기, 140 μl 1X SDS 샘플 버퍼 / 1 OD에서 펠렛을 분해하고 단백질 순도 분석에 전단 DNA에 sonicate.
2. 문화 5 ML 20 % arabinose의 추가와 박테리아를 유도, 3 시간에 대한 온도는 실온에서 225 rpm으로 흔들. 박테리아의 1 ML를 수집 원심 분리기 등 위의 순도 분석을위한 T ₃ 번 지점에 대한 1X SDS 샘플 버퍼에 용해.
3. 500 ML의 원심 분리기 병에 남아있는 세균을 수집, 4 ° C (8,500 RPM Sorvall GS-3 회)에서 12 분에 12,000 XG를 돌리다. -80에서 표면에 뜨는, 저장 펠릿을 가만히 따르다 필요한 경우 더 이상 ° C 하룻밤 나.
4. FR을 Resuspend10 ML 얼음 속에서 ozen 펠릿은 Lyse / 버퍼를 씻어 (50 MM 아니 ₂ PO _4, 300 MM NaCl, 10 MM 이미 다졸, 산도 8.0) 400 μl 25% 튼 X-100, 100 μl 100 MG / ML 라이소자임, 50과 보충 μl 200 밀리미터 phenylmethylsulfonyl 플루오르 화 (PMSF). 50 ML 오크 릿지 관에 resuspended 펠릿을 전송합니다.
5. 30 초 간격으로 얼음에 30 초에 5 번 lysate Sonicate. 스핀은 4 ° C (18,000 RPM Sorvall SS-34 회)에서 20 분에 39,000 XG에서 오크 리지 관 lysate를 sonicated.
6. lysate가 회전하는 동안 Lyse / 4에서 5 분 동안 1,200 rpm으로 버퍼와 스핀을 씻으 ° 10 ML 1 개 ML 니켈 NTA 아가로 오스를 씻어 C. (모든 자세한 세차 / elutions이 상황에서 원심 분리를 사용하여). 세탁을 대기음.
7. 단계 1.5에서 니켈 NTA 아가로 오스에 박테리아 표면에 뜨는을 추가, 4에서 2.5 시간에 부드럽게 흔들 ° C. 표면에 뜨는 수집 봐. 10 μ 4X SDS 샘플 버퍼를 표면에 뜨는 30 μl을 결합하고 순도 분석에 저장합니다. 버퍼를 Lyse / 쉐이브와의 구슬 4 번 씻으십시오트리스 / 소금 버퍼 (50 MM 트리스, 300 MM NaCl, 산도 8.0)에 CE.
8. , 구슬에 1 ML의 용출 버퍼 (트리스 / 소금 버퍼 250 MM 이미 다졸) 5 μl 1 M dithiothreitol (DTT)을 추가 10 분 동안 얼음에 잠복기, 회전하고 표면에 뜨는를 수집하여 3 회를 Elute. SLO는 매우 산화 환원에 민감한 단백질이며, 항상 얼음에 보관해야합니다. 심지어 짧은 기간 동안, 37 ° C로 예열하면 일단 감소, 단백질이 빠른 속도로 그 활동을 잃게됩니다.
9. 4에 1 분에 10,000 XG에서 용출 버퍼, 스핀에 500 μl polymixin - 복합 아가로 오스을 씻으 500 μl의 ° C와 resuspend. 독소를 고갈하려면 각 용출에 200 μl 구슬을 추가하고 30 분에 대해 4 ° C를 흔들. 1 4의 분 ° C, 그리고 표면에 뜨는을 저장 10,000 XG에 스핀. SDS-PAGE 분석을위한 10 μl 4X SDS 샘플 버퍼 각 용출의 30 μl 조화를 이루고 있습니다.
10. SDS-PAGE에 의해 elutions의 순수성을 테스트합니다. 종기 샘플 10 % 젤에 5 분 및로드 10 μl에 95 ° C에서 젤 분석에 저장되었습니다. GE를 얼룩단백질을 시각화 할 수 Coomassie 함께하는 (그림 2A). SLO 69 kDa입니다. (일반 수율은 4 MG / 처음 두 elutions에 ML이지만, 박테리아 스트레인과 플라스미드가 사용에 따라 다를 수 있습니다) 단백질 농도를 결정하기 위해 브래드 포드 분석을 수행합니다.
11. 각 용출의 용혈성 활동 (아래)를 테스트합니다. 순도, 집중력 및 용혈성 활동이 만족 풀 elutions. 단일 사용 aliquots (일반적으로 5-10 μl)에 나누어지는의 SLO는 -80에서 드라이 아이스 및 매장 ° C.에 고정

2. 용혈성 분석

1. RBC 분석 완충액 (0.3 % 소 혈청 알부민 (BSA), 2 MM CaCl _2, 10 밀리미터 Hepes, 산도 7.4), 5 분에 1,200 rpm으로 회전에 양 적혈구 (적혈구)을 씻어, 그리고 2.5 %의 적혈구시에 resuspend 10 ML RBC 분석 버퍼.
2. / 잘 얼음에 96도 V-바닥 판에 10 μl RBC 분석 버퍼를 추가합니다. 순차적으로 중복 된 각 용출을 희석. 일반적인 희석 범위는 1:1,000으로 1:512,000 있습니다. 10을 더 독소가있는 3 개의 우물과 3 우물을 포함μl 2% 튼 각각 최소 및 최대 우물과 같은 X-100,.
3. 37 플레이트 및 배양을 맡아 ° C 30 분. 5 분에 1,200 rpm으로 원심 분리기. 평면 바닥 96 잘 판에 표면에 뜨는의 70 μl를 전송합니다. _{405 번을} 읽어 보시기 바랍니다. 한 단위는 적혈구의 50 % 용해에 필요한 독소의 희석입니다. 독소 활동은 1 단위 * 희석 factor/0.01 ML입니다.

3. 셀 Lytic 분석

1. 수확 세포, 수, 스핀. 2x10에 Resuspend 버퍼에 ⁶ / ML R / B (2 MM과 RPMI CaCl _2, 0.5 % BSA) 및 20 μg / ML의 propidium의 요오드화물. 96 - 웰 V-바닥 판에 100 μl 세포를 추가합니다.
2. 직렬 셀에 100 μl 독소 또는 100 μl 버퍼 R / B을 추가, 버퍼 R / B에 최종 농도를 2 배에 SLO를 희석. 배양 5 분 37 ° C. U / ML 2000에서 31.25 U / ML에 일반적인 최종 농도 범위.
3. 흐름 cytometer에 세포를 실행하고 phycoerythrin (PE)에 대한 필터 데이터를 수집합니다. 한 로그 근무 transiently permeabilized cel을 나타냅니다이게 3 로그 근무 시간이 죽은 세포에게 ⁴ 나타내며. 다음과 같이 실험 (% PI ^높은 _EXP)에서 컨트롤에 죽은 세포의 비율 (% PI ^높은 _CTL)을 차감하여 세포의 특정 용해를 계산 : 특정 용해 = (% PI ^높은 _EXP - % PI ^높은 _CTL) / (100 - % PI ^높은 _CTL) * 100

4. 문화 요리의 세포에 독소의 인도를 Micropipette

1. 콜라겐 - 코팅 유리 하단 35mm 요리에 대한 실험 판 2x10 ⁵ 대 식세포하기 전에 어느 날.
2. 현미경과 microinjector를 켜십시오. 온수 무대 시간이 37 ° C.에 따뜻하게 할 수 있도록 허용 현미경의 선택은 일반적으로 로컬 사용할 수 있습니다 무엇 이냐에 따라 달라집니다. 현미경은 37 요리를 가열의 단계 수, 역 단계가 필요 ° C, 선택한 염료, 그리고 물리적 microinjector을 연결하는 공간에 적합한 여기 / 방출 필터 큐브. 버트 란드 렌즈microinjection에 도움이되지만 필요하지 않습니다. 현미경을 유도하는 컴퓨터가 데이터를 수집하고 저장할 충분한 메모리가 필요합니다.
3. 37 번 염색과 30 분에 라벨 세포 ° C. 검정에 따라 라벨은 5 μl Fura2 1 ML 전체 미디어에서 오전 1 ML PBS 또는 2 μl calcein에서 오전 짓을 할 수 있습니다. Fura2를 들어, 여기 / 방출은 510분의 340 나노 미터와 510분의 380 nm의에 대한 수집 및 380분의 340 신호의 비율은 칼슘 유량을 결정합니다. ethidium homodimer는 620분의 525 nm의이며, APC는 660분의 650 nm의 상태에서 calcein를 들어, 여기 / 방출은 515분의 495 nm의 것입니다. 다른 레이블도 선택 될 수있다.
4. 한 ML RPMI에서 PBS와 장소가있는 세포를 씻어은 2 MM CaCl ₂ 보충. 현미경에 장착합니다.
5. 4 ° C.에 20,000 XG 10 분에 독소와 dextran 물에, 그리고 원심 분리기를 희석 일반적으로, 1 μl SLO과 4 μl 10 MG / ML dextran-555은 6 μl 물에 희석되어 있습니다. Dextran 또는 다른 형광 유체 상 분자는 펨토 - 끝이 막힌되어 있지 않은지 확인하는 데 사용하고, 인제합니다CTS는 원하는.
6. microloader를 사용하여 희석 독소 0.07 μl와 함께 후방에서 펨토 - 팁을로드합니다.
7. microinjector에 펨토 - 팁을로드합니다. 팁은 모든 방향으로 이동하는 방 세포의 중심을 통해 앉아 있도록 주입기의 각도를 조정합니다. Z-제한을 해제합니다. 사출 설정은 20 PSI 백 압력 120 PSI에 0.5 초에 주입해야합니다. 이 매체를 입력 할 때까지 팁을 낮 춥니 다.
8. 버트 란드 렌즈, 센터에게 팁을 사용하고이 가까운 셀 인하되기 때문에 팁을 따르십시오. 일단 초점을 잃어, 일반 광학으로 전환합니다. 바늘의 그림자가 필드에 분명해야합니다. 셀 위에 집중하고 초점이 될 때까지 바늘을 낮 춥니 다. 세포에 다시 초점을주의 깊게 셀에 인접한 바늘을 가져. 분사에 대한 Z-한도를 설정합니다. 원하는 위치로 팁을 이동 영상을 개시 원하는 시점에서 독소를 출시 할 주입. 바늘을 올려, 세포의 새로운 영역으로 이동 주입. 모든 원치 않는을 방지하기 위해 홈 위치로 바늘을 이동바늘의 독소 누출.

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결과

일반적으로 10 ⁷ -10 ⁸ U / ML SLO은 4 MG / ML의 단백질 농도를 구할 수 있습니다. 세포 용해에 필요한 독소의 양이 세포 유형에 따라 다르며, 보통 125-500 U / ML SLO (그림 2B)입니다. 다른 사람들이 (특히 T 세포 라인) 더 민감하지만 식세포와 같은 세포 유형 (4,000 U / ML) 더 내성이 될 수 있습니다. 이러한 민감한 상업적으로 사용할 수 SLO와 일치합니다. 독소 활동은 독소의 각 배?...

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토론

기술은 박테리아 독소에 대한 면역 세포의 반응을 시험 할 수 여기에 설명했다. 가장 중요한 단계는 독소의 처리와 주입합니다. 독소 활동도의 취약성으로 인해 같은 준비의 다른 aliquots 사이에 매우 변수가 될 수 있습니다. 이 중 참조 셀 라인 또는 적혈구에 대한 독소의 각 나누어지는을 테스트하거나 독소의 그라디언트를 사용하여 필요로. 독소 그라디언트는 등 micropipette에 의해 전달, 실시간?...

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자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
시약의 이름	회사	카탈로그 번호	코멘트 (선택 사항)
니켈 NTA 아가로 오스	Qiagen	30,210
polymixin - 아가로 오스	시그마	P1411-5ML
Zeba 탈염하다 스핀 컬럼	어부	PI-89891
양 적혈구	어부	50-415-688
pBADgIII-SLO	N / A	N / A	심판이 9 참조
Cy5 monoreactive 염료	GE 헬스 케어	PA25001
Fura2-AM	생명 기술	F1221
Calcein AM / 장군님hidium homodimer	생명 기술	L3224
안티 CD11c-APC	BD Biosciences	550261
콜라겐 - 코팅 유리 바닥 요리	Mattek	P35GCol - 1.5-10-C
펨토 - 팁 II	어부	E5242957000
Microloader	어부	E5242956003
dextran 알렉사 555	생명 기술	D34679
Injectman NI이	Eppendorf	920000029
FemtoJet	Eppendorf	5247 000.013
			특정 시약 및 equipm의 표 1. 목록 및 소스다닐이 필요 해요. 회사 카탈로그 번호와 함께이 프로토콜에서 사용되는 특정 장비와 시약이 나열되어 있습니다.
			버퍼 구성 사용 단계 세탁 / Lyse 50 ㎜ 아뇨 2 PO 4 300 MM NaCl 10 MM 이미 다졸, pH를 8.0 1.4 트리스 / 소금 50 ㎜ 트리스, 산도 8.0 300 MM NaCl 1.7 용출 버퍼 50 ㎜ 트리스, 산도 8.0 300 MM NaCl 250 MM 이미 다졸 1.8 RBC 분석 버퍼 0.3 % BSA 이 MM CaCl 2 10 MM HEPES, pH를 7.4 2.1 버퍼 R / B RPMI 세포 배양액 이 MM CaCl 2 0.5 % BSA 3.1
			이 프로토콜에 사용되는 버퍼의 표 2. 목록입니다. 사용되는 버퍼는 자신의 구성과 그들이 프로토콜에 사용되는에있는 첫 번째 단계가 나열됩니다.